全 文 :犇犗犐:10.11686/犮狔狓犫2015250 犺狋狋狆://犮狔狓犫.犾狕狌.犲犱狌.犮狀
刘金平,王大伟,游明鸿,张小晶,蔡捡,曾晓琳.种子发育过程老芒麦生殖枝生物量和能量分配及激素含量变化分析.草业学报,2016,25(3):135
142.
LIUJinPing,WANGDaWei,YOUMingHong,ZHANGXiaoJing,CAIJian,ZENGXiaoLin.Biomasschange,energydistributionandhormone
concentrationsin犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊reproductivestemsduringseeddevelopment.ActaPrataculturaeSinica,2016,25(3):135142.
种子发育过程老芒麦生殖枝生物量和
能量分配及激素含量变化分析
刘金平1,王大伟1,游明鸿2,张小晶1,蔡捡1,曾晓琳1
(1.西华师范大学生命科学院,四川 南充637009;2.四川省草原科学研究院,四川 成都611731)
摘要:通过在开花期、灌浆期、乳熟期、蜡熟期、完熟期,测定生殖枝叶片的光合速率,茎、叶、穗柄、穗的生物量和能
量分配比,种子的千粒重和激素含量,分析种子发育时生殖枝水分、生物量和能量的数量及配比变化,探讨老芒麦
种子发育的物质、能量基础及其转移规律。结果表明,1)生殖枝总生物量在开花-灌浆-乳熟期不断显著增加
(犘<0.05),蜡熟期达到最大值;营养器官生物量比例随种子发育逐渐下降,叶生物量分配比由开花期的18.39%
下降到完熟期的9.76%,而茎生物量分配比在乳熟期达最大后显著下降;生殖器官生物量在乳熟-蜡熟期显著增
加,穗柄生物量分配比相对稳定,穗生物量分配比则不断增加。2)光合速率在开花-乳熟期无变化,乳熟期后显著
下降(犘<0.05),生殖枝总能量在开花-灌浆期、灌浆-乳熟期有2个显著增加高峰(犘<0.05),总能量蜡熟期最
大;能量分配有极显著变化(犘<0.01),变化大小顺序为穗>叶>茎>穗柄,穗能量分配比在开花-乳熟期无显著
差异,乳熟期后显著增加。3)茎、叶热能值随种子发育而下降,叶热能值在灌浆-乳熟期、乳熟-蜡熟期有2次显
著下降,下降达13.69%;茎热能值仅在乳熟-蜡熟期1次显著下降,下降了3.59%;生物量与能量随种子发育有由
叶向茎向穗柄向穗的转移过程。4)种子鲜重有2个显著增加阶段,干重在5个发育期均有显著增加(犘<0.05),种
子产量在乳熟-蜡熟期显著增加,蜡熟-完熟期显著下降(犘<0.05)。5)赤霉素 (GA)含量从灌浆期到完熟期下
降了50.25%,蜡熟期脱落酸 (ABA)含量比灌浆期增加了91.37%。所以,种子田管理时,乳熟期之前要保持叶片
的完整与健康为种子发育提供能量,种子收获应该在蜡熟后期进行。
关键词:老芒麦;生殖枝;种子发育;生物量结构;能量分配;脱落酸
犅犻狅犿犪狊狊犮犺犪狀犵犲,犲狀犲狉犵狔犱犻狊狋狉犻犫狌狋犻狅狀犪狀犱犺狅狉犿狅狀犲犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀狊犻狀犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊
狉犲狆狉狅犱狌犮狋犻狏犲狊狋犲犿狊犱狌狉犻狀犵狊犲犲犱犱犲狏犲犾狅狆犿犲狀狋
LIUJinPing1,WANGDaWei1,YOUMingHong2,ZHANGXiaoJing1,CAIJian1,ZENGXiaoLin1
1.犆狅犾犾犲犵犲狅犳犔犻犳犲犛犮犻犲狀犮犲狊,犆犺犻狀犪犠犲狊狋犖狅狉犿犪犾犝狀犻狏犲狉狊犻狋狔,犖犪狀犮犺狅狀犵637009,犆犺犻狀犪;2.犃犮犪犱犲犿狔狅犳犛犻犮犺狌犪狀犌狉犪狊狊犾犪狀犱犛犮犻
犲狀犮犲,犆犺犲狀犵犱狌611731,犆犺犻狀犪
犃犫狊狋狉犪犮狋:Athreeyearoldstandof犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊,wasstudiedwiththeaimofdeterminingthechangeinre
productivestembiomass,watercontent,biomassandenergydistributionamongfloralcomponentsduringthe
seedheaddevelopment,inordertobetterunderstandtheenergeticsofseedheaddevelopment.Duringflower
ingvariousmeasurementsweremade,includingphotosyntheticrateofreproductiveculms,biomassandenergy
distribution(includingproportionalalocationtostem,leaf,peduncle,andflower),1000seedweight,hor
第25卷 第3期
Vol.25,No.3
草 业 学 报
ACTAPRATACULTURAESINICA
135-142
2016年3月
收稿日期:20150514;改回日期:20150626
基金项目:四川省科技厅应用基础(2012JY0062),应用基础计划(2015JY0004)和科技支撑计划(2011NZ0064)资助。
作者简介:刘金平(1972),男,山西临县人,副教授,博士。Email:jpgg2000@163.com
moneconcentration.Measurementswererepeatedatstemelongation,anthesis,seedfiling,themilkstage,
thedoughstageandseedmaturity.Keyresultswere:1)Thetotalbiomassofreproductivestemssignificantly
increasedfromanthesistoseedfilingtothemilkstage(犘<0.05).Seedheadbiomasspeakedwhenplants
wereinthedoughstage.Thebiomassproportionofvegetativeorgansgradualydecreasedwithseedheaddevel
opment.Leafcomprised18.39%oftotalbiomassatanthesis,andthatdroppedto9.76%atseedmaturity.
Theproportionofstembiomassreachedamaximumatthemilkstage,thensignificantlydecreased.Thebio
massofreproductiveorgans,especialytheflowers,significantlyincreasedfromthemilkstagetothedough
stage.However,thebiomassofpedunclewasrelativelystatic.2)Thephotosyntheticrateofreproductive
stemschangedlittlefromanthesistothemilkstage,butdroppedsignificantlyafterthemilkstage(犘<0.05).
Thetotalenergycontentofreproductivestemsreacheditsmaximumatthedoughstage,buttwopeakswere
observed;onebetweenanthesisandseedfiling,andonefromseedfilingtothemilkstage(犘<0.05).Energy
distributiondifferedsignificantlybetweenseedheadcomponents(犘<0.01),andrankedinorder:panicle>
leaf>stem>peduncle.3)Theenergycontentofstemsandleavesdeclinedduringseeddevelopment.Theener
gycontentofleavesshowedtwoobvioustroughs,withaminimumof13.69%,fromseedfilingstagetothe
doughstage.Theenergycontentofstemswasdeclinedsignificantlyfrommilkthestagetoseedmaturity.4)
Duringseeddevelopment,seedfreshweightsignificantlyincreasedtwofold,andseeddryweightsignificantly
increasedfivefold(犘<0.05).Seedyield(unitsareneeded)significantlyincreasedfromthemilkstagetothe
doughstage,thensignificantlydecreasedafterthedoughstage(犘<0.05).5)Thegibberelicacidconcentra
tionfelby50.25%fromseedfilingtoseedmaturity,whileabscisicacidconcentrationincreasedby91.37%
fromthedoughstagetotheseedfilingstage.Therefore,seedproductionfieldsshouldbemanagedsoasto
maintaintheintegrityandhealthofleavesuntilthemilkstageofseeddevelopment,toprovideenergyforseed
development.Seedshouldbeharvestedattheendofthedoughstage.
犓犲狔狑狅狉犱狊:犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊;reproductivebranch;seeddevelopment;biomassstructure;energydistribution;
ABA
老芒麦(犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊)是禾本科披碱草属多年生疏丛型中旱生植物,为披碱草属中营养价值最高的牧
草。“川草2号”老芒麦(犈.狊犻犫犻狉犻犮狌狊cv.chuancaoNo.2)具有适应性广,生长速度快,分蘖力强,草质优,产量高,
抗寒,耐湿等优点,是青藏高原高寒牧区广泛种植的优良牧草品种[12]。近年来,在川西北高原建有约3500hm2
老芒麦种子生产基地,由于缺乏系统、实用技术的指导与支撑,大田生产的实际种子产量仅为潜在种子产量的
10%左右[3],不仅投入产出比率低下,造成人力物力财力浪费,且使种子产量不能满足青藏高原东缘生态恢复重
建、退化沙化草地治理、退牧还草、种草养畜等工程对优质 “川草2号”老芒麦种子需求。所以,系统开展种子生
产技术研究,总结适合川西北高原气候特点的技术线路,加强对大田产业化生产的技术支持,是提高种子产量与
质量急需解决的关键问题。
国内外关于老芒麦种子生产技术的报道较少,多集中于资源评价、品种选育及适应性等方面[46],种子生产技
术主要集中在真菌对种子萌发和幼苗生长[7],行距、播量、施肥、收获时间对老芒麦种子产量及构成因子[89]等的
研究。生殖枝作为构成种子产量的基本单位,目前未见关于种子发育过程中生殖枝生物量结构、能量分配及种子
千粒重和激素含量变化报道。本文通过在开花期、灌浆期、乳熟期、蜡熟期、完熟期,测定生殖枝叶片的光合速率,
茎、叶、穗柄、穗的含水量、生物量和能量分配比,种子的千粒重和激素含量,分析种子发育时生殖枝水分、生物量
和能量的数量及配比变化,探讨种子发育的物质、能量基础及其转移规律,以期为合理选择提高种子产量与质量
的技术措施提供科学依据,为规模化、产业化进行种子生产提供服务。
631 ACTAPRATACULTURAESINICA(2016) Vol.25,No.3
1 材料与方法
1.1 试验地概况
试验于阿坝州红原县邛溪镇二农场进行,为大陆性高原温带季风气候,东经102°32′,北纬32°46′,海拔3497
m,年均温1.1℃,极端高温23.5℃,极端低温-33.8℃,年降水量738mm,相对湿度71%,≥10℃年积温仅
865℃。土壤为草甸土,0~20cm 土壤的有效氮、有效磷、有效钾含量分别为276mg/kg,10.2mg/kg和131
mg/kg,有机质含量5.87%,pH值5.91。
1.2 试验材料及测定指标
于2014年7月,在行距60cm、密度约1000生殖枝/m2,播后第3年的“川草2号”老芒麦种子试验田中,选
背风、向阳,面积约15m2 地块,以健壮无病虫害的生殖枝为材料。
光合速率:在开花期、灌浆期、乳熟期、蜡熟期、完熟期分别随机选10个生殖枝,于晴朗无风上午,用LI6400
便携式光合仪,在自然光下,测定由上而下第2叶的光合速率。
生物量、生物量分配及含水量:在开花期、灌浆期、乳熟期、蜡熟期、完熟期分别随机选10个生殖枝,按叶、茎、
穗柄、穗分离成4部分,称鲜重后,分别装袋,于105℃烘至恒重,称干重为生物量,(鲜重-干重)/鲜重×100%为
含水量,每部分生物量/总生物量×100%为生物量分配比,设3次重复。
单位生物量能量值及能量分配:把烘干叶、茎、穗柄、穗粉碎后,用parr1281氧弹量热仪检测单位生物量的热
能值。构件能量累积值为该构件热能值×生物量。构件能量分配比为该构件能量值占生殖枝总能量的百分比。
种子千粒重:在开花期、灌浆期、乳熟期、蜡熟期、完熟期分别随机选10个生殖枝,随机取种子200粒,风干至
恒重后称重,计算千粒重,3次重复。
种子产量:在乳熟期、蜡熟期和完熟期随机选10个生殖枝,人工采种,风干后称重,计算每个生殖枝的种子产
量,3次重复。
激素水平:在开花期、灌浆期、乳熟期、蜡熟期、完熟期,分别随机选10个穗金属膜包裹,垂悬于液氮罐中保
鲜。于9月,各随机取小穗样品5g,用酶联免疫法(ELISA)测定赤霉素(GA)、脱落酸(ABA)含量[10]。
1.3 数据处理
采用SAS9.3进行多重比较的数据分析。
2 结果与分析
2.1 种子发育过程中生殖枝生物量分配的变化
2.1.1 茎、叶重量及含水量变化 种子发育过程中生殖枝的茎鲜重无显著变化(犘>0.05)(表1),仅乳熟期显
著高于完熟期(犘<0.05),但与其他期无显著差异。但茎干重和茎含水量有极显著变化(犘<0.01),茎含水量随
种子发育逐渐降低,开花-灌浆期和蜡熟-完熟期为两个显著降低阶段;茎干重随种子发育逐渐增加,灌浆-乳
熟期增加显著,乳熟-蜡熟-完熟期茎干重变化较小。
生殖枝的叶鲜重、干重及含水量均有极显著变化(犘<0.01)(表1),由犉值可见,含水量变化最大,鲜重次
之。叶鲜重、干重在灌浆期最大,乳熟-完熟期一直下降,但均无显著差异;叶含水量在种子发育过程中一直下
降,有灌浆-乳熟期、蜡熟-完熟期两个下降高峰,分别下降27.58%和43.77%。
2.1.2 穗柄、穗重量及含水量变化 穗柄鲜重、干重、含水量在种子发育期均有极显著变化(犘<0.01)(表2)。
穗柄鲜重在灌浆期达最大值,随种子成熟在乳熟-蜡熟期、蜡熟-完熟期呈显著下降(犘<0.05);穗柄含水量开
花后逐渐下降,在灌浆-乳熟-蜡熟期下降显著(犘<0.05);穗柄干重随开花-灌浆-乳熟-蜡熟期呈递进增
加,蜡熟期达最大值,完熟期显著下降。
穗鲜重、干重、含水量在种子发育期均有极显著变化(犘<0.01)。穗鲜重开花-灌浆期、灌浆-乳熟期有两
个显著增加高峰;含水量在乳熟期达最大值,乳熟-蜡熟期显著下降了32.83%;穗干重随种子发育不断增加,有
3个显著增加阶段,乳熟-蜡熟期增加幅度最大,完熟期达最大值。
731第25卷第3期 草业学报2016年
表1 生殖枝茎、叶重量与含水量变化的多重比较
犜犪犫犾犲1 犕狌犾狋犻狆犾犲犮狅犿狆犪狉犻狊狅狀狅犳狊狋犲犿,犾犲犪犳狑犲犻犵犺狋犪狀犱狑犪狋犲狉犮狅狀狋犲狀狋狅犳狉犲狆狉狅犱狌犮狋犻狏犲犫狉犪狀犮犺犱狌狉犻狀犵狊犲犲犱犱犲狏犲犾狅狆犿犲狀狋狊狋犪犵犲
种子发育期
Development
stage
茎Stem
鲜重
Freshweight(g)
干重
Dryweight(g)
含水量
Watercontent(%)
叶Leaf
鲜重
Freshweight(g)
干重
Dryweight(g)
含水量
Watercontent(%)
开花期Floweringstage 13.39±1.10AB 5.31±0.31C 60.33±0.85A 4.60±0.72A 1.83±0.23A 60.16±2.56A
灌浆期Filingstage 12.60±0.14AB 5.97±0.19BC 52.66±1.52B 4.68±0.81A 1.94±0.27A 58.23±1.81A
乳熟期 Milkstage 14.33±1.92A 7.33±0.90A 48.81±1.13BC 2.46±0.09B 1.42±0.06B 42.26±4.25B
蜡熟期Doughstage 14.01±0.66AB 7.32±0.61A 47.75±2.47BC 1.96±0.40B 1.24±0.18B 43.91±4.23B
完熟期Ripestage 12.09±1.22B 6.50±0.17AB 45.96±5.18C 1.65±0.04B 1.09±0.07B 24.69±3.28C
犉 2.22 8.51 13.14 23.65 12.09 54.49
犘 0.1397 0.0029 0.0005 <0.0001 0.0008 <0.0001
注:同列不同大写字母间差异显著(犘<0.05),下同。
Note:Valuesinasamecolumnwithdifferentcapitallettersindicatesignificantdifferences(犘<0.05).Thesamebelow.
表2 生殖枝穗柄、穗重量与含水量变化的多重比较
犜犪犫犾犲2 犕狌犾狋犻狆犾犲犮狅犿狆犪狉犻狊狅狀狅犳狆犲犱狌狀犮犾犲,狆犪狀犻犮犾犲狑犲犻犵犺狋犪狀犱狑犪狋犲狉犮狅狀狋犲狀狋狅犳
狋犺犲狉犲狆狉狅犱狌犮狋犻狏犲犫狉犪狀犮犺犱狌狉犻狀犵狊犲犲犱犱犲狏犲犾狅狆犿犲狀狋狊狋犪犵犲
种子发育期
Development
stage
穗柄Peduncle
鲜重
Freshweight(g)
干重
Dryweight(g)
含水量
Watercontent(%)
穗Panicle
鲜重
Freshweight(g)
干重
Dryweight(g)
含水量
Watercontent(%)
开花期Floweringstage 4.12±0.38AB 1.33±0.03C 67.93±4.05A 3.91±0.44C 1.48±0.23D 61.69±2.20A
灌浆期Filingstage 4.64±0.20A 1.53±0.14BC 66.97±2.11A 4.59±0.35B 1.79±0.07C 61.13±2.21A
乳熟期 Milkstage 4.29±0.34A 1.85±0.04AB 56.94±1.82B 5.04±0.13A 1.95±0.16C 62.59±2.37A
蜡熟期Doughstage 3.54±0.19B 2.13±0.08A 40.05±1.05C 5.22±0.37AB 2.92±0.26B 42.04±1.26B
完熟期Ripestage 2.68±0.09C 1.61±0.19BC 39.84±4.51C 5.44±0.30A 3.37±0.24A 37.95±2.73B
犉 15.51 7.02 117.62 15.88 149.28 47.74
犘 0.0003 0.0059 <0.0001 0.0002 <0.0001 <0.0001
2.1.3 生殖枝生物量分配变化 生殖枝总生物量在种子发育不同时期存在着极显著差异(犘<0.01)(表3),
在开花-灌浆-乳熟期总生物量显著增加(犘<0.05),乳熟-蜡熟-完熟期间差异较小,蜡熟期达到最大值。生
殖枝总含水量随种子发育期显著下降(犘<0.05)。营养器官、生殖器官生物量分配比随种子发育有极显著变化
(犘<0.01)。
营养器官生物量分配比随种子发育逐渐下降,开花-灌浆-乳熟期差异较小(表3),乳熟-蜡熟期显著下降
(犘<0.05)。不同发育期,茎、叶生物量分配比均有极显著差异(犘<0.01),叶分配比由开花期的18.39%下降到
完熟期的9.76%,下降了近50%;而茎分配比随种子发育先显著增加后显著降低,在乳熟期达最大值58.28%。
生殖器官生物量分配比极显著受发育期的影响(犘<0.01)(表3),其比例随发育期不断增加,乳熟-蜡熟期
增加显著(犘<0.05)。穗柄生物量分配比在不同发育期无显著变化(犘>0.05),仅完熟期显著低于其他时期;穗
分配比随发育期不断增加,尤其乳熟-蜡熟-完熟期增加愈显著(犘<0.05)。由犉值可见,生物量分配受发育期
影响顺序为穗>叶>茎>穗柄。穗柄生物量虽随发育期显著增加,但其比例相对恒定。
2.2 种子发育过程中生殖枝能量分配的变化
2.2.1 单位生物量热能值的变化 单位生物量热能值在不同发育期均有极显著变化(犘<0.01)(表4),变化
大小顺序为穗>叶>茎>穗柄。茎、叶热能值随种子发育而下降,叶在灌浆-乳熟期、乳熟-蜡熟期有2次显著
831 ACTAPRATACULTURAESINICA(2016) Vol.25,No.3
下降,茎在乳熟-蜡熟期1次显著下降,整个发育期叶热能值下降了13.69%,茎热能值仅下降了3.59%。穗柄
热能值在发育前期显著增加(犘<0.05),乳熟期达最大值,蜡熟期后显著下降(犘<0.05)。穗热能值随种子发育
不断增加,灌浆-乳熟期有1个显著的增加高峰。由上可见,叶和茎热能值在开花期最大,穗柄热能值在乳熟期
最大,穗热能值在完熟期最大,说明种子发育过程中各构件不仅热能值不同,且热能值达到最大值的时期也不同。
2.2.2 构件能量累积值的变化 构件能量累积量在不同发育期均有极显著变化(犘<0.01),变化大小顺序为
穗>叶>穗柄>茎(表4)。种子发育过程中,生殖枝叶能量累积值灌浆期最大,之后显著下降,从灌浆期到完熟
期下降了49.75%;而茎、穗柄、穗能量累积量则随发育而增加,分别于乳熟期、蜡熟期、完熟期达到最大值,增加
了18.14%,60.34%,149.17%;之后茎、穗柄能量累积值显著下降,而穗能量累积值随种子发育均表现为显著增
加。
表3 生殖枝生物量分配比变化的多重比较
犜犪犫犾犲3 犕狌犾狋犻狆犾犲犮狅犿狆犪狉犻狊狅狀狅犳犫犻狅犿犪狊狊犱犻狊狋狉犻犫狌狋犻狅狀狉犪狋犻狅狅犳狉犲狆狉狅犱狌犮狋犻狏犲犫狉犪狀犮犺犱狌狉犻狀犵狊犲犲犱犱犲狏犲犾狅狆犿犲狀狋狊狋犪犵犲
种子发育期
Development
stage
营养器官生物量分配比
Vegetativeorganbiomassalocationratio(%)
茎
Stem
叶
Leaf
茎+叶
Stem+leaf
生殖器官生物量分配比Reproductive
organbiomassalocationratio(%)
穗柄
Peduncle
穗
Panicle
穗柄+穗
Peduncle+panicle
总生物量
Total
biomass
(g)
总含水量
Totalwater
content
(%)
开花期Floweringstage 53.33BC 18.39A 71.71A 13.34AB 14.95C 28.29B 9.94C 61.71A
灌浆期Filingstage 53.16BC 17.31A 70.47A 13.62AB 15.59C 29.53B 11.22B 57.65B
乳熟期 Milkstage 58.28A 11.37B 69.66A 14.76AB 15.91C 30.35B 12.54A 52.33C
蜡熟期Doughstage 54.35B 8.07C 62.42B 15.80A 21.78B 37.58A 13.47A 45.16D
完熟期Ripestage 51.08C 9.76C 60.84B 12.67B 26.49A 39.16A 12.73A 41.72E
犉 7.14 23.95 20.67 2.04 36.83 20.67 14.17 97.49
犘 0.0055 <0.0001 <0.0001 0.1642 <0.0001 <0.0001 0.0004 <0.0001
表4 生殖枝各构件能量累积变化的多重比较
犜犪犫犾犲4 犕狌犾狋犻狆犾犲犮狅犿狆犪狉犻狊狅狀狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犮狅犿狆狅狀犲狀狋犲狀犲狉犵狔犪犮犮狌犿狌犾犪狋犻狅狀狅犳狉犲狆狉狅犱狌犮狋犻狏犲犫狉犪狀犮犺犱狌狉犻狀犵狊犲犲犱犱犲狏犲犾狅狆犿犲狀狋狊狋犪犵犲
种子发育期
Developmentstage
单位生物量能量值Unitenergyvalueofbiomass(kJ/g)
叶Leaf 茎Stem 穗柄Peduncle 穗Panicle
能量累积量Accumulationofenergy(kJ/branch)
叶Leaf 茎Stem 穗柄Peduncle 穗Panicle
开花期Floweringstage 17.68A 16.68A 16.53C 16.55C 32.27A 88.51D 21.91C 24.59E
灌浆期Filingstage 17.64A 16.55A 16.67B 16.70C 34.31A 98.72CD 25.48C 29.82D
乳熟期 Milkstage 16.84B 16.54A 17.05A 17.89B 23.91B 121.14A 31.48AB 34.83C
蜡熟期Doughstage 15.72C 16.14B 16.47C 18.11AB 18.95BC 118.26AB 35.13A 52.91B
完熟期Ripestage 15.26C 16.08B 16.27C 18.17A 17.24C 104.57BC 26.24BC 61.27A
犉 34.14 22.36 10.18 94.32 16.66 7.73 7.76 148.88
犘 <0.0001 <0.0001 0.0015 <0.0001 0.0002 0.0042 0.0041 <0.0001
2.2.3 生殖枝能量分配变化 在种子发育过程中,生殖枝累积总能量有极显著变化(犘<0.01)(表5),开花-
灌浆期、灌浆-乳熟期有2个显著增加高峰(犘<0.05),从开花期到乳熟期,生殖枝总能量增加了33.63%。增加
的能量由光合作用提供,光合速率在种子发育过程中有极显著变化(犘<0.01),开花-乳熟期无显著变化,乳熟
期后光合速率显著下降(犘<0.05),生殖枝总能量相对恒定。
生殖枝叶、茎、穗能量分配比在不同发育期有极显著变化(犘<0.01)(表5),穗柄能量分配比变化较小,变化
大小顺序为穗>叶>茎>穗柄。叶能量分配比在开花期最大,随种子发育逐渐减少,灌浆期后减少越加显著
(犘<0.05);茎能量分配在发育前期显著增加(犘<0.05),乳熟期达最大,之后显著下降;穗柄能量分配在发育期
相对稳定,仅蜡熟-完熟期显著下降;穗能量分配在开花-乳熟期无显著差异,乳熟期后显著增加。
931第25卷第3期 草业学报2016年
表5 生殖枝各构件能量分配变化的多重比较
犜犪犫犾犲5 犕狌犾狋犻狆犾犲犮狅犿狆犪狉犻狊狅狀狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犮狅犿狆狅狀犲狀狋犲狀犲狉犵狔犱犻狊狋狉犻犫狌狋犻狅狀狅犳狉犲狆狉狅犱狌犮狋犻狏犲犫狉犪狀犮犺犱狌狉犻狀犵狊犲犲犱犱犲狏犲犾狅狆犿犲狀狋狊狋犪犵犲
种子发育期
Developmentstage
能量分配Energydistribution(%)
叶Leaf 茎Stem 穗柄Peduncle 穗Panicle
生殖枝总能量Cumulative
totalenergy(kJ/branch)
光合速率Photosynthetic
rate(μmol/m2·s)
开花期Floweringstage 19.32A 52.87B 13.10AB 14.71C 167.28±21.23C 21.99±1.52A
灌浆期Filingstage 18.20A 52.42BC 13.54AB 15.84C 188.33±17.64B 22.91±2.27A
乳熟期 Milkstage 11.35B 57.19A 14.92AB 16.55C 211.38±20.17A 23.19±2.14A
蜡熟期Doughstage 7.66C 52.87B 15.68A 23.79B 223.53±18.62A 16.24±1.67B
完熟期Ripestage 8.98BC 49.55C 12.44B 29.04A 211.02±15.86A 5.46±0.68C
犉 30.47 8.24 2.54 42.37 13.31 79.25
犘 <0.0001 0.0033 0.1060 <0.0001 0.0005 <0.0001
2.3 种子发育过程中种子产量及千粒重变化
生殖枝种子产量有极显著变化(犘<0.01)(表6),乳熟-蜡熟期显著增加,蜡熟-完熟期显著下降(犘<
0.05)。种子鲜重、干重、含水量随发育期有极显著变化(犘<0.01),鲜重有2个显著增加阶段,干重则5个发育
期均显著增加(犘<0.05),含水量在灌浆期后逐渐显著下降。
2.4 种子发育过程中小穗激素含量变化
GA含量在种子发育过程中有极显著变化(犘<0.01)(表6),不同发育期GA含量差异显著。灌浆期GA含
量最高,随种子发育显著下降(犘<0.05),从灌浆期到完熟期下降了50.25%,其中灌浆-乳熟期、乳熟-蜡熟期、
蜡熟-完熟期分别下降了19.16%,14.71%,26.00%。
ABA含量在种子发育过程中有极显著变化(犘<0.01)(表6),灌浆期后ABA含量显著增加,蜡熟期比灌浆
期增加了91.37%,达最大值469.07ng/g,蜡熟-完熟期有显著的下降。
表6 种子产量和激素含量变化的多重比较
犜犪犫犾犲6 犕狌犾狋犻狆犾犲犮狅犿狆犪狉犻狊狅狀狅犳狊犲犲犱狔犻犲犾犱犪狀犱犺狅狉犿狅狀犲犮狅狀狋犲狀狋犱狌狉犻狀犵狊犲犲犱犱犲狏犲犾狅狆犿犲狀狋狊狋犪犵犲
种子发育期
Developmentstage
种子产量
Seedyield(g/branch)
种子千粒重Thousandgrainweigth
鲜重Freshweight(g) 干重Dryweight(g)
激素含量 Hormonecontent
赤霉素GA(ng/g) 脱落酸ABA(ng/g)
开花期Floweringstage ——— 3.41±0.24C 1.06±0.07E 374.27±25.62B 236.91±15.63D
灌浆期Filingstage ——— 4.46±0.35B 1.55±0.25D 416.30±42.57A 245.11±14.37D
乳熟期 Milkstage 0.19±0.02C 4.51±0.41B 2.05±0.40C 336.53±37.67C 279.13±27.65C
蜡熟期Doughstage 0.25±0.02A 5.85±0.35A 3.32±0.13B 282.60±24.15D 469.07±35.60A
完熟期Ripestage 0.22±0.03B 5.07±0.25A 3.52±0.09A 207.11±17.67E 368.36±36.27B
犉 6.34 24.37 438.48 178.51 156.66
犘 0.0057 <0.0001 <0.0001 <0.0001 <0.0001
3 讨论
3.1 种子发育和水分含量的关系
诸多学者对老芒麦种子发育过程中含水量变化与种子正常发育关系进行了大量研究[1112],试图通过种子含
水量的变化规律,总结出判断种子成熟的实用技术。本试验分析了种子不同发育期,生殖枝各构件的含水量变
化,生殖枝总含水量在种子发育5个阶段均显著下降,但种子含水量在乳熟期(54.32%)、蜡熟期(39.70%)、完熟
期(30.65%)有3个阶段显著下降,与韩建国等[11]、王显国[12]种子含水量随着种子的成熟呈先慢后快的阶段性下
降结果相同,但与他们盛花期后26~28d,含水量为39.0%~45.6%时,种子达到生理成熟的结果不同。川西北
老芒麦盛花期后26~31d为乳熟期,32~36d为蜡熟期,乳熟———蜡熟期种子含水量变化幅度达15%[13]。同
041 ACTAPRATACULTURAESINICA(2016) Vol.25,No.3
时,灌浆期生殖枝的茎含水量显著下降,乳熟期叶、种子和穗柄含水量显著下降,蜡熟期穗、种子和穗柄含水量显
著下降,完熟期叶和种子含水量显著下降,种子含水量与其他构件含水量之间是否存在相关性,生殖枝水分分配
规律如何,需进一步研究。种子水分散失易受年降水、年积温等气候因素以及种植密度、施肥量等栽培技术的影
响,单独以种子含水量作为判断种子发育成熟的指标存在一定的局限性。如用种子含水量判断种子成熟度或采
收期,一点误差就会因落粒率提升而造成种子实际产量的损失。应针对当地的气候特点和栽培技术,对种子发育
期间水分散失规律进行长期研究和试验,才能通过种子含水量准确地预测种子的成熟期。
3.2 种子发育和生物量分配的关系
植物营养生长是生殖生长的基础,营养生长累积和贮存的物质,主要用于满足开花结实的需要。种子发育实
质是营养器官向生殖器官输送营养物质的过程。生殖枝总生物量在种子蜡熟期之前显著增加,表明老芒麦在种
子发育过程中,营养器官保持了极高的生物量累积能力,致使蜡熟期总生物量比开花期增加了35.51%。营养器
官生物量分配比在乳熟-蜡熟期显著下降,生殖器官生物量分配比则显著增加,说明乳熟-蜡熟期为营养物质向
种子运输转移最快时期,也是种子结构分化、物质累积及种子活力形成的关键时期。运输效率对种子产量和品质
形成起至关重要的作用,最终种子产量高低取决于产量源、库容和物质运输能力(流)及其协调程度[14]。由生殖
枝各构件生物量分配比的变化说明,在种子发育中,生物量有从叶-茎-穗柄-穗-种子的明显转移过程,灌浆
物质主要来源于开花后的光合产物,而库容的大小在抽穗前就已被决定[15],可见在保证叶片完整保持光合能力
的基础上,提高运输能力是保证种子产量的关键技术。关于光照、温湿度、土壤水分、植物营养条件等因素对产量
源(光合能力)、库容(小花或种子数)研究较为深入,对运输能力的影响研究较少。本试验中发现,穗柄作为生殖
的附属器官,其生物量分配比和蜡熟-完熟期含水量相对稳定,且穗柄长度和直径与生殖枝小穗数、种子数、表现
种子产量、实际种子产量呈正相关[13],穗柄性状能否反映生殖枝营养状态、判断种子成熟度、预测种子产量,待于
进一步开展相关研究。
3.3 种子发育与能量转移的关系
种子发育过程中,由于细胞的增殖与贮藏物的沉积而需要大量ATP的供应[16],能量逐步从营养器官向生殖
器官转移。多通过种子形态大小、生物量数量、可溶性糖与淀粉含量的变化,来研究种子成熟时的能量转移过
程[1718],但种子形态受含水量、生物量受热能值的影响,且种子中不仅有糖类,还有蛋白质、脂肪等营养物质,之外
还有结构性物质、生理活性物质及遗传物质等能量贮藏库。通过单位生物量热能值变化说明,种子发育过程中生
殖枝构件热能值都有显著变化,热能值变化实质营养成分变化的表现,灌浆期叶热能值最大,乳熟期茎和穗柄热
能值最大,完熟期穗热能值最大,表明能量在灌浆-乳熟期显著由叶向茎转移,在乳熟-蜡熟期显著由茎向穗转
移,但能量贮藏及转化形式待于深入研究。从开花期到乳熟期,叶片保持了极高的光合能力,使生殖枝总能量增
加了33.63%,且把营养生长期贮藏能量的49.75%用于生殖生长,可见生殖生长所需能量来源于营养生长的贮
藏能量和生殖生长的同化能量,不仅证实营养生长是生殖生长的基础,也说明生殖过程中叶片保持捕获、同化、转
移光能的重要性。
3.4 种子发育与激素含量的关系
老芒麦具有极强的落粒性,有种柄脱落与小穗柄脱落两种落粒途径,自然状态下灌浆期、乳熟期、蜡熟期、完
熟期落粒率分别为4.73%,20.78%,75.67%,87.73%[13]。种子发育过程中,种子内激素种类与含量不断发生变
化,促进贮藏蛋白和糖分的积累。本文分析了种子发育不同时期,内源赤霉素和脱落酸含量变化,总的变化趋势
与韩建国等[11]研究结果一致,乳熟期后赤霉素含量显著下降,而脱落酸含量显著增加,蜡熟期达最大值,落粒率
增加了近4倍。关于禾本科牧草种子发育过程中激素含量变化,以及外源激素对穗重、结实率、落粒率的影响,较
对农作物的相关研究少而浅显。仅有对老芒麦研究结果还存在品种差异、地域差异及年份差异[11]。所以,针对
川西北年积温低、生长期短的气候特点,研究老芒麦地方品种种子发育与激素含量的关系,分析落粒早、落粒持续
时间长、落粒率高的根本原因,探讨外源激素对落粒性的影响,是该区提高老芒麦收种率及种子质量的必经途径。
犚犲犳犲狉犲狀犮犲狊:
[1] YouM H,LiuJP,BaiSQ,犲狋犪犾.Effectofmixedapplicationoffertilizersandherbicidesonproductionperformanceof犈犾狔
141第25卷第3期 草业学报2016年
犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊.ActaPrataculturaeSinica,2010,19(5):283286.
[2] YouM H,ZhangCB,LiuJP,犲狋犪犾.Effectofrowspacingandfertilizingonproductivityof犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊cv.chuancao
No.2.PrataculturalScience,2008,25(2):6972.
[3] YouM H,LiuJP,BaiSQ,犲狋犪犾.Influenceofrowspacingonfertiletilerandcharactersofseedyieldof犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊
cv.chuancaoNo.2.ActaPrataculturaeSinica,2011,20(6):299302.
[4] YanJJ,BaiSQ,MaX,犲狋犪犾.Earcharacterdiversityofnativepopulationsof犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊inthenorthwestplateauofSi
chuanprovince.ActaPrataculturaeSinica,2007,16(6):99106.
[5] ChenG,HeLF.Evaluationofecologicaladaptabilityandproductivityoftwospeciesof犈犾狔犿狌狊inalpineregion.Pratacultural
Science,2004,21(9):3942.
[6] YuanQH,ZhangJY,ZhangWS,犲狋犪犾.Biodiversityofnativepopulationsof犈犾狔犿狌狊犱犪犺狌狉犻犮狌狊and犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊.Acta
PrataculturaeSinica,2003,20(5):4449.
[7] ChenT,NanZB.Seedbornefungiinfectionofsiberianwildrye:Effectonseedgerminationandseedlinggrowth.ActaPrat
aculturaeSinica,2015,24(2):96103.
[8] MaoPS,HanJG,WangY,犲狋犪犾.Effectsoffertilizationonseedyieldandseedqualityof犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊.ActaPratacultu
raeSinica,2001,18(4):713.
[9] MaoPS,HanJG,WuXC.Effectsofharvesttimeonseedyieldofsiberianwildrye.ActaAgrestiaSinica,2003,11(1):3337.
[10] MaCH,ChengJ,HanJG,犲狋犪犾.Studyonthedynamicchangesofphysiologyandbiochemistryduringtheseeddevelop
mentoftalfescueinXinjiang.ActaPrataculturaeSinica,2002,11(4):7680.
[11] HanJG,MaoPS,NiuZL.Changesofphysiologyandbiochemistryduringseeddevelopmentofsiberianwildrye.ActaAg
restiaSinica,2000,8(4):237244.
[12] WangXG.StudiesontheVigorChangesduringSeedMaturationandtheOptimum HarvestingTimeofSiberianRyegrass
andRussianWildryeforSeed[D].Beijing:ChinaAgriculturalUniversity,1998:1142.
[13] YouM H,LiuJP,BaiSQ,犲狋犪犾.Studyonrelationshipofseedshattering,seeddevelopmentandyieldtraitsof犈犾狔犿狌狊
狊犻犫犻狉犻犮狌狊L.SouthwestChinaJournalofAgriculturalSciences,2011,24(4):12561260.
[14] CaoXZ,ZhuQS.Studyoncharacteristicsoftherelationshipbetweensourceandsinkinricevarietiesandtheirclassifica
tion.ActaAgronomicaSinica,1987,13(4):265272.
[15] TuNM,GuanCY.Effectsofleafcuttingtreatmentsonsourcesinkrelationofriceduringpanicleinitiation.JournalofHu
nanAgriculturalUniversity,1999,25(6):430436.
[16] ChingTM,CraneJM,StampDL.Adenylateenergypoolandenergychangeinmaturingrapeseed.PlantPhysiology,
1974,54:748751.
[17] LiuJP,YouMH.Effectofgrowthinhibitorsonbiomassstructure,energydistributionandlodgingratesforpopulationsof
犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊.ActaPrataculturaeSinica,2012,21(5):195203.
[18] LiuJP,YouMH,BaiSQ.Effectofrowspaceonpopulationcomponentcomposition,biomassstructureandenergydistri
butionof犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊.ActaPrataculturaeSinica,2012,21(3):6974.
参考文献:
[1] 游明鸿,刘金平,白史且,等.肥料和除草剂混施对老芒麦生产性能的影响.草业学报,2010,19(5):283286.
[2] 游明鸿,张昌兵,刘金平,等.行距和肥力对川草2号老芒麦生产性能的作用.草业科学,2008,25(2):6972.
[3] 游明鸿,刘金平,白史且,等.行距对川草2号老芒麦生殖枝及种子产量性状的影响.草业学报,2011,20(6):299302.
[4] 鄢家俊,白史且,马啸,等.川西北高原野生老芒麦居群穗部形态多样性研究.草业学报,2007,16(6):99106.
[5] 陈功,贺兰芳.高寒地区两种老芒麦生态适应性和生产性能评价.草业科学,2004,21(9):3942.
[6] 袁庆华,张吉宇,张文淑,等.披碱草和老芒麦野生居群生物多样性研究.草业学报,2003,20(5):4449.
[7] 陈焘,南志标.不同储存年限老芒麦种子种带真菌检测及致病性测定.草业学报,2015,24(2):96103.
[8] 毛培胜,韩建国,王颖,等.施肥处理对老芒麦种子质量和产量的影响.草业学报,2001,18(4):713.
[9] 毛培胜,韩建国,吴喜才.收获时间对老芒麦种子产量的影响.草地学报,2003,11(1):3337.
[10] 马春晖,程军,韩建国,等.新疆高羊茅种子发育生理生化变化的动态研究.草业学报,2002,11(4):7680.
[11] 韩建国,毛培胜,牛忠联.老芒麦种子发育过程中的生理生化变化.草地学报,2000,8(4):237244.
[12] 王显国.老芒麦、新麦草种子成熟过程中活力变化与适宜收获期的研究[D].北京:中国农业大学,1998:1142.
[13] 游明鸿,刘金平,白史且,等.老芒麦落粒性与种子发育及产量性状关系的研究.西南农业学报,2011,24(4):12561260.
[14] 曹显祖,朱庆森.水稻品种的源库特征及其类型划分的研究.作物学报,1987,13(4):265272.
[15] 屠乃美,官春云.水稻幼穗分化期间减源对源库关系的影响.湖南农业大学学报,1999,25(6):430436.
[17] 刘金平,游明鸿.生长抑制剂对老芒麦种群生物量结构、能量分配及倒伏率的影响.草业学报,2012,21(5):195203.
[18] 刘金平,游明鸿,白史且.行距对老芒麦种群构件组成、生物量结构及能量分配的影响.草业学报,2012,21(3):6974.
241 ACTAPRATACULTURAESINICA(2016) Vol.25,No.3