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Cloning, sequence analysis and prokaryotic expression of the WRKY6 of potato

马铃薯WRKY6基因的克隆、序列分析与原核表达研究



全 文 :书马铃薯犠犚犓犢6基因的克隆、序列分析
与原核表达研究
李立芹,黄玉碧,王西瑶
(四川农业大学农学院,四川 雅安625014)
摘要:在高等植物中 WRKY转录因子家族成员众多,它广泛参与植物对生物胁迫、非生物胁迫、生长发育和代谢过
程的调控。本研究采用同源序列克隆的方法获得马铃薯犠犚犓犢6基因,序列分析表明该蛋白属于 WRKY家族第3
组成员,锌指结构为CX7CX23HXC。构建系统发育树结果表明它与拟南芥 WRKY70亲缘关系较近,相似性达
58%。然后将其完整编码区构建到大肠杆菌表达载体。在培养温度18℃条件下添加0.2mmol/LIPTG(异丙基硫
代半乳糖苷),诱导培养8h可获得高表达融合蛋白。进一步实验获得特异性和纯度非常高的纯化蛋白。本研究为
进一步确定该蛋白的体外活性及生物学功能奠定了坚实基础。
关键词:马铃薯;WRKY;克隆;序列分析;原核表达
中图分类号:S532.03;Q943.2  文献标识码:A  文章编号:10045759(2011)02017707
  WRKY转录因子是近年来发现植物特有的一类重要基因,WRKY蛋白最初是从甘薯中发现的一类转录因
子,当时命名为SPF1[1]。后来相继从其他植物中也鉴定出了这种蛋白。迄今为止,已从拟南芥(犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊
狋犺犪犾犻犪狀犪)、野生马铃薯(犛狅犾犪狀狌犿狋狌犫犲狉狅狊狌犿)、棉花(犌狅狊狊狔狆犻狌犿spp.)、水稻(犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪)、烟草(犖犻犮狅狋犻犪狀犪
狋犪犫犪犮狌犿)、大麦(犎狅狉犱犲狌犿狏狌犾犵犪狉犲)、辣椒(犆犪狆狊犻犮狌犿犪狀狀狌狌犿)、遏蓝菜(犜犺犪犾犪狊狆犻犪狉狏犲狀狊犲)等植物分离出许多的
WRKY蛋白[29],这类蛋白共同特点是在其N端含有高度保守的具有60个氨基酸的 WRKY结构域,其中包括1
个十分保守的七肽 WRKYGQK,WRKY蛋白也由此得名。同时该结构域中还含有一类新的类似锌指的结构
域,因而 WRKY蛋白也可能是一类锌指蛋白。根据已有的一些研究表明 WRKY蛋白参与植物病菌信号转
导[10]、衰老[2,11]、生长发育[1213]、代谢调控[4]和非生物逆境等众多生理过程[1416]。
马铃薯是世界范围内重要粮菜兼用的经济植物,是位列于水稻、小麦(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)和玉米(犣犲犪
犿犪狔狊)之后的第四大粮食作物[17]。马铃薯品种“米拉”是我国西南地区长期以来的主栽品种,1956年从德国引入
我国。它的优点是适应性极强,能够适应不同的气候和土壤环境,同时高抗晚疫病,因此推测其含有很多优异的
基因。利用基因工程等生物技术手段有目的寻找其抵御逆境胁迫的优良基因,以期将来应用于马铃薯遗传育种
研究,这将具有重要的研究意义。本研究从该品种中克隆出与抗逆性相关 WRKY家族成员犠犚犓犢6,通过生物
信息学分析,克隆的犠犚犓犢6基因属于 WRKY家族第3组成员,锌指结构为CX7CX23HXC。然后在大肠杆
菌(犈狊犮犺犲狉犻犮犺犻犪犮狅犾犻)中成功表达该蛋白,纯化后获得了特异性高的融合蛋白,这对于下一步在体外研究其功能具
有重要意义。
1 材料与方法
1.1 试验材料
供试马铃薯品种米拉,由四川农业大学马铃薯研究中心提供;大肠杆菌DH5α和DE3、DNA凝胶回收纯化
试剂盒购于天根生化科技(北京)有限公司;pMD19T 克隆载体、ExTaqDNA 聚合酶、T4DNA 连接酶购于
TaKaRa公司(大连)。
1.2 方法
1.2.1 提取马铃薯米拉总RNA和反转录 试验于2010年3月进行,以组培苗的幼嫩叶片为材料,采用Trizol
第20卷 第2期
Vol.20,No.2
草 业 学 报
ACTAPRATACULTURAESINICA   
177-183
2011年4月
 收稿日期:20101008;改回日期:20101201
作者简介:李立芹(1974),女,山东东阿人,博士,讲师。Email:liliqin@sicau.edu.cn
通讯作者。Email:wxyrtl@163.com
法提取总RNA,然后反转录为cDNA。反转录的反应体系为20μL,在DEPC(焦碳酸二乙酯)水处理过的小管中
依次加入下列组分:OligodT1μL;dNTPs(40mmol/L)1μL;RNA5μg;补水至13μL。65℃变性5min,迅速
在冰上冷却至少1min,稍微离心,然后加入:5×FirstStrandbuf4μL;0.1mol/LDTT(二硫苏糖醇)1μL;Super
ScriptTMIIRT(反转录酶)1μL。反应条件是42℃反应60min,70℃处理15min。反转录产物在-20℃保存备用。
1.2.2 扩增犠犚犓犢6基因 根据GenBank公布的马铃薯犠犚犓犢6基因编码序列(登陆号EU056918.1),利用
Premier5.0设计同源引物,该引物分别对应位于该基因编码区上游起始密码子及C端终止密码区,可扩增该基
因的完整编码区。以cDNA模板,以犠犚犓犢6F(5′GGATCCATGGATAACTCATCGACTG3′,下划线处表示
酶切位点,以下同)和 WRKY6R引物(5′CCCGGGCTACACTTGATCAAAATTCC3′),对犠犚犓犢6基因的编
码区进行PCR扩增。PCR反应体系以1μLcDNA为模板,加入10×ExTaq缓冲液5μL(含Mg
2+),WRKY6F
和 WRKY6R各1μL(10μmol/L),40mmol/LdNTP0.5μL,ExTaqDNA 聚合酶0.25μL(5U/μL),加水至
50μL。PCR反应的条件:94℃预变性5min;94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸1min,共35个循环;最后
72℃延伸10min。PCR产物于1%琼脂糖凝胶电泳检测。
1.2.3 基因克隆及测序 扩增产物经电泳检测后,回收目的片段,然后与pMD19T载体16℃连接过夜,连接产
物转化大肠杆菌DH5α感受态,然后在涂有氨苄青霉素及Xgal/IPTG(5溴4氯3吲哚βD半乳糖苷/异丙基
硫代半乳糖苷)的LB平板上进行蓝白斑筛选,挑取白色单克隆,进行菌落PCR检测。然后随机选取3个独立的
阳性克隆进行测序(上海Invitrogen生物工程技术服务有限公司)。
1.2.4 序列分析 基因的编码框用 NCBI提供的在线 ORFFinder寻找(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/
gorf/gorf.html);核苷酸及氨基酸序列的同源序列搜索由 NCBI提供的在线BLAST进行(http://blast.ncbi.
nlm.nih.gov);DNA序列的翻译、比对及系统演化树用DNAMAN(6.0DEMO)进行。
1.2.5 原核表达载体的构建与鉴定 利用引物 WRKY6F和 WRKY6R对测序正确的质粒进行PCR扩增并
回收目的基因。纯化的PCR产物及pGEX4T2质粒分别用犅犪犿犎Ⅰ和犛犿犪Ⅰ进行双酶切,回收、纯化酶切片
段,并用T4DNA连接酶16℃连接过夜,转化宿主菌大肠杆菌DH5α,蓝白斑筛选阳性克隆,进行菌落PCR检测;
用碱裂解法提取质粒,然后进行双酶切和测序鉴定。
1.2.6 原核表达蛋白的诱导 经鉴定阅读框正确的阳性重组质粒转化BL21感受态细胞,涂板挑菌,筛选出阳
性重组菌。在含氨苄青霉素的LB培养基中37℃振摇培养过夜后,取重组菌按1∶100体积比转接到含氨苄青霉
素的LB培养基中,37℃振摇培养至OD值达到0.6~0.8时,菌液中加入终浓度为0.2和0.5mmol/LIPTG分
别在37和18℃条件下诱导表达,收集1mL菌液分装
图1 马铃薯犠犚犓犢6基因扩增结果
犉犻犵.1 犠犚犓犢6犘犆犚狆狉狅犱狌犮狋
M:分子量标准250;1:PCR产物;箭头示PCR条带
M:Marker250;1:PCRproduct;Arrowshowsthetargetband
于1.5mL的离心管中,离心5min,沉淀用PBS(磷酸
缓冲液pH7.4)悬浮,再加入5×聚丙烯酰胺凝胶电
泳 (SDS-PAGE)上样缓冲液,水浴煮沸5min,12000
r/min离心5min,取上清进行SDS-PAGE电泳。聚
丙烯酰胺胶采用考马斯亮蓝法进行染色。
1.2.7 融合蛋白纯化 将诱导成功的GSTStWRKY6
菌液按1∶100体积比转接于5mLLB液体培养基
中,37℃振摇培养过夜。将活化的菌液按1∶50的接种
量转接到200mL含氨苄青霉素的LB培养基中,37℃
培养至OD值达到0.6~0.8时,加入诱导剂IPTG至
终浓度为0.2mmol/L,18℃诱导培养过夜。将诱导
的菌液离心收集于50mL离心管中,弃上清,加入含
适量溶菌酶的裂解液,吹匀后转到50mL离心管中。
超声破碎菌体,离心收集上清,然后加入适量已平衡好
的谷胱甘肽-Sepharose4B珠子,4℃结合4h以上,
871 ACTAPRATACULTURAESINICA(2011) Vol.20,No.2
离心收集结合有目的蛋白的谷胱甘肽-Sepharose4B珠子。用不含溶菌酶的裂解液清洗非特异结合在谷胱甘肽
-Sepharose4B珠子上的杂蛋白。还原型谷胱甘肽洗脱液洗脱 GST-StWRKY6融合蛋白。最后用SDS-
PAGE分析GSTStWRKY6融合蛋白纯度。纯化后蛋白冷冻干燥保存于冰箱待用。
2 结果与分析
2.1 目的基因的PCR扩增及克隆
用引物 WRKY6F和 WRKY6R对马铃薯米拉cDNA进行扩增,PCR扩增产物用1%琼脂糖凝胶电泳检测
后,可见1条约为990bp的条带(图1)。该条带回收纯化后,与pMD19T载体连接,转化产物经过蓝白斑及菌
落PCR筛选后,将获得阳性克隆随机挑选3个进行测序。
图2 犛狋犠犚犓犢6蛋白与不同物种 犠犚犓犢蛋白保守结构域比较
犉犻犵.2 犆狅狀狊犲狉狏犲犱狆狉狅狋犲犻狀犱狅犿犪犻狀犫犲狋狑犲犲狀犛狋犠犚犓犢6犪狀犱狅狋犺犲狉犠犚犓犢狆狉狅狋犲犻狀犳狉狅犿狅狋犺犲狉狊狆犲犮犻犲狊
 Consensus表示一致性序列,并在序列下面列出,黑色阴影表示20个序列中均保守的 WRKY结构域,其他根据保守程度高低依次使用深灰色和
浅灰色阴影标示,第1行代表 WRKY6蛋白Consensusindicatessamesequencesandarelistedbelow,blackshadowindicatesWRKYconserveddo
main,accordingtothedegreeofconservation,darkgrayandlightgrayareindicated,thefirstlinerepresentsStWRKY6protein
971第20卷第2期 草业学报2011年
2.2 序列分析
图3 马铃薯 犠犚犓犢6与不同物种
犠犚犓犢蛋白的系统演化分析
犉犻犵.3 犘犺狔犾狅犵犲狀犲狋犻犮犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳狋犺犲犱犲犱狌犮犲犱犪犿犻狀狅犪犮犻犱
狊犲狇狌犲狀犮犲犫犲狋狑犲犲狀犘狋犠犚犓犢6犪狀犱狅狋犺犲狉犠犚犓犢狆狉狅狋犲犻狀
  St:马铃薯犛.狋狌犫犲狉狅狊狌犿;At:拟南芥犃.狋犺犪犾犻犪狀犪;Os:水稻犗.狊犪狋犻
狏犪;Ta:小麦犜.犪犲狊狋犻狏狌犿;Bn:油菜犅狉犪狊狊犻犮犪狀犪狆狌狊;Cl:西瓜犆犻狋狉狌犾
犾狌狊犾犪狀犪狋狌狊;Va:山葡萄犞犻狋犻狊犪犲狊狋犻狏犪犾犻狊;Nt:烟草犖.狋犪犫犪犮狌犿;Hv:
大麦 犎.狏狌犾犵犪狉犲;Pt:三 倍 体 毛 白 杨 (犘狅狆狌犾狌狊狋狅犿犲狀狋狅狊犪 ×犘.
犫狅犾犾犲犪狀犪)×犘.狋狅犿犲狀狋狅狊犪
图4 重组质粒的鉴定
犉犻犵.4 犇狅狌犫犾犲犲狀狕狔犿犲犱犻犵犲狊狋犻狅狀狉犲狊狌犾狋
M:分子量标准;1:酶切产物 M:Marker;1:PCRproduct
核酸序列分析结果表明,该基因的开放阅读框为
990bp,编码330氨基酸。利用 NCBI数据库进行
Blast分析发现,克隆序列与其他学者登录的马铃薯
犠犚犓犢6(EU056918.1)序列一致,说明在同种植物中
该基因的保守性程度非常高。用 WRKY6的氨基酸
序列在NCBI网站中的Blast进行在线比对,从中选出
同源性较高的19条氨基酸序列进行保守域分析,通过
比对从中选择同源性较高的 WRKY结构域进行作
图,结果表明克隆的 WRKY6含有1个保守 WRKY
结构域,其锌指结构模式为CX7CX23HXC,属于
WRKY家族的第3组(图2)。同时根据这20个蛋白
的氨基酸序列(包括StWRKY6)构建系统发育树(图
3)。分析发现,该蛋白与来自拟南芥的 WRKY70(XP
_002878082.1)、油菜 WRKY70(ACQ76810.1)和西
瓜 WRKY70(ACV29874.1)聚为紧密一支,说明它们
的亲缘关系较近,与来自大麦的 WRKY4(ABR87002.1)
距离最远。
2.3 原核表达载体的构建和重组子鉴定
利用犅犪犿犎Ⅰ和犛犿犪Ⅰ对犛狋犠犚犓犢6pMD19T
载体和原核表达载体pGEX4T2进行双酶切,然后纯
化酶切产物、连接,构建重组表达载体。单克隆经菌落
PCR检测,可扩增出1条990bp左右插入片段,与目
的片段(990bp)分子量基本相符;通过双酶切鉴定可
将重组质粒酶切为990bp左右的片段和4900bp左
右片段(图4)。载体pGEX4T2的分子量是4900
bp。重组质粒经测序表明,与克隆序列完全一致,开
放阅读框正确。表明犛狋犠犚犓犢6的原核表达载体构
建成功。
2.4 目的蛋白表达的SDS-PAGE分析
在37和18℃的温度条件下分别添加0.2和0.5
mmol/LIPTG对含有重组质粒的大肠杆菌DE3进行
诱导目的蛋白的表达,结果表明在18℃条件下诱导该
融合蛋白的表达量高于在37℃条件下(结果未显示),
在18℃条件下使用0.2和0.5mmol/LIPTG诱导
时,目的蛋白没有显著差异。因此确定StWRKY6蛋
白最佳诱导条件是在18℃培养条件下添加0.2
mmol/LIPTG。StWRKY6蛋白分子量39.6kD,加
上GSTtag标签蛋白26kD,融合蛋白分子量应为66
kD左右,含有目的质粒的大肠杆菌经过诱导表达出蛋
白分子量约66kD左右,与理论值相符,而含有空载体
081 ACTAPRATACULTURAESINICA(2011) Vol.20,No.2
菌株未见表达出目的蛋白(图5)。
图5 犌犛犜犛狋犠犚犓犢6表达产物的犛犇犛-犘犃犌犈
犉犻犵.5 犛犇犛-犘犃犌犈狅犳犲狓狆狉犲狊狊犻狅狀狅犳犌犛犜犛狋犠犚犓犢6犻狀犅犔21
   M:蛋白质分子量标准;1:未诱导的空载体;2:未诱导的重组质粒;
3:用0.2mmol/LIPTG诱导的空载体;4:用0.2mmol/LIPTG诱导
的重组质粒;箭头示表达的目的蛋白 M:Proteinmarker;1:pGEX4T
2plasmidbeforeinduction;2:Recombinantplasmidbeforeinduction;
3:pGEX4T2plasmidinducedby0.2mmol/LIPTG;4:Recombinant
plasmidinducedby0.2mmol/LIPTG;Arrowshowsthetargetprotein
图6 犌犛犜犛狋犠犚犓犢6纯化产物的犛犇犛犘犃犌犈
犉犻犵.6 犛犇犛犘犃犌犈狅犳狆狌狉犻犳犻犲犱犌犛犜犛狋犠犚犓犢6
   M:蛋白质分子量标准;1:纯化的 GSTStWRKY6蛋白 M:Protein
marker;1:PurifiedGSTStWRKY6
2.5 目的蛋白纯化的SDS-PAGE分析
纯化的结果表明,GSTStWRKY6融合蛋白在大
肠杆菌BL21(DE3)中获得高效表达。试验表明在
18℃条件下添加0.2mol/LIPTG诱导8h后可得到
大量融合蛋白。纯化后融合蛋白约为66kD(图6),
SDSPAGE显示其条带特异性好,纯度高。
3 讨论
植物中 WRKY蛋白结构的共同特点含有1~2
个 WRKY 结构域,结构域 C端具有一个 C2H2 或
C2HC的锌指结构。根据 WRKY结构域的数目和锌
指结构的类型,WRKY蛋白可分成3组:第1组含2
个 WRKY结构域,锌指结构模式为CX45CX2223H
XH,第2和3组均含1个 WRKY结构域,第2组锌
指结构模式与第1组相同;第3组仅在组成锌指的氨
基酸有变化,CX7CX2223HXC[18]。在高等植物中,
第3组 WRKY蛋白占该家族成员的20%,在低等植
物例如苔藓(犅狉狔狅狆犺狔狋犪)植物中不存在[19]。表明该类
WRKY蛋白可能处在陆生植物进化的较后位置,可能
与高等植物适应复杂多变的环境相关。应用生物信息
学的相关软件可以根据已知生物的基因组图谱和功能
信息,来预测未知基因和功能蛋白的相关信息和构建
物种遗传图谱;是当前研究生物基因组学的主要手段
之一[20]。本研究以GenBank中其他学者已公布序列
(EU056918.1)设计引物,利用 RT-PCR 获得了
犛狋犠犚犓犢6的cDNA序列。分析比对后发现,其与已
公布cDNA序列一致,说明对于同种植物,该基因十
分保守,系统进化分析表明该蛋白与其他物种间的同
源性较低,为21%~63%,这与其他学者的研究一致,
即属内同源性高,属间相对低[21,22]。
目前关于 WRKY 蛋白二级结构研究不多,Ya
masaki等[23]采用核磁共振技术对 AtWRKY44蛋白
C末端 WRKY结构域进行分析,发现C末端由4条β
链折叠组成,WRKYGQK位于β链的N端,其中甘氨酸残基处形成扭结使得色氨酸残基具有很强的疏水作用,
这有助于β链折叠。Duan等
[24]研究AtWRKY1蛋白C末端晶体结构域发现它由5个β链组成1个反向平行的
β折叠球形结构,在另一端存在1个新型锌离子结合位点。通过 AntheProt3D 蛋白软件分析,本研究中
StWRKY6蛋白的二级结构中螺旋占27%,折叠占18%,转角占27%,蜷曲占28%。这为进一步研究该蛋白的
结构提供一定的线索。通过氨基酸序列分析比对,StWRKY6蛋白属于第3组,构建系统发育树的结果表明
StWRKY6与拟南芥的 WRKY70、油菜 WRKY70 和西瓜 WRKY70聚为紧密一支。拟南芥第3组成员
WRKY70敲除的突变体能降低SA(水杨酸)介导对二孢白粉菌抗性,而超表达植株能提高这种抗性,但会降低
JA(茉莉酸)介导的对甘蓝黑斑病抗性,因此AtWRKY70在拟南芥SA和JA防御信号途径起到一个重要的平衡
作用[19]。油菜BnWRKY70也属于第3组成员,该蛋白能在转录水平上参与调节与真菌侵染和激素刺激相关的
181第20卷第2期 草业学报2011年
基因[25],而西瓜ClWRKY70的功能未见报道。由于 AtWRKY70和 BnWRKY70被报道与植物的病菌侵染相
关,因此推测StWRKY6可能与马铃薯的抗病性相关,当然这还需要通过进一步实验证明。现在已报道的第3组
成员还包括在大豆(犌犾狔犮犻狀犲犿犪狓)中克隆的GmWRKY57B,通过将该基因在烟草中的过量表达,可以提高转基因
烟草的抗旱性[26]。因此到目前为止 WRKY家族第3组成员主要被发现与植物的生物和非生物胁迫相关。
目前,已经在公共数据库中发表了多个物种的 WRKY基因序列,其数目已经超过1000个,目前 WRKY蛋
白的研究主要集中在拟南芥、水稻和玉米等已经测序完成的物种。马铃薯作为一种世界范围内重要的经济作物,
相比较而言,WRKY转录因子的研究较少,StWRKY1是采用差减杂交的方法从马铃薯中分离到1个 WRKY基
因,该基因编码172个氨基酸,并包含1个 WRKY结构域。该基因是受到软腐病诱导表达,但是SA、MJ(茉莉酸
甲酯)、乙烯和伤害对它的表达没有影响,推测它参与马铃薯软腐病的抵御过程[27]。ScWRKY1转录因子是从野
生马铃薯胚珠中分离到的,它在受精后16d的鱼雷期胚胎中有瞬时高表达,但是在已完全发育的果实、根、茎和
花瓣中表达量很低,表明ScWRKY1可能参与胚胎形成过程[3]。本研究克隆了马铃薯中 WRKY6的完整编码
框,并成功在大肠杆菌中表达和纯化出特异性高的融合蛋白,进一步的工作可以采用凝胶电泳迁移改变实验来验
证其是否具有结合 W盒的能力,以及采用瞬时表达融合GFP(绿色荧光蛋白)的方法来研究其定位,这些对于确
定该 WRKY转录因子的功能是必需的。虽然马铃薯中 WRKY转录因子的研究起步较晚,但是该物种的基因组
序列框架图在2009年9月已完成。相信以此为契机将来会有更多的 WRKY转录因子的信息被注释。WRKY
蛋白中保守的 WRKY结构域可以结合启动子区域的 W盒,因此所有启动子区域含有 W 盒的基因都有可能是其
靶基因。这其中包括 WRKY基因本身[18]。随着马铃薯基因信息的日益完善,寻找 WRKY转录因子靶基因将成
为可能,这对于阐明 WRKY转录因子调控植物生理机制具有重要的意义。
参考文献:
[1] IshiguroS,NakamuraK.CharacterizationofacDNAencodinganovelDNAbindingprotein,SPF1,thatrecognizesSP8se
quencesintheupstreamregionsofgenescodingforsporaminandbetaamylasefromsweetpotato[J].MolecularandGeneral
Genetics,1994,244(6):563571.
[2] RobatzekS,SomssichIE.AnewmemberoftheArabidopsisWRKYtranscriptionfactorfamily,AtWRKY6,isassociated
withbothsenescenceanddefencerelatedprocesses[J].PlantJournal,2001,28:123133.
[3] LagacéM,MattonDP.CharacterizationofaWRKYtranscriptionfactorexpressedinlatetorpedostageembryosof犛狅犾犪狀狌犿
犮犺犪犮狅犲狀狊犲[J].Planta,2004,219:185189.
[4] XuYH,WangJW,WangS,犲狋犪犾.CharacterizationofGaWRKY1,acottontranscriptionfactorthatregulatesthesesquiter
penesynthasegene(+)-δ-cadinenesynthase-A[J].PlantPhysiology,2004,135:507515.
[5] ZhangZL,XieZ,ZouXL,犲狋犪犾.AriceWRKYgeneencodesatranscriptionalrepressorofthegibberelinsignalingpathway
inaleuronecels[J].PlantPhysiology,2004,134:15001513.
[6] ChenC,ChenZ.IsolationandcharacterizationoftwopathogenandsalicylicacidinducedgenesencodingWRKYDNAbinding
proteinsfromtobacco[J].PlantMolecularBiology,2000,42:387396.
[7] SunCX,PalmqvistS,OlssonH,犲狋犪犾.AnovelWRKYtranscriptionfactor,SUSIBA2,participatesinsugarsignalinginbar
leybybindingtothesugarresponsiveelementsof狋犺犲犻狊狅1promoter[J].PlantCel,2003,15:20762092.
[8] HwangEW,KimKA,ParkSC,犲狋犪犾.Expressionprofilesofhotpepper(犆犪狆狊犻犮狌犿犪狀狀狌犿)genesundercoldstresscondi
tions[J].JournalofBiosciences,2005,30(5):657667.
[9] WeiW,ZhangYX,HanL,犲狋犪犾.AnovelWRKYtranscriptionalfactorfromthlaspicaerulescensnegativelyregulatestheos
moticstresstoleranceoftransgenicTobacco[J].PlantCelReports,2008,27(4):795803.
[10] WangJ,ZhangS,StaceyG.Activationofamitogenactivatedproteinkinasepathwayin犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊bychitin[J].Molecular
PlantPathology,2004,5:125135.
[11] Robatzek,SomssichIE.TargetsofAtWRKY6regulationduringplantsenescenceandpathogendefense[J].GenesDevelop
ment,2002,16:11391149.
[12] JonsonCS,KolevskiB,SmythDR.TRANSPARENTTESTAGLABRA2,atrichomeandseedcoatdevelopmentgeneof
281 ACTAPRATACULTURAESINICA(2011) Vol.20,No.2
犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊,encodeaWRKYtranscriptionfactor[J].PlantCel,2002,14:13591375.
[13] LuoM,DennisES,BergerF,犲狋犪犾.AMINISEED3(MINI3),aWRKYfamilygene,andHAIKU2(IKU2),aleucinerich
repeat(LRR)kinasegene,areregulatorsofseedsizein犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊[J].ProceedingsoftheNationalAcademyofSciences
USA,2005,102:1753117536.
[14] MareC,MazzucoteliE,CrosattiC,犲狋犪犾.HvWRKY38:Anewtranscriptionfactorinvolvedincoldanddroughtresponse
inbarley[J].PlantMolecularBiology,2004,55:399416.
[15] DevaiahBN,KarthikeyanAS,RaghothamaKG.WRKY75transcriptionfactorisamodulatorofphosphateacquisitionand
rootdevelopmentin犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊[J].PlantPhysiology,2007,143:17891801.
[16] ChenYF,LiLQ,XuQ,犲狋犪犾.TheWRKY6transcriptionfactormodulatesPHOSPHATE1expressioninresponsetolowPi
stressin犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊[J].ThePlantCel,2009,21:35543566.
[17] 程天庆.马铃薯栽培技术(第2版)[M].北京:金盾出版社,2004.
[18] EulgemT,RushtonPJ,RobatzekS,犲狋犪犾.TheWRKYsuperfamilyofplanttranscriptionalfactor[J].TrendsPlantSci
ence,2000,5(5):199206.
[19] LiJ,BraderG,PalvaET.TheWRKY70transcriptionfactor:Anodeofconvergenceforjasmonatemediatedandsalicylate
mediatedsignalsinplantdefense[J].PlantCel,2004,16(2):319331.
[20] 郑轶琦,刘建秀.草坪草分子遗传图谱的构建与应用研究进展[J].草业学报,2009,18(1):155162.
[21] 尚以顺,杨春燕,钟理.贵州野生匍匐剪股颖种质资源遗传多样性的ISSR分析[J].草业学报,2009,18(3):6773.
[22] 沈宝云,刘玉汇,张俊莲,等.马铃薯块茎GBSSⅠ基因的cDNA克隆及其序列特征分析[J].草业学报,2010,19(5):18.
[23] YamasakiK,KigawaT,InoueM,犲狋犪犾.Soltuionstructeruofan犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊WRKYDNAbidningdoamin[J].PlantCel,
2005,(37):944956.
[24] DuanMR,NanJ,LiangYH,犲狋犪犾.DNAbindingmechanismrevealedbyhighresolutioncrystalstructureof犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊
狋犺犪犾犻犪狀犪 WRKY1protein[J].NucleicAcidsResearch,2007,35:11451154.
[25] YangB,JiangY,RahmanM H,犲狋犪犾.IdentificationandexpressionanalysisofWRKYtranscriptionfactorgenesincanola
(犅狉犪狊狊犻犮犪狀犪狆狌狊L.)inresponsetofungalpathogensandhormonetreatments[J].BMCPlantBiology,2009,9:6887.
[26] 张兰,王晓萍,毕影东,等.大豆转录因子 GmWRKY57B的基因克隆及功能分析[J].科学通报,2008,53(21):2604
2611.
[27] DelagiA,HelibronnJ,AvrovaAO,犲狋犪犾.ApotatogeneencodingaWRKYliketranscriptionfactorisinducedininterac
tionswith犈狉狑犻狀犻犪犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.atrosepticaand犘犺狔狋狅狆犺狋犺狅狉犪犻狀犳犲狊狋犪狀狊andiscoregulatewithclassIendochitinaseex
pression[J].MolecularPlantMicrobeInteractions,2000,13(10):10921101.
犆犾狅狀犻狀犵,狊犲狇狌犲狀犮犲犪狀犪犾狔狊犻狊犪狀犱狆狉狅犽犪狉狔狅狋犻犮犲狓狆狉犲狊狊犻狅狀狅犳狋犺犲犠犚犓犢6狅犳狆狅狋犪狋狅
LILiqin,HUANGYubi,WANGXiyao
(AgronomyDepartmentofSichuanAgriculturalUniversity,Ya’an625014,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:Inhigherplants,therearemanyWRKYtranscriptionfactorsinWRKYfamily.Theyarewidelyin
volvedinbioticstress;abioticstress;growth;developmentandmetabolismregulation.Cloning犠犚犓犢6from
potatobyhomologycloning.Analysisshowthatthe犠犚犓犢6belongstothethirdgroupofWRKYfamilymem
bers,zincfingerstructureisCX7CX23HXC.Phylogenyresultsshow犠犚犓犢6isthemostclosesttoAt
WRKY70with58%similarity,BySDS-PAGEanalysis,thebestexpressionconditionsof犠犚犓犢6arethat
hostbacteria犈狊犮犺犲狉犻犮犺犻犪犮狅犾犻(DE3)isgrowingfor8hoursunder18℃adding0.2mmol/LIPTG(Isopropylβ
Dthiogalactoside),purifiedproteinofhighspecificityisobtained.Thisresearchlayasolidfoundationtofur
therstudythefoundationof犠犚犓犢6.
犓犲狔狑狅狉犱狊:potato(犛狅犾犪狀狌犿狋狌犫犲狉狅狊狌犿);WRKYgene;cloning;sequenceanalysis;prokaryoticexpression
381第20卷第2期 草业学报2011年