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Molecular identification and partial sequence analysis of Cucumber mosaic virus isolate from Atractylodes macrocephala Koidz

白术矮化病毒病病原的分子鉴定和部分序列分析



全 文 :植物病理学报
ACTA PHYTOPATHOLOGICA SINICA  44(4): 357 ̄362(2014)
收稿日期: 2012 ̄09 ̄06ꎻ 修回日期: 2014 ̄05 ̄14
基金项目: 山西农业大学“中青年学术带头人及学术骨干”专项资金ꎻ山西省自然科学基金(2012011032 ̄5)
通讯作者: 牛颜冰ꎬ教授ꎬ主要从事植物病毒学研究ꎻTel:0354 ̄6287205ꎬE ̄mail:niuyanbingbest@163.comꎮ
doi:10.13926 / j.cnki.apps.2014.04.003
白术矮化病毒病病原的分子鉴定和部分序列分析
牛颜冰∗ꎬ 时晓丽ꎬ 赵慧琪ꎬ 张西梅ꎬ 赵保佳
(山西农业大学生命科学学院ꎬ太谷 030801)
摘要:本试验在生物学接种的基础上ꎬ利用非序列依赖性 PCR扩增(sequence ̄independent amplificationꎬSIA)对白术矮化病毒
病病原进行了分子鉴定ꎬ序列测定及分析ꎮ 结果发现ꎬ具有矮化症状的白术为黄瓜花叶病毒(Cucumber mosaic virusꎬCMV)所
侵染ꎮ 为明确 CMV白术分离物(CMV ̄Am)的分类地位ꎬ本研究进一步克隆了 CMV ̄Am的外壳蛋白基因(CP)和移动蛋白基
因(MP)全序列ꎮ 序列比对分析表明ꎬCMV ̄Am与 CMV亚组ⅠB中株系 XJ2序列同源性最高ꎬ核苷酸、氨基酸序列同源性分别
为 98.9%、99.1%ꎮ 氨基酸序列同源性聚类分析表明ꎬCMV ̄Am与中国大多数 CMV分离物一样ꎬ属于 CMV亚组ⅠBꎮ
关键词:白术ꎻ 黄瓜花叶病毒ꎻ 系统进化树分析
Molecular identification and partial sequence analysis of Cucumber mosaic virus
isolate from Atractylodes macrocephala Koidz   NIU Yan ̄bingꎬ SHI Xiao ̄liꎬ ZHAO Hui ̄qiꎬ
ZHANG Xi ̄meiꎬ ZHAO Bao ̄jia  (College of Life Sciencesꎬ Shanxi Agricultural Universityꎬ Taigu 030801ꎬ China)
Abstract: To identify the viruse that induced Atractylodes macrocephala Koidz dwarf diseaseꎬ biological
inoculation and sequence ̄independent amplification(SIA)were used. Results of SIA and sequencing showed
that there was Cucumber mosaic virus (CMV ) in dwarf Atractylodes macrocephala Koidz leaves. To further
characterize the CMV isolate Atractylodes macrocephala Koidz (CMV ̄Am)ꎬ the coat protein gene (CP) and
movement protein gene (MP) coded by CMV ̄Am RNA3 were cloned and sequenced. Sequence alignments
showed that CMV ̄Am had the highest sequence identities with strain XJ2 belongs in CMV subgroup ⅠBꎬ was
98.9% in nucleotide and 99.1% in deduced amino acid identityꎬ respectively. The phylogenetic analysis of CP
suggested that CMV ̄Am belongs to CMV subgroup ⅠB.
Key words: Atractylodes macrocephala Koidzꎻ Cucumber mosaic virusꎻ phylogenetic tree analysis
中图分类号: S432.4          文献标识码: A          文章编号: 0412 ̄0914(2014)04 ̄0357 ̄06
    白术(Atractylodes macrocephala Koidz.)为菊
科(Compositae)苍术属多年生草本植物ꎬ其干燥根
茎为著名的传统中药材ꎬ与人参齐名ꎬ素有“北参
南术”之誉ꎮ 白术主产于浙江于潜、安徽亳州、河
北安国和山西绛县等地ꎮ 白术因具健脾益气、燥湿
利水、止汗和安胎等功效ꎬ被«神农本草经»列为上
品ꎮ 近年来有研究表明ꎬ白术还具有预防流感、抗
炎、止腹泻、抗氧化、延缓衰老、降血糖、抗凝血和抗
肿瘤等作用[1~4]ꎮ 另外ꎬ最近韩国和日本等国的美
容护肤品中也大量使用白术提取物ꎮ 白术现今已
成为我国出口创汇的十大拳头中药品种之一ꎮ 白
术多为栽培ꎬ现已少野生[5]ꎮ 2011 年笔者对山西
绛县和河北安国等白术主产区的病毒病害进行调
查ꎬ发现许多白术表现出典型的矮化症状ꎻ为明确
白术矮化病病原ꎬ本研究利用生物学方法、病毒
dsRNA分离技术、非序列依赖性 PCR 扩增(SIA)
和 RT ̄PCR等手段ꎬ对表现矮化症状的白术样品进
行了病毒分离检测与鉴定ꎬ确定其被 CMV 所侵
 
植物病理学报 44卷
染ꎮ 并对 CMV ̄Am 的 RNA3 多聚蛋白基因和运
动蛋白基因进行了克隆、测序与序列分析ꎬ初步确
定了 CMV ̄Am 属于 CMV亚组ⅠBꎮ
1  材料与方法
1.1  材料
    病样采自山西绛县和河北安国白术种植田中
表现出典型矮化症状的病株叶片ꎮ
    主要试剂:莫洛尼鼠白血病病毒逆转录酶
(M ̄MLV)和 RNasin 核酸酶抑制剂等ꎬ购自 Pro ̄
mega公司ꎻ克隆载体 pMD 18 ̄T 购自 TaKaRa 公
司ꎻTaqplus DNA polymerse、 Taq DNA polymerse
和琼脂糖凝胶 DNA 回收试剂盒等ꎬ购自生工
(Sangon Biotech)公司ꎮ
1.2  方法
1.2.1  生物学接种试验  取白术病样叶片在磷酸
盐缓冲液中研磨ꎬ将其汁液摩擦接种于苋色藜、昆
诺藜和普通烟等指示植物ꎬ进行症状观察ꎮ
1.2.2  植物病原双链 RNA(dsRNA)的提取  参照
Niu等[ 6 ~ 7 ]和 Tzanetakis等[ 8 ]的方法进行ꎮ
1.2.3  非序列依赖性 PCR(SIA)和特异引物 PCR
检测  以所提取的病样 dsRNA 为模板ꎬ进行 SIA
和特异引物 PCR 扩增ꎬ同时以健康白术作为阴性
对照ꎮ 所用的随机引物和特异引物见表 1ꎮ
Table 1  Sequences of primer pairs for PCR
amplification
Name Sequence (5-3)
XTN269 AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGNNNNNN
XTN177 AAGCAGTGGTATCAACGCAGAG
CMV CP ̄F ACGTCGACCATGGACAAATC
CMV CP ̄R TACCCGGGTCAGACTGGTAGCACC
CMV MP ̄F CAGTGTGTTAGATTTCCCGAGGCAT
CMV MP ̄R AYCCAGGTTTACARCGYTCACTCCC
 
    反转录反应体系及反应程序为:dsRNA模板 4
μL、Primer XTN269 1 μL、 dNTP mixtures ( 10 m
mol / L) 1 μL、ddH2O 8.7 μLꎬ90 ℃水浴 5 minꎬ迅
速冰上冷却 3 minꎻ再加入 5×RT ̄PCR buffer 4 μL、
RNase inhibitor 0. 5 μL、 M ̄MLV Reverse Tran ̄
scriptase 0.8 μLꎬ42 ℃ 1 hꎬ70℃ 15 minꎬ反应结束
后反应产物保存于-20 ℃ꎮ PCR 反应体系及反应
程序为:ddH2O 18.75 μL、10×PCR buffer 2.5 μL、
dNTP mixtures(10 m mol / L) 0. 5 μL、锚定引物
(XTN177)或特异引物(CMV CP ̄F / CMV CP ̄R
或 CMV MP ̄F / CMV MP ̄R )1 μL、Taqplus DNA
polymerse 0. 25 μL、 cDNA 2 μLꎮ 反应程序为:
94 ℃3 minꎬ94 ℃ 30 sꎬ52 ℃ 30 sꎬ72 ℃ 1.5 minꎬ
35个循环ꎻ72 ℃ 10 minꎬ4 ℃ 保存ꎮ 反应结束后ꎬ
进行琼脂糖凝胶电泳检测ꎮ
1.2.4  PCR产物克隆及序列分析  利用琼脂糖凝
胶回收试剂盒回收目的片段ꎬ并将其与 PMD 18 ̄T
vector进行连接转化ꎬ阳性克隆通过 PCR 和酶切
鉴定后送至北京华大基因研究中心进行测序ꎮ 登
录 GenBank对所得序列利用 BlAST 进行检索ꎬ采
用 DNAstar 软件包中的 SeqMan 程序对测序亚克
隆进行拼接ꎬ拼接序列用 EditSeq 程序修改和保
存ꎮ 结合 NCBI ̄GenBank 部分共享数据ꎬ利用
DNAMAN软件对所测序列与已报道的分离物序
列进行核苷酸序列、氨基酸序列的同源性比较分
析ꎬ运用 MEGA 4.1 软件构建系统进化树ꎬ以同属
的花生矮化病毒(PSV)为外群ꎮ
2  结果与分析
2.1  生物学接种结果
    白术病样叶片的汁液在 3 种指示植物上均引
起了明显的病毒病症状ꎮ 接种 7 d 后ꎬ普通烟都呈
现系统花叶症状ꎻ苋色藜和昆诺藜均呈现坏死斑症
状ꎬ符合 CMV的发病特点[ 9 ]ꎮ
2.2  SIA检测
    以 XTN269 / XTN177 为引物ꎬ以提取的
dsRNA为模板进行 SIA检测ꎬ得到大小在 500~750
bp之间的多条条带ꎬ但以 749 bp处的条带最亮ꎬ而
健康样品中则未扩增出任何片段(图 1)ꎮ 经克隆、
测序和序列比对发现ꎬ所扩增的病毒基因组条带均
为 CMVꎬ证明白术被 CMV 所侵染ꎬ并将该分离物
命名为 CMV ̄Amꎮ
2.3  特异引物 PCR检测
    为了进一步确定 CMV ̄Am 的分类地位ꎬ本试
验以提取的白术感病叶片中的 dsRNA为模板 ꎬ
853
 
  4期 牛颜冰ꎬ等:白术矮化病毒病病原的分子鉴定和部分序列分析
Fig. 1  Electrophoresis of SIA products
M: DL 2000TM DNA markerꎻLane1: Healthy plantꎻ
Lane 2: Infected plant.
CMV ̄CP ̄F / CMV ̄CP ̄R(用于扩增 CMV外壳蛋白
基因 CP )、 CMV ̄MP ̄F / CMV ̄MP ̄R (用于扩增
CMV移动蛋白基因 MP)为引物进行特异引物
PCR检测ꎮ 扩增产物经 1%琼脂糖凝胶电泳检测ꎬ
分别 得 到 大 小 为 657bp ( GenBank 登 录 号:
JQ362394) (图 2 ̄A)、 1362bp (GenBank 登录号:
JQ612526)(图 2 ̄B)的目的片段ꎬ而健康样品中未
扩增出相应大小的片段ꎮ
2.4  序列相似性分析
    利用 DNAMAN 软件对 CMV ̄Am 编码的 CP
基因序列与来自美国、中国、日本、韩国、印度、澳大
利亚和匈牙利的 20 个分离物进行核苷酸序列、氨
基酸序列同源性比较分析 (表 2)ꎮ 结果表明
CMV ̄Am CP(GenBank登录号:JQ362394)基因序
列与 CMV 各亚组代表株系序列同源性都高于
70%ꎬ而与 PSV代表株系的序列同源性低于 70%ꎻ
CMV ̄Am与 CMV 亚组Ⅰ代表株系核苷酸和氨基
酸序列同源性(90%以上)远高于与亚组Ⅱ代表株
系的同源性 ( 90%以下)ꎮ 因此ꎬCMV ̄Am 属于
CMV亚组Ⅰꎮ
    为了进一步研究 CMV ̄Am 的起源与进化关
系ꎬ使用 MEGA 4.1软件ꎬ并以同属的 PSV 株系为
外群ꎬ对该分离物和已报道的其他 CMV 株系构建
CP基因的氨基酸序列系统进化树(图 3)ꎮ 从进化
树中可以看出ꎬCMV ̄Am 与亚组ⅠB 代表株系形
成一个独立分支ꎬ该分离物与亚组ⅠB的 XJ2株系
和 HLJ株系亲缘关系最近ꎬ聚为一簇ꎬ而与 PSV株
系亲缘关系最远ꎮ 这表明 CMV ̄Am 属于 CMV 亚
组ⅠBꎮ
Fig. 2  Electrophoresis of PCR products of specific primer
A: Electrophoresis of PCR products of CMV ̄Am CPꎻ M:DL 2000TM DNA markerꎻ Lane 1: Healthy plantꎻ
Lane 2: Infected plant. B: Electrophoresis of PCR products of CMV ̄Am
MPꎻ M:DL 2000TM DNA markerꎻ Lane 1: Healthy plantꎻ Lane 2: Infected plant.
3  结论与讨论
    随着白术种植面积的不断扩大ꎬ白术的病害也
呈逐年加重的趋势ꎬ尤其是立枯病、根腐病、白绢病
及斑枯病ꎬ发病率高ꎬ危害重ꎬ给药农带来了重大的
经济损失ꎮ 近年来ꎬ笔者在山西绛县、河北安国等
白术种植基地ꎬ发现表现严重矮化症状的白术发病
率有时可高达 95%ꎮ 本试验通过生物学接种、SIA
和 RT ̄PCR等方法ꎬ对染病白术进行病毒病病原的
分子鉴定ꎬ序列分析发现白术矮化病是由 CMV 侵
染所致ꎮ 由于 CMV 基因组序列较大ꎬ且株系繁
多ꎬ来自不同地区、不同寄主的 CMV 在生物学和
分子生物学特征上均具有很大差别ꎬ因此ꎬ深入开
展 CMV亚组鉴定具有十分重要的意义[ 10 ]ꎮ
953
 
植物病理学报 44卷
Table 2  Identity analysis of nucleotide and deduced amino acid sequence of CMV ̄Am
CP with other CMV strains
Isolate Subgroup
GenBank
number
Source
Nucleotide sequence
identity / %
Amino acid sequence
identity / %
PSV-ER U15730 America 52.4 45.4
M ⅠA AF268599 China 93.9 95.0
Fny ⅠA D10538 America 94.2 97.2
Y ⅠA D12499 Japan 94.1 96.3
Legume ⅠA D16405 Japan 93.6 96.3
As ⅠB X77855 Korea 97.0 98.2
XJ2 ⅠB DQ070746 China 98.9 99.1
DanShen ⅠB AY600989 China 97.7 98.6
XJ1 ⅠB DQ028825 China 96.7 97.2
HLJ ⅠB DQ459481 China 98.9 98.6
Indian Ⅱ AM396983 India 78.9 84.3
YN-B Ⅱ AJ242585 China 77.7 82.5
TSH Ⅱ DQ249298 China 77.5 82.5
WSJ Ⅱ EF514924 China 77.7 82.5
lily Ⅱ DQ885291 China 77.7 82.5
Xb Ⅱ AF268598 China 77.7 82.0
Q Ⅱ M21464 Australia 77.8 82.9
PaFM Ⅱ AB109908 Korea 77.7 82.9
trk7 Ⅱ L15336 Hungary 76.8 80.6
LS Ⅱ AF127976 America 77.5 82.0
 
    病毒病的生物学检测法具有直观、步骤简单和
易操作的优点ꎬ是植物病毒病原鉴定方法的一个重
要基础 [ 11 ]ꎮ 本试验在对引起白术矮化病病原进
行分子生物学鉴定之前ꎬ进行了生物学检测ꎬ初步
判定白术的病害为病毒病害ꎮ 随后本试验再利用
SIA对白术矮化病病毒病原进行分子鉴定ꎬ序列分
析发现引起白术矮化病的病毒病原为 CMVꎬ并将
其命名为 CMV ̄Amꎮ SIA 技术是将随机引物加入
dsRNA中ꎬ该引物 5端含有 20 个固定序列的核苷
酸ꎬ3端含有核苷酸随机简并序列[ 12 ]ꎬ在逆转录酶
的作用下延伸ꎮ 在 PCR延伸过程中加入固定序列
部分作引物ꎬ将扩增产物进行电泳分析、克隆和测
序[1 3 ]ꎮ SIA的特点是试验时间短ꎬ步骤简单ꎬ得到
病毒拷贝数高ꎬ不需特定试剂ꎮ 通过 SIA 扩增病
毒的 dsRNAꎬ再结合测序可用于 RNA 病毒和同一
病毒不同株系的复合侵染[ 1 4 ~ 1 5 ]ꎬ同时将 SIA技术
稍作修改还可以用于测定 DNA病毒[1 5 ]ꎮ
    为了进一步确定 CMV ̄Am 的分类地位和进
化关系ꎬ在 SIA检测的基础上ꎬ依据待测病毒的保
守序列设计引物ꎬ采用 RT ̄PCR技术扩增该病毒的
CP和 MP 的全序列ꎬ并将其测定结果进行同源关
系和系统进化分析ꎮ CMV ̄Am与来自东亚和东南
亚国家的 20个典型分离物进行序列比对分析ꎬ发
现 CMV ̄Am分离物与 CMV亚组ⅠB 代表株系的
核苷酸及其编码的氨基酸序列同源性最高ꎬ与
CMV亚组ⅠA次之ꎬ而与 CMV 亚组Ⅱ较低ꎻ与来
自中国的 CMV亚组ⅠB 的 XJ2 株系和 HLJ 株系
亲缘关系最近ꎬ聚为一簇ꎬ因此将 CMV ̄Am 分离
物归属于亚组ⅠBꎬ至于其确切来源有待全基因组
序列确定后才能作进一步分析ꎮ 本研究结果进一
步证明 CMV亚组Ⅰ在我国发生普遍ꎬ而亚组Ⅱ在
我国发生较少[ 1 6 ]ꎬ且我国大部分 CMV 分离物属
于亚组ⅠBꎮ 本实验的研究方法可为后期病毒病
原的分子鉴定提供借鉴ꎻ研究结果可为合理有效地
进行白术病毒病的综合防治及其白术脱毒苗的培
育提供参考ꎮ
063
 
  4期 牛颜冰ꎬ等:白术矮化病毒病病原的分子鉴定和部分序列分析
Fig. 3  Phylogenetic tree analysis on CP amino acid sequence
of CMV ̄Am and other reported isolates
.
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责任编辑:张宗英  曾晓葳   
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