免费文献传递   相关文献

Effects of lead stress on growth, physiology, and lead ion accumulation and transportation in gramineous forages

铅胁迫对禾本科牧草生长、生理及Pb2+富集转运的影响



全 文 :书犇犗犐:10.11686/犮狔狓犫2014303 犺狋狋狆://犮狔狓犫.犾狕狌.犲犱狌.犮狀
李慧芳,王瑜,袁庆华,赵桂琴.铅胁迫对禾本科牧草生长、生理及Pb2+富集转运的影响.草业学报,2015,24(9):163172.
LIHuiFang,WANGYu,YUANQingHua,ZHAOGuiQin.Effectsofleadstressongrowth,physiology,andleadionaccumulationandtranspor
tationingramineousforages.ActaPrataculturaeSinica,2015,24(9):163172.
铅胁迫对禾本科牧草生长、生理及
犘犫2+富集转运的影响
李慧芳1,2,王瑜1,袁庆华1,赵桂琴2
(1.中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京100193;2.甘肃农业大学草业学院,甘肃 兰州730070)
摘要:采用苗期盆栽试验,对14份禾本科牧草种质材料进行不同浓度(0,10,50,100,200,300mg/kg)铅(Pb)胁迫
处理,通过对株高、分蘖数、地上/地下生物量、脯氨酸含量、抗氧化酶(SOD、POD、CAT)活性、地上部与根中Pb2+
含量等指标的测定与分析,探究Pb胁迫对禾草生长生理以及Pb2+富集转运的影响。结果表明,随着Pb浓度的增
加,14份材料的株高、分蘖数、地上生物量均呈先上升后下降的趋势,地下生物量则逐渐降低,通过综合评价,来自
土耳其的长穗冰草G5具有较强的耐Pb性。随着Pb浓度的增加,地上部与根中Pb2+含量逐渐升高,富集系数逐渐
降低,转移系数逐渐降低(披碱草G7与G8除外),根中Pb2+含量显著高于地上部,为Pb2+的主要富集器官,披碱草
地上部Pb2+含量高于其他材料,具有较强的Pb富集转运能力。7份材料的生理指标测定结果表明,随着Pb浓度
的增加,7份材料的脯氨酸含量逐渐上升,CAT活性逐渐下降,POD和SOD活性则呈先上升后下降的趋势。
关键词:禾本科牧草;苗期;铅胁迫;生长和生理;富集转运   
犈犳犳犲犮狋狊狅犳犾犲犪犱狊狋狉犲狊狊狅狀犵狉狅狑狋犺,狆犺狔狊犻狅犾狅犵狔,犪狀犱犾犲犪犱犻狅狀犪犮犮狌犿狌犾犪狋犻狅狀犪狀犱狋狉犪狀狊狆狅狉
狋犪狋犻狅狀犻狀犵狉犪犿犻狀犲狅狌狊犳狅狉犪犵犲狊
LIHuiFang1,2,WANGYu1,YUANQingHua1,ZHAOGuiQin2
1.犐狀狊狋犻狋狌狋犲狅犳犃狀犻犿犪犾犛犮犻犲狀犮犲狅犳犆犃犃犛,犅犲犻犼犻狀犵100193,犆犺犻狀犪;2.犆狅犾犾犲犵犲狅犳犌狉犪狊狊犾犪狀犱犛犮犻犲狀犮犲,犌犪狀狊狌犃犵狉犻犮狌犾狋狌狉犪犾犝狀犻狏犲狉狊犻
狋狔,犔犪狀狕犺狅狌730070,犆犺犻狀犪
犃犫狊狋狉犪犮狋:Fourteengramineousforageswerestressedbydifferentleadtreatments(0,10,50,100,200,300
mg/kg)attheseedlingstageinpots.Bymeasurementofplantheight,tilernumber,shootandrootbiomass,
antioxidantenzymeactivitiesandshootandrootleadioncontent,theeffectsofleadstressongrowth,physiol
ogy,accumulationandtransportationwereanalyzed.Atlowlevelsofleadexposure,plantheight,tilernum
berandshootbiomassweregeneralyincreased,thenreducedgradualywithincreasingleadexposure.犃犵狉狅
狆狔狉狅狀犲犾狅狀犵犪狋狌犿 G5fromTurkeywasfoundtohaveahighleadtolerance.Withincreasingleadexposure,lead
ioncontentinrootsandshootsincreasedgradualy,whilethebioconcentrationfactorandtransferfactorde
creasedgradualyexceptfor犈犾狔犿狌狊犱犪犺狌狉犻犮狌狊G7andG8.Thecontentofleadionsinrootswassignificantly
higherthanthatinshoots,fromwhichweconcludedthattherootwasthemainorganbywhichPoaceousfora
gesaccumulateleadions.Thecontentofleadionsinshootsof犈.犱犪犺狌狉犻犮狌狊G7andG8werehigherthaninoth
第24卷 第9期
Vol.24,No.9
草 业 学 报
ACTAPRATACULTURAESINICA
2015年9月
Sep,2015
收稿日期:20140703;改回日期:20150226
基金项目:十二五国家科技支撑计划课题(2011BAD17B01),国家牧草产业体系(岗位专家)项目(CARS35)和中国农业科学院北京畜牧兽医研
究所基本科研业务费项目(2014ywfzd2)资助。
作者简介:李慧芳(1987),女,山西忻州人,在读硕士。Email:lhf523dxxz@163.com
通讯作者Correspondingauthor.Email:yuanqinghua@hotmail.com
ergermplasm,indicatingahighcapacityforleadaccumulationandtransportation.Fromphysiologicalanalysis
ofsevenevaluatedvarieties,itwasfoundthatwithincreasedleadexposure,prolinecontentincreasedgradual
ly,andcatalase(CAT)activitydecreasedgradualy,whileperoxidase(POD)andsuperoxidedismutase(SOD)
wereelevatedatlowlevelsofexposure,butdecreasedathigherlevelsofexposure.
犓犲狔狑狅狉犱狊:gramineousforages;seedlingstage;leadstress;growthandphysiology;accumulationandtrans
portation
铅(Pb)是最严重的环境重金属污染物之一[1]。Pb广泛存在于自然界,易被土壤吸附,不易被生物降解。Pb
在植物根、茎、叶及籽粒中的累积,不仅严重影响植物的生长发育、降低产量和质量[2],并通过生物链富集而对人
类健康造成严重的威胁,成为环境治理中越来越突出的问题。
重金属胁迫导致植物体内活性氧的增加是其毒害植物的重要机制之一。活性氧能够快速地与DNA、脂类、
蛋白质等反应从而造成细胞损伤[34]。正常情况下,植物体内的活性氧物质主要通过抗氧化剂和抗氧化酶两者协
同清除;在逆境胁迫下,植物体内的活性氧数量剧增,植物的抗氧化酶活性迅速升高,对清除活性氧起到重要的应
激反应,成为环境胁迫下应激反应的重要检测指标[5]。已有研究表明,Pb胁迫会导致羽扇豆(犔狌狆犻狀狌狊犾狌狋犲狌狊cv.
Ventus)与豌豆(犘犻狊狌犿狊犪狋犻狏狌犿)根部、水稻(犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪)植株、玉米(犣犲犪犿犪狔狊)愈伤组织等活性氧的增加与抗
氧化酶活性的增强[6]。另有研究表明,Pb胁迫会导致假俭草(犈狉犲犿狅犮犺犾狅犪狅狆犺犻狌狉狅犻犱犲狊)、结缕草(犣狅狔狊犻犪犼犪狆狅狀犻
犮犪)、多年生黑麦草(犔狅犾犻狌犿狆犲狉犲狀狀犲)等植物体内脯氨酸含量的升高[78]。脯氨酸的积累可以调节细胞内的渗透
势,维持水分平衡,保护细胞内重要代谢活动所需的酶类活性,为植物适应逆境胁迫的基本特征之一[9]。
我国拥有丰富的草种质资源,但这些资源并没有得到充分的利用,造成了资源的严重浪费。禾本科牧草适应
性强,耐刈耐牧耐栽培,是优良的水土保持、防风固沙的绿化植物,在草地生态系统中具有重要作用。钱海燕
等[10]研究发现黑麦草对Cu、Zn污染土壤有一定的耐性及修复作用;Tamas和Kovacs[11]认为早熟禾(犘狅犪spp.)
对Pb的吸收富集能力较强。本研究选取多年生黑麦草、老芒麦(犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊)、鹅观草(犚狅犲犵狀犲狉犻犪犽犪犿狅
犼犻)、披碱草(犈犾狔犿狌狊犱犪犺狌狉犻犮狌狊)、高羊茅(犉犲狊狋狌犮犪犲犾犪狋犪)、长穗冰草(犃犵狉狅狆狔狉狅狀犲犾狅狀犵犪狋狌犿)和鸭茅(犇犪犮狋狔犾犻狊
犵犾狅犿犲狉犪狋犪)等禾草作为试验材料,通过对其在Pb胁迫下的形态指标(株高、分蘖数、地上/地下生物量)与生理指
标(脯氨酸含量、抗氧化酶活性)的测定与分析,筛选受
损程度较轻及耐Pb性较强的材料,并掌握Pb胁迫下
禾草的生理响应机制,另外,通过对Pb2+在禾草植株
内富集转运的研究,筛选Pb富集能力较强的禾草,为
Pb污染土壤植物修复中禾草的选择提供依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料
供试14份禾草种质材料由中国农业科学院北京
畜牧兽医研究所提供,材料名称及来源见表1。供试
土由壤土、草炭土和营养土按1∶1∶1均匀混合,其理
化性质如下:pH6.5,全氮2.8g/kg,全钾19g/kg,全
磷6.7g/kg,Pb含量3.37mg/kg。
1.2 试验方法
1.2.1 材料的培养与处理  试验于2013年3-8
月在中国农业科学院北京畜牧兽医研究所廊坊试验基
地温室中进行。将壤土、草炭土和营养土(1∶1∶1)均
匀混合后装入无孔塑料花盆(高20cm,底径15cm,口
表1 试验材料及来源
犜犪犫犾犲1 犕犪狋犲狉犻犪犾狊犪狀犱狋犺犲犻狉狉犲狊狅狌狉犮犲狊
编号Code 种名Species 来源地Resources
G1 多年生黑麦草犔狅犾犻狌犿狆犲狉犲狀狀犲 丹麦 Denmark
G2 多年生黑麦草犔狅犾犻狌犿狆犲狉犲狀狀犲 丹麦 Denmark
G3 老芒麦犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊 内蒙古InnerMongolia
G4 老芒麦犈犾狔犿狌狊狊犻犫犻狉犻犮狌狊 河北 Hebei
G5 鹅观草犚狅犲犵狀犲狉犻犪犽犪犿狅犼犻 河北 Hebei
G6 鹅观草犚狅犲犵狀犲狉犻犪犽犪犿狅犼犻 北京Beijing
G7 披碱草犈犾狔犿狌狊犱犪犺狌狉犻犮狌狊 山西Shanxi
G8 披碱草犈犾狔犿狌狊犱犪犺狌狉犻犮狌狊 江苏Jiangsu
G9 高羊茅犉犲狊狋狌犮犪犲犾犪狋犪 美国 America
G10 高羊茅犉犲狊狋狌犮犪犲犾犪狋犪 美国 America
G11 长穗冰草犃犵狉狅狆狔狉狅狀犲犾狅狀犵犪狋狌犿 加拿大Canada
G12 长穗冰草犃犵狉狅狆狔狉狅狀犲犾狅狀犵犪狋狌犿 土耳其 Turkey
G13 鸭茅犇犪犮狋狔犾犻狊犵犾狅犿犲狉犪狋犪 美国 America
G14 鸭茅犇犪犮狋狔犾犻狊犵犾狅犿犲狉犪狋犪 荷兰 Holand
461 草 业 学 报 第24卷
径20cm),每盆装土1.5kg。装土完成后,在盆中点入已发芽试验材料种子,每材料点播3盆,每盆25株,待长
出两片真叶后进行间苗,每盆留苗15株。
间苗7d后进行Pb处理,将硝酸铅Pb(NO3)2 配制成一定浓度的溶液施入盆中。Pb处理共设置6个浓度
梯度,0,10,50,100,200,300mg/kg(风干土重),以纯Pb计,分别以CK、Pb10、Pb50、Pb100、Pb200和Pb300表示,每
处理3个重复。Pb胁迫期间进行正常管理,定期定量浇水,以保持土壤含水量为最大持水量的70%。
Pb处理30d后进行指标测定。
1.2.2 生长指标的测定  株高:用直尺测量植株地上部的垂直高度,以每盆中15株苗的平均值作为株高,精
确到0.01cm。相对株高=Pb处理植株的株高/对照植株的株高。
分蘖数:测定植株的分蘖,以每盆中15株苗的平均值作为分蘖数,精确到1个。相对分蘖数=Pb2+处理植
株的分蘖数/对照植株的分蘖数。
地上与地下生物量:自来水冲洗下轻柔地将植株根部从土壤中分离并冲洗干净,蒸馏水冲洗干净后用剪刀将
植株地上部与地下部分开,用纸包好后放入烘箱,105℃杀青30min,之后70℃烘干至恒重(12h)后进行称量。
每盆15株苗地上部的总干重为地上生物量,地下部的总干重为地下生物量,精确到0.001g。
1.2.3 生理指标的测定  分别从每个种中选择1份材料,共7份材料(G1、G3、G6、G7、G10、G12与G14)进行游
离脯氨酸(Pro)含量、过氧化氢酶(CAT)活性、过氧化物酶(POD)活性、超氧化物歧化酶(SOD)活性等生理指标
的测定。Pro含量的测定参照李合生[12]的酸性茚三酮比色法,CAT活性的测定参照Dhindsa等[13]的紫外吸收
法,POD活性的测定参照刘祖祺和张石城[14]的愈创木酚法,SOD活性的测定参照Cao等[15]的NBT光还原法。
1.2.4 地上部与根部Pb2+含量的测定  分别称取烘干磨细过0.5mm筛的植株地上部与根部样品1.0g于
25mL试管中,加入硝化液(5mL浓硝酸、1mL60% 三氯乙酸、0.5mL浓硫酸),90℃水浴硝解120min,冷却后
过滤,取50μL滤液用超纯水定容至250mL。利用美国热电公司的电感耦合等离子体发射光谱仪(ICP-MS)对
Pb2+含量进行测定。
生物富集系数(bioconcentrationfactor,BCF)=植物地上或根系Pb2+积累浓度/土壤中Pb2+浓度[16];转运
系数(translocationfactor,TF)=地上部Pb2+积累浓度/根中Pb2+积累浓度[17];积累量=植物地上或根系Pb2+
积累浓度×植物地上或根系生物量。
1.3 耐Pb性综合评价
利用株高、分蘖数、地上与地下生物量等生长指标,采用标准差系数赋予权重法[18]对14份禾草进行耐铅性
综合评价。
1.4 数据处理
利用 MicrosoftExcel2007软件进行数据统计分析和作图,采用SPSS16.0软件的Duncan检验进行方差分
析。
2 结果与分析
2.1 Pb胁迫对禾草株高和分蘖数的影响
如表2所示,随Pb处理浓度的升高,14份材料的相对株高呈现先上升后下降的趋势。当Pb浓度为10,50,
100mg/kg时,分别有12,13和10份种质的相对株高高于对照,且最大增幅分别为15.2%,16.7%和19.6%,说
明低浓度Pb对禾草的生长有促进作用。当Pb浓度增至300mg/kg时,除G2外,其余各材料的株高明显低于对
照,其中下降幅度最大的材料是来自河北木兰围场的鹅观草G5,降幅为29.9%。
在相同Pb浓度下,14份材料的相对分蘖数存在显著差异(犘<0.05)。当Pb浓度为10mg/kg时,供试材料
相对分蘖数均显著高于对照,说明该浓度下,Pb对分蘖有促进作用。但随着Pb浓度的增加,相对分蘖数下降。
在Pb浓度为300mg/kg时,14份材料相对分蘖数均低于对照,其中降幅最大的是来自河北赤城的老芒麦G4,与
对照相比下降了67.6%。
561第9期 李慧芳 等:铅胁迫对禾本科牧草生长、生理及Pb2+富集转运的影响
表2 犘犫胁迫对相对株高和相对分蘖数的影响
犜犪犫犾犲2 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狅犳犾犲犪犱狊狋狉犲狊狊狅狀狉犲犾犪狋犻狏犲狆犾犪狀狋犺犲犻犵犺狋犪狀犱狉犲犾犪狋犻狏犲狋犻犾犲狉犻狀犵狀狌犿犫犲狉
序号
NO.
相对株高Relativeplantheight
Pb10 Pb50 Pb100 Pb200 Pb300
相对分蘖数Relativetileringnumber
Pb10 Pb50 Pb100 Pb200 Pb300
G1 0.967 0.992 0.918 0.910 0.844 1.222 1.333 1.667 0.778 0.667
G2 1.066 1.075 1.047 1.009 1.019 1.167 0.917 0.667 0.583 0.500
G3 1.084 1.056 1.037 0.907 0.850 1.111 1.333 1.111 0.778 0.889
G4 1.096 1.074 1.053 0.968 0.894 1.000 1.143 1.214 0.929 0.324
G5 0.881 1.090 0.866 0.776 0.701 1.014 1.214 0.929 0.857 0.643
G6 1.088 1.167 1.196 0.961 0.892 1.222 1.111 0.889 0.778 0.667
G7 1.057 1.041 1.033 0.951 0.894 1.100 1.200 1.100 0.700 0.600
G8 1.010 1.041 0.929 0.929 0.867 1.077 1.154 1.000 0.846 0.769
G9 1.014 1.025 1.047 0.995 0.962 1.167 1.167 1.000 0.833 0.667
G10 1.005 1.021 1.062 0.969 0.928 1.200 1.400 1.200 1.000 0.800
G11 1.099 1.037 1.031 0.969 0.907 1.143 1.286 1.143 0.857 0.344
G12 1.152 1.064 0.966 0.917 0.873 1.800 1.600 1.400 1.200 0.800
G13 1.009 1.014 1.019 0.940 0.823 1.250 1.125 1.000 0.750 0.500
G14 1.098 1.073 1.010 0.902 0.860 1.111 1.000 0.778 0.778 0.444
犉值犉value 1.730 0.729 1.928 1.377 2.275 0.764 0.759 1.112 0.577 0.625
犘值犘value 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05
 注:犉值表示材料间差异显著(犘<0.05)。下同。
 Note:The犉valueshowsignificantdifferenceatthe0.05level.Thesameasbelow.
2.2 Pb胁迫对禾草地上和地下生物量的影响
当Pb处理浓度为10mg/kg时,有9份材料的相对地上生物量高于对照(表3)。随着Pb浓度的增加,各材
料相对地上生物量逐渐降低,当Pb浓度增至300mg/kg时,14份材料相对地上生物量与对照相比下降幅度为
10.7%~45.7%,其中来自荷兰的鸭茅G14降幅最小,来自江苏丰县的披碱草G8降幅最大。
从表3可以看出,Pb浓度越大,14份材料相对地下生物量越低。当Pb浓度为100mg/kg时,除G8外,其他
材料的相对地下生物量均呈明显下降趋势,各材料间相对地上生物量存在显著差异(犘<0.05)。当Pb浓度为
300mg/kg时,相对地下生物量降幅最大的是来自丹麦的多年生黑麦草G2,其次是来自加拿大的长穗冰草G11,
分别比对照下降了61.0%和57.7%。
2.3 14份禾草耐Pb性综合评价
利用标准差系数赋予权重法对14份禾草的耐Pb性进行排序(表4),结果发现不同种之间以及同一种的不
同来源地之间均存在差异,14份禾草的耐Pb性不存在种特异性。耐Pb性由强到弱排序为:G12>G9>G6>G3
>G10>G13>G1>G8>G4>G11>G7>G14>G2>G5。来自于土耳其的长穗冰草G12耐Pb性最强,来自于河北
的鹅观草G5耐Pb性最弱。
2.4 Pb胁迫对脯氨酸含量的影响
由图1可知,当Pb处理浓度为0时,鹅观草(G6)、高羊茅(G10)、长穗冰草(G12)、鸭茅(G14)叶片中脯氨酸含
量均小于1μg/g,多年生黑麦草(G1)、老芒麦(G3)、披碱草(G7)均大于1μg/g,这可能是由于材料自身的差异造
成的。7份材料叶片中脯氨酸含量均随着Pb浓度的增加而升高,当Pb浓度为300mg/kg时,各材料脯氨酸含
量与对照相比显著增加,鸭茅(G14)的增幅最大,较对照增长78.2倍,多年生黑麦草(G1)增幅最小,较对照增长
28.3%。
661 草 业 学 报 第24卷
表3 犘犫胁迫对相对地上和地下生物量的影响
犜犪犫犾犲3 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狅犳犾犲犪犱狊狋狉犲狊狊狅狀狉犲犾犪狋犻狏犲狉狅狅狋犪狀犱狊犺狅狅狋犫犻狅犿犪狊狊
序号
NO.
相对地上部生物量 Relativeshootbiomass
Pb10 Pb50 Pb100 Pb200 Pb300
相对地下部生物量Relativerootbiomass
Pb10 Pb50 Pb100 Pb200 Pb300
G1 1.024 0.995 0.930 0.895 0.787 1.136 0.893 0.825 0.728 0.621
G2 0.939 1.004 0.917 0.721 0.697 0.688 0.674 0.596 0.475 0.390
G3 1.021 1.062 1.028 0.896 0.877 1.169 0.993 0.937 0.803 0.704
G4 0.975 0.893 0.938 0.865 0.859 1.061 0.818 0.758 0.697 0.546
G5 0.993 0.920 0.725 0.648 0.631 0.899 0.891 0.857 0.656 0.546
G6 1.007 1.038 1.059 0.792 0.654 1.080 0.915 0.881 0.836 0.766
G7 1.026 0.900 0.885 0.792 0.762 0.876 0.788 0.751 0.736 0.694
G8 0.803 0.765 0.690 0.776 0.543 1.411 1.196 1.143 0.976 0.821
G9 1.094 1.212 1.148 1.073 0.873 1.189 0.820 0.869 0.820 0.672
G10 1.070 1.089 0.986 0.842 0.705 0.920 0.812 0.775 0.747 0.690
G11 1.062 1.014 0.987 0.906 0.811 0.916 0.821 0.580 0.483 0.423
G12 1.022 1.156 1.051 0.933 0.860 0.942 0.906 0.808 0.741 0.630
G13 1.073 1.123 1.162 0.927 0.793 0.972 0.922 0.863 0.839 0.808
G14 0.997 0.882 0.985 0.907 0.893 1.076 0.932 0.698 0.680 0.565
犉值犉value 0.762 1.554 2.127 0.951 0.760 0.737 0.567 2.497 3.201 1.149
犘值犘value 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05 犘<0.05
表4 14份禾草的耐铅系数、隶属函数值及综合评价犇值
犜犪犫犾犲4 犜犺犲犾犲犪犱狋狅犾犲狉犪狀犮犲犮狅犲犳犳犻犮犻犲狀狋,狊狌犫狅狉犱犻狀犪狋犻狅狀狏犪犾狌犲犪狀犱犇狏犪犾狌犲狅犳犮狅犿狆狉犲犺犲狀狊犻狏犲犲狏犪犾狌犪狋犻狅狀狅犳犳狅狌狉狋犲犲狀犳狅狉犪犵犲犵狉犪狊狊犲狊
序号
NO.
耐Pb系数Leadtolerancecoefficient
相对株高
Relativeplant
height
相对分蘖数
Relativetilering
number
相对地上生物量
Relativeshoot
biomass
相对地下生物量
Relativeroot
biomass
隶属函数值Subordinationvalue
μ(1) μ(2) μ(3) μ(4)
综合评价D值
Dvalueof
comprehensive
evaluation
耐铅性排序
Sortbylead
tolerance
G1 92.62 113.34 96.10 84.06 0.320 0.618 0.543 0.507 0.497 7
G2 104.32 76.68 89.53 56.46 0.911 0.000 0.366 0.000 0.313 13
G3 98.68 104.44 100.18 92.12 0.626 0.468 0.652 0.655 0.600 4
G4 101.70 92.20 91.78 77.60 0.779 0.262 0.427 0.388 0.462 9
G5 86.28 93.14 82.15 76.98 0.000 0.277 0.169 0.377 0.209 14
G6 106.08 93.34 97.40 89.56 1.000 0.281 0.577 0.608 0.616 3
G7 99.52 94.00 90.08 76.90 0.669 0.292 0.381 0.375 0.428 11
G8 95.52 96.92 75.85 110.94 0.467 0.341 0.000 1.000 0.465 8
G9 100.86 96.68 113.18 87.40 0.736 0.337 1.000 0.568 0.654 2
G10 99.70 112.00 99.68 78.88 0.678 0.595 0.638 0.412 0.578 5
G11 100.86 95.46 99.23 64.46 0.736 0.317 0.626 0.147 0.450 10
G12 99.44 136.00 104.05 80.54 0.665 1.000 0.756 0.442 0.712 1
G13 96.10 92.50 107.13 88.08 0.496 0.267 0.838 0.580 0.542 6
G14 98.86 82.22 94.28 79.02 0.635 0.093 0.494 0.414 0.407 12
 权重
 Indexweight
0.248 0.251 0.237 0.263
761第9期 李慧芳 等:铅胁迫对禾本科牧草生长、生理及Pb2+富集转运的影响
2.5 Pb胁迫对CAT活性的影响
由图2可知,随着Pb处理浓度的增加,各材料叶片中CAT活性呈现下降趋势。当Pb浓度为50mg/kg时,
多年生黑麦草(G1)、高羊茅(G10)、长穗冰草(G12)、鸭茅(G14)等4份材料的CAT活性较对照显著下降(犘<
0.05),降幅均大于50%。当Pb浓度为300mg/kg时,7份材料CAT活性较对照均显著下降(犘<0.05),降幅为
69.9%~88.8%,多年生黑麦草(G1)的降幅最大(88.8%),鹅观草(G6)的降幅最小(69.9%)。
2.6 Pb胁迫对POD活性的影响
由图3可以看出,随着Pb处理浓度的增加,7份材料的POD活性大体上都呈现出先上升后下降的趋势。其
中,多年生黑麦草(G1)、老芒麦(G3)、鹅观草(G6)、长穗冰草(G12)和鸭茅(G14)等5份材料的POD活性在Pb浓
度为100mg/kg时达到峰值,披碱草(G7)与高羊茅(G10)则在Pb浓度为10mg/kg时达到峰值。当Pb浓度为
300mg/kg时,披碱草(G7)与长穗冰草(G12)的POD活性仍旧高于对照,分别高于对照10.0%与3.9%,其余5
份材料的POD活性均低于对照,与对照相比,5份材料POD活性的降幅为0~15.2%,多年生黑麦草(G1)降幅
最大(15.2%)。
2.7 Pb胁迫对SOD活性的影响
由图4可以看出,随着Pb处理浓度的升高,7份材料叶片中SOD活性呈现先上升后下降的趋势。多年生黑
麦草(G1)、老芒麦(G3)、披碱草(G7)、高羊茅(G10)和鸭茅(G14)等5份材料在Pb浓度为50mg/kg时达到峰值,
其增幅为对照的24.6%~108.9%,披碱草(G7)的增幅最高(108.9%)。鹅观草(G6)和长穗冰草(G12)在Pb浓度
为100mg/kg时达到峰值,与对照相比,其增幅分别为95.7%和46.1%,均显著高于对照(犘<0.05)。当Pb浓
度为300mg/kg时,7份材料的SOD活性仍均高于对照,高出比例为1.7%(鸭茅)~49.6%(披碱草)。
图1 犘犫胁迫对禾草脯氨酸含量的影响
犉犻犵.1 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狊狅犳犾犲犪犱狊狋狉犲狊狊狅狀狆狉狅犾犻狀犲
犮狅狀狋犲狀狋狅犳犳狅狉犪犵犲犵狉犪狊狊犲狊
 
图2 犘犫胁迫对禾草犆犃犜活性的影响
犉犻犵.2 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狊狅犳犾犲犪犱狊狋狉犲狊狊狅狀犆犃犜
犪犮狋犻狏犻狋狔狅犳犳狅狉犪犵犲犵狉犪狊狊犲狊
 
图3 犘犫胁迫对禾草犘犗犇活性的影响
犉犻犵.3 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狊狅犳犾犲犪犱狊狋狉犲狊狊狅狀犘犗犇
犪犮狋犻狏犻狋狔狅犳犳狅狉犪犵犲犵狉犪狊狊犲狊
 
图4 犘犫胁迫对禾草犛犗犇活性的影响
犉犻犵.4 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狊狅犳犾犲犪犱狊狋狉犲狊狊狅狀犛犗犇
犪犮狋犻狏犻狋狔狅犳犳狅狉犪犵犲犵狉犪狊狊犲狊
 
861 草 业 学 报 第24卷
2.8 不同Pb处理浓度下14份供试材料的富集系数和转移系数的变化
14份禾本科牧草体内Pb2+含量随着Pb处理浓度的升高而增加(表5)。在相同Pb处理浓度下,除披碱草
G7和G8外,其余材料根部Pb2+含量明显高于叶片,说明禾本科牧草吸收Pb2+主要集中在根部,很少可以运输到
地上部。各材料根与地上部富集系数(BCF)随着Pb处理浓度的升高而显著下降(犘<0.05),根下降的幅度更
大。
各禾本科牧草的转移系数(TF)由材料不同而表现出不同的趋势。披碱草(G7与G8)的TF随着Pb处理浓
度的升高表现出先降低后升高再降低的趋势,当Pb处理浓度为200mg/kg时,G7与G8的TF达到最大值且均大
于1,分别为1.04与1.02;其他材料的TF则随着Pb处理浓度的升高而逐渐降低,且TF均小于1。
表5 犘犫胁迫对禾本科牧草根和地上部中犘犫2+含量的分布
犜犪犫犾犲5 犜犺犲犲犳犳犲犮狋狅犳犾犲犪犱狊狋狉犲狊狊狅狀犾犲犪犱犻狅狀狊犮狅狀狋犲狀狋犻狀狉狅狅狋犪狀犱狊犺狅狅狋狅犳犳狅狉犪犵犲犵狉犪狊狊犲狊
序号
NO.
Pb处理
Pbtreatment
Pb2+含量Pb2+content(mg/kg)
地上部Shoot 根Root
生物富集系数Bioconcentrationfactor(BCF)
地上部Shoot 根Root
转移系数
Translocationfactor(TF)
G1 Pb10 17.05±1.21a 33.56±3.26a 1.71±0.12a 3.36±0.33a 0.51±0.04a
Pb50 20.30±1.46b 40.28±5.07a 0.41±0.03b 0.81±0.10b 0.50±0.03a
Pb100 24.35±2.03c 52.65±4.93b 0.24±0.02c 0.53±0.05c 0.46±0.04b
Pb200 26.05±1.09d 66.96±11.02c 0.13±0.01d 0.33±0.06d 0.39±0.01c
Pb300 36.15±1.37e 105.32±13.01d 0.12±0.00d 0.35±0.04d 0.34±0.01d
G2 Pb10 11.75±1.03a 25.24±5.29a 1.18±0.10a 2.52±0.53a 0.47±0.01a
Pb50 15.75±1.05b 38.86±1.08b 0.32±0.02b 0.78±0.02b 0.41±0.09b
Pb100 16.95±1.10c 47.77±7.45c 0.17±0.01c 0.48±0.07c 0.35±0.01c
Pb200 21.40±1.13d 53.43±3.73d 0.11±0.01d 0.27±0.02d 0.40±0.03b
Pb300 23.60±1.11e 66.35±9.10e 0.08±0.00d 0.22±0.03e 0.36±0.01c
G3 Pb10 17.55±0.98a 27.37±2.66a 1.76±0.10a 2.74±0.27a 0.64±0.04a
Pb50 18.40±1.54b 56.64±8.94b 0.37±0.03b 1.13±0.18b 0.32±0.02b
Pb100 22.47±1.07c 79.38±6.71c 0.22±0.01c 0.79±0.07c 0.28±0.02c
Pb200 23.05±1.62d 82.64±10.73d 0.12±0.01d 0.41±0.05d 0.28±0.02c
Pb300 26.40±2.11e 106.47±15.29e 0.09±0.01e 0.35±0.05e 0.25±0.01d
G4 Pb10 16.65±1.08a 31.18±5.76a 1.67±0.11a 3.12±0.58a 0.53±0.02a
Pb50 24.85±0.72b 50.24±7.62b 0.50±0.01b 1.00±0.15b 0.49±0.01b
Pb100 32.45±1.69c 69.92±4.59c 0.32±0.02c 0.70±0.05c 0.46±0.04c
Pb200 43.80±1.25d 97.37±13.91d 0.22±0.01d 0.49±0.07d 0.45±0.01c
Pb300 55.25±1.67e 143.93±16.23e 0.18±0.01e 0.48±0.05d 0.38±0.01d
G5 Pb10 5.25±0.04a 20.39±3.90a 0.53±0.00a 2.04±0.39a 0.26±0.00a
Pb50 5.65±0.08b 27.87±2.35b 0.11±0.00b 0.56±0.05b 0.20±0.01b
Pb100 8.70±0.14c 46.14±6.19c 0.09±0.00c 0.46±0.06c 0.19±0.00bc
Pb200 10.25±0.67d 58.37±5.68d 0.05±0.00d 0.29±0.03d 0.18±0.01c
Pb300 12.95±1.06e 74.72±4.06e 0.04±0.00d 0.25±0.01e 0.17±0.02c
G6 Pb10 10.25±0.87a 23.54±4.27a 1.03±0.09a 2.35±0.43a 0.44±0.02a
Pb50 19.10±1.26b 46.78±3.58b 0.38±0.03b 0.94±0.07b 0.41±0.03b
Pb100 26.05±1.63c 64.95±7.61c 0.26±0.02c 0.65±0.08c 0.40±0.02bc
Pb200 39.70±1.85d 103.13±13.86d 0.20±0.01d 0.52±0.07d 0.38±0.01c
Pb300 48.05±2.14e 171.68±21.09e 0.16±0.01e 0.57±0.07e 0.28±0.01d
961第9期 李慧芳 等:铅胁迫对禾本科牧草生长、生理及Pb2+富集转运的影响
 续表5 Continued
序号
NO.
Pb处理
Pbtreatment
Pb2+含量Pb2+content(mg/kg)
地上部Shoot 根Root
生物富集系数Bioconcentrationfactor(BCF)
地上部Shoot 根Root
转移系数
Translocationfactor(TF)
G7 Pb10 27.45±1.63a 32.73±4.17a 2.75±0.16a 3.27±0.42a 0.84±0.04d
Pb50 45.55±1.08b 56.15±4.73b 0.91±0.02b 1.12±0.09b 0.81±0.02e
Pb100 64.10±2.16c 73.42±6.29c 0.64±0.02c 0.73±0.06c 0.87±0.03c
Pb200 92.75±4.72d 89.36±5.40d 0.46±0.02d 0.45±0.03d 1.04±0.08a
Pb300 94.23±6.51e 96.74±10.32e 0.31±0.02e 0.32±0.03e 0.97±0.06b
G8 Pb10 28.60±1.81a 39.54±1.92a 2.86±0.18a 3.95±0.19a 0.72±0.08c
Pb50 33.51±1.25b 54.59±6.24b 0.67±0.03b 1.09±0.12b 0.61±0.02d
Pb100 58.37±2.03c 63.87±4.78c 0.58±0.02c 0.64±0.05c 0.91±0.04b
Pb200 79.62±2.74d 78.12±6.13d 0.40±0.01d 0.39±0.03d 1.02±0.04a
Pb300 93.84±5.19e 90.57±8.56e 0.31±0.02e 0.30±0.03e 1.00±0.06a
G9 Pb10 15.30±1.15a 25.75±3.46a 1.53±0.12a 2.58±0.35a 0.59±0.03a
Pb50 19.30±1.24b 43.81±5.93b 0.39±0.02b 0.88±0.12b 0.44±0.02b
Pb100 23.05±1.51c 61.35±7.11c 0.23±0.02c 0.61±0.07c 0.38±0.02c
Pb200 35.60±1.02d 97.47±10.25d 0.18±0.01d 0.49±0.05d 0.37±0.01cd
Pb300 49.10±2.63e 141.32±11.37e 0.16±0.01d 0.47±0.04d 0.35±0.02d
G10 Pb10 10.15±0.58a 23.34±3.14a 1.02±0.06a 2.33±0.31a 0.43±0.02a
Pb50 17.70±0.91b 45.52±5.69b 0.35±0.02b 0.91±0.11b 0.39±0.02b
Pb100 22.35±1.74c 73.05±5.83c 0.22±0.02c 0.73±0.06c 0.31±0.03c
Pb200 32.60±1.30d 102.80±9.28d 0.16±0.01d 0.51±0.05d 0.32±0.01c
Pb300 52.85±2.26e 179.50±15.02e 0.18±0.01d 0.60±0.05e 0.29±0.02d
G11 Pb10 13.35±1.01a 34.82±4.33a 1.34±0.10a 3.48±0.43a 0.38±0.02a
Pb50 14.25±1.37b 55.24±2.78b 0.29±0.03b 1.10±0.06b 0.26±0.05b
Pb100 18.95±2.02c 79.87±6.19c 0.19±0.02c 0.80±0.06c 0.24±0.03c
Pb200 25.90±2.15d 116.26±12.06d 0.13±0.01d 0.58±0.06d 0.22±0.01c
Pb300 30.20±1.87e 183.82±20.47e 0.10±0.01e 0.61±0.07e 0.16±0.02d
G12 Pb10 11.20±0.62a 23.87±4.38a 1.12±0.06a 2.39±0.44a 0.47±0.01a
Pb50 18.25±1.03b 48.35±7.21b 0.37±0.02b 0.97±0.14b 0.38±0.01b
Pb100 23.05±1.47c 69.37±8.76c 0.23±0.01c 0.69±0.09c 0.33±0.02c
Pb200 26.30±1.83d 85.97±5.47d 0.13±0.01d 0.43±0.03d 0.31±0.03d
Pb300 32.70±2.08e 113.72±8.95e 0.11±0.01e 0.38±0.03e 0.29±0.02e
G13 Pb10 11.35±1.01a 21.93±1.22a 1.14±0.10a 2.19±0.12a 0.52±0.06a
Pb50 14.20±0.74b 39.15±3.56b 0.28±0.01b 0.78±0.07b 0.36±0.02b
Pb100 15.75±1.26c 47.64±2.17c 0.16±0.01c 0.48±0.02c 0.33±0.05b
Pb200 17.90±1.53d 58.29±7.03d 0.09±0.01d 0.29±0.04d 0.31±0.02c
Pb300 29.40±1.79e 133.97±10.78e 0.10±0.01d 0.45±0.04e 0.22±0.03d
G14 Pb10 8.70±0.34a 18.86±2.03a 0.87±0.03a 1.89±0.20a 0.46±0.02a
Pb50 13.70±0.95b 31.33±2.76b 0.27±0.02b 0.63±0.06b 0.44±0.03b
Pb100 19.80±1.23c 57.96±6.14c 0.20±0.01c 0.58±0.06c 0.34±0.02c
Pb200 22.05±1.16d 82.73±9.73d 0.11±0.01d 0.41±0.05d 0.27±0.01d
Pb300 33.90±1.87e 153.52±11.25e 0.11±0.01d 0.51±0.04e 0.22±0.02e
 注:不同小写字母表示各材料不同浓度间差异显著(犘<0.05)。
 Note:Differentsmallettersshowsignificantdifferencebetweendifferentconcentrationforeachmaterial(犘<0.05).
071 草 业 学 报 第24卷
3 讨论与结论
Pb是一种有毒的重金属元素,外源重金属铅污染物进入土壤后,禾本科牧草可通过根系吸收土壤中的铅,进
而运输到地上部分。Pb在植物体内的过度积累会导致根系受损、分蘖减少、地上部生长减缓[19]。本研究中,随
着Pb处理浓度的增加,14份禾草的株高、分蘖数、地上生物量均呈现先升高后下降的趋势,地下生物量则呈现逐
渐降低的趋势(G8除外)。可能是由于土壤中施入低浓度Pb(NO3)2 后,Pb2+主要被根系吸收,使得根的生长受
到抑制,而NO3-的施入提高了土壤肥力,从而使得地上部的生长受到促进;随着Pb(NO3)2 施入浓度的增大,地
上部积累的Pb2+也随之升高,地上部的生长也逐渐受到抑制,当Pb处理浓度为300mg/kg时,14份禾草的生长
均受到明显抑制。李西等[19]对假俭草、狗牙根(犆狔狀狅犱狅狀犱犪犮狋狔犾狅狀)、结缕草的研究表明,当 Pb浓度为250
mg/kg时,3种草的生长均受到显著抑制,与本研究的结果基本一致。通过综合评价筛选出耐铅性最强的禾草为
来自土耳其的长穗冰草G5。
植物体内游离脯氨酸含量的增加是植物对逆境胁迫的一种生理生化反应,脯氨酸作为细胞质渗透调节物质,
具有稳定生物大分子结构的作用,植物通过体内游离脯氨酸的积累可防止细胞结构和功能受损以降低受伤害程
度[7]。张呈祥等[20]研究发现当Pb浓度<100mg/kg时,草地早熟禾(犘狅犪狆狉犪狋犲狀狊犻狊)体内的脯氨酸含量随着Pb
浓度的增大持续升高,当Pb浓度>100mg/kg时,脯氨酸含量逐渐下降。刘慧芹等[8]的研究表明,当Pb浓度<
1000mg/L时,多年生黑麦草体内的脯氨酸含量随着Pb浓度的增大而升高,当Pb浓度>1000mg/L时,脯氨酸
含量逐渐下降。本研究中,当Pb浓度<300mg/kg时,7份禾草的脯氨酸含量均随着Pb处理浓度的增大而逐渐
升高,表明在该浓度范围内7份禾草均可以通过脯氨酸含量的持续升高以缓解Pb对植物的毒害作用。
SOD、CAT和POD是控制植物体内活性氧积累的最主要的酶。SOD是活性氧防御体系的第一道防线,能
歧化超氧阴离子自由基生成H2O2;CAT和POD又可以将 H2O2 歧化成无毒害的 H2O和 O2。李西等[19]研究
发现,当Pb浓度为0~1000mg/kg时,假俭草、狗牙根、结缕草的SOD、POD、CAT活性均随着Pb处理浓度的
增大而逐渐升高。本研究中,随着Pb处理浓度的增大,7种禾草SOD与POD活性均先升高后降低,CAT活性
则一直降低,表明SOD与POD在禾草体内超氧阴离子自由基的清除中发挥主要作用;当Pb浓度为100mg/kg
时,3种酶活性均处于降低状态,表明禾草体内活性氧的积累超出了自身的清除能力,此时大部分材料的地上与
地下生物量均低于对照,生长受到抑制。
植物体内重金属含量与植株的生物量、品种的遗传特性、生长条件及土壤中Pb浓度的含量等因素直接相
关[21]。本研究中,随着Pb处理浓度的升高,14份禾草地上部与根的富集系数逐渐降低,表明Pb胁迫的加剧降
低了禾草对Pb的富集效率,另外,除披碱草(G7与G8)外,其余12份禾草的转移系数也呈现逐渐降低的趋势,并
且转移系数均小于1,表明根是禾草富集Pb的主要器官,从根向地上部转移Pb的能力较弱,且会随着Pb胁迫的
加剧更趋减弱。Pb超富集植物要求植株地上部Pb2+含量大于1000mg/kg,地上部生物富集系数大于1,转移系
数大于1,且在Pb污染土壤中能够生长良好,不会发生毒害现象[22]。本研究中,14份材料均未达到超富集植物
的标准。披碱草(G7与G8)虽然在Pb处理浓度为200mg/kg时的转移系数大于1,但其地上部Pb2+含量,地上
部生物富集系数都远未达到超富集植物的标准。当Pb处理浓度为200和300mg/kg时,G7与G8地上部Pb2+含
量与转移系数均显著高于其他材料(犘<0.05),说明其在高浓度Pb胁迫下具有较强的Pb吸收与富集转运能力,
可作为Pb污染土壤修复的候选植物。
综合而言,来自土耳其的长穗冰草G5具有较强的耐Pb性,而披碱草G7与G8则具有较强的Pb富集转运能
力,是否能将披碱草用于Pb污染土壤的生态修复还需要进一步的大田试验进行验证。
犚犲犳犲狉犲狀犮犲狊:
[1] QinTC,WuYS,WangHX,犲狋犪犾.Effectofcadmium,leadandtheirinteractionsonthephysiologicalandecologicalcharac
teristicsofrootsystemof犅狉犪狊狊犻犮犪犮犺犻狀犲狀狊犻狊.EctaEcologicaSinica,1998,18(3):320325.
[2] DuLC.Leadtolerantecotypesandleadtolerancemechanismofplant.BiologyTeaching,2007,32(2):23.
[3] NavarilzzoF,QuartacciMF.Phytoremediationofmetalstolerancemechanismsagainstoxidativestress.MinervaBiotecno
logica,2001,13(2):7383.
[4] ShahK,KumarRG,VermaS,犲狋犪犾.Effectofcadmiumonlipidperoxidation,superoxideaniongenerationandactivitiesof
171第9期 李慧芳 等:铅胁迫对禾本科牧草生长、生理及Pb2+富集转运的影响
antioxidantenzymesingrowingriceseedlings.PlantScience,2001,161(6):11351144.
[5] LiX,YueH,WangS,犲狋犪犾.Researchofdifferenteffectsonactivityofplantantioxidantenzymes.ChinaJournalofChinese
MateriaMedica,2013,38(7):973978.
[6] ReddyAM,KumarSG,JyothsnakumariG,犲狋犪犾.Leadinducedchangesinantioxidantmetabolismofhorsegram (犕犪犮狉狅狋
狔犾狅犿犪狌狀犻犳犾狅狉狌犿 (Lam.)Verdc.)andbengalgram(CicerarietinumL.).Chemosphere,2005,60(1):97104.
[7] XieCJ,YangJH,ZhouSB,犲狋犪犾.Effectsonphysiologicalcharacteristicsof犈狉犲犿狅犮犺犾狅犪狅狆犺犻狌狉狅犻犱犲狊and犣狅狔狊犻犪犼犪狆狅狀犻犮犪
underprogressiveleadstress.ActaPrataculturaeSinica,2008,17(4):6570.
[8] LiuHQ,HanJC,LiuHP,犲狋犪犾.Influenceofleadstressonthephysiologicalandbiochemicalcharacteristicsofperennial
ryegrass(犔狅犾犻狌犿狆犲狉犲狀狀犲)seedlings.ActaPrataculturaeSinica,2012,21(6):5763.
[9] JiY,ZhangXQ,PengY,犲狋犪犾.Effectsofdroughtstressonlipidperoxidation,osmoticadjustmentandactivitiesofprotec
tiveenzymesintherootsandleavesoforchardgrass.ActaPrataculturaeSinica,2014,23(3):144151.
[10] QianHY,WangXX,JiangPL,犲狋犪犾.TheenduranceandtherestorativeeffectofcoatinuousstubblesryegrassonCuand
Znpolutioninsoil.ActaAgriculturaeUniversitatisJiangxiensis,2004,26(5):801804.
[11] TamasJ,KovacsA.VegetationpatternandheavymetalaccumulationataminetailingatGyongyosoroszi,Hungary.
ZeitschriftfurNaturforschungSectionC,2005,60(34):362367.
[12] LiHS.PlantPhysiologyandBiochemistryExperimentalPrinciplesandTechniques[M].Beijing:HigherEducationPress,
2002:258261.
[13] DhindsaRS,DhindsaPP,ThorpeTA.Leafsenescence:correlatedwithincreasedlevelsofmembranepermeabilityandlip
idperoxidationanddecreasedlevelsofsuperoxidedismutaseandcatalase.JournalofExperimentalBotany,1981,32(1):93
101.
[14] LiuZQ,ZhangSC.ResistancePhysiologyofPlant[M].Beijing:ChinaAgriculturePress,1994:370372.
[15] CaoY,ZhangZW,XueL W,犲狋犪犾.LackofSalicylicacidin犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊protectsplantsagainstmoderatesaltstress.
ZeitschriftfurNaturforschungSectionC,2009,64(34):231.
[16] ChamberlainAC.Faloutofleadanduptakebycrops.AtmosphericEnvironment,1983,17:693706.
[17] BakerAJM,ReevesRD,HajarASM.HeavymetalaccumulationandtoleranceinBritishpopulationsofthemetallophyte
ThlaspicaerulescensJ&C.Presl(Brassicaceae).NewPhytologist,1994,127:6168.
[18] LiY,LiuGB,GaoHW,犲狋犪犾.Acomprehensiveevaluationofsalttoleranceandthephysiologicalresponseof犕犲犱犻犮犪犵狅狊犪
狋犻狏犪attheseedlingstage.ActaPrataculturaeSinica,2010,19(4):7986.
[19] LiX,WuYJ,SunLX.Growthandphysiologicalresponsesofthreewarmseasonturfgrassestoleadstress.ActaPratacul
turaeSinica,2014,23(4):171180.
[20] ZhangCX,ChenWF,PeiHC.ResponsesofKentuckybluegrasstoleadstressandaccumulationcharacteristicsoflead.
ChineseJournalofGrassland,2013,35(1):96101.
[21] ZhaoXL,LiuX.Differencesinplantgrowth,Cdandnutrientuptake,Cdtranslocationbetweentwotobaccocultivarsunder
Cdstress.JournalofSoilandWaterConservation,2009,23(1):117121.
[22] WangSL,LiaoWB,YuFQ.Hyperaccumulationoflead,zinc,andcadmiuminplantsgrowingonalead/zincoutcropin
YunnanProvince,China.EnvironmentalGeology,2009,58(3):471476.
参考文献:
[1] 秦天才,吴玉树,王焕校,等.镉、铅及其相互作用对小白菜根系生理生态效应的研究.生态学报,1998,18(3):320325.
[2] 杜连彩.植物耐铅生态型及对铅胁迫的耐性机理.生物学教学,2007,32(2):23.
[5] 李璇,岳红,王升,等.影响植物抗氧化酶活性的因素及其研究热点和现状.中国中药杂志,2013,38(7):973978.
[7] 谢传俊,杨集辉,周守标,等.铅递进胁迫对假俭草和结缕草生理特性的影响.草业学报,2008,17(4):6570.
[8] 刘慧芹,韩巨才,刘慧平,等.铅梯度胁迫对多年生黑麦草幼苗生理生活特性影响.草业学报,2012,21(6):5763.
[9] 季杨,张新全,彭燕,等.干旱胁迫对鸭茅根、叶保护酶活性、渗透物质含量及膜质过氧化作用的影响.草业学报,2014,
23(3):144151.
[10] 钱海燕,王兴祥,蒋佩兰,等.黑麦草连茬对铜、锌污染土壤的耐性及其修复作用.江西农业大学学报,2004,26(5):801
804.
[12] 李合生.植物生理生化实验原理和技术[M].北京:高等教育出版社,2002:258261.
[14] 刘祖祺,张石城.植物抗性生理学[M].北京:中国农业出版社,1994:370372.
[18] 李源,刘贵波,高洪文,等.紫花苜蓿种质耐盐性综合评价及盐胁迫下的生理反应.草业学报,2010,19(4):7986.
[19] 李西,吴亚娇,孙凌霞.铅胁迫对三种暖季型草坪草生长和生理特性的影响.草业学报,2014,23(4):171180.
[20] 张呈祥,陈为峰,裴洪翠.草地早熟禾对铅的胁迫反应及积累特性.中国草地学报,2013,35(1):96101.
[21] 赵秀兰,刘晓.同品种烟草生长和镉及营养元素吸收对镉胁迫响应的差异.水土保持学报,2009,23(1):117121.
271 草 业 学 报 第24卷