免费文献传递   相关文献

Exogenous nitric oxide elevated alkali tolerance of Avena nuda seedlings

外源一氧化氮提高裸燕麦幼苗的耐碱性



全 文 :书犇犗犐:10.11686/犮狔狓犫2014352 犺狋狋狆://犮狔狓犫.犾狕狌.犲犱狌.犮狀
刘建新,王金成,王瑞娟,贾海燕.外源一氧化氮提高裸燕麦幼苗的耐碱性.草业学报,2015,24(8):110117.
LiuJX,WangJC,WangRJ,JiaHY.Exogenousnitricoxideelevatedalkalitoleranceof犃狏犲狀犪狀狌犱犪seedlings.ActaPrataculturaeSinica,2015,
24(8):110117.
外源一氧化氮提高裸燕麦幼苗的耐碱性
刘建新,王金成,王瑞娟,贾海燕
(陇东学院生命科学与技术学院,甘肃省高校陇东生物资源保护与利用省级重点实验室,甘肃 庆阳745000)
摘要:采用营养液砂培方法,研究外源一氧化氮(NO)供体硝普钠(SNP)对NaHCO3 胁迫下裸燕麦幼苗生长、活性
氧代谢和渗透溶质积累的影响。结果表明,1~200μmol/LSNP能够缓解75mmol/LNaHCO3 胁迫对裸燕麦幼
苗生长的抑制作用,25μmol/LSNP的缓解作用最明显,可降低裸燕麦叶片O2
·-、H2O2、丙二醛和有机酸含量,增
强幼苗叶片超氧化物歧化酶、过氧化氢酶、过氧化物酶、抗坏血酸过氧化物酶和质膜 H+ATPase活性,提高叶片谷
胱甘肽、可溶性糖、可溶性蛋白质、游离氨基酸、脯氨酸含量和K+/Na+,但对抗坏血酸含量影响不大。分析表明,
外源NO可能通过激活抗氧化系统活性、促进渗透溶质积累和改善Na+、K+平衡缓解碱胁迫对幼苗的伤害和生长
抑制,从而提高裸燕麦的耐碱性。
关键词:一氧化氮;裸燕麦;碱胁迫;活性氧代谢;渗透溶质  
犈狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲犲犾犲狏犪狋犲犱犪犾犽犪犾犻狋狅犾犲狉犪狀犮犲狅犳犃狏犲狀犪狀狌犱犪狊犲犲犱犾犻狀犵狊
LIUJianXin,WANGJinCheng,WANGRuiJuan,JIAHaiYan
犆狅犾犾犲犵犲狅犳犔犻犳犲犛犮犻犲狀犮犲犪狀犱犜犲犮犺狀狅犾狅犵狔,犔狅狀犵犱狅狀犵犝狀犻狏犲狉狊犻狋狔,犝狀犻狏犲狉狊犻狋狔犘狉狅狏犻狀犮犻犪犾犓犲狔犔犪犫狅狉犪狋狅狉狔犳狅狉犘狉狅狋犲犮狋犻狅狀犪狀犱犝狋犻犾犻狕犪
狋犻狅狀狅犳犔狅狀犵犱狅狀犵犅犻狅狉犲狊狅狌狉犮犲狊犻狀犌犪狀狊狌犘狉狅狏犻狀犮犲,犙犻狀犵狔犪狀犵745000,犆犺犻狀犪
犃犫狊狋狉犪犮狋:Theeffectsofsodiumnitroprusside(SNP)asanitricoxide(NO)donorongrowth,leafreactiveoxy
genmetabolismandosmoticaccumulationinnakedoat(犃狏犲狀犪狀狌犱犪)seedlingsunderNaHCO3stresswerein
vestigatedbyasandnutrientcultivationmethod.SNPexposureatconcentrationrangesof1-200μmol/L,es
pecialyat25μmol/L,significantlyaleviatedNaHCO3relatedgrowthinhibitionofseedlingsbydecreasingthe
levelsofO2·-,H2O2,malondialdehydeandorganicacid,andincreasedtheactivitiesofsuperoxidedismutase,
catalase,peroxidase,ascorbateperoxidaseandplasmamembraneH+ATPaseinleavesunder75mmol/L
NaHCO3stress.Similarly,theconcentrationsofreducedglutathione,solublesugar,solubleprotein,freeami
noacidandprolineaswelasK+/Na+ratiowerealsoincreasedsignificantlyinseedlingleavesunderthesame
stress,butascorbicacidconcentrationwasnotaffectedsignificantly.TheresultsindicatethatNOmayaleviate
thedamageandgrowthinhibitioncausedbyalkalistressinnakedoatseedlingsviaactivationofantioxidantsys
temactivity,accelerationofosmoticaccumulationandmaintenanceofNa+andK+balance,thusimprovingal
kaliresistanceofthenakedoatplants.
犓犲狔狑狅狉犱狊:nitricoxide;犃狏犲狀犪狀狌犱犪;alkalistress;reactiveoxygenmetabolism;osmotica
第24卷 第8期
Vol.24,No.8
草 业 学 报
ACTAPRATACULTURAESINICA
2015年8月
Aug,2015
收稿日期:20140821;改回日期:20141008
基金项目:甘肃省庆阳市科技计划项目(KZ201419)资助。
作者简介:刘建新(1964),男,甘肃通渭人,教授。
通讯作者Correspondingauthor.Email:liujx1964@163.com
土壤盐碱化是影响农业生产和生态环境的全球性问题[1]。盐碱化土壤中的致害盐类除以NaCl和Na2SO4
为主的中性盐外,还有以Na2CO3 和NaHCO3 为主的碱性盐。通常将中性盐胁迫称为盐胁迫,而将碱性盐胁迫
称为碱胁迫。盐、碱胁迫下,植物共同遭受离子毒害和渗透胁迫,但碱胁迫还要受高pH值胁迫。因而,碱胁迫通
常比盐胁迫具有更强的生态破坏力。有研究证明,碱胁迫和盐胁迫是两种既相关但又有本质区别的不同性质的
胁迫[2]。但以往的植物抗盐碱研究多以盐胁迫为主,对碱胁迫涉及较少。提高活性氧(ROS)清除系统活性及渗
透调节功能能够增强植物对盐碱胁迫的适应能力[34]。一氧化氮(nitricoxide,NO)是生物体内的一种信号分
子,参与调节了许多植物对盐碱逆境的适应过程。如能够诱导盐胁迫下水稻(犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪)叶片的抗氧化酶活
性,增加耐盐相关基因的转录本[5];缓解盐胁迫对小麦(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)幼苗的氧化损伤[6]和玉米(犣犲犪
犿犪狔狊)幼苗的生长抑制[7];增强盐胁迫长春花(犆犪狋犺犪狉犪狀狋犺狌狊狉狅狊犲狌狊)的光合作用和生物碱积累[8];上调抗氧化酶
活性和逆境蛋白表达增强菊苣(犆犻犮犺狅狉犻狌犿犻狀狋狔犫狌狊)盐适应能力[9];NO参与碱胁迫下光合功能的调控增强黑麦
草(犔狅犾犻狌犿狆犲狉犲狀狀犲)耐碱性[10]。但NO对碱胁迫下燕麦属植物活性氧代谢、渗透溶质积累影响的研究尚鲜见报
道。裸燕麦(犃狏犲狀犪狀狌犱犪)是中国北方大面积种植的禾本科燕麦属粮饲兼用作物,具有耐适度盐碱的特性。但种
植区土壤较高的NaHCO3 含量是春季返盐季节裸燕麦保苗难和幼苗生长发育不良的主要限制因子之一。因此,
本试验研究外源NO供体硝普钠(sodiumnitroprusside,SNP)对NaHCO3 胁迫下裸燕麦幼苗生长、活性氧代谢
和渗透调节物质含量的影响,探讨NO对裸燕麦耐碱性的增强效应及其生理机制,为裸燕麦高产栽培和遗传育种
提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 供试材料
试验于2012年5-7月在甘肃省高校陇东生物资源保护与利用省级重点实验室生物科技园进行。供试裸燕
麦品种‘定莜6号’种子由甘肃省定西市旱作农业科研推广中心馈赠。NO供体硝普钠([Na2Fe(CN)5]·NO,德
国merck公司产品)先配成100mmol/L的母液,4℃保存,用时按所需浓度稀释。
1.2 NaHCO3 和SNP浓度的筛选
用0.5%NaClO对精选的裸燕麦种子进行表面消毒30min,漂洗干净后置瓷盘中在温度为28℃的光照培养
箱中培养,光照/黑暗14h/10h,光照强度150μmol/(m
2·s)。待种子露白后选萌发一致的种子用蒸馏水培养1
周后,改用浓度分别为0,25,50,75,100,125,150,175,200mmol/LNaHCO3 培养,培养7d后根据植株相对生
长量选出NaHCO3 处理浓度。在选出的NaHCO3 溶液(75mmol/L)中分别添加0,1,5,10,15,25,50,100,150,
200μmol/LSNP溶液用同样的方法培养,培养7d后根据幼苗相对生长量选出进一步处理的SNP浓度。实验
重复5次,完全随机化排列。
1.3 材料培养与试验处理
用0.5% NaClO对裸燕麦种子表面消毒后播种在装有珍珠岩的培养皿(直径12cm)中,每皿播100粒左右,
浇足水后置培养室培养。昼/夜温度(28±5)℃/(21±3)℃,湿度60%~75%,每天光照约12h,平均光强420
μmol/(m
2·s)。幼苗2叶1心时根据预实验筛选的NaHCO3 和SNP浓度进行如下浇苗处理:1)对照,Hoag
land溶液,CK(pH6.12);2)Hoagland溶液+75mmol/LNaHCO3,NaHCO3(pH8.67);3)Hoagland溶液+75
mmol/LNaHCO3+25μmol/LSNP,NaHCO3+SNP(pH8.61);4)Hoagland溶液+25μmol/LSNP,SNP
(pH6.28)。处理期间,每天早晚各更换一次处理液,实验3次重复,随机排列。处理7d后取幼苗叶片保存在
-80℃冰箱中用于各项生理指标测定。
1.4 测定指标与方法
1.4.1 幼苗相对生长量的测定  每个处理取50株幼苗,在105℃杀青30min,70℃烘干至恒重,称干重,以对
照组干重为100%,其他处理的幼苗干重与对照组干重比值作为幼苗相对生长量。
1.4.2 超氧阴离子(O2·-)、H2O2 和 MDA含量测定  O2·-含量按陈建勋和王晓峰[11]的方法测定。H2O2
含量参照Sergiev等[12]的方法测定;丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量采用硫代巴比妥酸法[11]测定。
111第8期 刘建新 等:外源一氧化氮提高裸燕麦幼苗的耐碱性
1.4.3 抗氧化酶活性和抗氧化物质含量测定  超氧化物歧化酶(superoxidedismutase,SOD)、过氧化氢酶
(catalase,CAT)、过氧化物酶(peroxidase,POD)、抗坏血酸过氧化物酶(ascorbateperoxidase,APX)活性及谷胱
甘肽(glutathione,GSH)和抗坏血酸(ascorbicacid,AsA)含量按陈建勋和王晓峰[11]的方法测定。SOD活性以
抑制氯化硝基四氮唑蓝(NBT)光化还原的50%为1个酶活性单位(U);CAT活性以每分钟240nm 吸光值
(OD)减少0.01为1个活力单位(U);POD活性以每分钟470nmOD值增加0.01为1个活力单位(U);APX活
性以每分钟290nmOD值减少0.01为1个活力单位(U)。
1.4.4 渗透调节物质含量的测定  分别按李合生[13]的蒽酮比色法、考马斯亮蓝法、茚三酮染色法和磺基水杨
酸法测定可溶性糖、可溶性蛋白质、游离氨基酸和脯氨酸含量。有机酸含量按高俊凤[14]的方法测定。
1.4.5 质膜 H+ATPase活性和Na+、K+含量的测定  质膜微囊提取和 H+ATPase活性测定采用陈海燕
等[15]的方法。Na+、K+按赵旭等[16]的方法浸提,FP640型火焰光度计测定浸提液中Na+、K+含量。
1.5 统计分析
所有数据以平均数±标准差表示,采用SPSS19.0进行方差分析和Duncan法多重比较(犘<0.05)。
2 结果与分析
2.1 NaHCO3 和SNP处理浓度的筛选
图1显示,用0~200mmol/LNaHCO3 处理裸燕麦7d,幼苗相对生长量随NaHCO3 浓度增加呈下降趋势,
75mmol/L及以上浓度NaHCO3 处理与0mmol/L对照的幼苗相对生长量差异显著。因此,选用75mmol/L
NaHCO3 作为碱胁迫浓度。在75mmol/LNaHCO3 胁迫下用0~200μmol/LSNP处理裸燕麦时幼苗相对生
长量随SNP浓度递增呈先升后降的变化,其中25μmol/LSNP处理的相对生长量最大(图2)。因此,选用25
μmol/LSNP作为后续实验浓度。
图1 不同浓度犖犪犎犆犗3 对裸燕麦幼苗
相对生长量的影响
犉犻犵.1 犈犳犳犲犮狋狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀狅犳犖犪犎犆犗3狅狀
狉犲犾犪狋犻狏犲犱狉狔狑犲犻犵犺狋狅犳狀犪犽犲犱
狅犪狋狊犲犲犱犾犻狀犵狊
图2 不同浓度犛犖犘对75犿犿狅犾/犔犖犪犎犆犗3 胁迫下
裸燕麦幼苗相对生长量的影响
犉犻犵.2 犈犳犳犲犮狋狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀狊狅犳犛犖犘狅狀狉犲犾犪狋犻狏犲犱狉狔
狑犲犻犵犺狋狅犳狀犪犽犲犱狅犪狋狊犲犲犱犾犻狀犵狊狌狀犱犲狉
75犿犿狅犾/犔犖犪犎犆犗3狊狋狉犲狊狊
不同字母表示5%水平差异显著,下同。Differentlettersabovethebarsmeansignificantdifferenceat5%level.Thesamebelow.
2.2 SNP对NaHCO3 胁迫下裸燕麦幼苗叶片O2·-、H2O2 和 MDA含量的影响
O2·-和H2O2 是膜脂过氧化2种重要的ROS,MDA是膜脂过氧化的产物。从图3可见,与CK相比,NaH
CO3 胁迫显著提高了裸燕麦幼苗叶片O2·-、H2O2 和 MDA含量;NaHCO3+SNP处理与单独NaHCO3 处理相
比,O2·-、H2O2 和 MDA含量分别下降了41.5%,19.3%和34.3%,差异显著;单独SNP处理的 O2·-、H2O2
和 MDA含量与CK无显著差异。表明NO能够缓解碱胁迫下ROS积累诱导的膜脂过氧化伤害。
211 草 业 学 报 第24卷
图3 犛犖犘对犖犪犎犆犗3 胁迫下裸燕麦幼苗叶片犗2·-、犎2犗2 和 犕犇犃含量的影响
犉犻犵.3 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犛犖犘狅狀犮狅狀狋犲狀狋狊狅犳犗2·-,犎2犗2犪狀犱犕犇犃犻狀狀犪犽犲犱狅犪狋狊犲犲犱犾犻狀犵狊狌狀犱犲狉犖犪犎犆犗3狊狋狉犲狊狊
 
2.3 SNP对NaHCO3 胁迫下裸燕麦幼苗叶片活性氧清除系统的影响
由SOD、CAT、POD和APX等抗氧化酶及AsA、GSH等抗氧化物质组成的ROS清除系统对膜脂氧化损伤
具有保护作用。由表1可见,与CK相比,NaHCO3 胁迫显著降低了裸燕麦幼苗叶片SOD和CAT活性,提高了
APX活性及GSH含量,而POD活性和AsA含量无显著差异;NaHCO3+SNP处理的SOD、CAT、POD和APX
活性及GSH含量显著高于单独 NaHCO3 处理,分别提高了22.8%,41.8%,162.3%,19.4%和68.7%。而
AsA含量却没有明显变化。单独SNP处理的SOD、APX活性较CK提高了17.4%和22.2%,而CAT、POD活
性及AsA、GSH含量与CK无显著差异。
表1 犛犖犘对犖犪犎犆犗3 胁迫下裸燕麦幼苗叶片犛犗犇、犆犃犜、犘犗犇和犃犘犡活性及犃狊犃、犌犛犎含量的影响
犜犪犫犾犲1 犈犳犳犲犮狋狅犳犛犖犘狅狀犪犮狋犻狏犻狋犻犲狊狅犳犛犗犇,犆犃犜,犘犗犇,犃犘犡犪狀犱犮狅狀狋犲狀狋狊狅犳犃狊犃,
犌犛犎犻狀犾犲犪狏犲狊狅犳狀犪犽犲犱狅犪狋狊犲犲犱犾犻狀犵狊狌狀犱犲狉犖犪犎犆犗3狊狋狉犲狊狊
处理
Treatment
SOD活性
SODactivity
(U/gFW)
CAT活性
CATactivity
(U/gFW)
POD活性
PODactivity
(U/gFW)
APX活性
APXactivity
(U/gFW)
ASA含量
ASAcontent
(mg/gFW)
GSH含量
GSHcontent
(mg/gFW)
CK 428.0±6.93b 68.2±3.45a 20.0±0.20b 53.7±2.80d 4.69±0.18a 0.77±0.04c
NaHCO3 192.7±6.42d 51.9±5.57b 21.0±1.00b 75.4±1.71b 4.50±0.32a 1.15±0.12b
NaHCO3+SNP 236.6±5.89c 73.6±3.74a 55.1±1.65a 90.0±4.24a 4.48±0.21a 1.94±0.06a
SNP 502.3±4.69a 68.4±1.72a 22.5±1.40b 65.6±2.65c 4.63±0.14a 0.87±0.10c
 同列不同字母表示5%水平差异显著,下同。Differentletterswithinthesamecolumnmeansignificantdifferenceat5%level.Thesamebelow.
2.4 SNP对NaHCO3 胁迫下裸燕麦幼苗叶片渗透溶质含量的影响
从表2可见,与CK相比,单独NaHCO3 处理下裸燕麦幼苗叶片可溶性糖、可溶性蛋白和游离氨基酸含量分
别下降53.1%,31.0%和43.0%,而有机酸和脯氨酸含量则分别升高25.1%和276.8%;NaHCO3+SNP处理与
单独NaHCO3 处理相比,可溶性糖、可溶性蛋白质、脯氨酸和游离氨基酸含量分别提高42.2%,66.1%,24.5%
和28.7%,有机酸含量则下降59.9%。单独SNP处理与CK相比,可溶性蛋白质和脯氨酸含量显著提高,可溶
性糖和游离氨基酸含量明显降低,而有机酸含量无明显变化。
2.5 SNP对NaHCO3 胁迫下裸燕麦幼苗叶片Na+、K+含量及质膜H+ATP活性的影响
与CK相比,NaHCO3 处理下裸燕麦幼苗叶片 Na+含量提高了52.8%,K+含量和 K+/Na+及质膜 H+
ATP活性分别降低了26.6%,52.0%和46.3%(表3);添加SNP使NaHCO3 胁迫下Na+含量提高及K+含量、
K+/Na+和质膜 H+ATPase活性下降的幅度明显减小。单独SNP处理下的 Na+、K+含量、K+/Na+和质膜
H+ATPase活性与CK无明显差异。
311第8期 刘建新 等:外源一氧化氮提高裸燕麦幼苗的耐碱性
表2 犛犖犘对犖犪犎犆犗3 胁迫下裸燕麦幼苗叶片渗透溶质含量的影响
犜犪犫犾犲2 犈犳犳犲犮狋狅犳犛犖犘狅狀犮狅狀狋犲狀狋狅犳狅狊犿狅狋犻犮犪犻狀犾犲犪狏犲狊狅犳狀犪犽犲犱狅犪狋狊犲犲犱犾犻狀犵狊狌狀犱犲狉犖犪犎犆犗3狊狋狉犲狊狊
处理
Treatment
可溶性糖含量
Solublesugarcontent
(mg/gFW)
可溶性蛋白质含量
Solubleproteincontent
(mg/gFW)
有机酸含量
Organicacidcontent
(%)
脯氨酸含量
Prolinecontent
(μg/gFW)
游离氨基酸含量
Freeaminoacidcontent
(mg/gFW)
CK 7.83±0.05a 4.87±0.14b 3.35±0.08b 74.6±3.51d 12.59±0.18a
NaHCO3 3.67±0.14d 3.36±0.04c 4.19±0.16a 281.1±2.03b 7.18±0.10d
NaHCO3+SNP 5.22±0.11c 5.58±0.03a 1.68±0.13c 350.1±3.93a 9.24±0.22c
SNP 6.89±0.08b 5.33±0.07a 3.51±0.22b 120.6±6.46c 10.07±0.14b
表3 犛犖犘对犖犪犎犆犗3 胁迫下裸燕麦幼苗叶片犖犪+、犓+含量及质膜犎+犃犜犘活性的影响
犜犪犫犾犲3 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犛犖犘狅狀犮狅狀狋犲狀狋狊狅犳犖犪+,犓+犪狀犱犪犮狋犻狏犻狋狔狅犳狆犾犪狊犿犪犿犲犿犫狉犪狀犲犎+犃犜犘犪狊犲犻狀
犾犲犪狏犲狊狅犳狀犪犽犲犱狅犪狋狊犲犲犱犾犻狀犵狊狌狀犱犲狉犖犪犎犆犗3狊狋狉犲狊狊
处理
Treatment
Na+含量
Na+content(mmol/gDW)
K+含量
K+content(mmol/gDW)
K+/Na+ H+ATPase活性
H+ATPaseactivity(μmol/mg·h)
CK 1.730±0.025c 1.601±0.022a 0.925±0.016a 7.256±0.341a
NaHCO3 2.644±0.020a 1.175±0.018c 0.444±0.012c 3.899±0.224c
NaHCO3+SNP 2.209±0.013b 1.422±0.033b 0.644±0.017b 6.021±0.182b
SNP 1.678±0.054c 1.546±0.026a 0.921±0.011a 7.270±0.258a
3 讨论
生长受抑是作物对土壤盐碱化响应的直接表现。本研究表明,75mmol/L及以上浓度NaHCO3 溶液(相当
于土壤含0.63%以上碱性盐)处理显著抑制裸燕麦幼苗的生长(图1),1~200μmol/LSNP能够不同程度地缓解
75mmol/LNaHCO3 胁迫对裸燕麦幼苗生长的抑制,其中25μmol/LSNP的缓解作用最为明显(图2)。说明外
源NO能够提高裸燕麦幼苗的耐碱性。0.5mmol/LSNP能够产生约2μmol/LNO
[17]。NO能够缓解碱胁迫下
裸燕麦幼苗生长抑制作用的原因:一方面,可能是NO提高了细胞膜的流动性,促进了细胞生长[18],另一方面,可
能与NO参与光合作用过程调节,提高光化学活性有关[10]。但外源NO调节细胞生理代谢缓解盐碱胁迫对作物
生长抑制的作用是暂时性的,采用化控或遗传手段提高作物体内NO水平,增强作物长期适应盐碱环境的能力是
需要进一步研究解决的问题。
盐碱胁迫下,植物首先遭受的是离子毒害和渗透胁迫,进而导致氧化伤害等次生胁迫。细胞质膜是受氧化伤
害最敏感的部位。植物体内存在的酶促和非酶促两类活性氧清除系统在防御ROS对膜脂的攻击,维持膜结构和
功能的完整性方面具有重要作用[19]。SOD催化O2·-发生歧化反应生成 H2O2,CAT可直接与 H2O2 反应来清
除H2O2,POD则需在酚类物质参与下清除H2O2,APX参与AsA-GSH循环与AsA反应清除H2O2[20]。本试
验结果表明,75mmol/LNaHCO3 胁迫下,裸燕麦幼苗叶片尽管通过提高APX活性和GSH含量加强ROS的清
除,但因SOD和CAT活性的下降(表1),还是造成了O2·-和 H2O2 的积累及膜脂过氧化水平的提高(图3)。
外源SNP对NaHCO3 胁迫下SOD、CAT、POD和APX活性及GSH含量明显的促进作用(表1),提高了裸燕麦
清除ROS的能力,缓解了NaHCO3 胁迫诱导的O2·-和 H2O2 积累对膜脂的氧化伤害(图3)。表明外源NO可
通过调节抗氧化防护降低碱胁迫下ROS积累对膜脂的氧化损伤。NO对ROS水平的这种下调作用一方面可能
是NO作为抗氧化剂直接参与了ROS的清除[21];另一方面 NO作为信号分子可能诱导了抗氧化酶编码基因
mRNA的表达间接清除ROS[22]。
由于Na+和K+具有接近的水合半径,盐碱胁迫下的植物大量Na+的吸收会限制K+吸收。细胞胞质中积
累的Na+需跨膜转运以降低胞质伤害[23],胞质中通过累积有机渗透调节物质来维持渗透平衡[24]。质膜上结合
411 草 业 学 报 第24卷
的H+ATP酶通过水解ATP为Na+的跨质膜转运提供了驱动力[25]。有研究表明,NO能提高液泡膜质子泵和
Na+/H+逆向转运蛋白活性降低玉米在盐胁迫下对Na+的吸收[26];还可激活细胞质膜内向K+通道活性促进小
麦根系对K+的吸收[27]。本研究结果表明,25μmol/LNO供体SNP能够降低碱胁迫下裸燕麦植株 Na
+的含
量,提高K+/Na+和质膜H+ATPase活力(表3)。说明外源NO可能通过调节质膜H+ATPase活性维持碱胁
迫下K+、Na+的平衡。这与Zhao等[28]的研究结果一致。25μmol/LSNP处理还提高了75mmol/LNaHCO3
胁迫裸燕麦有机渗透溶质如可溶性的糖和蛋白质及游离氨基酸的含量,降低了有机酸含量(表2)。说明外源NO
可促进有机渗透调节物质在胞质的积累,从而提高裸燕麦的耐碱性,这与刘建新等[10]以黑麦草为材料及谷文英
等[9]在菊苣上的研究结果一致。脯氨酸除具有渗透调节作用外,还能够保护亚细胞结构及清除活性氧[2930]。外
源NO供体SNP提高了碱胁迫下裸燕麦的脯氨酸含量,这与外源NO促进黄瓜(犆狌犮狌犿犻狊狊犪狋犻狏狌狊)脯氨酸累积的
结果一致[31]。说明NO提高脯氨酸水平是其缓解植物逆境胁迫的重要原因。植物体内脯氨酸的合成有谷氨酸
途径和鸟氨酸途径2条,而脯氨酸分解的关键酶是脯氨酸脱氢酶。杨双龙和龚明[32]研究指出,NO通过提高鸟
氨酸途径中的鸟氨酸转氨酶活性促进了脯氨酸的合成,又同时抑制脯氨酸脱氢酶的活性抑制了脯氨酸的降解。
NO诱导碱胁迫下脯氨酸积累的机制尚待进一步探讨。
4 结论
外源SNP不仅能够提高NaHCO3 胁迫下裸燕麦幼苗叶片SOD、CAT、POD和APX活性及GSH含量,降
低 H2O2、O2·-和 MDA含量;还可促进可溶性糖、可溶性蛋白质、游离氨基酸和脯氨酸积累,提高K+/Na+,缓
解NaHCO3 胁迫对植株生长的抑制。表明外源NO能够通过增强抗氧化和渗透调节能力,维持K+、Na+的平
衡,提高裸燕麦的耐碱性。
犚犲犳犲狉犲狀犮犲狊:
[1] LiH,KangJ,ZhaoGM,犲狋犪犾.Effectsofsalinityonaccumulationanddistributionmodeofdrymatterandsolublesugarof
Jerusalemartichoke(犎犲犾犻犪狀狋犺狌狊狋狌犫犲狉狅狊狌狊).ActaPrataculturaeSinica,2014,23(2):160170.
[2] YangCW,LiCY,YinHJ,犲狋犪犾.PhysiologicalresponseofXiaobingmai(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿犃犵狉狅狆狔狉狅狀犻狀狋犲狉犿犲犱犻狌犿)to
saltstressandalkalistress.ActaAgronomicaSinica,2007,33(8):12551261.
[3] BaisakR,RanaD,AcharyaPBB,犲狋犪犾.Alterationsintheactivitiesofactiveoxygenscavengingenzymesofwheatleavessub
jectedtowaterstress.PlantandCelPhysiology,1994,35(3):489495.
[4] YouJH,LuJM,YangWJ.StudiesoncoldresistanceandeffectsonrelatedphysiologicalindexbyCaincloveseedling.
PrataculturalScience,2003,12(1):3133.
[5] UchidaA,JagendorfAT,HibinoT,犲狋犪犾.Effectsofhydrogenperoxideandnitricoxideonbothsaltandheatstresstolerance
inrice.PlantScience,2002,163:515523.
[6] RuanHH,ShenWB,YeMB,犲狋犪犾.Protectiveeffectofnitricoxideonoxidativedamageinwheatleavesundersaltstress.
ChineseScienceBuletin,2001,46(23):19931997.
[7] ZhangYY,LiuJ,LiuYL.NitricoxidealeviatesgrowthinhibitioninmaizeseedlingunderNaClstress.JournalofPlant
PhysiologyandmolecularBiology,2004,30(4):455459.
[8] HuFB,LongXH,LiuL,犲狋犪犾.EffectsofSNPonphotosynthesisandalkaloidcontentof犆犪狋犺犪狉犪狀狋犺狌狊狉狅狊犲狌狊seedlingsun
derNaClstress.ActaPedologicaSinica,2011,48(5):10441050.
[9] GuWY,MoPH,YangJS,犲狋犪犾.Exogenousnitricoxideandhydrogenperoxideregulatetheacclimationofchicory(犆犻犮犺狅
狉犻狌犿犻狀狋狔犫狌狊)tosaltstress.ChineseJournalofEcology,2014,33(1):8997.
[10] LiuJX,WangJC,WangX,犲狋犪犾.Regulationofexogenousnitricoxideonphotosyntheticphysiologicalresponseof犔狅犾犻狌犿
狆犲狉犲狀狀犲seedlingsunderNaHCO3stress.ActaEcologicaSinica,2012,32(11):34603466.
[11] ChenJX,WangXF.PlantPhysiologyExperimentalGuidance[M].Guangzhou:SouthChinaUniversityofTechnology
Press,2002.
[12] SergievI,AlexievaV,KaranovE.Effectofspermine,atrazineandcombinationbetweenthemonsomeendogenousprotec
tivesystemsandstressmarkersinplants.ComptesRendusdeI’AcademieBulgaredesSciences,1997,51:121124.
[13] LiHS.PrinciplesandTechniquesofPlantPhysiologicalBiochemicalExperiment[M].Beijing:HigherEducationPress,
2000.
511第8期 刘建新 等:外源一氧化氮提高裸燕麦幼苗的耐碱性
[14] GaoJF.PlantPhysiologyExperimentalGuidance[M].Beijing:HigherEducationPress,2006.
[15] ChenHY,CuiXJ,ChenX,犲狋犪犾.EffectsofsaltstressandLa3+onantioxidativeenzymesandplasmamembraneH+AT
Paseinrootsoftworicecultivarswithdifferentsalttolerance.ActaAgronomicaSinica,2007,33(7):10861093.
[16] ZhaoX,WangLQ,ZhouCJ,犲狋犪犾.EffectsofsaltstressontheabsorptionandaccumulationofNa+andK+inseedlingsof
fourwinterwheat(犜狉犻狋犻狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)genotypes.ActaEcologicaSinica,2007,27(1):205213.
[17] DeledonneM,XiaY,DixonRA,犲狋犪犾.Nitricoxidefunctionsasasignalinplantdiseaseresistance.Nature,1998,394:
585588.
[18] LeshemYY,HamaratYE.PlantagingtheemissionofNOandethyleneandeffectofNOreleasingcompoundsongrowth
ofpea(犘犻狊狌犿狊犪狋犻狏狌犿)foliage.JournalofPlantPhysiology,1996,148:258263.
[19] MengYX,WangSH,WangJC,犲狋犪犾.InfluencesofCoCl2onthegrowthandseedlingphysiologicalindexesof犎狅狉犱犲狌犿
狏狌犾犵犪狉犲underNaClstress.ActaPrataculturaeSinica,2014,23(3):160166.
[20] DixonDP,DavisBG,EdwardsR.Functionaldivergenceintheglutathionetransferasesuperfamilyinplants:Identification
oftwoclasseswithputativefunctionsinredoxhomeostasisin犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪.JournalofBiologicalChemistry,2002,
277:3085930869.
[21] BeligniMV,FathA,BethkePC,犲狋犪犾.Nitricoxideactsasanantioxidantanddelaysprogrammedceldeathinbarleyaleu
ronelayers.PlantPhysiology,2002,129:16421650.
[22] HongJK,YunBW,KangJG,犲狋犪犾.Nitricoxidefunctionandsignalinginplantdiseaseresistance.JournalofExperimental
Biology,2008,59:147154.
[23] ParidaAK,DasAB.Salttoleranceandsalinityeffectsonplantsareview.EcotoxicologyandEnvironmentalSafety,2005,
60(3):324349.
[24] MunnsR,TesterM.Mechanismsofsalinitytolerance.AnnualReviewofPlantBiology,2008,59:651681.
[25] SerranoR.StructureandfunctionofplasmamembraneATPase.AnnualReviewofPlantPhysiologyandPlantMolecularBi
ology,1989,40:6194.
[26] ZhangYY,WangLL,LiuYL,犲狋犪犾.Nitricoxideenhancessalttoleranceinmaizeseedlingsthroughincreasingactivitiesof
protonpumpandNa+/H+antiportinthetonoplast.Planta,2006,224:545555.
[27] WenY,ZhaoX,ZhangX,犲狋犪犾.Effectsofnitricoxideonrootgrowthandabsorptioninwheatseedlingsinresponsetowater
stress.ActaAgronomicaSinica,2008,34(2):344348.
[28] ZhaoLQ,ZhangF,GuoJK,犲狋犪犾.Nitricoxidefunctionsasasignalinsaltresistanceinthecalusesfromtwoecotypesof
reed.PlantPhysiology,2004,134:849857.
[29] AshrafM,FooladMR.Rolesofglycinebetaineandprolineinimprovingplantabioticstressresistance.Environmentaland
ExperimentalBotany,2007,59:206216.
[30] WangRM,DongKH,LiYY,犲狋犪犾.Effectsofapplyingexogenousplanthormoneonpralinemetabolismof犛狑犪犻狀狊狅狀犻犪
狊犪犾狊狌犾犪seedlingsunderNaClstress.ActaPrataculturaeSinica,2014,23(2):189195.
[31] FanHF,GuoSR,JiaoYS,犲狋犪犾.Theeffectsofexogenousnitricoxideongrowth,activeoxygenmetabolismandphoto
syntheticcharacteristicsincucumberseedlingsunderNaClstress.ActaEcologicaSinica,2007,27(2):546553.
[32] YangSL,GongM.EffectsofnitricoxideonprolineaccumulationandmetabolicpathwaysinMaize(犣犲犪犿犪狔狊L.)seed
lings.PlantPhysiologyCommunications,2009,45(8):781784.
参考文献:
[1] 李辉,康健,赵耕毛,等.盐胁迫对菊芋干物质和糖分积累分配的影响.草业学报,2014,23(2):160170.
[2] 杨春武,李长有,尹红娟,等.小冰麦(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿犃犵狉狅狆狔狉狅狀犻狀狋犲狉犿犲犱犻狌犿)对盐胁迫和碱胁迫的生理响应.作物学
报,2007,33(8):12551261.
[6] 阮海华,沈文飙,叶茂炳,等.一氧化氮对盐胁迫下小麦叶片氧化损伤的保护效应.科学通报,2001,46(23):19931997.
[7] 张艳艳,刘俊,刘友良.一氧化氮缓解盐胁迫对玉米生长的抑制作用.植物生理与分子生物学学报,2004,30(4):455459.
[8] 胡凡波,隆小华,刘玲,等.硝普钠对NaCl胁迫下长春花幼苗光合及生物碱的影响.土壤学报,2011,48(5):10441050.
[9] 谷文英,莫平华,杨江山,等.外源一氧化氮和过氧化氢调节菊苣盐适应性.生态学杂志,2014,33(1):8997.
[10] 刘建新,王金成,王鑫,等.外源NO对NaHCO3 胁迫下黑麦草幼苗光合生理响应的调节.生态学报,2012,32(11):3460
3466.
[11] 陈建勋,王晓峰.植物生理学实验指导[M].广州:华南理工大学出版社,2002.
[13] 李合生.植物生理生化实验原理和技术[M].北京:高等教育出版社,2000.
[14] 高俊凤.植物生理学实验指导[M].北京:高等教育出版社,2006.
[15] 陈海燕,崔香菊,陈熙,等.盐胁迫及La3+对不同耐盐性水稻根中抗氧化酶及质膜 H+ATPase的影响.作物学报,2007,
611 草 业 学 报 第24卷
33(7):10861093.
[16] 赵旭,王林权,周春菊,等.盐胁迫对四种基因型冬小麦幼苗Na+、K+吸收累积的影响.生态学报,2007,27(1):205213.
[19] 孟亚雄,王世红,汪军成,等.CoCl2对NaCl胁迫下大麦生长及幼苗生理指标的影响.草业学报,2014,23(3):160166.
[27] 闻玉,赵翔,张骁.水分胁迫下一氧化氮对小麦幼苗根系生长和吸收的影响.作物学报,2008,34(2):344348.
[30] 王若梦,董宽虎,李钰莹,等.外源植物激素对NaCl胁迫下苦马豆苗期脯氨酸代谢的影响.草业学报,2014,23(2):189
195.
[31] 樊怀福,郭世荣,焦彦生,等.外源一氧化氮对 NaCl胁迫下黄瓜幼苗生长、活性氧代谢和光合特性的影响.生态学报,
2007,27(2):546553.
[32] 杨双龙,龚明.一氧化氮对玉米幼苗体内脯氨酸积累及其代谢途径的影响.植物生理学通讯,2009,45(8):781784.
711第8期 刘建新 等:外源一氧化氮提高裸燕麦幼苗的耐碱性