全 文 ：园 艺 学 报 2011，38（8）：1462–1468 http: // www. ahs. ac. cn
Acta Horticulturae Sinica E-mail: yuanyixuebao@126.com
收稿日期：2011–05–17；修回日期：2011–07–19
基金项目：‘十一五’国家科技支撑计划项目（2006BAD07B06-10）；中国农业科学院果树生长发育与品质控制重点开放实验室项目
* 通信作者 Author for correspondence（E-mail：fangjinbao@caas.net.cn）
甜樱桃 MADS box 基因的克隆与表达分析
林苗苗，赵长竹，姜建福，顾 红，陈锦永，方金豹*
（中国农业科学院郑州果树研究所，中国农业科学院果树生长发育与品质控制重点开放实验室，郑州 450009）
摘 要：以甜樱桃‘拉宾斯’（Prunus avium L.‘Lapins’）为试材，采用 RT-PCR 结合 RACE 技术，
克隆获得 1 个与花发育相关的 MADS box 基因，命名为 PaMADS3，其在 GenBank 中的登录号为 HQ229605。
PaMADS3 基因全长 1 095 bp，包含 1 个 723 bp 的开放阅读框，推断其编码 240 个氨基酸。序列分析表明：
PaMADS3 蛋白与拟南芥中的 SEP 蛋白高度同源。组织特异性表达显示 PaMADS3 基因在花瓣、雄蕊、心
皮中表达。实时定量 RT-PCR 分析表明，花芽露绿期的离体枝条经过 15 和 25 ℃处理后，其雌蕊中 PaMADS3
基因在 25 ℃的表达量高于在 15 ℃的表达量。
关键词：甜樱桃；花发育；MADS box；克隆；表达
中图分类号：S 662.5 文献标识码：A 文章编号：0513-353X（2011）08-1462-07

Cloning and Expression Analysis of MADS box Gene in Sweet Cherry
（Prunus avium）
LIN Miao-miao，ZHAO Chang-zhu，JIANG Jian-fu，GU Hong，CHEN Jin-yong，and FANG Jin-bao*
（Key Laboratory for Fruit Tree Growth，Development and Quality Control，Zhengzhou Fruit Research Institute，Chinese
Academy of Agricultural Sciences，Zhengzhou 450009，China）
Abstract：A MADS box gene was isolated from the floral bud of sweet cherry（Prunus avium L.
‘Lapins’）by using RT-PCR and RACE approaches，the gene was named PaMADS3（The accession
number in GenBank：HQ229605）. The full length cDNA of PaMADS3 is 1 095 bp，with an ORF of 723 bp
encoding 240 putative amino acid residues. Sequence analysis indicated that PaMADS3 shared highly
homology with Arabidopsis SEP gene. Tissue specific analysis showed that PaMADS3 expressed in petal，
stamen，and carpel. Real-time RT-PCR revealed that when the shoots were treated with 15 ℃ and 25 ℃，
respectively，the expression of PaMADS3 was increased in carpel under the temperature of 25 ℃.
Key words：sweet cherry；flower development；MADS box；cloning；expression

露地春季高温、设施栽培中管理失误引起的高温，被认为是引起甜樱桃胚珠结构异常、坐果困
难的重要原因（Beppu et al.，2001），这也是甜樱桃在南方地区（如长江三角洲地区）引种试栽的一
大难题（王世平 等，2004）。甜樱桃属于完全花，具有典型的花萼、花瓣、雄蕊、雌蕊四轮结构。
目前通过对模式植物如拟南芥、金鱼草、矮牵牛突变体及其基因功能分析，提出花器官发育的 ABC
模型（Coen & Meyerowitz，1991；Weigel & Meyerowitz，1994）。随着研究的深入，在矮牵牛中发


8 期 林苗苗等：甜樱桃 MADS box 基因的克隆与表达分析 1463

表 1 引物代码与引物序列
Table 1 Primer code and sequence
引物 Primer 序列 Sequence
PaS3F1 5′-ggAgAgTggAgCTgAAgAgg-3′
PaS3R1 5′-ggTATCCAATCTGTAACgTCgg-3′
GSP1 5′-TggAgCTgAAgAggATTgAgA-3′
GSP2 5′-TCTCTggTgCTCCATAgTTgC -3′
PaS3F2 5′-CAATATCAgTggTCACAgCAggTC-3′
PaS3R2 5′-ggCTgCTCTCCATACACACTTTT-3′
EF-1αF 5′-TTCTTgATTgCCACACTTCTCAC-3′
EF-1αR 5′-ggCTCCTTCTCAATCTCCTTACC-3′
现控制胚珠发育的 D 功能基因（Colombo et al.，1995；Rounsley et al.，1995），以及在花瓣、雄蕊、
心皮的正常发育所必须的 SEP1、SEP2、SEP3，即 E 类基因，因此花发育模型被完善为 ABCDE 模
型（Theissen，2001；Eckardt，2003；Ferrario et al.，2003）。
植物花发育过程中的大多数基因都属于 MADS box 基因，MADS box 基因编码的蛋白质作为转
录因子在花器官和果实发育过程中发挥着重要的调控作用（Jack，2004）。研究表明，SEP 类蛋白在
控制胚珠发育中是至关重要的，SEP 基因表达量降低可导致胚珠发育异常（Favaro et al.，2003）。同
时，温度可以影响 MADS box 基因的调控作用，高温或低温引起 MADS box 基因表达量发生变化
（Lozano et al.，1998；Sablowski & Meyerowitz，1998）。为了弄清 MADS box 基因家族对甜樱桃花
芽分化，特别是对雌器官发育的影响，本试验中以甜樱桃品种‘拉宾斯’花芽为材料，采用 RACE
技术克隆 PaMADS3 基因，通过定量 RT-PCR 对其进行了表达分析。
1 材料与方法
1.1 植物材料
以中国农业科学院郑州果树研究所实验园内的 6 年生盛果期‘拉宾斯’甜樱桃（Prunus avium L.
‘Lapins’）为试材，2009 年 9 月取雌蕊分化后期的花芽，进行基因克隆。2010 年 4 月取盛花期花
朵的萼片、花瓣、雄蕊、雌蕊进行组织特异性表达分析。2010 年 3 月取经不同温度处理的离体水培
枝条盛花后雌蕊进行实时 RT-PCR。所有材料均用液氮处理，–80 ℃冻存备用。
1.2 cDNA 制备和 PaMADS3 基因克隆与序列分析
以雌蕊分化后期的花芽为材料，采用
CTAB 方法提取总 RNA，cDNA Synthesis kit
（MBI）合成 cDNA，根据多种植物 MADS box
基因核酸保守区，参照李属植物密码子偏爱性，
设计 PCR 扩增引物 PaS3F1 和 PaS3R1（表 1）。
PCR 反应体系为 25 μL。循环参数为：94 ℃，
10 min；94 ℃，30 s；55 ℃，30 s；72 ℃，1 min；
34 个循环。回收目的片段，连接到 pMD-19T
载体上，转入大肠杆菌 DH5α 菌株，进行克隆、
测序、分析。根据上步所得 cDNA 片段序列，
设计 3′ 端和 5′ 端引物 GSP1 和 GSP2（表 1），按 Clontech 公司 BD SMARTTM RACE cDNA
Amplification kit 操作说明进行反应，回收扩增产物，克隆到 pMD-19T 载体上，转入大肠杆菌 DH5α
菌株，鉴定后进行双向测序、拼接得到 PaMADS3 基因全长。通过 NCBI 中 BLASTx 对 PaMADS3
进行同源性搜索与比对，利用 Clustal X 软件进行同源性分析。使用 MEGA 软件 NJ 法构建系统发育
树（Saitou & Nei，1987）。
1.3 PaMADS3 组织特异性分析
提取萼片、花瓣、雄蕊和雌蕊总 RNA，cDNA Synthesis Kit（MBI）合成 cDNA。所用引物为
PaS3F1 和 PaS3R1（表 1），采用内参基因 EF-1α 为阳性对照。PCR 反应体系为 25 μL。循环参数为：
94 ℃，10 min；94 ℃，30 s；55 ℃，30 s；72 ℃，45 s；34 个循环。
1464 园 艺 学 报 38 卷
1.4 温度处理对 PaMADS3 基因表达的影响试验
取花芽露绿期（Side Green Phase）的枝条进行水培，白天（9：00—17：00）分别置于 25 ℃和
15 ℃两个培养箱中，夜晚放于室外园中（17：00—次日 9：00 每天整点时刻的温度平均值 11 ℃）。
以试验园中露地生长的为对照（9：00—17：00 每天整点时刻的温度平均值 15 ℃）。盛花期（即在
15 ℃、25 ℃分别处理 11 d 和 7 d）测量不同温度处理的花器大小，使用 SAS 软件的 GLM 程序统计
分析，采用 Duncan’s 检验。
盛花期取不同温度处理的雌蕊提取 RNA。采用 PrimeScriptRT reagent Kit with gDNA Eraser
（TaKaRa）反转录成单链 cDNA，进行实时 RT-PCR。设计引物 PaS3F2 和 PaS3R2（表 1），定量 PCR
采用 SYBR Premix Ex TaqTMⅡ kit（TaKaRa）。反应体系为：10 μL SYBR Premix Ex TaqTMⅡ（2 ×）
mix，0.6 μL forward primer，0.6 μL reverse primer，2 μL cDNA，6.8 μL H2O。反应条件为：95 5 s℃
（1 个循环）；95 5 s℃ ，60 30 s℃ （40 个循环）。以 EF-1α 为内参，在 Roche Lignt Cycler 2.0 荧光
定量 PCR 仪上反应，进行 3次重复。为了检测RNA样品中是否存在 DNA污染，每个样品取 1 μL RNA
作为模板进行 PCR，方法同上。采用 2-ΔΔCT 法进行定量分析（Livak & Schmittgen，2001）。
2 结果与分析
2.1 基因克隆及全序列分析
用 RT-PCR 方法在‘拉宾斯’甜樱桃花芽中克隆到 642 bp 的中间片段，在 NCBI 上 BLAST 分
析表明该片段与多种植物的 MADS box 基因有较高同源性，具有 MADS box 典型结构，证明该片段
为所需的目的片段。采用 RACE 技术，分别获得 3′端和 5′端目的片段，序列拼接得到 1 095 bp 的全
长基因（图 1），命名为 PaMADS3，GenBank 登录号为 HQ229605。

图 1 PaMADS3 拼接全长和推导的氨基酸序列
方框中为特异引物 PaS3F1 和 PaS3R1，箭头部分为 RACE 引物 GSP1 和 GSP2。
Fig. 1 The full length of cDNA and deduced amino acid
The boxes are specific primers PaS3F1 and PaS3R1，the arrows are RACE primers GSP1 and GSP2.
8 期 林苗苗等：甜樱桃 MADS box 基因的克隆与表达分析 1465

2.2 PaMADS3 氨基酸同源性分析
PaMADS3 基因含有 1 个 723 bp 的 ORF，编码 240 个氨基酸（图 1），分子量 27.5 kD，等电点
8.79，是一个碱性蛋白。
利用 NCBI 中的 BLASTx 工具把 PaMADS3 核酸序列翻译成氨基酸序列并进行同源性比对（图
2），结果表明，PaMADS3 与 ABCDE 模型中的 E 类蛋白有较高的同源性，其中与桃（Prunus persica）
PrpMADS5 蛋白的同源性高达 99%，与苹果（Malus domestica）MdMADS18 蛋白的同源性为 92%，
与葡萄（Vitis vinifera）VvMADS4 蛋白的同源性为 90%。


图 2 PaMADS3 蛋白与其他植物 MADS box 蛋白的序列比对
GenBank 登录号：拟南芥 SEP3 NP850953；金鱼草 DEFH72 CAA64742J；金鱼草 DEFH200 CAA64743；
葡萄 VvMADS4 AAM21344；柑橘 CitMADS3 BAF34912；
桃 PrpMADS5 ABO27621；苹果 MdMADS18 ADL36740。
Fig. 2 Aligment of PaMADS3 protein with other MADS box proteins
The GenBank accession No. Arabidopsis thaliana SEP3：NP850953；Antirrhinum majus DEFH72：CAA64742J；DEFH200：CAA64743；
Vitis vinifera VvMADS4：AAM21344；Citrus CitMADS3：BAF34912；Prunus percica PrpMADS5 ABO27621；
Malus domestica MdMADS18 ADL36740.

2.3 PaMADS3 蛋白的系统发育分析
选取 MADS box 基因的 4 个亚家族（即 A、B、C/D、E 类基因家族）中的典型 MADS box 基因，
利用 MEGA 软件，构建系统进化树（图 3）。
系统进化关系分析表明：PaMADS3 编码蛋白与 ABCDE 模型中的 SEP-like（E 类）基因编码蛋
白同源性较高，与金鱼草（Antirrhinum majus）中的 DEFH72 编码蛋白亲缘关系最近。PaMADS3 应
属于 E 类 MADS box 基因。
1466 园 艺 学 报 38 卷

图 3 PaMADS3 蛋白的系统进化分析
接点部位的值代表 1 000 次重复的靴带值。
Fig. 3 Phylogenetic tree of PaMADS3 protein sequences with known MADS box protein sequences
Values at nodes indicate bootstrap percentages.

2.4 PaMADS3 的组织特异性分析
组织特异性分析表明，PaMADS3 在花瓣、雄蕊、心皮中表达，在萼片中不表达（图 4）。PaMADS3
基因的表达情况与同源性较高的拟南芥 SEP3 各组织的表达情况一致，进一步说明其应属于 E 类基
因。
图 4 ‘拉宾斯’甜樱桃 PaMADS3 基因 RT-PCR 表达分析
1. 萼片；2. 花瓣；3. 雄蕊；4. 心皮。
Fig. 4 RT-PCR analysis of PaMADS3 gene in‘Lapins’sweet cherry
1. Sepal；2. Petal；3. Stamen；4. Carpel.

2.5 温度处理对 PaMADS3 基因表达的影响
25 ℃处理的枝条花期明显早于 15 ℃处理（图 5），但 25 ℃处理的枝条花的花梗、花瓣、雌蕊
都显著小于 15 ℃处理的。15 ℃和 25 ℃处理的花器显著小于露地植株活体枝条上的花器（表 2）。
在经过 15 ℃和 25 ℃温度处理后，PaMADS3 的表达量发生变化，在 25 ℃时 PaMADS3 的表
达量大于在 15 ℃时 PaMADS3 的表达量，但都小于在露地植株活体枝条上花中 PaMADS3 的表达量
（图 6）。
8 期 林苗苗等：甜樱桃 MADS box 基因的克隆与表达分析 1467

表 2 温度处理对花器大小的影响
Table 2 Effects of temperature treatment on flower dimension

处理
Treatment
花梗/cm
Peduncle
花瓣/cm
Petal
雌蕊/cm
Pistil
25 ℃ 0.729 ± 0.181 c 0.767 ± 0.149 c 0.943 ± 0.134 c
15 ℃ 1.105 ± 0.235 b 1.115 ± 0.264 b 1.141 ± 0.158 b
露地
Field
3.024 ± 0.434 a 1.607 ± 0.120 a 1.470 ± 0.118 a

图 6 ‘拉宾斯’甜樱桃 PaMADS3 基因在不同温度下的
实时定量 RT-PCR 分析
Fig. 6 Expression analysis of PaMADS3 by real-time
RT-PCR in‘Lapins’sweet cherry treated
with different temperature

图 5 温度处理对花期的影响
Fig. 5 Effects of temperature treatment on florescence

3 讨论
本试验中依据 MADS box 基因家族在 MADS 区域的高度保守性序列设计引物，采用 RT-PCR 和
RACE 的技术快速分离 MADS box 基因，分离出一个与花发育相关的 MADS box 基因，其推测的蛋
白质具有完整的 MADS 区和 K 区，表明他们是典型的 MADS box 基因。同源分析的结果表明，
PaMADS3 与桃 PrpMADS5 基因、葡萄 VvMADS4 基因有较高的同源性，桃 PrpMADS5 可使开花时
间提前（Xu et al.，2008），葡萄 VvMADS4 基因在花和果实中都表达，并且在果实中的表达量非常
高（Paul et al.，2002）。本试验中的 PaMADS3 在花瓣、雄蕊、心皮 3 轮中表达（图 3），这与 SEP
类基因的表达模式一致（Eckardt，2003）。
研究表明，在 15 ℃和 25 ℃的温度处理后，25 ℃的开花时间明显提前，但花器官变小，胚珠发
育异常（Beppu et al.，2001）。本研究中不同温度处理是在培养箱中利用离体枝条进行的，从花器官
发育情况看，15 ℃处理的比 25 ℃处理的花器官要大，这与 Beppu 等（2001）的报道一致。但在温
度相近时，露地栽培的植株上花器明显大于水培离体枝条上的，结果表明，除温度之外，尚有其他
因素影响花器的发育。
在已有报道中，番茄 A 类基因 TM4、B 类基因 TM5 和 TM6、C 类基因 TGL1 在低温条件下的
表达量增多（Lozano et al.，1998）。在本研究中，离体枝条上 PaMADS3 mRNA 表达有随温度升高
的趋势，即 25 ℃处理的比 15 ℃处理的表达量大。基因的表达量与温度之间的关系与以往的报道不
1468 园 艺 学 报 38 卷
一致，原因可能是不同基因的表达对温度变化的响应不尽相同。并且，研究中还观察到，在相同温
度条件下，PaMADS3 mRNA 在离体培养枝条上的表达和露地栽培的并不一样，说明，除温度之外，
还有其他因素对基因的表达产生重要影响。
本试验中分离出 MADS box 基因家族中的一个基因，有待对其功能进一步验证，其它家族成员
的克隆工作也正在进行中，以期较全面了解 MADS box 基因对花芽分化、萌动期至盛花期雌器官的
继续发育的调控作用。

References
Beppu K，Suehara T，Kataoka I. 2001. Embryo sac development and fruit set of Satonishiki sweet cherry as affected by temperature，GA3 and
paclobutrazol. Journal of Japanese Society for Horticultural Science，70 (2)：157–162 .
Coen E S，Meyerowitz E M. 1991. The war of the whorls：Genetic interactions controlling a flower development. Nature，353 (6339)：31–37.
Colombo L，Franken J，Koetje E，van Went J，Dons H J M，Angenent G C，van Tunen A J. 1995. The petunia MADS box gene FBPⅡ determines
ovule identity. Plant Cell，7 (11)：1859–1868.
Eckardt N A. 2003. MADS monsters：Controlling floral organ identity. Plant Cell，15：803–805.
Favaro R，Pinyopich A，Battaglia R，Kooiker M，Borghi L，Ditta G，Yanofsky M F，Kater M M，Colombo L. 2003. MADS-box protein complexes
control carpel and ovule development in Arabidopsis. Plant Cell，15：2603–2611.
Ferrario S，Immink R G，Shchennikova A，Busscher-Lange J，Angenent G C. 2003. The MADS-box gene FBP2 is required for SEPALLATA function
in petunia. Plant Cell，15 (4)：914–925.
Jack T. 2004. Molecular and genetic mechanisms of floral control. Plant Cell，16：1–17.
Livak K J，Schmittgen T D. 2001. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCT method. Methods，25
(4)：402–408.
Lozano R，Angosto T，Gomez P，Payan C，Capel J，Huijser P，Salinas J，Martinez-Zapater J M. 1998. Tomato flower abnormalities induced by
low temperatrues are associated with changes of expression of MADS box genes. Plant Physiol，17：91–100.
Paul K Boss，Elisabetta Sensi，Chi Hua，Chris Davies，Mark R Thomas. 2002. Cloning and characterisation of grapevine（Vitis vinifera L.）MADS-
box genes expressed during inflorescence and berry development. Plant Science，162：887–895.
Rounsley S D，Ditta G S，Yanofsky M F. 1995. Diverse roles for MADS-box genes in Arabidopsis development. Plant Cell，7：1259–1269.
Sablowski R W M，Meyerowitz E W. 1998. Temperature-sensitive splicing in the floral homeotic apetala3-1 mutant. Plant Cell，10：1453–1463.
Saitou N，Nei M. 1987. The neighbor-jorning method：A new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular Biology and Evolution，4
(10)：406–425.
Theissen G. 2001. Development of floral organ identity：Stories from the MADS house. Current Opinion of Plant Biology，4 (1)：75–85.
Wang Shi-ping，Yuan Cai-xia，Dai Yun-ting，Shu Huan，Yang Tian-yi，Zhang Cai-xi. 2004. Development of flower organs in sweet cherry in Shanghai
area. Acta Horticulturae Sinica，31 (3)：357–359. (in Chinese)
王世平，袁彩娟，戴韵婷，舒 缓，杨天仪，张才喜. 2004. 上海地区栽培的欧洲甜樱桃花器官发育的观察. 园艺学报，31 (3)：357–
359.
Weigel D，Meyerowitz E M. 1994. The ABCs of floral homeotic genes. Cell，78：203–209.
Xu Yong，Zhang Lin，Xie Hua，Zhang Yan-qiu，Oliveira M M，Ma Rong-cai. 2008. Expression analysis and genetic mapping of three
SEPALLATA-Like genes from peach[Prunus persica（L.）Batsch]. Tree Genetics & Genomes，4 (4)：693–703.