全 文 :书铝和酸胁迫对苜蓿根瘤菌生长和抗氧化酶系的影响
李智燕1,邢学峰2,唐华1,尹亚丽1,郭彦军1
(1.西南大学动物科技学院,重庆400716;2.呼和浩特市家畜改良站,内蒙古 呼和浩特010020)
摘要:在铝和酸胁迫下,比较分析了天蓝苜蓿和紫花苜蓿根瘤菌的生长及SOD(超氧化物歧化酶)、CAT(过氧化氢
酶)、POD(过氧化物酶)、及GR(谷胱甘肽还原酶)等抗氧化酶系响应特点。铝胁迫设5个梯度,即0,25,50,75,
100μmol/L;酸胁迫设4个pH水平,即4,5,6,7。结果表明,铝和酸胁迫下,2种苜蓿根瘤菌的ODA600均显著降低,
生长受到抑制,且天蓝苜蓿根瘤菌的ODA600显著高于紫花苜蓿根瘤菌。在pH水平为4和5时,紫花苜蓿根瘤菌没
有生长。在铝毒胁迫下,天蓝苜蓿根瘤菌的SOD酶活性一定程度减小后缓慢上升,而CAT、POD和GR酶活性随
铝浓度增大显著下降;紫花苜蓿根瘤菌的SOD,CAT及GR酶活在低Al胁迫下无显著变化,在高铝胁迫下显著下
降。随着pH水平的下降,天蓝苜蓿和紫花苜蓿根瘤菌均表现为SOD、CAT、POD、GR酶活性的显著下降。在不同
铝及酸胁迫下,天蓝苜蓿根瘤菌各抗氧化酶活性显著高于紫花苜蓿根瘤菌。综合分析认为天蓝苜蓿根瘤菌较之紫
花苜蓿根瘤菌有较强的耐酸、耐铝性。
关键词:铝胁迫;酸胁迫;根瘤菌;天蓝苜蓿;紫花苜蓿;抗氧化酶系
中图分类号:S816;S551+.703.4;Q945.78 文献标识码:A 文章编号:10045759(2013)03014608
犇犗犐:10.11686/cyxb20130319
在我国,酸性土壤总面积约203万hm2,约占全国土地面积的21%[1],主要分布于我国南方15个省、市、自
治区[2]。酸性土壤是指过滤和吸收了有能力释放 H+的酸性物质,即pH 值低于7的土壤,而对于农业生产来
说,耕作层土壤pH值低于6.6即为酸性土壤[3]。酸性土壤中,铝以离子态大量溶出,对植物造成严重毒害[4],过
多的铝离子是酸性土壤中影响植物生长的主要障碍因子[5]。酸性土壤较低的pH水平和较高的活性铝是限制豆
科植物与根瘤菌建立共生关系的主要因子。铝毒害的最初反应是抑制植物根的生长,并因而抑制水分、养分的吸
收,长时间的铝胁迫会引起地上部分生长受阻[6,7]。Al胁迫下,根瘤菌的细胞结构、细胞分裂、酶系统等受到毒害
影响,对结瘤和固氮产生限制作用,影响植物根系发育和营养元素的吸收[8],也会对苜蓿根和根瘤的抗氧化系统
产生影响[9]。根瘤菌适宜的pH值为6.5~7.5,对酸极其敏感,一般只能在中性偏碱的土壤中良好生长,在酸性
土壤中很难存活[10,11]。研究表明,铝和酸胁迫时,根瘤菌自身会形成一些抗性机制,如细胞外排、胞外沉淀、主动
输出、酶类解毒及降低细胞对铝和酸的敏感性等[12,13]。目前,对根瘤菌酶类解毒的研究较少,而这种解毒机制主
要有抗氧化系统的保护作用,包括抗氧化酶类如SOD(超氧化物歧化酶)、CAT(过氧化氢酶)、POD(过氧化物
酶)、及GR(谷胱甘肽还原酶)[14]。且不同种类的根瘤菌抵抗胁迫的生理功能不尽相同[15]。
紫花苜蓿(犕犲犱犻犮犪犵狅狊犪狋犻狏犪)是一种优良的多年生豆科牧草,然而它对酸性土壤敏感,当土壤pH值为6.1~
6.5时,其生长开始受限制,根瘤菌的繁殖率和存活率下降;土壤pH 低于6.0时,紫花苜蓿生长严重受抑
制[16,17],导致其难以大面积推广种植,制约着南方草地畜牧业的发展水平[18]。天蓝苜蓿(犕犲犱犻犮犪犵狅犾狌狆狌犾犻狀犪)是
西南地区分布较广的野生一年生豆科植物,对酸性土壤具有较强的适应性,其根瘤菌与紫花苜蓿具有较高的亲和
性。本试验对分离自天蓝苜蓿和紫花苜蓿的根瘤菌菌株进行了铝胁迫和酸胁迫处理,研究了根瘤菌的生长及其
抗氧化酶系对胁迫的响应机制,旨在为筛选酸性土壤适宜的紫花苜蓿根瘤菌菌株提供理论依据,也可为今后在南
方推广种植紫花苜蓿提供技术支持。
146-153
2013年6月
草 业 学 报
ACTAPRATACULTURAESINICA
第22卷 第3期
Vol.22,No.3
收稿日期:20120507;改回日期:20130608
基金项目:重庆市科技攻关项目(CSCT2010AC1010)资助。
作者简介:李智燕(1986),女,甘肃陇西人,在读硕士。Email:azhi3333@qq.com
通讯作者。Email:qhgyj@126.com
1 材料与方法
1.1 供试苜蓿根瘤菌菌株(rhizobiumstrains)
试验于2010年10月,自西南大学牧草试验基地,采集野生天蓝苜蓿和种植5年的紫花苜蓿的根瘤,分离天
蓝苜蓿根瘤菌(R1)和紫花苜蓿根瘤菌(R2)。在YMA固体培养基(酵母-甘露醇-琼脂)上划线培养。西南大
学牧草试验基地位于重庆市北碚区,年降水量为1133.5mm;年平均气温为18.1℃;日最高气温为44.3℃;极端
最低气温为-3.1℃;土壤呈弱酸性(pH6.5)。
1.2 基础培养基
培养根瘤菌用YMB液体培养基。培养基成分:甘露醇10g/L,K2HPO3·3H2O0.2g/L,NaCl0.1g/L,
MgSO4·7H2O0.5g/L,酵母提取物1.0g/L,蒸馏水1000mL/L,用0.1mol/LNaOH或HCl调pH为6.8。
在上述成分中加入15g琼脂和5mL刚果红(0.5%),用于纯化根瘤菌的固体培养基(YMA)。
1.3 培养方法
1.3.1 菌株纯化 从所取的苜蓿上取下一个根瘤,先进行表面灭菌(先经95%的酒精杀毒10s后,再在3%的
H2O2 中灭菌3min),用无菌水冲洗3~5次后,加1滴灭菌蒸馏水,用镊子把根瘤捣碎,用接种环挑取一环根瘤
的汁液接种到CRYMA培养基上,划线分离,在28℃黑暗条件下培养,待菌落长成,选取单菌落,2次划线分离培
养,连续2次,得到纯的根瘤菌菌株。
1.3.2 扩大培养 将纯化后的菌种用5mL无菌水洗脱于装有液体培养基(YMB)的锥形瓶(150mL)中,置于
摇床(150r/min)上恒温(28℃)预培养至指数期,备用。
1.3.3 胁迫培养 金属离子Al3+胁迫:将预培养的菌种按1%的接种量接种于含不同浓度Al3+梯度的YMB液
体培养基中,以AlCl3(A.R)的形式,使Al3+浓度梯度为0,25,50,75,100μmol/L。然后于28℃,150r/min培
养,分别于第3和7天观察培养液的混浊度,记录生长情况,以600nm下的OD值来反映。以不接种为对照,各
处理重复3次。然后于4℃、8000r/min离心5min收集菌体。
酸度胁迫:将YMB液体培养基pH值分别调至4,5,6,7(用1mol/LHCl调),接种预培养后的供试菌株,
置于28℃,150r/min的条件下摇床培养,分别于第3和7天观察培养液的混浊度,记录生长情况,以600nm下
的OD值来反映。以不接种为对照,各处理重复3次。然后于4℃、8000r/min离心5min收集菌体[19,20]。
1.4 酶活性测定
1.4.1 细胞破碎和粗酶液提取 将收集的菌体用磷酸缓冲液(0.05mmol/L,pH7.8,4℃预冷)洗涤3次,置于
干滤纸(无菌)上,吸去表面残余液。然后置于10mL离心管中,记录菌体质量,加4mL磷酸盐提取液(0.05
mmol/L,pH7.8,含1%PVP,4℃预冷)混匀,置于冰上超声波破壁,离心15min(4℃,15000r/min),上清液为
抗氧化酶粗提液,保存于-20℃冰箱以备用。
1.4.2 抗氧化酶活性测定 SOD(超氧化物歧化酶)活性的测定采用氮蓝四唑(NBT)光化还原法,定义将NBT
光化还原反应抑制到50%为一个酶活性单位(U)[21];CAT(过氧化氢酶)活性采用紫外吸收法测定,以每 min减
少0.1个OD值所需的酶量为1个酶活力单位(U)[22];POD(过氧化物酶)的测定采用愈创木酚法,在 H2O2存在
下POD催化愈创木酚生成棕色聚合物,在470nm有特征吸收峰,以每min内A470变化0.01为1个过氧化物酶
活性单位(U)[23];GR(谷胱甘肽还原酶)的活性采用NADPH法,以每min每mg蛋白氧化1nmolNADPH为一
个活性单位(U)[24,25]。
1.5 数据处理
采用Excel和GenStat13.0统计软件进行统计分析。显著水平为犘=0.05(l.s.d检测)。
2 结果与分析
2.1 Al胁迫处理对2种苜蓿根瘤菌生长和抗氧化酶活性的影响
Al胁迫与苜蓿根瘤菌菌株对苜蓿根瘤菌生长及抗氧化酶活性具有显著的交互作用(表1)。Al胁迫处理后,
2种苜蓿根瘤菌的ODA600均显著降低,生长受到抑制。天蓝苜蓿根瘤菌(R1)的ODA600在25和50μmol/L水平
间无显著差异,50μmol/L后显著下降。R1的 ODA600显著高于紫花苜蓿根瘤菌(R2)。随着铝浓度增加,R2的
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ODA600逐渐下降(犘<0.05),当Al浓度增加至50μmol/L后,再增加铝浓度对R2的ODA600无显著影响。回归分
析结果表明,Al浓度与R1的ODA600呈线性关系(狔=1.377-0.0009狓,狉2=0.845,犘<0.01)(图1),与R2的
ODA600呈指数关系[狔=1.29exp(0.005狓),狉2=0.924,犘<0.01](图2)。
铝胁迫处理后,R1SOD酶活性显著降低,且Al浓度为50μmol/L时的SOD酶活性最低,而后随铝浓度上
升又缓慢增加。Al浓度为25μmol/L时,R2SOD酶活性与对照无显著差异,随着Al浓度的继续增加,SOD酶
活性显著下降。回归分析结果表明,Al浓度与R1SOD酶活性呈指数加线性关系[狔=-86.24+427.68exp
(-0.019狓)+2.62狓,狉2=0.862,犘<0.01](图1),与 R2SOD酶活性呈二次幂关系(狔=103.91+0.55狓-
0.014狓2,狉2=0.973,犘<0.01)(图2)。R1SOD酶活性显著高于R2。
铝胁迫处理后,R1CAT酶活性显著降低,当Al浓度增加至75μmol/L后,变化逐渐变缓,75μmol/L时的
CAT酶活性与50和100μmol/L无显著差异。R2CAT酶活性显著低于R1,且铝浓度25,50,75μmol/L时的
CAT酶活性与对照无显著差异。回归分析结果表明,Al浓度与 R1CAT酶活性呈指数关系[狔=45.82exp
(-0.013狓),狉2=0.918,犘<0.01](图1),与R2CAT活性呈二次幂关系(狔=11.85+0.023狓-0.0008狓2,狉2=
0.847,犘<0.01)(图2)。
R1和R2POD酶活性均随铝浓度的增加呈下降趋势,且R1POD酶活性显著高于R2。回归分析结果表明,
Al浓度与R1POD酶活性呈指数关系[狔=49.66exp(-0.013狓),狉2=0.957,犘<0.01](图1),与R2POD酶活
性呈线性关系(狔=23.80-0.16狓,狉2=0.859,犘<0.01)(图2)。
铝胁迫处理后,R1GR酶活性显著下降,当Al浓度超过50μmol/L时,变化趋缓;R2GR酶活性在低铝浓度
下与对照无显著差异,当Al浓度超过75μmol/L时,GR酶活性显著低于对照。对照和25μmol/L铝浓度下,
R1GR酶活性显著高于R2,其余铝浓度下二者无显著差异。回归分析结果表明Al浓度与R1GR活性呈指数关
系[狔=0.017exp(-0.027狓),狉2=0.910,犘<0.01](图1),与R2GR活性呈线性关系(狔=0.0043-3.16狓,狉2=
0.730,犘<0.01)(图2)。
表1 犃犾胁迫对天蓝苜蓿和紫花苜蓿根瘤菌生长及抗氧化酶活性的影响
犜犪犫犾犲1 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犪犾狌犿犻狀狌犿狊狋狉犲狊狊狅狀犵狉狅狑狋犺犪狀犱犪狀狋犻狅狓犻犱犪狀狋犲狀狕狔犿犲犪犮狋犻狏犻狋犻犲狊
狅犳狉犺犻狕狅犫犻狌犿犻狊狅犾犪狋犲犱犳狉狅犿犕.犾狌狆狌犾犻狀犪犪狀犱犕.狊犪狋犻狏犪
铝水平
Al(μmol/L)
ODA600
R1 R2
SOD(U/g·h)
R1 R2
CAT(U/g·min)
R1 R2
POD(U/g·min)
R1 R2
GR(U/g·min)
R1 R2
0 1.38 1.33 339.00 104.86 47.15 11.91 51.00 24.55 0.018 0.004
25 1.34 1.14 259.21 106.61 31.87 11.71 33.54 18.65 0.008 0.004
50 1.35 0.97 187.50 96.10 20.66 11.00 24.36 16.21 0.004 0.003
75 1.31 0.89 235.02 65.90 17.98 8.76 19.76 11.05 0.003 0.002
100 1.28 0.88 234.87 14.81 15.12 5.60 14.47 8.16 0.002 0.001
l.s.dAl - - - - -
l.s.dR - - - - -
l.s.dAR 0.032 19.000 4.542 4.804 0.002
注:R1代表天蓝苜蓿根瘤菌;R2代表紫花苜蓿根瘤菌。
Note:R1representsrhizobiumisolatedfrom犕.犾狌狆狌犾犻狀犪;R2representsrhizobiumisolatedfrom犕.狊犪狋犻狏犪,thesamebelow.
2.2 不同酸水平对2种苜蓿根瘤菌生长及抗氧化酶活性的影响
酸胁迫处理后,2种苜蓿根瘤菌的ODA600均显著降低,生长受到抑制 (表2)。R1ODA600在pH值为7和6水
平间无显著差异,低于5显著下降。在pH 为4~5的高酸水平下,R2生长完全被抑制。天蓝苜蓿根瘤菌的
ODA600值显著高于紫花苜蓿。
841 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.3
图1 天蓝苜蓿根瘤菌生长及酶活性与犃犾浓度之间的相关性
犉犻犵.1 犚犲犾犪狋犻狅狀狊犺犻狆犫犲狋狑犲犲狀犵狉狅狑狋犺犪狀犱犪狀狋犻狅狓犻犱犪狀狋犲狀狕狔犿犲犪犮狋犻狏犻狋犻犲狊
狅犳狉犺犻狕狅犫犻狌犿犻狊狅犾犪狋犲犱犳狉狅犿犕.犾狌狆狌犾犻狀犪狋狅犃犾犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀
图2 紫花苜蓿根瘤菌生长及酶活性与犃犾浓度之间的相关性
犉犻犵.2 犚犲犾犪狋犻狅狀狊犺犻狆犫犲狋狑犲犲狀犵狉狅狑狋犺犪狀犱犪狀狋犻狅狓犻犱犪狀狋犲狀狕狔犿犲犪犮狋犻狏犻狋犻犲狊
狅犳狉犺犻狕狅犫犻狌犿犻狊狅犾犪狋犲犱犳狉狅犿犕.狊犪狋犻狏犪狋狅犃犾犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀
941第22卷第3期 草业学报2013年
随着pH水平的上升,R1和R2均表现为SOD、CAT、POD、GR酶活性的显著增加,且R1酶活性在不同pH
水平下均显著高于R2(表2)。回归分析结果表明,pH水平与R1SOD酶活性呈线性关系(狔=82.35+38.06狓,
狉2=0.825,犘<0.01),与CAT酶活性呈线性关系(狔=28.45+9.21狓,狉2=0.919,犘<0.01),与POD酶活性呈线
性关系(狔=42.23+17.19狓,狉2=0.881,犘<0.01),与GR酶活性呈线性关系(狔=0.013+0.005狓,狉2=0.839,
犘<0.01)(图3)。pH水平与ODA600之间无显著相关性。
表2 不同狆犎水平对天蓝苜蓿和紫花苜蓿根瘤菌生长及抗氧化酶活性的影响
犜犪犫犾犲2 犈犳犳犲犮狋狊狅犳狆犎犾犲狏犲犾狊狅狀犵狉狅狑狋犺犪狀犱犪狀狋犻狅狓犻犱犪狀狋犲狀狕狔犿犲犪犮狋犻狏犻狋犻犲狊狅犳狉犺犻狕狅犫犻狌犿犻狊狅犾犪狋犲犱犳狉狅犿犕.犾狌狆狌犾犻狀犪犪狀犱犕.狊犪狋犻狏犪
pH
ODA600
R1 R2
SOD(U/g·h)
R1 R2
CAT(U/g·min)
R1 R2
POD(U/g·min)
R1 R2
GR(U/g·min)
R1 R2
4 1.3 0 235.76 - 9.20 - 25.18 - 0.006 -
5 1.35 0 269.99 - 18.45 - 49.02 - 0.010 -
6 1.47 0.48 312.41 16.71 22.67 0.93 54.47 33.11 0.015 0
7 1.46 0.73 348.47 63.40 38.49 2.18 80.68 34.06 0.020 0.002
l.s.dP - 27.62 - - 0.003
l.s.dR - 19.53 - - 0.002
l.s.dPR 0.147 - 3.585 11.310 -
图3 天蓝苜蓿根瘤菌生长及酶活性与狆犎水平之间的相关性
犉犻犵.3 犚犲犾犪狋犻狅狀狊犺犻狆犫犲狋狑犲犲狀犵狉狅狑狋犺犪狀犱犪狀狋犻狅狓犻犱犪狀狋
犲狀狕狔犿犲犪犮狋犻狏犻狋犻犲狊狅犳狉犺犻狕狅犫犻狌犿犻狊狅犾犪狋犲犱
犳狉狅犿犕.犾狌狆狌犾犻狀犪狋狅狊狅犻犾犪犮犻犱犻狋狔
051 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.3
3 讨论
本试验中,2种苜蓿根瘤菌的生长在铝胁迫下均受到胁迫,但天蓝苜蓿根瘤菌生长情况好于紫花苜蓿,说明
天蓝苜蓿根瘤菌耐铝能力优于紫花苜蓿,这与刘卢生等[26]的研究结论一致。铝胁迫对苜蓿共生系统的形成有抑
制作用,共生系统对铝的耐受性有赖于豆科植物与根瘤菌的共同作用,根瘤菌的存活以及结瘤较植株本身对根际
铝更敏感[27]。根瘤菌会对这种逆境胁迫产生一定的抗性机制,如根瘤菌耐受重金属胁迫与抗氧化酶活性的变化
有重要关系[28]。在受到Pb、Cd等重金属胁迫时,诱发生物代谢过程所产生的自由基—O2-、H2O2 等[29],对生物
有伤害作用,而生物体自身的保护酶系统能一定程度清除自由基,以减轻伤害[30,31]。本试验中,在低浓度铝毒胁
迫下,天蓝苜蓿根瘤菌的SOD酶活性显著下降;回归分析表明随着铝浓度的增加,SOD酶活性有上升趋势。这
说明天蓝苜蓿根瘤菌在高浓度铝胁迫下可能通过维持较高的SOD保护酶来抵御不利伤害。CAT、POD和GR
酶活性随铝浓度增大一直下降,说明铝毒害对根瘤菌本身的伤害已超出其抵抗能力,这几种保护酶失去防御能力
而被破坏,活性降低[32,33]。天蓝苜蓿SOD酶活性与其他对铝胁迫的响应差异,可能与体内不同保护酶的活力不
同以及不同酶对不利胁迫的敏感程度不同有关[34,35]。
在低Al胁迫下,紫花苜蓿根瘤菌的SOD、CAT及GR无显著变化,说明防御酶起到一定保护作用,其根瘤菌
对铝毒伤害有一定耐受性[36]。随铝浓度增大各酶活显著下降,高Al胁迫破坏了酶系统的动态平衡,其抗氧化能
力下降,铝毒对紫花苜蓿根瘤菌的伤害越来越大[37]。相对于天蓝苜蓿,紫花苜蓿根瘤菌各抗氧化酶活性均比较
低,这可能是紫花苜蓿ODA600值随铝浓度增加迅速下降的原因。
酸胁迫对苜蓿共生系统的形成亦有抑制作用。本试验中紫花苜蓿根瘤菌在高酸胁迫下生长完全被抑制,在
弱酸下的生长也显著低于天蓝苜蓿,说明天蓝苜蓿根瘤菌的耐酸性优于紫花苜蓿。有学者研究根瘤菌在酸性条
件下自身有一定的产碱能力,以增加根瘤菌的耐酸性[38],这说明天蓝苜蓿根瘤产碱能力可能优于紫花苜蓿。在
酸胁迫下,2种苜蓿根瘤菌的酶活性从伤害一开始,其酶活随之显著降低,说明这2种根瘤菌对酸伤害比较敏感,
未能使抗氧化酶系形成抵御伤害的能力,活性氧的积累超出根瘤菌所能耐受的阈值,加重了氧化伤害程度,活性
氧与防御系统的平衡被破坏,使苜蓿根瘤菌大量代谢活动发生紊乱而抑制了酶活性[39,40]。
综合分析认为天蓝苜蓿根瘤菌较之紫花苜蓿根瘤菌有较强的耐酸耐铝性,可用于酸性土壤接种紫花苜蓿,提
高其耐酸性。有关保护酶系统与植物抗逆关系的研究已经有许多报道,结果不尽相同,这可能与不同植物和不同
微生物的抗逆能力、它们体内保护酶系统的活力和抗氧化物质含量、毒害程度、外界环境影响等因子的不同有关。
今后需进一步研究酸、铝胁迫下天蓝苜蓿根瘤菌与紫花苜蓿植株之间的亲和性。
参考文献:
[1] 丁国安,徐晓斌.中国酸雨现状及发展趋势[J].科学通报,1997,42(2):169173.
[2] 李庆逵.中国红壤[M].北京:科学出版社,1983:74193.
[3] 李剑峰,师尚礼,张淑卿.环境酸度对紫花苜蓿早期生长和生理的影响[J].草业学报,2010,19(2):4754.
[4] AlvaAK.RelationshipsbetweenrootlengthofsoybeanandcalculatedactivitiesofAlmonomersinnutrientsolution[J].Soil
ScienceSocietyofAmericaJournal,1986,50(4):959962.
[5] 徐仁扣,季国亮.pH对酸性土壤中铝的溶出和铝离子形态分布的影响[J].土壤学报,1998,35(2):162170.
[6] GuoYJ,LiGD,HayesR,犲狋犪犾.Toleranceof犜狉犻犳狅犾犻狌犿狊狆狌犿狅狊狌犿,犅犻狊犲狉狉狌犾犪狆犲犾犲犮犻狀狌狊and犗狉狀犻狋犺狅狆狌狊狊犪狋犻狏犪tosoilacid
ity[J].NewZealandJournalofAgriculturalResearch,2012,55:114.
[7] RyanPR,DitomasoJM,KochianLV.Aluminumtoxicityinroots:Aninvestigationofspecialsensitivityandtoroleofthe
cap[J].JournalofExperimentalBotany,1993,44:437446.
[8] BhattacharyyaS,PalTK,BasumajumdarA.Modulationofenzymeactivitiesofaleadadaptedstrainof犚犺犻狕狅狆狌狊狉狉狉犺犻狕狌狊
duringbioaccumulationoflead[J].FoliaMicrobiologica,2009,54(6):505508.
[9] ScandaliosJG.Oxygenstressandsuperoxidedismutases[J].PlantPhysiology,1993,101:712.
[10] 郭彦军,黄建国.紫花苜蓿在酸性土壤中的生长表现[J].草业学报,2006,15(1):8489.
[11] CastroSowinskiS,CarreraI,CatalanAI,犲狋犪犾.Occurrencediversityandeffectivenessofmidacidtolerantalfalfanodulating
151第22卷第3期 草业学报2013年
rhizobiainUniguay[J].Symbiosis,2002,32(2):105118.
[12] 马占强,赵龙飞,王莉,等.铜胁迫对苜蓿中华根瘤菌抗氧化酶系的影响[J].农业环境科学学报,2011,30(6):1058
1063.
[13] SilverS,PhungleT.Abacterialviewoftheperiodictable:Genesandproteinsfortoxicinorganicions[J].JournalofIndus
trialMicrobiologyandBiotechnology,2005,32:587605.
[14] ChenTF,WongYS.Seleniuminducedchangesinactivitiesofantioxidantenzymesandcontentofphotosyntheticpigments
in犛狆犻狉狌犾犻狀犪狆犾犪狋犲狀狊犻狊[J].JournalofIntegrativePlantBiology,2008,50(1):4048.
[15] GibsonAH.Geneticvariationintheeffectivenessofnodulationoflucernevarieties[J].AustralianJournalofAgricultural
Research,1962,13:388399.
[16] 李春龙,李风山,杨恒山,等.科尔沁沙地紫花苜蓿的引种研究初报[J].草业科学,2005,22(2):4447.
[17] 刘慧霞,申晓蓉,郭正刚.硅对紫花苜蓿种子萌发及幼苗生长发育的影响[J].草业学报,2011,20(1):155160.
[18] ParrotandWA,BoutonJH.Aluminumtoleranceinalfalfaasexpressedintissueculture[J].CropScience,1990,30:387
389.
[19] AguirreJ,RiosMombergM,HewittD,犲狋犪犾.Reactiveoxygenspeciesanddevelopmentinmicrobialeukaryotes[J].Trends
inMicrobiology,2005,13(3):111118.
[20] 李郑军,许修宏.不同地区大豆根瘤菌培养条件的优化[J].东北农业大学学报,2009,40(11):1113.
[21] BeauchampCO,FdovichI.Superoxidedismutase:improvedassaysandanassayapplicabletoacrylamidegels[J].Analytical
Biochemistry,1971,44:276287.
[22] BeersRF,SizerIW.Aspectrophotometricmethodformeasuringthebreakdownofhydrogenperoxidebycatalase[J].The
JournalofBiologicalChemistry,1952,5:276287.
[23] ArcherMC,PalnerJK.Anexperimentinenzymecharacterization:Bonapolyphenoloxidase[J].BiochemicalEducation,
1975,3:5052.
[24] DaltonDA,RusselSA,HanusFJ,犲狋犪犾.Enzymaticreactionsofascorbateandglutathionethatpreventperoxidedamagein
soybeanrootnodules[J].ProceedingsoftheNationalAcademyofSciences,1986,83:38113815.
[25] 薛鹿龙.植物生理学实验手册[M].上海:上海科学技术出版社,1985:191192.
[26] 刘卢生,江杨,肖书磊.耐酸耐铝毒苜蓿根瘤菌的筛选[J].湖北农业科学,2009,48(4):827830.
[27] CarvalhoM M,EdwardsDG,AndrewCS,犲狋犪犾.Aluminumtoxicity,nodulation,andgrowthon犛狋狔犾狅狊犪狀狋犺犲狊狊狆犲犮犻犲狊[J].
AgronomyJournal,1981,73:261265.
[28] FigueiraEMAP,LimaAIG,PereiraSIA.Cadmiumtoleranceplasticityin犚犺犻狕狅犫犻狌犿犾犲犵狌犿犻狀狅狊犪狉狌犿bv.Viciae:Gluta
thioneasadetoxifyingagent[J].CanadianJournalofMicrobiology,2005,51:714.
[29] RicciloPM,MugliaC,BvuijnFG,犲狋犪犾.Glutathioneisinvolvedinenvironmentalstressresponsesin犚犺犻狕狅犫犻狌犿狋狉狅狆犻犮犻,
includingacidtolerance[J].JournalofBacteriology,2000,182:17481753.
[30] 任艳芳,何俊瑜,刘畅,等.镉胁迫对莴苣幼苗生长及抗氧化酶系统的影响[J].生态环境,2009,18(2):494497.
[31] HalJL.Celularmechanismsforheavymetaldetoxificationandtolerance[J].JournalofExperimentalBotany,2002,53:1
11.
[32] 严重玲,洪业汤,付舜珍,等.Cd、Pb胁迫对烟草叶片中活性氧清除系统的影响[J].生态学报,1997,17(5):488492.
[33] 邹丽娜,周志宇,颜淑云,等.盐分胁迫对紫穗槐幼苗生理生化特性的影响[J].草业学报,2011,20(3):8490.
[34] 刘碧英,潘远智,赵杨迪.沿阶草不同叶片对土壤铅胁迫的生理生化响应[J].草业学报,2011,20(4):123128.
[35] SchicklerH,CaspiH.Responseofantioxidativeenzymestonickelandcadmiumstressinhyperaccumulatorplantsofthege
nusAlyssum[J].PhysiologiaPlantarum,1999,105:3944.
[36] FechtChristoffersM M,BraunHP,LemaitreGuilierC,犲狋犪犾.Effectofmanganesetoxicityontheproteomeoftheleafap
oplastincowpea[J].PlantPhysiology,2003,33(4):19351946.
[37] PosmykM M,KontekR,JanasKM.Antioxidantenzymesactivityandphenoliccompoundscontentinredcabbageseedlings
exposedtocopperstress[J].EcotoxicologyandEnvironmentalSafety,2009,72:596602.
[38] 何庆元,胡艳,王永雄.生态环境对根瘤菌竞争结瘤影响的研究进展[J].大豆学报,2004,23(1):6670.
251 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.3
[39] 史庆华,朱祝军,李娟,等.高锰胁迫与低pH 对黄瓜根系氧化胁迫和抗氧化酶的复合效应[J].中国农业科学,2005,
38(5):9991004.
[40] CandanN,TarhanL.Thecorrelationbetweenantioxidantenzymeactivitiesandlipidperoxidationlevelsin犕犲狀狋犺犪狆狌犾犲犵犻狌犿
organsgrowninCa2+,Mg2+,Cu2+,Zn2+andMn2+stressconditions[J].PlantScience,2003,165:769776.
犈犳犳犲犮狋狊狅犳犪犾狌犿犻狀狌犿犪狀犱犪犮犻犱狊狋狉犲狊狊犲狊狅狀狋犺犲犵狉狅狑狋犺犪狀犱犪狀狋犻狅狓犻犱犪狀狋犲狀狕狔犿犲犪犮狋犻狏犻狋犻犲狊狅犳
狉犺犻狕狅犫犻犪犻狊狅犾犪狋犲犱犳狉狅犿犕犲犱犻犮犪犵狅犾狌狆狌犾犻狀犪犪狀犱犕.狊犪狋犻狏犪
LIZhiyan1,XingXuefeng2,TANGHua1,YINYali1,GUOYanjun1
(1.FacultyofAnimalScienceandTechnology,SouthwestUniversity,Chongqing400716,China;
2.LivestockImprovementStationofHuhehot,Huhehot010020,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:AcidsoilsarewidelydistributedinsouthernChinaandtheysignificantlylimitlegumegrowthandre
ducenodulationability,particularlythroughtheinfluencesofhighcontentsofH+andaluminuminsoils.Se
lectingacidtolerantrhizobiumstrainsisbelievedtobeimportantforplanting犕犲犱犻犮犪犵狅狊犪狋犻狏犪inacidsoils.犕.
犾狌狆狌犾犻狀犪and犕.狊犪狋犻狏犪belongtothesamegenusandtheirrhizobiacaninfecteachotherandformnodules.
Fieldstudieshaveshownthat犕.犾狌狆狌犾犻狀犪couldgrowinacidsoils,suggestingthatitsrhizobiummightbeacid
tolerant.Therefore,inthecurrentexperiment,rhizobiumstrainsfrom犕.犾狌狆狌犾犻狀犪(R1)and犕.狊犪狋犻狏犪(R2)
wereisolatedfromthefieldsinBeibei,Chongqing,andpropagatedonYMA (YeastMaltextractAgar)solid
culturemedium.Theresponsesofgrowthandactivitiesofantioxidantenzymesofthetwostrainstoaluminum
andaciditywerestudied.Therewerefivealuminumlevels(0,25,50,75,and100μmol/L),andfourpHlev
els(4,5,6,and7).TheODA600ofrhizobiaisolatedfrombothcultivarsreducedsignificantlyafteraluminum
andaciditystress.TheODA600fromR1wassignificantlyhigherthanthatfromR2.Noobviousgrowthofrhi
zobiumfromR2wasobservedatlessthanpH4and5.WithincreasingaluminumconcentrationsSODactivity
ofrhizobiumfromR1decreasedinitialyandthenincreased,whiletheactivitiesofCAT,PODandGRsignifi
cantlydecreased.TheactivitiesofSOD,CATandGRofrhizobiumfromR2hardlychangedunderlowAlcon
centrations,butdecreasedathighAlconcentrations.Alenzymeactivitiesofrhizobiafrom R1andR2de
creasedwithincreasingsoilacidity.Enzymeactivitiesofrhizobiumfrom R1weresignificantlyhigherthan
thosefromR2.Overal,R1hadbettertolerancetoAlandacidthanR2.Furtherstudyisneededtoanalysethe
affinitybetweenRhizobiumstrainsfrom犕.犾狌狆狌犾犻狀犪and犕.狊犪狋犻狏犪.
犓犲狔狑狅狉犱狊:aluminumstress;acidstress;rhizobium;犕犲犱犻犮犪犵狅犾狌狆狌犾犻狀犪;犕.狊犪狋犻狏犪;antioxidantenzymesac
tivity
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