全 文 ：植物科学学报　 ２０１５ꎬ ３３(１): ５３~６０
Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｊｏｕｒｎａｌ
　 　 ＤＯＩ:１０􀆰 １１９１３ / ＰＳＪ􀆰 ２０９５－０８３７􀆰 ２０１５􀆰 １００５３
根尖分生组织细胞核大小:
一个可能用于植物入侵性评估的新指标
郭水良１ꎬ 陈国奇２
(１. 上海师范大学生命与环境科学学院ꎬ 上海 ２００２３４ꎻ ２. 广东农业科学院植物保护研究所ꎬ 广州 ５１０６４０)
摘　 要: 植物的入侵性与 ＤＮＡ Ｃ￣值之间存在统计学上的负相关关系ꎮ 在这种关系中ꎬ 细胞和细胞核大小可能起
关键作用ꎬ 因此我们推测分生组织细胞核大小在评估植物或至少某些分类群的入侵性方面有潜在的应用价值ꎮ
本研究以豌豆属(Ｖｉｃｉａ)５种入侵能力不同的植物为材料ꎬ 观察了它们的分生组织染色体、 细胞核和细胞大小以
及有丝分裂速率ꎬ 同时测定了种子产量、 单位种子干重产生的幼苗生物量(近似于幼苗相对生长速率)和生活史
的长短ꎮ 结果显示根尖分生区细胞核较小的植物细胞较小ꎬ 细胞分裂速率快ꎬ 单位种子干重产生的幼苗生物量
高ꎬ 种子小而数量多ꎬ 生活史短ꎮ 这些结果表明 ５种豌豆属植物中分生组织细胞核较小的倾向于具有较高的入
侵性ꎬ 其原因主要是: (１)能够产生小而多的种子ꎻ (２)具有较高的有丝分裂速率、 相对较快的幼苗生长速率和
短的生活史ꎮ 分生组织细胞核大小影响植物入侵性与 ＤＮＡ Ｃ￣值的作用是一致的ꎬ 在植物入侵性评估模型中ꎬ 分
生组织细胞核大小在评估植物入侵性方面可能具有潜在的应用价值ꎬ 而且其测定方便、 费用低廉ꎮ 但是ꎬ 这一
指标的应用范围和条件需要进一步筛选ꎮ
关键词: 分生组织ꎻ 细胞学指标ꎻ 入侵性ꎻ 种子产量ꎻ 世代时间
中图分类号: Ｑ１６　 　 　 　 　 文献标识码: Ａ　 　 　 　 　 文章编号: ２０９５￣０８３７(２０１５)０１￣００５３￣０８
　 　 　 收稿日期: ２０１４￣０５￣３１ꎬ 退修日期: ２０１４￣０６￣２０ꎮ
　 基金项目: 国家自然科学基金项目(３１０７０４７９)ꎻ 上海市科委基础研究重点项目(１０ＪＣ１４１２１００)ꎮ
　 作者简介: 郭水良(１９６４－)ꎬ 男ꎬ 教授ꎬ 主要从事植物分类与生态学研究(Ｅ￣ｍａｉｌ: ｇｓｇ＠ｓｈｎｕ􀆰 ｅｄｕ􀆰 ｃｎ)ꎮ
Ｒｏｏｔ Ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ Ｋａｒｙｏｎ Ｓｉｚｅ: Ｐｏｓｓｉｂｌｅ Ｎｅｗ Ｉｎｄｅｘ
ｉｎ ｔｈｅ Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ
ＧＵＯ Ｓｈｕｉ￣Ｌｉａｎｇ１ꎬ ＣＨＥＮ Ｇｕｏ￣Ｑｉ２
(１. Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｌｉｆｅ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｎｏｒｍａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ Ｓｈａｎｇｈａｉ ２００２３４ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ
２. Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎꎬ Ｇｕａｎｇｄｏｎｇ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｇｕａｎｇｚｈｏｕ ５１０６４０ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｍａｎｙ ｒｅｐｏｒｔｓ ｈａｖｅ ｆｏｕｎｄ ａ ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌｌｙ ｎｅｇａｔｉｖｅ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ
ａｎｄ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓꎬ ｗｉｔｈ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｐｌａｙｉｎｇ ａ ｋｅｙ ｒｏｌｅ ｉｎ ｔｈｉｓ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ
ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｒｅｓｅａｒｃｈ. Ｗｅ ｈｙｐｏｔｈｅｓｉｚｅｄ ｔｈａｔ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｃｏｕｌｄ ｂｅ
ａｐｐｌｉｅｄ ａｓ ａｎ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｉｎｄｅｘ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｆｏｒ ａｔ ｌｅａｓｔ ｓｏｍｅ ｔａｘａ. Ｔｏ ｔｅｓｔ ｔｈｉｓ
ｈｙｐｏｔｈｅｓｉｓꎬ ｗｅ ｅｘａｍｉｎｅｄ ｔｈｅ ｓｉｚｅｓ ｏｆ ｋａｒｙｏｎｓꎬ ｃｅｌｌｓꎬ ａｎｄ ｍｉｔｏｓｉｓ ｒａｔｅｓ ｏｆ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ａｎｄ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓꎬ ａｎｄ ａｌｓｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ ｔｈｅｉｒ ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎꎬ
ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｗｅｉｇｈｔ / ｄｒｙ ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔ ( ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅ)ꎬ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｌｉｆｅ
ｓｐａｎｓ. Ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｐｌａｎｔｓ ｗｉｔｈ ｓｍａｌｌｅｒ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎｓ ｗｅｒｅ ｐｒｏｎｅ ｔｏ ｈａｖｅ
ｓｍａｌｌｅｒ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓꎬ ｋａｒｙｏｎｓꎬ ｃｅｌｌｓꎬ ａｎｄ ｓｅｅｄｓꎬ ｑｕｉｃｋｅｒ ｍｉｔｏｓｉｓꎬ ｈｉｇｈｅｒ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ
ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅꎬ ｓｈｏｒｔｅｒ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｔｉｍｅꎬ ａｎｄ ｐｒｏｄｕｃｅ ｍｏｒｅ ａｎｄ ｓｍａｌｌｅｒ ｓｅｅｄｓ. Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ
ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｐｌａｎｔｓ ｗｉｔｈ ｓｍａｌｌｅｒ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎｓ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｈｉｇｈｅｒ
ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓꎬ ｗｈｉｃｈ ｍａｙ ｂｅ ｅｘｐｌａｉｎｅｄ ｂｙ ｔｗｏ ａｓｐｅｃｔｓ: (１) ｓｍａｌｌｅｒ ｓｅｅｄｓ ｗｉｔｈ ｍｕｃｈ ｈｉｇｈｅｒ
ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎꎻ ａｎｄ ( ２) ｈｉｇｈｅｒ ｒａｔｅｓ ｏｆ ｃｅｌｌ ｄｉｖｉｓｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ｗｉｔｈ ｓｈｏｒｔｅｒ
ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｔｉｍｅｓ. Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｏｎ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｃｏｉｎｃｉｄｅｄ ｗｉｔｈ
ｔｈａｔ ｏｆ ｔｈｅ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ. Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｆｏｒ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｍｏｄｅｌｓꎬ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ
ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｈａｓ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｖａｌｕｅ ｉｎ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｄｕｅ ｔｏ ｉｔｓ ｃｏｎｖｅｎｉｅｎｃｅ ａｎｄ ｌｏｗｅｒ
ｅｘｐｅｎｓｅꎬ ｔｈｏｕｇｈ ｍｏｒｅ ｗｏｒｋ ｉｓ ｎｅｅｄｅｄ ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｉｔｓ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｓｃｏｐｅ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｏｌｏｇｙ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｔｉｓｓｕｅｓꎻ Ｃｙｔｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｎｄｉｃｅｓꎻ Ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓꎻ Ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎꎻ Ｇｅｎｅ￣
ｒａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ
　 　 Ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｏｎ ｐｏｓｅｓ ｓｅｒｉｏｕｓ ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ ｉｎ
ｔｈｅ ｗｏｒｌｄ ｔｏｄａｙ. Ｔｈｏｕｇｈ ｍａｎｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｉｎｄｉｃｅｓꎬ
ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ[１]ꎬ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｒａｉｔｓꎬ
ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ ａｎｄ ｇｅｎｏｍｅ ｓｉｚｅ[２ꎬ３] ａｎｄ ｇｅｎｅ ｅｘ￣
ｐｒｅｓｓｉｏｎ[４]ꎬ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｏ ｅｖａｌｕａｔｅ
ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓꎬ ｗｅ ｓｔｉｌｌ ｈａｖｅ ｎｏ ｇｅｎｅｒａｌ ｔｏｏｌ
ｔｏ ｐｒｅｄｉｃｔ ｗｈｉｃｈ ｐｌａｎｔｓ ａｒｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｉｎｖａｄｅｒｓ.
Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｉｔ ｉｓ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｗｈｉｃｈ ｉｎｄｉ￣
ｃｅｓ ａｒｅ ｃｌｅａｒｌｙ ａｎｄ ｂｒｏａｄｌｙ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｐｌａｎｔ
ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ.
Ｗｅｅｄ ｐｌａｎｔｓ ａｒｅ ｍａｉｎｌｙ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ ｈｕｍａｎ￣
ｄｉｓｔｕｒｂｅｄ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓ ａｎｄ ａｒｅ ｎｏｔ ｐｕｒｐｏｓｅｌｙ
ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ[５] . Ｗｅｅｄｓ ｅｘｈｉｂｉｔ ｍａｎｙ ｔｒａｉｔｓ ｔｈａｔ ａｌｌｏｗ
ｔｈｅｍ ｔｏ ｉｎｖａｄｅ ｉｎｔｏ ｈｕｍａｎ￣ｄｉｓｔｕｒｂｅｄ ｅｃｏｓｙｓｔｅｍｓ
ｅａｓｉｌｙ. Ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｓｈｏｗｎ ｔｈａｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｉｓ
ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｗｅｅｄｉｎｅｓｓ[６ꎬ７] . Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ ｉｎｖａｓｉｖｅ
Ｎｏｒｔｈ ａｎｄ Ｓｏｕｔｈ Ａｍｅｒｉｃａｎ ｓｐｅｃｉｅｓ ｎａｔｕｒａｌｉｚｅｄ ｉｎ
Ｆｒａｎｃｅ (２７４ ｓｐｅｃｉｅｓ) ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｄｉｖｉｄｅｄ ｉｎｔｏ ａｇｒｉ￣
ｃｕｌｔｕｒａｌ ｗｅｅｄｓ ａｎｄ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｗｅｅｄｓ ａｃｃｏｒ￣
ｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅｉｒ ｈａｂｉｔａｔｓ ｉｎ Ｆｒａｎｃｅ[８] . Ｓｕｔｈｅｒｌａｎｄ
(２００４) ｓｔｕｄｉｅｄ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｂｙ ｏｂｓｅｒｖｉｎｇ
ｔｈｅ ｔｒａｉｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｗｅｅｄｓ ａｎｄ ｎｏｎ￣
ｗｅｅｄｓ ｉｎ Ｎｏｒｔｈ Ａｍｅｒｉｃａ [９] .
Ｇｅｎｅｒａｌｌｙ ｓｐｅａｋｉｎｇꎬ ｗｅｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｈａｖｅ ｈｉｇ￣
ｈｅｒ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ[５ꎬ８]ꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｓｕｃｃｅｓｓ ｏｆ ｍａｎｙ
ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｗｅｅｄｓ ｍａｙ ｂｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｓｅｖｅｒａｌ
ｔｒａｉｔｓ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａ ｌｏｗ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ (ａｍｏｕｎｔ
ｏｆ ＤＮＡ ｉｎ ｔｈｅ ｕｎｒｅｐｌｉｃａｔｅｄ ｇａｍｅｔｉｃ ｎｕｃｌｅｕｓ ).
Ｔｈｅｓｅ ｔｒａｉｔｓ ｉｎｃｌｕｄｅ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｉｎｇꎬ ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇꎬ ａｎｄ
ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ｑｕｉｃｋｌｙ ｗｉｔｈ ｍａｎｙ ｓｍａｌｌ ｓｅｅｄｓ[１０ꎬ１１] .
Ｔｈｅｒｅ ａｒｅ ｍａｎｙ ｒｅｐｏｒｔｓ ｏｎ ｔｈｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｏｆ ＤＮＡ
Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ ｔｏ ｅｖａｌｕａｔｅ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ[１０ꎬ１２－１４] .
ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ ａｎｄ ｇｅｎｏｍｅ ｓｉｚｅ ｂｏｔｈ ｈａｖｅ ｓｉｇｎｉｆｉ￣
ｃａｎｔ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓꎬ ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｉｎ
ｈｅｒｂｓꎬ ｄｉｃｏｔｓꎬ ｍｏｎｏｃｏｔｓꎬ ｐｅｒｅｎｎｉａｌｓꎬ ｎｏｎ￣ｐｅ￣
ｒｅｎｎｉａｌｓꎬ ｄｉｐｌｏｉｄｓꎬ ｐｏｌｙｐｌｏｉｄｓꎬ ａｎｄ ｔｈｅ Ｃｏｍｐｏｓｉ￣
ｔａｅ ａｎｄ Ｐｏａｃｅａｅ ｆａｍｉｌｉｅｓꎬ ｂｕｔ ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｉｎ
ｔｒｅｅｓ ｏｒ ｔｈｅ Ｆａｂａｃｅａｅ ｆａｍｉｌｙ [３]ꎬ ｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅｒｅ ａｒｅ
ｓｏｍｅ ｅｘｃｅｐｔｉｏｎｓ ｉｎ ｓｏｍｅ ｔａｘａ[１５] .
Ｗｉｔｈ ｌｏｗｅｒ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓꎬ ｐｌａｎｔｓ ｇｅｎｅｒａｌｌｙ
ｈａｖｅ ｓｍａｌｌｅｒ ｋａｒｙｏｎｓ ａｎｄ ｃｅｌｌｓ[１６－２０] . Ｔｈｉｓ ｔｅｎｄｅｎｃｙ
ｍａｋｅｓ ｐｌａｎｔｓ ｍｏｒｅ ｈｉｇｈｌｙ ｉｎｖａｓｉｖｅ ｄｕｅ ｔｏ: １) ｓｍａｌ￣
ｌｅｒ ｓｅｅｄｓ ａｎｄ ｈｉｇｈｅｒ ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎꎻ ａｎｄ ２) ｓｈｏｒ￣
ｔｅｒ ｎｅｗ ｃｅｌｌ ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｔｉｍｅꎬ ｗｈｉｃｈ ｍａｙ ａｃｃｅ￣
ｌｅｒａｔｅ ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅ ａｎｄ ｓｈｏｒｔｅｎ ｌｉｆｅ ｓｐａｎ[１２ꎬ１３ꎬ２１] .
Ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｉｓ ｈｙｐｏｔｈｅｓｉｓꎬ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅ￣
ｔｗｅｅｎ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ ａｎｄ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｉｓ
ｌｉｎｋｅｄ ｔｏ ｋａｒｙｏｎ ａｎｄ ｃｅｌｌ ｓｉｚｅ. Ｉｎ ｏｔｈｅｒ ｗｏｒｄｓꎬ
ｋａｒｙｏｎ ａｎｄ ｃｅｌｌ ｓｉｚｅ ｐｌａｙ ａ ｋｅｙ ｒｏｌｅ ｉｎ ｔｈｅ ｍｅｃｈａ￣
ｎｉｓｍ ｏｆ ｈｏｗ ｔｈｅ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ ａｆｆｅｃｔｓ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａ￣
ｓｉｖｅｎｅｓｓ. Ｔｈｉｓ ｂｅｇｓ ｔｈｅ ｑｕｅｓｔｉｏｎ ｏｆ ｗｈｙ ｋａｒｙｏｎ
ａｎｄ ｃｅｌｌ ｓｉｚｅ ｉｓ ｎｏｔ ｕｓｅｄ ｔｏ ｅｖａｌｕａｔｅ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａ￣
ｓｉｖｅｎｅｓｓ ｉｎ ｌｉｅｕ ｏｆꎬ ｏｒ ａｔ ｌｅａｓｔ ａｓ ａ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ
ｔｏꎬ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ.
Ｍｏｒｅｏｖｅｒꎬ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ｐｌａｎｔｓ ａｒｅ ｍａｉｎ￣
ｌｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｂｙ ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ[１２ꎬ２２] . Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ
ｔｈｅ ｖａｌｕｅｓ ｇａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｍｅａｓｕｒｉｎｇ ｓｔｒａｔｅ￣
ｇｉｅｓꎬ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｄｙｅｓ ａｎｄ ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓꎬ ｃａｎ
ｖａｒｙ[２３ꎬ２４] . Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｅｒｓ ａｒｅ ｅｘ￣
ｐｅｎｓｉｖｅ ａｎｄ ｔｈｅ ｍｅａｓｕｒｉｎｇ ｐｒｏｃｅｓｓ ｉｓ ｔｉｍｅ￣ｃｏｎ￣
ｓｕｍｉｎｇ. Ｃｏｎｖｅｒｓｅｌｙꎬ ｔｈｅ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｏｆ ｍｅｒｉｓｔｅ￣
ｍａｔｉｃ ｃｅｌｌｓ ｉｓ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｓｔａｂｌｅ ａｎｄ ｍｕｃｈ ｍｏｒｅ
ｃｏｎｖｅｎｉｅｎｔ ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ.
Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｔｅｓｔｉｎｇ ａｎｄ ｃｏｍｐａｒｉｎｇ ｔｈｅ ｃｏｒｒｅ￣
ｌａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ ａｎｄ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｉｓ
ｉｍｐｏｒｔａｎｔꎬ ａｎｄ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ ｏｎ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ
ｂｅｔｗｅｅｎ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ａｎｄ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ
ｕｓｉｎｇ ｒｅｌａｔｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｒｅ ｎｅｅｄｅｄ. Ｗｅ ｆｏｕｎｄ ｆｉｖｅ
Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｏ ｂｅ ｉｄｅａｌ ｍａｔｅｒｉａｌｓ. Ｖｉｃｉａ ｓａｔｉｖａ
Ｌ.ꎬ Ｖ. ｔｅｔｒａｓｐｅｒｍａ (Ｌ.) Ｓｃｈｒｅｂｅｒꎬ ａｎｄ Ｖ. ｈｉｒｓｕｔａ
４５ 植 物 科 学 学 报 第 ３３卷　
(Ｌ.) Ｓ. Ｆ. Ｇｒａｙ ａｒｅ ｔｈｒｅｅ ｗｉｄｅｌｙ ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ ｗｅｅｄ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｃｈｉｎａꎬ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ ｉｎ ｍａｎｙ ｏｔｈｅｒ
ｃｏｕｎｔｒｉｅｓ[２５ꎬ２６]ꎬ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ (ｐｇ) ａｒｅ
１􀆰 ９０ꎬ ３􀆰 ２５ꎬ ａｎｄ ４􀆰 ２５ꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ[２７] . Ｖｉｃｉａ
ｔｅｎｕｉｆｏｌｉａ Ｒｏｔｈ. ｉｓ ｎｏｔ ｃｌｅａｒｌｙ ｉｎｖａｓｉｖｅ[２５ꎬ２６]ꎬ ａｎｄ
ｉｔｓ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ ｉｓ ８􀆰 ０ ｐｇ[２７] . Ｖｉｃｉａ ｆａｂａ Ｌ. ｉｓ ａ
ｈｉｇｈｌｙ ｄｏｍｅｓｔｉｃａｔｅｄ ａｎｄ ｇｌｏｂａｌｌｙ ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ ｃｒｏｐ
ｓｐｅｃｉｅｓ[２５ꎬ２６]ꎬ ａｎｄ ｉｔｓ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ ｉｓ １１􀆰 ９０ ｐｇ[２７] .
Ｔｈｅｉｒ ｒａｎｋｓ ｏｆ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ (ｏｒ ｗｅｅｄｉｎｅｓｓ) ａｒｅ
ｒｅｖｅｒｓｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅｉｒ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ.
Ｂｙ ｅｘａｍｉｎｉｎｇ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅꎬ ｃｅｌｌ
ｓｉｚｅꎬ ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎꎬ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈꎬ
ａｎｄ ｌｉｆｅ ｓｐａｎｓ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｔｈｅｎ ａｎａ￣
ｌｙｚｉｎｇ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｗｉｔｈ
ｔｈｅｓｅ ｉｎｄｉｃｅｓꎬ ｗｅ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ ｔｈｅ ｆｅａｓｉｂｉｌｉｔｙ ｏｆ
ｗｈｅｔｈｅｒ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅꎬ ｉｎ ｌｉｅｕ ｏｆ ＤＮＡ
Ｃ￣ｖａｌｕｅｓꎬ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ａｐｐｌｉｅｄ ａｓ ａｎ ｉｎｄｅｘ ｉｎ ｔｈｅ ａｓ￣
ｓｅｓｓｍｅｎｔ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ.
１　 Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ
１􀆰 １　 Ｓｅｅｄ ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔ
Ｉｎ Ａｐｒｉｌ ２００７ꎬ ｓｅｅｄｓ ｏｆ Ｖ. ｓａｔｉｖａꎬ Ｖ. ｔｅｔｒａｓ￣
ｐｅｒｍａꎬ Ｖ. ｈｉｒｓｕｔａꎬ ａｎｄ Ｖ. ｆａｂａ ｗｅｒｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ
ｆｒｏｍ ａ ｓｕｂｕｒｂ ｏｆ Ｊｉｎｈｕａ Ｃｉｔｙꎬ Ｚｈｅｊｉａｎｇꎬ Ｃｈｉｎａ
(２９°０７′０６″Ｎꎬ １１９°３７′４７″ Ｅꎬ ａｌｔ. ４５􀆰９ ｍ) ａｎｄ Ｖ.
ｔｅｎｕｉｆｏｌｉａ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｉｎ Ａｕｇｕｓｔ ２００６ ｉｎ
Ｓｈｉｈｅｚｉꎬ Ｘｉｎｊｉａｎｇꎬ Ｃｈｉｎａ(４４°２０′５０″ Ｎꎬ ８５°５８′５７″
Ｅꎬ ａｌｔ. ４００ ｍ ) . Ａｌｌ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ａｉｒ￣ｄｒｉｅｄ ａｎｄ
ｓｔｏｒｅｄ ｉｎ ｐａｐｅｒ ｂａｇｓ ａｔ ｒｏｏｍ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｉｎ ｔｈｅ
ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ａｔ Ｚｈｅｊｉａｎｇ Ｎｏｒｍａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ. Ｏｎｅ
ｈｕｎｄｒｅｄ ｍａｔｕｒｅ ｓｅｅｄｓ ｗｉｔｈ ｆｉｖｅ ｒｅｐｌｉｃａｔｅｓ ｆｏｒ
ｅａｃｈ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｓｅｌｅｃｔｅｄ ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｓｅｅｄ
ｗｅｉｇｈｔ. Ｔｈｅ ｖａｌｕｅｓ ｗｅｒｅ ｃｈａｎｇｅｄ ｉｎｔｏ １０００￣ｓｅｅｄ
ｗｅｉｇｈｔｓ.
１􀆰 ２ 　 Ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａｓ ｏｆ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎꎬ
ｃｅｌｌｓꎬ ａｎｄ ｍｉｔｏｓｉｓ ｒａｔｅ
Ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｐｌａｃｅｄ ｉｎｔｏ ａ ９ ｃｍ Ｐｅｔｒｉ ｄｉｓｈ
ｗｉｔｈ ｆｉｖｅ ｐｉｅｃｅｓ ｏｆ ｆｉｌｔｅｒ ｐａｐｅｒ ａｎｄ ９ ｍＬ ｏｆ ｄｅｉｏｎｉ￣
ｚｅｄ ｗａｔｅｒ. Ｔｈｅ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｎｏｔ ｓｕｂｍｅｒｇｅｄ ｂｕｔ
ｉｍｂｉｂｅｄ ｏｎ ｍｏｉｓｔｅｎｅｄ ｐａｐｅｒ. Ｔｈｅ ｄｉｓｈ ｗａｓ
ｓｅａｌｅｄ ｗｉｔｈ Ｐａｒａｆｉｌｍ ａｎｄ ｔｈｅｎ ｐｌａｃｅｄ ｉｎ ａ ｇｒｏｗｔｈ
ｃｈａｍｂｅｒ ｗｉｔｈ ｃｏｎｓｔａｎｔ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｕｎｔｉｌ ｓｅｅｄｓ
ｇｅｒｍｉｎａｔｅｄ ｔｏ ｆｏｒｍ ｒｏｏｔｓ. Ｔｈｅ ｉｎｃｕｂａｔｉｎｇ ｔｅｍｐｅ￣
ｒａｔｕｒｅ ｗａｓ ｓｅｔ ｔｏ ａ ｃｏｎｓｔａｎｔ ２５℃ꎬ ｗｉｔｈ ａ １２ ｈ
ｌｉｇｈｔ / １２ ｈ ｄａｒｋ ｒｅｇｉｍｅ.
Ｒｏｏｔ ｔｉｐｓ (１􀆰 ５－２􀆰 ０ ｃｍ ｆｏｒ Ｖ. ｆａｂａ ａｎｄ ０􀆰 ８－
１􀆰 ２ ｃｍ ｆｏｒ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｓｐｅｃｉｅｓ) ｗｅｒｅ ｔｒｅａｔｅｄ ｆｏｒ
２４ ｈ ａｔ ４℃ ａｎｄ ｆｉｘｅｄ ｉｎ ３ ∶１ (ａｂｓｏｌｕｔｅ ｅｔｈａｎｏｌ:
ａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ) ｆｏｒ ２４ ｈ. Ｔｈｅ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ｔｈｅｎ
ｓｔａｉｎｅｄ ｗｉｔｈ Ｃａｒｂｏｌ ｆｕｃｈｓｉｎ ｆｏｒ ３０ －４０ ｍｉｎ ａｆｔｅｒ
８ ｍｉｎ ｏｆ ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ ｉｎ １ ∶ １ (９５％ ｅｔｈａｎｏｌ: ３８％
ＨＣｌ) . Ｔｅｍｐｏｒａｒｙ ｓｌｉｄｅｓ ｆｏｒ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｃｈｒｏｍｏ￣
ｓｏｍｅꎬ ｋａｒｙｏｎ ａｎｄ ｃｅｌｌ ｓｉｚｅｓ ｗｅｒｅ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｕｓｉｎｇ
ｔｈｅ ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌ ｓｑｕａｓｈｉｎｇ ｍｅｔｈｏｄ. Ｔｈｅ ｍｉｃｒｏ￣
ｇｒａｐｈｓ ｗｅｒｅ ｔａｋｅｎ ｕｎｄｅｒ ａ １００× ｏｉｌ ｌｅｎｓ ｕｓｉｎｇ ａ
Ｍｏｔｉｃ ｄｉｇｉｔａｌ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ ＤＭＢ１￣２２３ (Ｍｏｔｉｃ Ｌｔｄ.
Ｃｏｒｐ.ꎬ Ｘｉａｍｅｎꎬ Ｃｈｉｎａ) . Ｆｉｖｅ ｈｕｎｄｒｅｄ ｃｅｌｌｓ ａｎｄ
ｋａｒｙｏｎｓ ｉｎ ｍｉｔｏｔｉｃ ｉｎｔｅｒｐｈａｓｅ ｆｏｒ ｅａｃｈ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａｓ ｏｆ
ｃｅｌｌｓ ａｎｄ ｋａｒｙｏｎｓ.
Ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｒｅ ａｎｎｕａｌ ｏｒ ｂｉｅｎｎｉａｌ
ｐｌａｎｔｓꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｉｎ ｔｈｅｉｒ ｇｒｏｗｔｈ
ｐｅｒｉｏｄｓ ｍｏｓｔｌｙ ｖａｒｉｅｓ ｆｒｏｍ １０℃ ｔｏ ３０℃. Ｆｏｒ ｃｏｍ￣
ｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅｓ
(ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ / ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ ｓｅｅｄ) ｏｆ ｔｈｅ
ｆｉｖｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｕｎｄｅｒ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓꎬ ｔｈｅｉｒ
ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｗｅｒｅ ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ ｆｏｒ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ａｔ １０℃ꎬ
１５℃ꎬ ２０℃ꎬ ２５℃ꎬ ａｎｄ ３０℃ꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｃｈｒｏ￣
ｍｏｓｏｍｅ ｓｌｉｄｅｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅｓｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｗｅｒｅ ｔｈｅｎ
ｐｒｅｐａｒｅｄ. Ｆｏｒ ｅａｃｈ ｔｒｅａｔｍｅｎｔꎬ １０ ｓｌｉｄｅｓ ｐｒｅ￣
ｐａｒｅｄ ｗｉｔｈ ｃｌｅａｒ ａｎｄ ｄｉｓｐｅｒｓｉｖｅ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ
ｃｅｌｌｓ ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｔｏ ｔａｋｅ ｍｉｃｒｏｇｒａｐｈｓ ｕｎｄｅｒ ａ ４０×
ｌｅｎｓ. Ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ｍｉｔｏｓｉｓ ｒａｔｅ ( ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ
ｃｅｌｌｓ ｕｎｄｅｒ ｐｒｏｐｈａｓｅꎬ ｍｅｔａｐｈａｓｅꎬ ａｎｄ ａｎａ￣
ｐｈａｓｅ / ｔｏｔａｌ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｃｅｌｌｓ)ꎬ １０ ｓｕｃｃｅｓｓｉｖｅ
ｇｒａｐｈｓ ｗｅｒｅ ｔａｋｅｎ ｆｏｒ ｅａｃｈ ｓｌｉｄｅ ｕｓｉｎｇ ａ Ｍｏｔｉｃ
ｄｉｇｉｔａｌ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ ＤＭＢ１－２２３.
Ｔｈｅ ａｖｅｒａｇｅ ｍｉｔｏｓｉｓ ｒａｔｅ ｏｆ ｅａｃｈ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｆｒｏｍ １０℃ ｔｏ ３０℃ ｗａｓ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄꎬ ａｎｄ ｉｔｓ ｒｅｌａ￣
ｔｉｏｎｓｈｉｐ ｗｉｔｈ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｗａｓ ａｌｓｏ ａｎａｌｙｚｅｄ.
１􀆰 ３　 Ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅ
Ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅ￣
５５　 第 １期　 　 　 　 　 郭水良等: 根尖分生组织细胞核大小: 一个可能用于植物入侵性评估的新指标 (英文)
ｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｃｏｍｐａｒｅｄ. Ｔｏ ｄｅｓｔｒｏｙ ｔｈｅ ｅｐｉｄｅｒｍｉｓ
ａｎｄ ｔｈｕｓ ｏｖｅｒｃｏｍｅ ｄｏｒｍａｎｃｙꎬ ｔｈｅｉｒ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ
ｓｏａｋｅｄ ｉｎ ｖｉｔｒｉｏｌ ｏｉｌ ｆｏｒ １８ ｍｉｎ ａｎｄ ｒｉｎｓｅｄ ｗｉｔｈ
ｄｅｉｏｎｉｚｅｄ ｗａｔｅｒ ｂｅｆｏｒｅ ｔｈｅ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ. Ａｌｌ ｓｅｅｄｓ
ｗｅｒｅ ｓｏａｋｅｄ ｉｎ ｄｅｉｏｎｉｚｅｄ ｗａｔｅｒ ｆｏｒ ４ ｈ ｂｅｆｏｒｅ
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. Ａｆｔｅｒ ｒｉｎｓｉｎｇꎬ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｐｌａｃｅｄ ｉｎ
Ｐｅｔｒｉ ｄｉｓｈｅｓ ｗｉｔｈ ｍｏｉｓｔ ｆｉｌｔｅｒ ｐａｐｅｒ. Ｅａｃｈ ｄｉｓｈ ｗａｓ
ｓｅａｌｅｄ ｗｉｔｈ Ｐａｒａｆｉｌｍ ａｎｄ ｐｌａｃｅｄ ｉｎ ａ ｇｒｏｗｔｈ ｃｈａｍ￣
ｂｅｒ ａｔ １５℃ꎬ ｗｉｔｈ ａ １２ ｈ ｌｉｇｈｔ / １２ ｈ ｄａｒｋ ｃｙｃｌｅ.
Ｉｍｍｅｄｉａｔｅｌｙ ａｆｔｅｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ３５ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ
ｐｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｐｅｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｓｅｌｅｃｔｅｄ ａｎｄ
ｐｌａｃｅｄ ｉｎｔｏ ｎｅｗ Ｐｅｔｒｉ ｄｉｓｈｅｓ ｆｏｒ ｃｏｎｔｉｎｕｅｄ ｇｒｏｗｔｈ
ｉｎ ａ ｇｒｏｗｔｈ ｃｈａｍｂｅｒ. Ｅａｃｈ ｓｐｅｃｉｅｓ ｈａｄ ｆｉｖｅ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｗｉｔｈ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｎｇ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ ｏｆ １０℃ꎬ
１５℃ꎬ ２０℃ꎬ ２５℃ꎬ ａｎｄ ３０℃ꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｖａ￣
ｐｏｒｉｚｅｄ ｗａｔｅｒ ｉｎ ｅａｃｈ Ｐｅｔｒｉ ｄｉｓｈ ｗａｓ ｒｅｐｌｅｎｉｓｈｅｄ
ａｓ ｎｅｅｄｅｄ. Ｔｗｏ ｗｅｅｋｓ ｌａｔｅｒꎬ ｔｈｅ ３０ ｌａｒｇｅｓｔ ｓｅｅｄ￣
ｌｉｎｇｓ ｆｏｒ ｅａｃｈ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｅｒｅ ｄｒｉｅｄ ｔｏ ａ ｃｏｎｓｔａｎｔ
ｗｅｉｇｈｔ ａｔ ８０℃ ａｎｄ ｔｈｅｎ ｗｅｉｇｈｅｄ.
１􀆰 ４　 Ｌｉｆｅ ｓｐａｎ ａｎｄ ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ
Ｆｉｅｌｄ ｐｌｏｔｓ ｗｅｒｅ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ ｉｎ Ｄｅｃｅｍｂｅｒ
２００７ ｉｎ ｔｈｅ ｓｕｂｕｒｂ ｏｆ Ｊｉｎｈｕａꎬ Ｚｈｅｊｉａｎｇ Ｐｒｏｖｉｎｃｅꎬ
Ｃｈｉｎａ (２９°０７′０６″Ｎꎬ １１９°３７′４７″ Ｅ) . Ｆｉｖｅ １ ｍ２
ｐｌｏｔｓ ｗｅｒｅ ｃｌｅａｒｅｄ ｏｆ ｔｈｅ ｓｕｒｆａｃｅ ５ ｃｍ ｏｆ ｓｏｉｌꎬ
ａｎｄ ｒｅｐｌａｃｅｄ ｗｉｔｈ ｗａｔｅｒ￣ｗａｓｈｅｄ ｓａｎｄ ｔｏ ｒｅｍｏｖｅ
ｓｏｉｌ ｖｅｇｅｔａｔｉｏｎ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ ｆｏｒ ｂｅｔｔｅｒ ｆｅｒｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ.
Ｅａｃｈ ｐｌｏｔ ｒｅｃｅｉｖｅｄ ａｎ ｉｎｉｔｉａｌ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ５０ ｇ / ｍ２
ｏｆ Ｆｕｓｈｅｎｇ􀆳ｓ Ｓｐｅｃｉａｌ Ｆｅｒｔｉｌｉｚｅｒ (１５￣１５￣１５) ( Ｆｕ￣
ｓｈｅｎｇ Ｆｅｒｔｉｌｉｚｅｒ Ｃｏ.ꎬ Ｌｔｄꎬ Ｔｉａｎｊｉｎｇꎬ Ｃｈｉｎａ) . Ｏｎ
Ｄｅｃｅｍｂｅｒ １６ꎬ ２００７ꎬ １５ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｐｅｒ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｇｅｒｍｉｎａｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ｃｈａｍｂｅｒ ｗｅｒｅ ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ
２０ ｃｍ ａｐａｒｔ. Ｔｈｅｒｅａｆｔｅｒꎬ ａｌｌ ｐｌａｎｔｓ ｗｅｒｅ ｗａｔｅｒｅｄ
ａｓ ｎｅｅｄｅｄ ａｎｄ ｆｅｒｔｉｌｉｚｅｄ ｅｖｅｒｙ ３０ ｄａｙｓ. Ｔｈｅ ｌｏｗｅｓｔ
ａｎｄ ｈｉｇｈｅｓｔ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ ｗｅｒｅ ｒｅｃｏｒｄｅｄ ｅａｃｈ ｄａｙ.
Ｏｎ Ｍａｒｃｈ １６ꎬ ２００８ꎬ ｆｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｏｆ ｅａｃｈ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｌｏｗｅｓｔ ｂｉｏｓｉｚｅ ｗｅｒｅ ｒｅｍｏｖｅｄ.
Ｆｏｒ ｅａｃｈ ｐｌａｎｔ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌꎬ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｄａｔｅｓ ｏｆ ｆｌｏｗｅ￣
ｒｉｎｇ ａｎｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｔｕｒｅ ｆｒｕｉｔｓ ｗｅｒｅ ｒｅｃｏｒ￣
ｄｅｄꎬ ａｎｄ ｓｈｅｄｄｉｎｇ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ａｎｄ
ｓｔｏｒｅｄ. Ｉｎ Ｍａｙ ２００８ꎬ ｐｌａｎｔｓ ｆｏｒ ｗｈｉｃｈ ａｂｏｕｔ ｈａｌｆ
ｏｆ ｔｈｅ ｓｅｅｄｓ ｈａｄ ｍａｔｕｒｅｄ ｗｅｒｅ ｕｐｒｏｏｔｅｄ ａｎｄ
ｗａｓｈｅｄ. Ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｅａｃｈ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌ ｗａｓ
ｃｏｕｎｔｅｄ. Ａｌｌ ｐｌａｎｔ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｗｅｒｅ ｄｒｉｅｄ ｔｏ ａ ｃｏｎ￣
ｓｔａｎｔ ｗｅｉｇｈｔ ａｔ ８０℃ ａｎｄ ｗｅｉｇｈｅｄ.
１􀆰 ５　 Ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｄａｔａ ｗｅｒｅ ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ａｓ ｍｅａｎｓ ± ｓｔａｎｄａｒｄ
ｅｒｒｏｒｓ ( ＳＥ ) . Ａ ｏｎｅ￣ｗａｙ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｖａｒｉａｎｃｅ
(ＡＮＯＶＡ) ｕｓｉｎｇ ＳＰＳＳ １５􀆰０ ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ｓｏｆｔｗａｒｅ
ｗａｓ ｅｍｐｌｏｙｅｄ ｔｏ ｔｅｓｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ. Ｌｅａｓｔ ｓｉｇｎｉｆｉ￣
ｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ (ＬＳＤ) ｗａｓ ｕｓｅｄ ｗｈｅｎ ｔｈｅ ｖａｒｉａ￣
ｎｃｅｓ ｗｅｒｅ ｈｏｍｏｇｅｎｅｏｕｓꎻ ｏｔｈｅｒｗｉｓｅꎬ Ｄｕｎｎｅｔｔ􀆳ｓ
Ｔ３ ｔｅｓｔ ｗａｓ ｕｓｅｄ. Ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ ａｎａｌｙｓｅｓ ｗｅｒｅ ｐｅｒ￣
ｆｏｒｍｅｄ ｕｓｉｎｇ ＳＰＳＳ １５􀆰０ ｓｏｆｔｗａｒｅ.
２　 Ｒｅｓｕｌｔｓ
２􀆰 １　 Ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａｓ ｏｆ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎｓ ａｎｄ
ｃｅｌｌｓꎬ ａｎｄ ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔ
Ｔｈｅ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎｓ ａｎｄ ｃｅｌｌｓ ｉｎ ｔｈｅ
ｒｏｏｔ ｔｉｐ ａｎｄ ｓｅｅｄｓ ｏｆ Ｖ. ｆａｂａ ｗｅｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ
ｌａｒｇｅｒꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ Ｖ. ｔｅｎｕｉｆｏｌｉａꎬ Ｖ. ｓａｔｉｖａꎬ Ｖ. ｈｉｒ￣
ｓｕｔａ ａｎｄ Ｖ. ｔｅｔｒａｓｐｅｒｍａ (Ｔａｂｌｅ １) .
　 　 Ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ ａｎａｌｙｓｅｓ ｗｉｔｈ ａ ｌｉｎｅａｒ ｍｏｄｅｌ (Ｔａ￣
Ｔａｂｌｅ １　 Ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａｓ ｏｆ ｔｏｔａｌ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓꎬ ｋａｒｙｏｎｓ ａｎｄ ｃｅｌｌｓꎬ ａｎｄ ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ
Ｓｐｅｃｉｅｓ Ｋａｒｙｏｎ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄａｒｅａ (μｍ２)
Ｃｅｌｌ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ
ａｒｅａ (μｍ２)
Ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ
ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａ (μｍ２)
Ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔ
(ｇ)
ＤＮＡ １Ｃ￣ｖａｌｕｅ∗
(ｐｇ)
Ｖ. ｓａｔｉｖａ ８９.４７ ± １.６７ ｃ ３３８.２９ ± ４.９８ ｃ ５５.４１ ± ３.９０ ｃ １３.４８ ± ０.０３ ｃ １.９０
Ｖ. ｔｅｔｒａｓｐｅｒｍａ ４８.８７ ± ０.８２ ｅ ２２０.５２ ± ２.９０ ｅ ６７.５０ ± ６.２３ ｄ ３.８１ ± ０.０６ ｅ ３.２５
Ｖ. ｈｉｒｓｕｔａ ７０.９８ ± １.２２ ｄ ２６７.５７ ± ３.３７ ｄ １０４.４４ ± ４.３４ ｂ ４.８９ ± ０.０３ ｄ ４.２５
Ｖ. ｔｅｎｕｉｆｏｌｉａ １２４.００ ± １.８６ ｂ ５００.９４ ± ６.４７ ｂ １１３.６５ ± ４.２２ ｂ ２２.８３ ± ０.０５ ｂ ８.００
Ｖ. ｆａｂａ ２２５.５９ ± ２.８５ ａ ７２４.１４ ± １１.９３ ａ １８４.１２ ± １０.６８ ａ １２６９.１２ ± ４.８２ ａ １１.９０
★Ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ ｗｉｔｈ
ｋａｒｙｏｎ ｐｒｏｊｅｃｔ ａｒｅａ
Ｒ ２ ＝ ０.９７６
Ｐ ＝ ０.００２
Ｒ ２ ＝ ０.８０９５
Ｐ ＝ ０.０３８
Ｒ ２ ＝ ０.８５２
Ｐ ＝ ０.０２５
Ｒ ２ ＝ ０.８３７
Ｐ ＝ ０.０２９
Ｎｏｔｅｓ: Ｓａｍｅ ｌｅｔｔｅｒ ｗｉｔｈｉｎ ａ ｃｏｌｕｍｎ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｎｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｍｏｎｇ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｔ Ｐ < ０.０５ ｌｅｖｅｌ. ∗: ＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ ｃｉｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｂｅｎｎｅｔｔ
ａｎｄ Ｌｅｉｔｃｈ (１９９５) [２７] . ★: Ｃｅｌｌ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａꎬ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａꎬ １０００￣ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔ ａｎｄ ＤＮＡ １Ｃ￣ｖａｌｕｅ ａｒｅ
ｒｅｇｒｅｓｓｅｄ ｗｉｔｈ ｋａｒｙｏｎ ｐｒｏｊｅｃｔ ａｒｅａ ｕｓｉｎｇ ａ ｌｉｎｅａｒ ｍｏｄｅｌꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ.
６５ 植 物 科 学 学 报 第 ３３卷　
ｂｌｅ １) ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｐｒｏ￣
ｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａ ｗａｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｍｅｒｉ￣
ｓｔｅｍａｔｉｃ ｃｅｌｌ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａꎬ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ ｐｒｏ￣
ｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａꎬ ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔꎬ ａｎｄ ＤＮＡ １Ｃ￣ｖａｌｕｅ.
Ａｄｄｉｔｉｏｎａｌｌｙꎬ ｔｈｅ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ＤＮＡ １Ｃ￣
ｖａｌｕｅ ａｎｄ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｃｅｌｌ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａ ｗａｓ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔꎬ ｗｈｉｌｅ ｔｈａｔ ｂｅｔｗｅｅｎ ＤＮＡ １Ｃ￣ｖａｌｕｅ ａｎｄ
ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔ ｗａｓ ｎｏｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ.
２􀆰 ２　 Ｍｉｔｏｓｉｓ ｒａｔｅ
Ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｏｆ ｔｈｅ ａｖｅｒａｇｅ ｍｉｔｏｓｉｓ ｒａｔｅ
ｗｉｔｈ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｉｓ ｓｈｏｗｎ ｉｎ Ｆｉｇ􀆰 １.
Ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅꎬ ｔｈｅ
ｍｉｔｏｓｉｓ ｒａｔｅ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｌｉｎｅａｒｌｙ (Ｐ < ０􀆰 ２) .
y x= 0.027 + 9.039-
r P= 0.6465, < 0.2
0
2
4
6
8
10
12
0 50 100 150 200 250M
ito
si
s
ra
te
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el
ls
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r p
ro
ph
as
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an
d
an
ap
ha
se
/
to
ta
l c
el
ls
)
Meristematic karyon size (μm )2
Ｆｉｇ􀆰 １　 Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ ａｖｅｒａｇｅ ｍｉｔｏｓｉｓ ｒａｔｅ ａｎｄ
ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ
２􀆰 ３　 Ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅ
Ａｆｔｅｒ ｔｗｏ ｗｅｅｋｓ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎꎬ ｔｈｅ ｒａｎｋｓ ｏｆ
ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｔａ￣
ｂｌｅ ２) ｗｅｒｅ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈａｔ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔｓꎬ
ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｆｏｒ ｔｈｅ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ａｔ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ
ｈｉｇｈｅｒ ｔｈａｎ １５℃. Ｔｈｅ ａｂｓｏｌｕｔｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ
ｒａｔｅ (ｎａｍｅｌｙꎬ ａｂｓｏｌｕｔｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ) ｏｆ
Ｖ. ｆａｂａꎬ ｗｈｉｃｈ ｈａｄ ｔｈｅ ｌａｒｇｅｓｔ １０００￣ｓｅｅｄ
ｗｅｉｇｈｔꎬ ｗａｓ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔꎬ ｗｈｉｌｅ ｔｈｏｓｅ ｏｆ Ｖ. ｔｅｔ￣
ｒａｓｐｅｒｍａ ａｎｄ Ｖ. ｈｉｒｓｕｔａ ｗｉｔｈ ｓｍａｌｌｅｒ １０００￣ｓｅｅｄ
ｗｅｉｇｈｔｓ ｗｅｒｅ ｌｏｗｅｒ.
　 　 Ｎｅｖｅｒｔｈｅｌｅｓｓꎬ ｔｈｅ ｓｉｔｕａｔｉｏｎ ｏｎ ｓｅｅｄｉｎｇ ｄｒｙ
ｗｅｉｇｈｔ / ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔ (ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ
ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅ)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｒｅｆｌｅｃｔｓ ｃｏｍｐｅｔｉｔｉｖｅ ａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ
ａ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｗａｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｆｒｏｍ ａｂｓｏｌｕｔｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ
ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅ. Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｓｍａｌｌｅｓｔ １０００￣
ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔꎬ Ｖ. ｔｅｔｒａｓｐｅｒｍａ ｇｒｅｗ ｑｕｉｃｋｅｒ ｔｈａｎ
Ｖ. ｈｉｒｓｕｔａ ｕｎｄｅｒ ａｌｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ ｅｘｃｅｐｔ ２０℃. Ｗｅ
ｆｕｒｔｈｅｒ ａｎａｌｙｚｅｄ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｏｆ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄ￣
ｌｉｎｇ ｗｅｉｇｈｔ ｗｉｔｈ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｆｉｖｅ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ. Ｉｎｔｅｒｅｓｔｉｎｇｌｙꎬ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｗｅｉｇｈｔ
ｗａｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｎｅｇａｔｉｖｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｋａｒｙｏｎ
ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａ (Ｆｉｇ. ２) .
２􀆰 ４　 Ｌｉｆｅ ｓｐａｎ ａｎｄ ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ
Ｂｙ Ｍａｙ １８ꎬ ２００８ꎬ ａｌｌ ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ ｐｌａｎｔｓ ｗｅｒｅ
ｕｐｒｏｏｔｅｄ ｅｘｃｅｐｔ Ｖ. ｔｅｎｕｉｆｏｌｉａ ( ｉｔ ｍａｉｎｔａｉｎｅｄ ｓｔｒｏｎｇ
ｖｅｇｅｔａｔｉｖｅ ｇｒｏｗｔｈ ｂｕｔ ｄｉｄ ｎｏｔ ｆｌｏｗｅｒ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ
ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ) . Ｉｎ ｔｈｅ １５４ ｄａｙｓ ｏｆ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ ( ｆｒｏｍ
Ｄｅｃｅｍｂｅｒ １６ꎬ ２００７)ꎬ ｔｈｅ ｍｅａｎ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｗａｓ
１１􀆰 ７２℃ꎬ ｗｉｔｈ ａ ｌｏｗｅｓｔ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｏｆ －２℃ ａｎｄ
ｈｉｇｈｅｓｔ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｏｆ ３４℃.
Ｔｈｅ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ Ｖ. ｆａｂａ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｗａｓ ｔｈｅ
ｈｉｇｈｅｓｔꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ Ｖ. ｓａｔｉｖａꎬ Ｖ. ｈｉｒｓｕｔａꎬ ａｎｄ Ｖ.
ｔｅｔｒａｓｐｅｒｍａ (Ｔａｂｌｅ ３). Ｔｈｅ ｊｕｖｅｎｉｌｅ ｐｅｒｉｏｄ (ｐｅｒｉｏｄ
ｆｒｏｍ ｅｍｅｒｇｅｎｃｅ ｔｏ ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ) ｏｆ Ｖ. ｆａｂａ (ａｂｏｕｔ
９６ ｄ) ｗａｓ ｔｈｅ ｓｈｏｒｔｅｓｔ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｉｔｓ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ
ｔｉｍｅ ( ｐｅｒｉｏｄ ｆｒｏｍ ｅｍｅｒｇｅｎｃｅ ｔｏ ｆｉｒｓｔ ｍａｔｕｒｅｄ
ｆｒｕｉｔ) ｗａｓ ｔｈｅ ｌｏｎｇｅｓｔ. Ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｋａｒｙｏｎ
ｓｉｚｅ ( ｘ)ꎬ ｔｈｅｉｒ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ ( ｙ) ｅｘｔｅｎｄｅｄꎬ
ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ: ｙ ＝ ０􀆰 ０８８ｘ ＋ １２７􀆰 ７ ( ｒ ＝ ０􀆰 ９７３１ꎬ Ｐ<
０􀆰 ０１) (Ｆｉｇ􀆰 ３) . Ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｎｕｍｂｅｒ ｐｅｒ Ｖ. ｆａｂａ ｉｎ￣
ｄｉｖｉｄｕａｌ ｗａｓ ａｂｏｕｔ １６ꎬ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ
ｌｏｗｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ｏｆ Ｖ. ｓａｔｉｖａꎬ Ｖ. Ｔｅｔｒａｓｐｅｒｍａꎬ
ａｎｄ Ｖ. ｈｉｒｓｕｔａ (Ｔａｂｌｅ ３) .
　 　 Ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ ａｎａｌｙｓｅｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｗｉｔｈ ｉｎｃｒｅａ￣
Ｔａｂｌｅ ２　 Ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｆｔｅｒ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ ａｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ ｆｏｒ １４ ｄａｙｓ (ｍｇ)
Ｓｐｅｃｉｅｓ １０℃ １５℃ ２０℃ ２５℃ ３０℃
Ｖ. ｓａｔｉｖａ ２.２０ ± ０.０６ ｂ ４.００ ± ０.０６ ｂ ４.６６ ± ０.０７ ｂ ３.８３ ± ０.０６ ｂ ２.４６ ± ０.０５ ｂ
Ｖ. ｔｅｔｒａｓｐｅｒｍａ １.２６ ± ０.０２ ｃ １.９５ ± ０.０４ ｅ ２.０９ ± ０.０４ ｄ ２.２１ ± ０.０５ ｄ １.９９ ± ０.０４ ｄ
Ｖ. ｈｉｒｓｕｔａ ０.７１ ± ０.０３ ｅ １.７２ ± ０.０３ ｄ ２.１０ ± ０.０３ ｄ １.９０ ± ０.０４ ｅ １.５６ ± ０.０４ ｅ
Ｖ. ｔｅｎｕｉｆｏｌｉａ １.１２ ± ０.０２ ｄ ２.２０ ± ０.０６ ｃ ３.１４ ± ０.０５ ｃ ３.２１ ± ０.０４ ｃ ２.２５ ± ０.０３ ｃ
Ｖ. ｆａｂａ ４５.３６ ± ０.６１ ａ ６９.０２ ± １.６４ ａ １３８.９５ ± １.８８ ａ １１２.７１ ± ２.４８ ａ ９０.２５ ± ２.５７ ａ
　 　 Ｎｏｔｅ: Ｓａｍｅ ｌｅｔｔｅｒ ｗｉｔｈｉｎ ａ ｃｏｌｕｍｎ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｎｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｔ ｔｈｅ ０.０５ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ.
７５　 第 １期　 　 　 　 　 郭水良等: 根尖分生组织细胞核大小: 一个可能用于植物入侵性评估的新指标 (英文)
00.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
40 60 80 100 120 140 160 180 200 220
10°C R P2 = 0.893, = 0.018
15 R2 = 0.954, = 0.004P°C
20 R2 0.= 912, = 0.011P°C
25 R2 = 0.971, = 0.002P°C
30 R2 = 0.943, = 0.006P°C
R
el
at
iv
e
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in
g
w
ei
gh
t /
s
ee
d
dr
y
w
ei
gh
t (
m
g/
m
g)
Meristematic karyon projected area (μm )2
Ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎｓ ａｒｅ ｄｒａｗｎ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ Ｐｏｗｅｒ ｍｏｄｅｌꎬ ａｎｄ ｒｅｌａｔｉｖｅ Ｒ ２
ａｎｄ Ｐ ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｓｈｏｗｎ.
Ｆｉｇ􀆰 ２　 Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｗｅｉｇｈｔ
(ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ / ｓｅｅｄ ｗｅｉｇｈｔ) ａｎｄ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ
ｋａｒｙｏｎ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｓｉｎｇ ｋａｒｙｏｎ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａ ( ｘ)ꎬ ｓｅｅｄ ｎｕｍｂｅｒ
ｐｅｒ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌ ( Ｙ１) ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ Ｙ１ ＝
－１􀆰 ８０４９ｘ ＋ ４３７􀆰 ７９ (Ｒ ２ ＝ ０􀆰 ８９８９ꎬ Ｐ ＝ ０􀆰 ０５)ꎬ
ａｎｄ ｓｅｅｄ ｎｕｍｂｅｒ ｐｅｒ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ ａｎ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌ
(Ｙ２) ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ Ｙ２ ＝ １０４４􀆰 ６ ×ｅ－０􀆰 ０３３１ｘ
(Ｒ ２ ＝ ０􀆰 ９９７３ꎬ Ｐ ＝ ０􀆰 ００１) (Ｆｉｇ􀆰 ４).
３　 Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
Ｅｘｐｌｏｒｉｎｇ ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｍｏｄｅｌｓ ｔｏ ｅ￣
ｖａｌｕａｔｅ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｄｅｓｅｒｖｅｓ ｍｏｒｅ ａｔｔｅｎ￣
ｔｉｏｎ. Ｂｅｃａｕｓｅ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｄｅｒｓ ｈａｖｅ ｍａｎｙ ｓｉｍｉｌａｒ ａｔ￣
ｔｒｉｂｕｔｅｓꎬ ａ ｒｏｂｕｓｔ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｍｏｄｅｌ ｎｅｅｄｓ ｔｏ ｉｎ￣
ｃｌｕｄｅ ｍａｎｙ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ａｎｄ ｐｒａｃｔｉｃａｌ ｉｎｄｉｃｅｓ. Ｏｕｒ
ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｍｐｌｙ ｔｈａｔꎬ ｉｎ ｌｉｅｕ ｏｆ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅꎬ ｍｅｒｉｓ￣
ｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｍａｙ ｂｅ ａｎ ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ｉｎｄｅｘ ｆｏｒ
ｅｖａｌｕａｔｉｎｇ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ.
Ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｉｔｈ ｓｍａｌｌｅｒ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓꎬ ｓｕｃｈ
ａｓ Ｖ. ｔｅｔｒａｓｐｅｒｍａ ａｎｄ Ｖ. ｓａｔｉｖａꎬ ｔｅｎｄｅｄ ｔｏ ｈａｖｅ
ｓｍａｌｌ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎｓ ａｎｄ ｃｅｌｌｓ (Ｔａｂｌｅ １)ꎬ
ｈｉｇｈｅｒ ｍｉｔｏｓｉｓ ( Ｆｉｇ􀆰 １ ) ａｎｄ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ
ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅｓ ( Ｆｉｇ􀆰 ２)ꎬ ｄｅｖｅｌｏｐｅｄ ｍｏｒｅ ｑｕｉｃｋｌｙ
ｗｉｔｈ ｓｈｏｒｔｅｒ ｌｉｆｅ ｓｐａｎｓ (Ｔａｂｌｅ ３ꎬ Ｆｉｇ􀆰 ３) ａｎｄ ｐｒｏ￣
ｄｕｃｅｄ ｍｏｒｅ ａｎｄ ｓｍａｌｌｅｒ ｓｅｅｄｓ (Ｆｉｇ􀆰 ４) .
Ｔｈｅｒｅ ｉｓ ａ ｍａｘｉｍｕｍ ｌｉｍｉｔ ｔｏ ｔｈｅ ｍａｓｓ ｏｆ ＤＮＡ
ｆｏｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｈａｔ ｃａｎ ｃｏｍｐｌｅｔｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｉｎ ａ
ｇｉｖｅｎ ｔｉｍｅ. Ｉｎ ａｎｙ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ ｗｈｅｒｅ ａ ｐｌａｎｔ
ｍｕｓｔ ｃｏｍｐｌｅｔｅ ｉｔｓ ｌｉｆｅ￣ｃｙｃｌｅ ｉｎ ａ ｇｉｖｅｎ ｔｉｍｅ ｉｎ ｏｒ￣
ｄｅｒ ｔｏ ｓｕｒｖｉｖｅꎬ ａｌｌ ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｒｅ ｃｅｒ￣
ｔａｉｎ ｔｏ ｈａｖｅ ａ ｖｅｒｙ ｌｏｗ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ[３３] . Ｔｈｅｒｅ￣
ｆｏｒｅꎬ ｓｈｏｒｔ ｌｉｆｅ￣ｃｙｃｌｅｓꎬ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ
ｓｍａｌｌ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎｓꎬ ａｒｅ ｖｉｔａｌ ｆｏｒ ｉｎｖａ￣
ｓｉｖｅ ｓｐｅｃｉｅｓ.
Ｍｏｓｔ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｄｅｒｓ ａｒｅ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｔｏ ｂｅ
ｌａｒｇｅｌｙ ｏｐｐｏｒｔｕｎｉｓｔｉｃꎬ ｃａｐａｂｌｅ ｏｆ ｅｘｐｌｏｉｔｉｎｇ ｃｈａｎ￣
ｇｉｎｇ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｈｕｍａｎ ｏｒ ｎａ￣
ｔｕｒａｌ ｄｉｓｔｕｒｂａｎｃｅｓ[２８ꎬ２９] . Ｉｎｖａｓｉｖｅ ｐｌａｎｔｓ ｆｉｒｓｔ ｃｏｌｏ￣
ｎｉｚｅ ａｎｄ ｔｈｅｎ ｐｅｒｓｉｓｔ ｉｎ ｔｈｅｉｒ ｎｅｗ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓꎬ
ａｎｄ ｌａｔｅｒ ｂｅｃｏｍｅ ａｂｕｎｄａｎｔ ａｎｄ ｄｏｍｉｎａｎｔ ｃｏｍ￣
ｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｎｔ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ[３０] . Ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ
ｍａｎｙ ｓｍａｌｌ ｓｅｅｄｓ ｇｒｅａｔｌｙ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅｓ ｔｏ ｔｈｅ ａｂｉｌｉｔｙ
ｏｆ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｄｅｒｓ ｔｏ ｏｖｅｒｃｏｍｅ ｔｈｅ ｄｉｆｆｉｃｕｌｔｉｅｓ ｏｆ
ｌｏｎｇ￣ｄｉｓｔａｎｃｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｅｓｔａｂ￣
ｌｉｓｈｍｅｎｔ. Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ ｔｈｅ ａｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｑｕｉｃｋｌｙ ｇｒｏｗ
ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐ ｅｎａｂｌｅｓ ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｏ ｓｗｉｆｔｌｙ ｕｔｉ￣
ｌｉｚｅ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ａｎｄ ｓｐａｃｅ.
Ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅｓｅ ａｔｔｒｉｂｕｔｅｓꎬ ｐｌａｎｔｓ ｗｉｔｈ ｓｍａｌｌ
ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎｓ ｍａｙ ｏｕｔ￣ｇｒｏｗ ａｎｄ ｏｕｔ￣ｒｅ￣
ｐｒｏｄｕｃｅ ｎａｔｉｖｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｎｅｗ ｈａｂｉｔａｔｓꎬ ｐａｒｔｉｃｕ￣
ｌａｒｌｙ ｆｏｒ ａｎｎｕａｌｓ ａｎｄ ｂｉｅｎｎｉａｌｓ. Ｉｔ ｃａｎ ｂｅ ｃｏｎｃｌｕ￣
ｄｅｄꎬ ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｔｈａｔ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｔｈｅ
ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅꎬ ｌｏｗｅｒ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ
ｂｅｎｅｆｉｔｓ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ.
Ｔａｂｌｅ ３　 Ｌｉｆｅ ｓｐａｎｓꎬ ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｆｏｕｒ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ
Ｓｐｅｃｉｅｓ ＤＷ ( ｇ) ＰＦ (ｄ) ＰＭ (ｄ) Ｓｅｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ(ｓｅｅｄ ｎｕｍｂｅｒ / ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌ)
Ｖ. ｓａｔｉｖａ ７.７ ± ０.８ ｂ １０６.７ ± ０.５ ａ １３３.５ ± ０.９ ｂ ３４７.０ ± ３０.５ ａ
Ｖ. ｔｅｔｒａｓｐｅｒｍａ １.５ ± ０.１ ｄ １０６.４ ± ０.６ ａ １３３.９ ± ０.８ ｂ ３１２.０ ± ２８.９ ａ
Ｖ. ｈｉｒｓｕｔａ ２.５ ± ０.２ ｃ １０５.６ ± ０.５ ａ １３３.９ ± ０.８ ｂ ２９０.４ ± ３８.９ ａ
Ｖ. ｆａｂａ ２７.６ ± ２.９ ａ ９４.４ ± ０.３ ｂ １４８.２ ± ０.２ ａ １６.８ ± １.９ ｂ
Ｎｏｔｅｓ: Ｓａｍｅ ｌｅｔｔｅｒ ｗｉｔｈｉｎ ａ ｃｏｌｕｍｎ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｎｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｍｏｎｇ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｔ ｔｈｅ ０.０５ ｌｅｖｅｌ. ＤＷ ＝ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｎｔ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌꎻ
ＰＦ ＝ ｐｅｒｉｏｄ ｆｒｏｍ ｅｍｅｒｇｅｎｃｅ ｔｏ ｆｌｏｗｅｒｉｎｇꎻ ＰＭ ＝ ｐｅｒｉｏｄ ｆｒｏｍ ｅｍｅｒｇｅｎｃｅ ｔｏ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｍａｔｕｒｅ ｌｅｇｕｍｅ. Ｖ. ｔｅｎｕｉｆｏｌｉａ
ｍａｉｎｔａｉｎｅｄ ｓｔｒｏｎｇ ｖｅｇｅｔａｔｉｖｅ ｇｒｏｗｔｈꎬ ｂｕｔ ｄｉｄ ｎｏｔ ｆｌｏｗｅｒ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ.
８５ 植 物 科 学 学 报 第 ３３卷　
y x= 0.088 + 127.7
r P= 0.9731, < 0.01
130
135
140
145
150
0 50 100 150 200 250
G
en
er
at
io
n
tim
e
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)
Meristematic karyon projected area (μm )2
Ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎｓ ａｒｅ ｄｒａｗｎ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ ｌｉｎｅａｒ ｍｏｄｅｌꎬ ａｎｄ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｒ
ａｎｄ Ｐ ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｓｈｏｗｎ.
Ｆｉｇ􀆰 ３　 Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｔｉｍｅ ａｎｄ
ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｖｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ
Y 2 = 1044.6e-0.0331x
R 2 = 0.9973
0
50
100
150
200
250
0 50 100 150 200 250
Meristematic karyon projected area (μm )2
Se
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m
g)
Ｆｉｇ􀆰 ４　 Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ ｓｅｅｄ ｎｕｍｂｅｒ ｐｅｒ ｄｒｙ
ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌ ｗｅｉｇｈｔ ａｎｄ ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ ｋａｒｙｏｎ
ｐｒｏｊｅｃｔｅｄ ａｒｅａ ｏｆ ｔｈｅ Ｖｉｃｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ
　 　 Ａｐｐｌｙｉｎｇ ｔｈｅ ｓｑｕａｓｈｉｎｇ ｍｅｔｈｏｄ ｔｏ ｐｒｅｐａｒｅ
ｔｅｍｐｏｒａｒｙ ｓｌｉｄｅｓ ｆｏｒ ｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｋａｒｙｏｎ ａｎｄ
ｃｅｌｌ ｓｉｚｅｓ ｉｓ ａ ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌ ｐｒａｃｔｉｃｅ. Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅ
ｓｉｚｅｓ ｏｆ ｋａｒｙｏｎｓ ｏｒ ｃｅｌｌｓ ｍａｙ ｂｅ ａｆｆｅｃｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ
ｓｑｕａｓｈｉｎｇ ｆｏｒｃｅꎬ ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｔ ｓｔｕｄｙ ｍｏｒｅ ｔｈａｎ
５００ ｃｅｌｌｓ ｗｅｒｅ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｉｎ ｅａｃｈ ｔｒｅａｔｍｅｎｔꎬ ａｎｄ
ｔｈｕｓ ｔｈｅ ｃｙｔｏｌｏｇｉｃａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ａｍｏｎｇ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｂｅｌｉｅｖａｂｌｅ.
Ｎｏ ｓｉｎｇｌｅ ｉｎｄｅｘ ｃａｎ ｂｅ ａｐｐｌｉｅｄ ｔｏ ｐｒｅｄｉｃｔ ａｌｌ
ｉｎｖａｓｉｏｎ ｐｈｅｎｏｍｅｎａ. Ｉｎ ｃｕｒｒｅｎｔ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｏｎ ｒｉｓｋ
ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｓｙｓｔｅｍｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ｔｈｅ Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ
ｅｘｏｔｉｃ ｐｌａｎｔ ｒｉｓｋ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｓｙｓｔｅｍ[３１] ａｎｄ ｔｈｅ
Ｃｈｉｎｅｓｅ ａｌｉｅｎ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅ ｒｉｓｋ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｓｙｓ￣
ｔｅｍｓ[３２]ꎬ ｍａｎｙ ｉｎｄｉｃｅｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ａｐｐｌｉｅｄ ｔｏ
ｆｏｒｍ ａｎ ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ｒｉｓｋ ｖａｌｕｅ ｔｏ ｅｖａｌｕａｔｅ ｔｈｅ ｉｎｖａ￣
ｓｉｖｅｎｅｓｓ ｏｆ ａ ｆｏｃａｌ ｐｌａｎｔ. Ｔｈｅ ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ ｏｆ ｔｈｅ
ｐｒｅｓｅｎｔ ｗｏｒｋ ｗａｓ ｔｏ ｆｉｎｄ ｎｅｗ ｉｎｄｉｃｅｓ ｔｏ ｉｍｐｒｏｖｅ
ｏｒ ｅｎｒｉｃｈ ｔｈｅ ｒｉｓｋ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｉｎｄｅｘ ｓｙｓｔｅｍꎬ ｎｏｔ
ｔｏ ｒｅｐｌａｃｅ ｅｘｉｓｔｉｎｇ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｉｎｄｉｃｅｓ. Ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ
ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｐｌａｎｔｓ ｗｉｔｈ ｓｍａｌｌ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓ ｓｔａ￣
ｔｉｓｔｉｃａｌｌｙ ｈａｄ ｓｍａｌｌｅｒ ａｐｉｃａｌ ｍｅｒｉｓｔｅｍ ｋａｒｙｏｎｓ ａｎｄ
ｃｅｌｌｓꎬ ｈｉｇｈ ｍｉｔｏｓｉｓ ｒａｔｅｓꎬ ｓｍａｌｌｅｒ ｓｅｅｄｓ ｗｉｔｈ ｈｉｇ￣
ｈｅｒ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅｓꎬ ｈａｄ ｓｈｏｒｔｅｒ ｌｉｆｅ
ｃｙｃｌｅｓꎬ ａｎｄ ｔｈｕｓ ｔｅｎｄｅｄ ｔｏ ｂｅ ｍｏｒｅ ｈｉｇｈｌｙ ｉｎｖａ￣
ｓｉｖｅ. Ｃｏｍｐａｒｅｄ ｗｉｔｈ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅｓꎬ ｔｈｅ ｒｏｏｔ
ｍｅｒｉｓｔｅｍ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｉｓ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｅａｓｉｌｙ ｄｅｔｅｒ￣
ｍｉｎｅｄ. Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｋａｒｙｏｎ ｓｉｚｅ ｉｓ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ａｓ ａ
ｎｅｗ ｉｎｄｅｘ ｉｎ ｔｈｅ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅ￣
ｎｅｓｓ ｉｎ ｌｉｅｕ ｏｆ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ.
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:
[ １ ] 　 Ｎｉｅｌｓｅｎ ＪＡꎬ Ｗｈｉｇｈａｍ ＰＡꎬ Ｆｒｅｗ ＲＤꎬ Ｃａｌｌａｗａｙ
ＲＭꎬ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ＫＪＭ. Ｉｎｖａｓｉｏｎ ｅｓｓｅｎｔｉａｌｓ: ｄｏｅｓ
ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｐｌａｓｔｉｃｉｔｙ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅ ｔｏ ｔｈｅ ｉｎ￣
ｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｏｆ Ｔｈｙｍｕｓ ｖｕｌｇａｒｉｓ Ｌ.? [ Ｊ] . Ｃｈｅｍｏ￣
ｅｃｏｌｏｇｙꎬ ２０１３ꎬ ２４(１): １５－２７.
[ ２ ] 　 Ｇａｌｌａｇｈｅｒ ＲＶꎬ Ｌｅｉｓｈｍａｎ ＭＲꎬ Ｍｉｌｌｅｒ ＪＴꎬ Ｈｕｉ Ｃꎬ
Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ ＤＭꎬ Ｓｕｄａ Ｊꎬ Ｔｒáｖｎíｅｋ Ｐ. Ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ
ｉｎ ｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ ａｃａｃｉａｓ: ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ｔｒａｉｔｓ ａｎｄ ｇｅｎｏｍｅ ｓｉｚｅ [ Ｊ] . Ｄｉｖｅｒｓ Ｄｉｓｔｒｉｂꎬ
２０１１ꎬ １７(５): ８８４－８９７.
[ ３ ] 　 Ｃｈｅｎ ＧＱꎬ Ｇｕｏ ＳＬꎬ Ｙｉｎ ＬＰ. Ａｐｐｌｙｉｎｇ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌ￣
ｕｅｓ ｔｏ ｅｖａｌｕａｔｅ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｏｆ ａｎｇｉｏｓｐｅｒｍｓ: ｖａ￣
ｌｉｄｉｔｙ ａｎｄ ｌｉｍｉｔａｔｉｏｎ[ Ｊ] . Ｂｉｏｌ Ｉｎｖａｓｉｏｎｓꎬ ２０１０ꎬ １２
(５): １３３５－１３４８.
[ ４ ] 　 Ｈｏｄｇｉｎｓ ＫＡꎬ Ｌａｉ Ｚꎬ Ｎｕｒｋｏｗｓｋｉ Ｋꎬ Ｈｕａｎｇ Ｊꎬ
Ｒｉｅｓｅｂｅｒｇ ＬＨ. Ｔｈｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂａｓｉｓ ｏｆ ｉｎｖａｓｉｖｅ￣
ｎｅｓｓ: ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｉｎ ｇｅｎｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｎａｔｉｖｅ ａｎｄ
ｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ ｃｏｍｍｏｎ ｒａｇｗｅｅｄ (Ａｍｂｒｏｓｉａ ａｒｔｅｍｉｓｉｉ￣
ｆｏｌｉａ) ｉｎ ｓｔｒｅｓｓｆｕｌ ａｎｄ ｂｅｎｉｇｎ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓ [ Ｊ] .
Ｍｏｌ Ｅｃｏｌꎬ ２０１３ꎬ ２２(９): ２４９６－２５１０.
[ ５ ] 　 Ｂａｋｅｒ ＨＧ. Ｔｈｅ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ｗｅｅｄｓ[Ｊ] . Ａｎｎｕ Ｒｅｖ
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[ ６ ] 　 Ｄａｅｈｌｅｒ ＣＣ. Ｔｈｅ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｉｎｖａｓｉｖｅ
ａｎｇｉｏｓｐｅｒｍ ｐｌａｎｔｓ: ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｎｓｉｇｈｔｓ ａｎｄ ｃｏｍ￣
ｐａｒｉｓｏｎ ｔｏ ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ ｗｅｅｄｓ [ Ｊ] . Ｂｉｏｌ Ｃｏｎｓｅｒｖꎬ
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[ ８ ] 　 Ｍａｉｌｌｅｔ Ｊꎬ Ｌｏｐｅｚ￣Ｇａｒｃｉａ Ｃ. Ｗｈａｔ ｃｒｉｔｅｒｉａ ａｒｅ ｒｅｌｅ￣
ｖａｎｔ ｆｏｒ ｐｒｅｄｉｃｔｉｎｇ ｔｈｅ ｉｎｖａｓｉｖｅ ｃａｐａｃｉｔｙ ｏｆ ａ ｎｅｗ
ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ ｗｅｅｄ? Ｔｈｅ ｃａｓｅ ｏｆ ｉｎｖａｓｉｖｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｆｒａｎｃｅ[Ｊ] . Ｗｅｅｄ Ｒｅｓꎬ ２０００ꎬ ４０(１):
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[ ９ ] 　 Ｓｕｔｈｅｒｌａｎｄ Ｓ. Ｗｈａｔ ｍａｋｅｓ ａ ｗｅｅｄ ａ ｗｅｅｄ: ｌｉｆｅ
ｈｉｓｔｏｒｙ ｔｒａｉｔｓ ｏｆ ｎａｔｉｖｅ ａｎｄ ｅｘｏｔｉｃ ｐｌａｎｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ＵＳＡ
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[１０] 　 Ｂｅｎｎｅｔｔ ＭＤꎬ Ｌｅｉｔｃｈ ＩＪꎬ Ｈａｎｓｏｎ Ｌ. ＤＮＡ ａｍｏｕｎｔｓ
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[１１] 　 Ｒｅｊｍａｎｅｋ Ｍ. Ａ ｔｈｅｏｒｙ ｏｆ ｓｅｅｄ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ:
Ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｓｋｅｔｃｈ[ Ｊ] . Ｂｉｏｌ Ｃｏｎｓｅｒｖꎬ １９９６ꎬ ７８ (１－
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[１２] 　 Ｇｒｏｔｋｏｐｐ Ｅꎬ Ｒｅｊｍａｎｅｋ Ｍꎬ Ｓａｎｄｅｒｓｏｎ ＭＪ. Ｅｖｏｌｕ￣
ｔｉｏｎ ｏｆ ｇｅｎｏｍｅ ｓｉｚｅ ｉｎ ｐｉｎｅｓ (Ｐｉｎｕｓ) ａｎｄ ｉｔｓ ｌｉｆｅ￣
ｈｉｓｔｏｒｙ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｓ: ｓｕｐｅｒ ｔｒｅｅ ａｎａｌｙｓｅｓ[Ｊ] . Ｅｖｏｌｕ￣
ｔｉｏｎꎬ ２００４ꎬ ５８(８): １７０５－１７２９.
[１３] 　 Ｇｕｏ ＳＬꎬ Ｃｈｅｎ ＧＱꎬ Ｍａｏ ＬＨ. Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅ￣
ｔｗｅｅｎ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ ａｎｄ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｉｎ ５３９ ａｎ￣
ｇｉｏｓｐｅｒｍ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｃｈｉｎａ [ Ｊ] . Ａｃｔａ Ｅｃｏｌ Ｓｉｎꎬ
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[１４] 　 Ｋｎｉｇｈｔ ＣＡꎬ Ａｃｋｅｒｌｙ ＤＤ. Ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｎｕｃｌｅａｒ ＤＮＡ
ｃｏｎｔｅｎｔ ａｃｒｏｓｓ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｇｒａｄｉｅｎｔｓ: ａ ｑｕａｎｔｉｌｅ
ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ[Ｊ]. Ｅｃｏｌ Ｌｅｔꎬ ２００２ꎬ ５(１): ６６－
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[１５] 　 Ｆｕ ＧＬꎬ Ｆｅｎｇ ＹＬ. Ｎｕｌｃｅａｒ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ ｏｆ ａｌｉｅｎ ｉｎ￣
ｖａｓｉｖｅ ａｎｄ ｎａｔｉｖｅ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ｉｔｓ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｗｉｔｈ
ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ[ Ｊ] . Ｃｈｉｎ Ｊ Ｅｃｏｌꎬ ２００７ꎬ ２６ ( １０):
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[１６] 　 Ｇｒｉｍｅ ＪＰꎬ Ｍｏｗｆｏｒｔｈ ＭＡ. Ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｇｅｎｏｍｅ
ｓｉｚｅａｎ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｎｔｅｒｐｒｅｔａｔｉｏｎ[Ｊ] . Ｎａｔｕｒｅꎬ １９８２ꎬ
２９９(５８７９): １５１－１５３
[１７] 　 Ｂｅｎｎｅｔｔ ＭＤꎬ Ｈｅｓｌｏｐ￣Ｈａｒｒｉｓｏｎ ＪＳꎬ Ｓｍｉｔｈ ＪＢꎬ Ｗａｒｄ
ＪＰ. ＤＮＡ ｄｅｎｓｉｔｙ ｉｎ ｍｉｔｏｔｉｃ ａｎｄ ｍｅｉｏｔｉｃ ｍｅｔａｐｈａｓｅ
ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓ ｏｆ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ａｎｉｍａｌｓ [ Ｊ] . Ｊ Ｃｅｌｌ
Ｓｃｉꎬ １９８３ꎬ ６３: １７３－１７９.
[１８] 　 Ａｎｄｅｒｓｏｎ ＬＫꎬ Ｓｔａｃｋ ＳＭꎬ Ｆｏｘ ＭＨꎬ Ｃｈｕａｎｓｈａｎ Ｚ.
Ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｇｅｎｏｍｅ ｓｉｚｅ ａｎｄ ｓｙｎａｐｔｏｎｅ￣
ｍａｌ ｃｏｍｐｌｅｘ ｌｅｎｇｔｈ ｉｎ ｈｉｇｈｅｒ ｐｌａｎｔｓ[Ｊ] . Ｅｘｐ Ｃｅｌｌ
Ｒｅｓꎬ １９８５ꎬ １５６(２): ３６７－３７７.
[１９] 　 Ｒｅｅｓ Ｈꎬ Ｃａｍｅｒｏｎ ＦＭꎬ Ｈａｚａｒｉｋａ ＭＨꎬ Ｊｏｎｅｓ ＧＨ.
Ｎｕｃｌｅａｒ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｄｉｐｌｏｉｄ ａｎｇｉｏｓｐｅｒｍｓ
[Ｊ] . Ｎａｔｕｒｅꎬ １９６６ꎬ ２１１: ８２８－８３０
[２０] 　 Ａｃｏｓｔａ ＭＣꎬ Ｇｕｅｒｒａ Ｍꎬ Ｍｏｓｃｏｎｅ ＥＡ. Ｋａｒｙｏｌｏｇｉｃａｌ
ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａｍｏｎｇ ｓｏｍｅ Ｓｏｕｔｈ Ａｍｅｒｉｃａｎ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｏｆ Ｓｏｌａｎｕｍ (Ｓｏｌａｎａｃｅａｅ) ｂａｓｅｄ ｏｎ ｆｌｕｏｒｏｃｈｒｏｍｅ
ｂａｎｄｉｎｇ ａｎｄ ｎｕｃｌｅａｒ ＤＮＡ ａｍｏｕｎｔ[ Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｓｙｓ
Ｅｖｏｌꎬ ２０１２ꎬ ２９８(８): １５４７－１５５６.
[２１] 　 Ａｎｄｒéｓ￣Ｓáｎｃｈｅｚ Ｓꎬ Ｔｅｍｓｃｈ ＥＭꎬ Ｒｉｃｏ Ｅꎬ Ｍａｒｔíｎｅｚ￣
Ｏｒｔｅｇａ ＭＭ. Ｇｅｎｏｍｅ ｓｉｚｅ ｉｎ Ｆｉｌａｇｏ Ｌ. ( Ａｓｔｅｒａ￣
ｃｅａｅꎬ Ｇｎａｐｈａｌｉｅａｅ) ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ: ｐｈｙｌｏｇｅ￣
ｎｅｔｉｃꎬ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ａｎｄ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ[Ｊ] .
Ｐｌａｎｔ Ｓｙｓ Ｅｖｏｌꎬ ２０１３ꎬ ２９９(２): ３３１－３４５.
[２２] 　 Ｍｅｎｇ Ｒꎬ Ｆｉｎｎ Ｃ. Ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｐｌｏｉｄｙ ｌｅｖｅｌ ａｎｄ ｎｕ￣
ｃｌｅａｒ ＤＮＡ ｃｏｎｔｅｎｔ ｉｎ Ｒｕｂｕｓ ｂｙ ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ[Ｊ] .
Ｊ Ａｍｅｒ Ｓｏｃ Ｈｏｒｔ Ｓｃｉꎬ ２００２ꎬ １２７(５): ７６７－７７５.
[２３] 　 Ｓｕｇｉｙａｍａ Ｓꎬ Ｙａｍａｇｕｃｈｉ Ｋꎬ Ｙａｍａｄａ Ｔ. Ｉｎｔｒａｓｐｅ￣
ｃｉｆｉｃ ｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｎｕｃｌｅａｒ
ＤＮＡ ｃｏｎｔｅｎｔ ｉｎ Ｌｏｌｉｕｍ ｐｅｒｅｎｎｅ Ｌ. [Ｊ] . Ｅｕｐｈｙｔｉｃａꎬ
２００２ꎬ １２８(２): １４５－１５１.
[２４] 　 Ｄｏｌｅｚｅｌ Ｊꎬ Ｇｒｅｉｌｈｕｂｅｒ Ｊꎬ Ｌｕｃｒｅｔｔｉ Ｓ. Ｐｌａｎｔ ｇｅｎｏｍｅ
ｓｉｚｅ ｅｓｔｉｍａｔｉｏｎ ｂｙ ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ: ｉｎｔｅｒ￣ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ
ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ[Ｊ] . Ａｎｎ Ｂｏｔꎬ １９９８ꎬ ８２(ｓｕｐ. Ａ): １７－
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[２５] 　 Ｈｏｌｍ ＬＧꎬ Ｐａｎｃｈｏ ＪＶꎬ Ｈｅｒｂｅｒｇｅｒ ＪＰ. Ａ ｇｅｏｇｒａ￣
ｐｈｉｃａｌ ａｔｌａｓ ｏｆ ｗｏｒｌｄ ｗｅｅｄｓ[Ｍ] . Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ: Ｊｏｈｎ
Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓꎬ １９７９.
[２６] 　 Ｌｉ ＹＨ. Ｗｅｅｄｓ ｉｎ Ｃｈｉｎａ[Ｍ] . Ｂｅｉｊｉｎｇ: Ｃｈｉｎａ Ａｇｒｉ￣
ｃｕｌｔｕｒｅ Ｐｒｅｓｓꎬ １９９８.
[２７] 　 Ｂｅｎｎｅｔｔ ＭＤꎬ Ｌｅｉｔｃｈ ＩＪ. Ｎｕｃｌｅａｒ ＤＮＡ ａｍｏｕｎｔｓ ｉｎ
ａｎｇｉｏｓｐｅｒｍｓ[ Ｊ] . Ａｎｎ Ｂｏｔꎬ １９９５ꎬ ７６ (２): １１３ －
１７６.
[２８] 　 Ｄａｅｈｌｅｒ ＣＣ. Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ ｏｆ ｃｏ￣ｏｃ￣
ｃｕｒｒｉｎｇ ｎａｔｉｖｅ ａｎｄ ａｌｉｅｎ ｉｎｖａｓｉｖｅ ｐｌａｎｔｓ: Ｉｍｐｌｉｃａ￣
ｔｉｏｎｓ ｆｏｒ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ａｎｄ ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ[Ｊ] . Ａｎｎ Ｒｅｖ
Ｅｃｏｌ Ｅｖｏｌ Ｓｙｓꎬ ２００３ꎬ ３４(１): １８３－２１１.
[２９] 　 Ｆｕｎｋ ＪＬꎬ Ｖｉｔｏｕｓｅｋ ＰＭ. Ｒｅｓｏｕｒｃｅ￣ｕｓｅ ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ
ａｎｄ ｐｌａｎｔ ｉｎｖａｓｉｏｎ ｉｎ ｌｏｗ￣ｒｅｓｏｕｒｃｅ ｓｙｓｔｅｍｓ [ Ｊ] .
Ｎａｔｕｒｅꎬ ２００７ꎬ ４４６(７１３９): １０７９－１０８１.
[３０] 　 Ｓｅａｓｔｅｄｔ Ｔ. Ｐｌａｎｔ ｅｃｏｌｏｇｙ￣Ｒｅｓｏｕｒｃｅｆｕｌ ｉｎｖａｄｅｒｓ
[Ｊ] . Ｎａｔｕｒｅꎬ ２００７ꎬ ４４６(７１３９): ９８５－９８６.
[３１] 　 Ｃａｌｅｙ Ｐꎬ Ｌｏｎｓｄａｌｅ ＷＭꎬ Ｐｈｅｌｏｕｎｇ ＰＣ. Ｑｕａｎｔｉｆｙｉｎｇ
ｕｎｃｅｒｔａｉｎｔｙ ｉｎ ｐｒｅｄｉｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｉｎｖａｓｉｖｅｎｅｓｓꎬ ｗｉｔｈ
ｅｍｐｈａｓｉｓ ｏｎ ｗｅｅｄ ｒｉｓｋ ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ[Ｊ] . Ｂｏｉｌ Ｉｎｖａ￣
ｓｉｏｎｓꎬ ２００６ꎬ ８(８) １５９５－１６０４.
[３２] 　 Ｌｉ ＺＹꎬ Ｘｉｅ Ｙ. Ｉｎｖａｓｉｖｅ Ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｃｈｉｎａ[Ｍ] . Ｂｅ￣
ｊｉｎｇ: Ｃｈｉｎａ Ｆｏｒｅｓｔｒｙ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｈｏｕｓｅꎬ ２００２.
[３３] 　 Ｎｉ ＬＰꎬ Ｇｕｏ ＳＬ. Ｒｅｖｉｅｗ ｏｎ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ ｉｎ￣
ｖａｓｉｖｅｎｅｓｓ ｏｆ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ＤＮＡ Ｃ￣ｖａｌｕｅ [ Ｊ] .
Ａｃｔａ Ｅｃｏｌ Ｓｉｎꎬ ２００５ꎬ ２５(９): ２３７２－２３８１.
(责任编辑: 刘艳玲)
０６ 植 物 科 学 学 报 第 ３３卷