全 文 :作物学报 ACTA AGRONOMICA SINICA 2015, 41(1): 72−79 http://zwxb.chinacrops.org/
ISSN 0496-3490; CODEN TSHPA9 E-mail: xbzw@chinajournal.net.cn
DOI: 10.3724/SP.J.1006.2015.00072
新疆小麦 Psy-A1、Ppo-A1、Ppo-D1、TaLox-B1等位变异对面粉色泽
的影响
相吉山 1,2 穆培源 1,2,* 桑 伟 1,2 徐红军 1,2,* 聂迎彬 1,2 崔凤娟 1,2
庄 丽 2,3 韩新年 1,2 邹 波 1
1新疆农垦科学院作物研究所, 新疆石河子 832000; 2谷物品质与遗传改良兵团重点实验室, 新疆石河子 832000; 3石河子大学生命科
学院, 新疆石河子 832003
摘 要: 利用已开发的面粉色泽相关性状基因的分子标记, 检测了 182 份新疆小麦品种(系)的 Psy-A1、Ppo-A1、
Ppo-D1、TaLox-B1 等位变异, 并结合表型鉴定结果, 分析不同等位变异对面粉色泽的影响。结果表明, 单基因等位
变异对面粉色泽的影响不同, 其中 4个基因等位变异 L*值的差异均不显著; 对 a*值的效应, Psy-A1a高于 Psy-A1b (P <
0.01), Ppo-A1b高于 Ppo-A1a (P < 0.05), TaLox-B1a高于 TaLox-B1b (P < 0.05); Psy-A1a基因型的 b*值高于 Psy-A1b基
因型(P < 0.01); Psy-A1a基因型的 Wht值低于 Psy-A1b基因型(P < 0.01)。说明 Psy-A1是影响面粉色泽(红度、黄度和
白度)的重要基因, 而 Ppo-A1和 TaLox-B1基因的等位变异只对面粉红度有显著影响。4个检测基因共有 12种等位变
异组合, 对 a*、b*和 Wht 值有显著效应(P < 0.01), 但对 L*值影响不显著(P > 0.05); Psy-A1b/Ppo-A1a/Ppo-D1b/
TaLox-B1b 组合具有最高的 Wht值和最低的 a*、b*值, Psy-A1a/Ppo-A1a/Ppo-D1b/TaLox-B1a组合具有最低的 Wht值和
最高的 a*、b*值。182 份品种的 Wht 值平均为 86.86, 其中审定品种平均为 86.87, 冬小麦品种为 86.42, 春小麦品种
为 87.32。青春 5 号具有优良的基因型和较高的面粉白度, 应加强利用。总体来看, 改良新疆小麦面粉的白度, 应重
点加强对 Psy-A1基因的选择, 提高 Psy-A1b比例。
关键词: 新疆; 面粉色泽基因; 等位基因; 功能标记
Effects of Psy-A1, Ppo-A1, Ppo-D1, and TaLox-B1 Alleles on Flour Color of
Xinjiang Wheats
XIANG Ji-Shan1,2, MU Pei-Yuan1,2,*, SANG Wei1,2, XU Hong-Jun1,2,*, NIE Ying-Bin1,2, CUI Feng-Juan1,2,
ZHUANG Li2,3, HAN Xin-Nian1,2, and ZOU Bo1
1 Crop Research Institute, Xinjiang Academy of Agricultural and Reclamation Science, Shihezi 832000, China; 2 Key Laboratory of Xinjiang Produc-
tion and Construction Corps for Cereal Quality Research and Genetic Improvement, Shihezi 832000, China; 3 College of Life Science, Shihezi Uni-
versity, Shihezi 832003, China
Abstract: The allelic variations on Psy-A1, Ppo-A1, Ppo-D1, and TaLox-B1 loci in 182 Xinjiang wheat varieties (lines) were
tested using developed molecular markers that are associated with flour color. The effects of these alleles were analyzed in com-
bination with phenotypes with the L*, a*, and b* values as well as the Wht data. On the view of a single gene, the allelic variation
showed diverse effects on flour color. For L* value, the allelic effect was not significant. For a* value, the effect was Psy-A1a >
Psy-A1b (P < 0.01), Ppo-A1b > Ppo-A1a (P < 0.05), and TaLox-B1a > TaLox-B1b (P < 0.05). For b* value, the effect of Psy-A1a
was higher than that of Psy-A1b (P < 0.01). As a result, the Wht value of Psy-A1a was signlificantly lower than that of Psy-A1b (P
< 0.01). These results suggest that Psy-A1 significantly affects flour redness, yellowness and whiteness, whereas Ppo-A1 and Ta-
Lox-B1 only have significant effects on flour redness. A total of 12 allelic combinations were found on the four gene loci, with
本研究由新疆兵团种质资源专项 (2012BB047), 国家自然科学基金项目 (31260324, U1178306), 新疆兵团重点领域科技攻关项目
(2011BA002), 新疆兵团青年创新基金项目(2013CB022), 新疆农垦科学院科技引导计划项目(44YYD201204)和新疆农垦科学院青年基
金项目(YQJ201304)资助。
* 通讯作者(Corresponding authors): 穆培源, E-mail: mupy@163.com; 徐红军, E-mail: xhj288@163.com
第一作者联系方式: E-mail: xiangjsh@163.com
Received(收稿日期): 2014-04-14; Accepted(接受日期): 2014-09-30; Published online(网络出版日期): 2014-11-11.
URL: http://www.cnki.net/kcms/detail/11.1809.S.20141111.1556.005.html
第 1期 相吉山等: 新疆小麦 Psy-A1、Ppo-A1、Ppo-D1、TaLox-B1等位变异对面粉色泽的影响 73
significant effect on a*, b* and Wht values (P < 0.01) and slight effect on L* value (P > 0.05). The combination Psy-A1b/PPO-
A1a/PPO-D1b/TaLox-B1b had the highest Wht value and the lowest a* and b* values, and combination Psy-A1a/PPO-A1a/PPO-
D1b/TaLox-B1a had the lowest Wht value and the highest a* and b* values. The average Wht value of total varieties (lines) tested
was 86.86, and that of the released, winter, and spring varieties (lines) was 86.87, 86.42, and 87.32, respectively. Qingchun 5
should be used frequently as a promising parent in breeding programs for its excellent genotype and high flour whiteness. Our
results indicate that Psy-A1 is a key gene for improving flour whiteness, and the frequency of Psy-A1b should be promoted in
Xinjiang wheats.
Keywords: Xinjiang; Flour color gene; Alleles; Functional marker
面粉色泽作为评价小麦品质的重要指标, 对面
制品的商品性有重要影响 [1]。不同面制食品对颜色
的要求有一定差异 , 东南亚与日本的黄碱面条
(yellow alkaline noodle)和硬粒小麦通心面(pasta)要
求面条保持亮黄色, 而我国的传统食品如各种白盐
面条(white salted noodle)、馒头(steamed bread)、包
子(steamed stuffed bun)和饺子(dumpling)等要求色
泽亮白[2-5]。消费市场对面粉色泽多样化的需求, 导
致小麦育种目标不同。
面粉的色泽主要由色素决定。色素的总量取决于
八氢番茄红素合酶(phytoene synthase, Psy)等色素类
物质的积累 [6]以及多酚氧化酶 (polyphenol oxidase,
PPO)、过氧化物酶(peroxidase, POD)、脂肪氧化酶
(lipoxygenase, LOX)等对色素类物质的氧化降解[7-9]。
Psy 是植物类胡萝卜素合成途径中的限速酶[10], 直接
影响籽粒胚乳的颜色[11]。He 等[12-13]克隆了普通小麦
7AL 染色体上 Psy-A1 基因的全长序列, 开发了共显
性标记YP7A-1和YP7A-2; 结合电子克隆方法, 鉴定
并克隆了 7BL 染色体上 Psy-B1 的等位变异, 开发了
功能标记 YP7B-1、YP7B-2、YP7B-3和 YP7B-4。PPO
是面条制作过程中颜色变褐的主要原因, 其表型贡
献率高达 50%~70%[14-15]。张立平等[16]研究表明, 控
制 PPO 活性的主效基因位于 2AL 和 2DL 染色体上,
分别解释 37.2%~50.1%和 25.1%~29.1%的表型变异。
Sun 等[17]开发了位于 2AL 上 PPO 活性主效基因的
STS标记 PPO18, 能有效地区分控制高、低 PPO活性
的等位基因 Ppo-A1a 和 Ppo-A1b; He 等[18]利用小麦
PPO基因序列开发了位于 2DL染色体上 Ppo-D1a和
Ppo-D1b的互补显性标记 PPO16和 PPO29。LOX可
以催化多聚不饱和脂肪酸(polyunsaturated fatty acid,
PUFA), 使之释放出高活性的氧自由基, 将面粉及面
制品中色素分子的共扼双键氧化为单键, 从而对面
粉颜色起到漂白作用[19-20]。Carrera等[21]认为, 面粉色
素的降解主要发生在磨粉和面制品的加工过程中 ,
并且面制品加工过程中色素的损失主要源于 LOX 的
漂白作用。高 LOX 活性可以提高面粉和相关产品的
白度, 从而提升面粉的商品价值[22-23]。LOX 活性主要
受位于第 4 和第 5 同源群上的基因调控[24-25], 第 4 同
源群尤为重要。Geng等[1]利用电子克隆方法克隆了普
通小麦 4BS 和 5B 染色体上 LOX 活性基因 TaLox-B1
和 TaLox-B2的全长编码序列, 并开发了互补显性标记
LOX16和 LOX18, 能有效检测 TaLox-B1基因[25]。
新疆拉面(Xinjiang hand-stretched noodle)属于
手工鲜食白盐面条, 是新疆独具特色的面条种类。
据不完全统计, 新疆小麦面粉年产量的 80%都用于
制作新疆拉面 [26]。新疆拉面对色泽有较高的要求 ,
在目前的评价标准中, 色泽占新疆拉面加工品质总
分的 15%[27]。小麦籽粒 Psy、PPO、LOX活性及面粉
黄色素含量等与颜色相关的指标在小麦育种实践中
已受到重视 [19-20,24], 并已经开发了主效基因的功能
标记 [13,17-18,25]。王亮等[28-29]、相吉山等[30]分别对新
疆小麦 Psy、PPO、LOX相关基因进行了分子标记检
测, 但没有探讨这些基因型对面粉色泽的影响。本研
究以 182 份新疆小麦品种(系)为材料, 测定面粉 L*
值、a*值、b*值, 利用已开发的功能标记对 Psy-A1、
Ppo-A1、Ppo-D1、TaLox-B1基因进行检测, 分析不同
等位变异对面粉色泽的影响, 为利用这些分子标记
辅助育种提供参考信息。
1 材料与方法
1.1 材料
182份新疆小麦品种(系), 均由新疆农垦科学院
作物研究所小麦课题组收集保存。其中, 冬小麦110
份, 包括地方品种7份、引进品种(系) 25份、自育品
种(系) 78份; 春小麦72份, 包括地方品种11份、引进
品种(系) 20份、自育品种(系) 41份。这些材料涵盖
了新疆南北小麦主要种植区各个时期种植和使用的
冬、春小麦品种, 具有较好的代表性。
1.2 表型鉴定
2007—2008和2008—2009年度在新疆农垦科学
院作物研究所农业试验站种植所有材料, 田间顺序
排列; 5行区, 行长1.8 m, 行距0.25 m; 播量为每公
74 作 物 学 报 第 41卷
顷525万粒。田间管理同大田生产, 正常成熟后及时
收获, 人工脱粒。
分年度测定面粉色泽, 取每份材料脱粒后精选
的 1 kg种子, 在室温存放 30 d后制粉, 根据硬度加
水润麦, 软质麦、混合麦、硬质麦分别加水至 14.0%、
15.0%和 16.0%, 润麦 16~18 h 后 , 用 Quandrmat
Senior 磨 (德国 Brabender 公司 )制粉 , 用 Minolta
CR-310型色彩色差仪(日本 Minolta Camera公司)测
定面粉色泽。用 D65 的 CIE-L*、a*、b*色度系统表
示面粉色泽, L*值表示白(亮)-黑, 正值表示白色, 其
值越大越白(亮); a*值表示红-绿色, 正值表示红色,
其值越大越红 ; b*值表示黄 -蓝色 , 正值表示黄色 ,
其值越大越黄。3个月内完成全部测试。
[31]
2 2 2Wht 100 100 L a b= − − + +* * *
白度计算公式 为
( )
利用SAS 8.0软件对同一基因不同等位变异品
种的表型进行成组数据的t测验, 对不同基因型组合
品种的表型进行随机模型的方差分析(ANOVR), 并
利用LSD法进行多重比较。
1.3 分子标记检测等位基因
从每个品种(系)选3粒有代表性的种子, 粉碎后
放入2.0 mL离心管中 , 按照Lagudah等 [32]的方法提
取基因组DNA。DNA提取液含288 mmol L–1 NaCl、
200 mmol L–1 Tris-HCl (pH 8.0)、25 mmol L–1 EDTA
和0.5% SDS。
利用已开发的分子标记检测 Psy-A1、Ppo-A1、
Ppo-D1、TaLox-B1的等位变异(表 1)。PCR体系 20 μL,
含 20 mmol L–1 Tris-HCl (pH 8.4)、20 mmol L–1 KCl、
200 μmol L–1 dNTPs、1.5 mmol L–1 MgCl2、每条引物
10 pmol、Taq DNA聚合酶 1.5 U (北京汇天东方)、
模板 DNA 50 ng。在 MJ Research PTC-200 PCR仪
(MJ Research, Inc., Waltham, MA)上进行扩增, PCR
程序为 94℃预变性 5 min; 94℃变性 45 s, 退火, 72℃
延伸 1 min, 40个循环; 72℃延伸 10 min。
表 1 检测目标基因等位变异的引物及其扩增信息
Table 1 Marker and amplification information for detecting alleles of target genes
基因
Gene
引物
Marker
序列
Sequence (5′–3′)
退火
Annealing
temp. (℃)
退火时间
Annealing
time (s)
产物大小
Product
size (bp)
等位变异
Allele
参考文献
Reference
Psy-A1 YP7A F: GGACCTTGCTGATGACCGAG
R: TGACGGTCTGAAGTGAGAATGA
65 30 194231 Psy-A1a
Psy-A1b
He et al. [12]
Ppo-A1 PPO18 F: AACTGCTGGCTCTTCTTCCCA
R: AAGAAGTTGCCCATGTCCGC
65 60 685876 Ppo-A1a
Ppo-A1b
Sun et al. [17]
Ppo-D1 PPO16 F: TGCTGACCGACCTTGACTCC
R: CTCGTCACCGTCACCCGTAT
66→54, 0.3℃
touch down
30 713 Ppo-D1a He et al. [18]
PPO29 F: TGAAGCTGCCGGTCATCTAC
R: AAGTTGCCCATGTCCTCGCC
68 30 490 Ppo-D1b He et al. [18]
TaLox-B1 LOX16 F: CCATGACCTGATCCTTCCCTT
R: GCGCGGATAGGGGTGGT
62 45 489 TaLox-B1a Geng et al. [25]
LOX18 F: GCGCGGATAGGGGTGGT
R: GCGCGGATAGGGGTGC
62 45 791 TaLox-B1b Geng et al. [25]
在 1.5%琼脂糖凝胶上电泳分离扩增产物, 缓冲
液体系为 1×TAE, 电压 170 V, 电泳 45 min。用溴化
乙锭(EB)染色, GelDoc XR System扫描成像并存入
计算机。根据 3粒种子的检测结果判断每个品种(系)
4个基因的等位变异。当 3粒种子带型不一致时, 重
新取样和检测, 以 2次检测一致的结果为准。
2 结果与分析
2.1 4个基因等位变异对面粉色泽的影响
在 182份材料中, 4个基因位点各检测到 2种等位
变异, 均对 L*值无显著效应; 同一基因不同等位变异
对 a*值、b*值、Wht值的影响表现不同, Psy-A1等位变
异对三者都有显著影响, Ppo-D1位点对三者均无显著
效应, 在 Ppo-A1和 TaLox-B1b位点, 仅 a*值在等位变
异间有显著差异(表 2)。说明 Psy-A1 位点等位变异会
引起面粉红度、黄度、白度的极显著变化, 而 Ppo-A1、
TaLox-B1位点等位变异会引起面粉红度的显著变化。
2.2 4个基因等位变异组合对面粉色泽的影响
在 182份品种中共检测到 Psy-A1、Ppo-A1、
Ppo-D1和 TaLox-B1基因等位变异组合 12种, 其 L*
第 1期 相吉山等: 新疆小麦 Psy-A1、Ppo-A1、Ppo-D1、TaLox-B1等位变异对面粉色泽的影响 75
表 2 4个基因不同等位变异对面粉色泽的影响
Table 2 Effect of alleles of four genes on flour color
基因
Gene
等位变异
Genetype
品种数
No. of varieties
频率
Frequency (%)
L*值
L* value
a*值
a* value
b*值
b* value
白度
Wht value
Psy-A1 Psy-A1a 168 92.3 90.88 –1.02** 9.50** 86.76
Psy-A1b 14 7.7 91.20 –0.51 7.57 88.36**
Ppo-A1 Ppo-A1a 128 70.3 90.90 –0.95 9.27 86.93
Ppo-A1b 54 29.7 90.96 –1.08* 9.58 86.76
Ppo-D1 Ppo-D1a 158 86.8 90.87 –1.00 9.47 86.79
Ppo-D1b 24 13.2 91.22 –0.94 8.86 87.41
TaLox-B1 TaLox-B1a 46 25.3 90.86 –1.11* 9.55 86.70
TaLox-B1b 136 74.7 90.92 –1.00 9.44 86.91
*和**分别表示经 t检验同一基因位点上 2个等位变异之间差异显著(P < 0.05)和差异极显著(P < 0.01)。
* and ** indicate significant difference between two alleles on one gene locus at P < 0.05 and P < 0.01 according to t-test, respectively.
值的差异不显著, a*值、b*值、Wht值的差异极显著。
其中, 基因型 Psy-A1b/Ppo-A1a/Ppo-D1b/TaLox-B1b
的 a*值、 b*值均最低 , Wht 值最高 ; 基因型
Psy-A1a/Ppo-A1a/Ppo-D1b/TaLox-B1a 的 a*值、b*值
均最高, Wht值最低(表 3)。说明 Psy-A1、Ppo-A1、
Ppo-D1、TaLox-B1基因等位变异组合会引起面粉红
度、黄度、白度的极显著变化。
2.3 新疆小麦面粉白度较高品种的基因型
182 份供试材料的 Wht 值在 81.76~91.51 之间,
平均为 86.86, 说明新疆小麦品种资源具有较高的面
粉白度。其中 Wht>90 的品种(系)有 8 份(4.4%),
Wht>85的有 166份(91.2%)。在审定品种中, 春小麦
品种 34个(表 4), Wht值平均为 87.32, 在 4个基因位
点上主要等位变异为 Psy-A1a (91.2%)、Ppo-A1a
(82.4%)、Ppo-D1a (76.5%)和 TaLox-B1b (82.4%); 冬
小麦品种 31个(表 4), Wht值平均为 86.42, 主要等位
变异类型与春小麦相同, 但其比例分别为 96.8%、
71.0%、93.5%和 64.5%。
表 3 4个基因不同等位变异组合及其色泽差异
Table 3 Flour colors of different allelic combination on Psy-A1, Ppo-A1, Ppo-D1, and TaLox-B1 loci
等位变异组合
Allelic combination
品种数
No. of varieties
频率
Frequency (%)
L*值
L* value
a*值
a* value
b*值
b* value
白度
Wht value
Psy-A1a/Ppo-A1a/Ppo-D1a/TaLox-B1a 25 13.7 90.73 –1.10 ABC 9.66 A 86.53 AB
Psy-A1a/Ppo-A1a/Ppo-D1a/TaLox-B1b 75 41.2 90.80 –0.93 ABC 9.34 AB 86.82 AB
Psy-A1a/Ppo-A1a/Ppo-D1b/TaLox-B1a 2 1.1 91.04 –1.38 A 10.36 A 86.23 B
Psy-A1a/Ppo-A1a/Ppo-D1b/TaLox-B1b 16 8.8 91.38 –1.05 ABC 9.16 AB 87.30 AB
Psy-A1a/Ppo-A1b/Ppo-D1a/TaLox-B1a 16 8.8 91.12 –1.21 AB 9.56 A 86.88 AB
Psy-A1a/Ppo-A1b/Ppo-D1a/TaLox-B1b 31 17.0 90.92 –1.11 ABC 9.76 A 86.60 AB
Psy-A1a/Ppo-A1b/Ppo-D1b/TaLox-B1b 3 1.7 90.39 –0.57 ABC 8.71 AB 87.02 AB
Psy-A1b/Ppo-A1a/Ppo-D1a/TaLox-B1a 3 1.7 90.39 –0.51 BC 8.02 AB 87.44 AB
Psy-A1b/Ppo-A1a/Ppo-D1a/TaLox-B1b 5 2.8 91.37 –0.53 BC 7.90 AB 88.28 AB
Psy-A1b/Ppo-A1a/Ppo-D1b/TaLox-B1b 2 1.1 91.63 –0.35 C 6.01 B 89.67 A
Psy-A1b/Ppo-A1b/Ppo-D1a/TaLox-B1b 3 1.7 91.63 –0.57 ABC 7.72 AB 88.58 AB
基因型 Psy-A1b/Ppo-A1b/Ppo-D1b/TaLox-B1b 只有 1 个品种, 未列入表; 大写字母表示经 LSD 法多重比较色泽在不同等位变异
组合之间差异极显著(P < 0.01)。
Only one variety is Psy-A1b/Ppo-A1b/Ppo-D1b/TaLox-B1b genotype, which is not included in the table. Capital letters indicate signif-
icant difference between flour colors on different allelic combinations at P < 0.01 according to LSD multiple-comparison.
76 作 物 学 报 第 41卷
第 1期 相吉山等: 新疆小麦 Psy-A1、Ppo-A1、Ppo-D1、TaLox-B1等位变异对面粉色泽的影响 77
3 讨论
小麦面粉的颜色性状对面条和馒头等食品的外
观品质具有重要影响[33], 消费者首先通过面制品的
颜色来判断面食品质 , 其次才会考虑烹饪后的食
味。面粉中黄色素、氧化酶类和蛋白质等均会影响
面粉色泽[34-35]。类胡萝卜素是黄色素的主要成分[14],
主要由叶黄素和黄酮等物质组成[36]。Psy 基因在类
胡萝卜素家族各种成分的生物合成环节中起着重要
作用[6,37], 是影响小麦籽粒黄色素含量的关键基因[12]。
Psy-A1基因位于小麦 7AL染色体, 可解释黄色素含
量变异的 20%~28%, Psy-A1a 的黄色素含量显著高
于 Psy-A1b [13]。本研究发现, 新疆小麦品种中, Psy-
A1a的面粉红度和黄度极显著高于 Psy-A1b、白度极
显著低于 Psy-A1b, 说明 Psy-A1 基因等位变异通过
影响黄色素含量 [13], 会引起面粉黄度和红度的显著
变化, 导致白度发生显著变化。因此, 在要求面粉白
度较高的小麦育种中, 应尽量选择含有 Psy-A1b 基
因的材料。
LOX会偶联氧化小麦面粉中的类胡萝卜素进而
使小麦面粉变白[38], 其活性是影响面粉黄色素含量
的另一主要因素[39], 与磨粉品质及面条、馒头等食
品的颜色密切相关[40]。TaLox-B1基因位于小麦 4BS
染色体 , TaLox-B1a 的 LOX 活性极显著高于
TaLox-B1b [1,25]; LOX活性与类胡萝卜素含量呈极显
著负相关, 与全麦粉白度呈显著正相关, 与全麦粉
黄度相关性不显著[32]。本研究发现, 新疆小麦品种
中, TaLox-B1a 的面粉红度显著高于 TaLox-B1b, 而
面粉亮度、黄度、白度的差异均不显著, 这与以往
的研究结果[25,32]略有不同。这与我们所选用的新疆
小麦材料有一定的关系, 其原因可能是 LOX以酶的
形式对色素类物质起催化作用, 具有酶作用的高效
性特征。推测 LOX活性在某一特定范围内的差异就
可以引起黄色素含量或面粉白度的显著变化, 但这
一推测还有待验证。
PPO 活性与磨粉品质及面条、馒头等食品的颜
色密切相关 [40], 可以解释面条(团)颜色褐变变异的
50%~70%, 是引起面条(团)颜色变褐的主要原因[15]。
Ppo-A1基因位于小麦 2AL染色体, 可解释 PPO活性
变异的 28%~43%, Ppo-A1a 的 PPO 活性显著高于
Ppo-A1b [17]。Ppo-D1基因位于小麦 2DL染色体, 可
解释 PPO活性变异的 9.6%~24.4%, Ppo-D1a的 PPO
活性显著高于 Ppo-D1b [18]。本研究发现, Ppo-A1a的
面粉红度显著低于 Ppo-A1b, 而面粉亮度、黄度、白
度的差异均不显著; Ppo-D1a和Ppo-D1b面粉色泽的
差异均不显著。可以看出, 虽然 Ppo-A1a与 Ppo-A1b
的 PPO 活性差异极显著, 但这种差异并不一定能够
引起面粉亮度、黄度、白度的显著变化。PPO 主要
在面粉加工过程中起作用, 是面条制作过程中颜色
变褐的主要原因 [14-15,40], 对面粉色泽(红度除外)的
影响并不显著。
使用 D65 的 CIE-L*、a*、b*色度系统表示面粉
色泽时, a*为正值代表红色, 为负值代表绿色[41]。本
研究 182 份材料的 a*值均为负值, 说明新疆小麦面
粉色泽偏绿。以往的研究发现, 面粉红度与灰分含
量和面粉颗粒度 [41]以及籽粒蛋白质含量显著正相
关 [42], 说明影响面粉红度的因素较多。在本研究中,
Psy-A1、Ppo-A1、TaLox-B1 基因的等位变异均可导
致面粉红度的差异显著, 说明黄色素含量、PPO 和
LOX 活性均能显著影响面粉红度, 进一步印证影响
面粉红度的因素较多。
新疆小麦品种资源中, Psy-A1、Ppo-A1、Ppo-D1、
TaLox-B1基因共有 12种等位变异组合类型, 其面粉
亮度无显著差异, 但组合间红度、黄度、白度均有
极显著差异 , 以 Psy-A1b/Ppo-A1a/Ppo-D1b/TaLox-
B1b 基因型的白度最高、红度和黄度最低 , 而
Psy-A1a/Ppo-A1a/Ppo-D1b/TaLox-B1a 基因型具有最
低的白度、最高的红度和黄度。说明这 4 个基因等
位变异对面粉亮度的效应不大, 但对面粉红度、黄
度、白度存在极显著影响, 并且红度、黄度的提高
会降低白度[32]。在新疆小麦审定品种中, 春小麦品
种的面粉白度略高于冬小麦, 其中青春 5 号的白度
最高。据报道, 新疆小麦品种中 Psy-A1a 为 Psy-A1
位点的主要等位变异 [28-30]; 在本试验中 , 无论冬小
麦还是春小麦, Psy-A1a 的比例均超过 90%, 因此,
降低 Psy-A1a 的比例是进一步提高新疆小麦面粉白
度的重要途径。
4 结论
Psy-A1、Ppo-A1、Ppo-D1、TaLox-B1基因等位
变异对面粉色泽的影响存在较大的区别 , 其中
Psy-A1对面粉红度、黄度、白度均有极显著影响, 是
影响面粉色泽的重要基因; Ppo-A1和 TaLox-B1对面
粉红度有显著影响。等位变异组合 Psy-A1b/Ppo-A1a/
Ppo-D1b/TaLox-B1b 是面粉白度的优质基因型 , 而
Psy-A1a/Ppo-A1a/Ppo-D1b/TaLox-B1a 是劣质基因
78 作 物 学 报 第 41卷
型。由于各基因等位变异对面粉色泽影响程度的不
同 , 改良新疆地区小麦品种面粉色泽应以利用
Psy-A1b 为主攻目标, 可利用 Psy-A1 基因功能标记
辅助选择。
References
[1] 杨朝柱, 张磊, 司红起, 马传喜. 小麦面粉白度研究进展. 麦
类作物学报, 2002, 3: 74–77
Yang C Z, Zhang L, Si H Q, Ma C X. Review of wheat flour
whiteness. J Triticeae Crops, 2002, 3: 74–77 (in Chinese with
English abstract)
[2] He Z H, Yang J, Zhang Y, Quail K J, Pena R J. Pan bread and dry
white Chinese noodle quality in Chinese winter wheats. Euphyti-
ca, 2004, 139: 257–267
[3] 杨金, 张艳, 何中虎, 阎俊, 王德森, 刘建军, 王美芳. 小麦品
质性状与面包和面条品质关系分析 . 作物学报 , 2004, 30:
739–744
Yang J, Zhang Y, He Z H, Yan J, Wang D S, Liu J J, Wang M F.
Association between wheat quality traits and performance of pan
bread and dry white Chinese noodle. Acta Agron Sin, 2004, 30:
739–744 (in Chinese with English abstract)
[4] Asenstorfer R E, Wang Y, Mares D J. Chemical structure of fla-
vonoid compounds in wheat (Triticum aestivum L.) flour that
contribute to the yellow colour of Asian alkaline noodles. J
Cereal Sci, 2006, 43:108–119
[5] Fu B X. Asian noodles: history, classification, raw materials, and
processing. Food Res Int, 2008, 41: 888–902
[6] Lintig J, Welsch R, Bonk M, Giuliano G, Batschauer A, Kleinig H.
Light-dependent regulation of carotenoid biosynthesis occurs at
the level of phytoene synthase expression and is mediated by
phytochrome in Sinapis alba and Arabidopsis thaliana seedlings.
Plant J, 1997, 12: 625–634
[7] Irvine G N, Anderson J A. Variation in principal quality factors of
durum wheat with a quality prediction test for wheat or semolina.
Cereal Chem, 1953, 30: 334–342
[8] Žilić S, Dodig D, Šukalović V H T, Maksimović M, Saratlić G,
Škrbić B. Bread and durum wheat compared for antioxidants
contents, and lipoxygenase and peroxidase activities. Int J Food
Sci Technol, 2010, 45: 1360–1367
[9] Manna F, Borrelli G M, Massardo D R, Wolf K, Alifano P, Del
Giudice L, Di Fonzo N. Expression of lipoxygenase genes among
durum wheat cultivars. Cereal Res Commun, 1998, 26: 23-30
[10] Lindgren L O, Stalberg K G, Hoglund A S. Seed-specific over
expression of an endogenous Arabidopsis phytoene synthase gene
results in delayed germination and increased levels of carotenoids,
chlorophyll, and abscisic acid. Plant Physiol, 2003, 132: 779–785
[11] 朱长甫, 陈星, 王英典. 植物类胡萝卜素生物合成及其相关基
因在基因工程中的应用. 植物生理与分子生物学学报, 2005,
30: 609–618
Zhu C F, Chen X, Wang Y D. Carotenoid biosynthesis in plants
and application of its relative gene in gene engineering. J Plant
Physiol Mol Biol, 2005, 30: 609–618 (in Chinese with English
abstract)
[12] He X Y, Zhang Y L, He Z H, Wu Y P, Xiao Y G, Ma C X, Xia X
C. Characterization of a phytoene synthase 1 gene (Psy1) located
on common wheat chromosome 7A and development of a func-
tional marker. Theor Appl Genet, 2008, 116: 213–221
[13] He X Y, He Z H, Ma W, Appels R, Xia X C. Allelic variants of
phytoene synthase 1 (Psy1) genes in Chinese and CIMMYT
wheat cultivars and development of functional markers for flour
color. Mol Breed, 2009, 23: 553–563
[14] Miskelly D M. Flour components affecting paste and noodle
colour. J Sci Food Agric, 1984, 35: 463–471
[15] Kruger J E, Hatcher D W, DePauw R. A whole seed assay for
polyphenol oxidase in Canadian prairie spring wheats and its
usefulness as a measure of noodle darkening. Cereal Chem, 1994,
7: 324–326
[16] 张立平, 葛秀秀, 何中虎, 王德森, 闫俊, 夏先春, Sutherland
M W. 普通小麦多酚氧化酶活性的QTL分析. 作物学报, 2005,
31: 7–10
Zhang L P, Ge X X, He Z H, Wang D S, Yan J, Xia X C, Suther-
land M W. Mapping QTLs for polyphenol oxidase activity in a
DH population from common wheat. Acta Agron Sin, 2005, 31:
7–10 (in Chinese with English abstract)
[17] Sun D J, He Z H, Xia X C, Zhang L P, Morris C F, Appels R, Ma
W J, Wang H. A novel STS marker for polyphenol oxidase activ-
ity in bread wheat. Mol Breed, 2005, 16: 209–218
[18] He X Y, He Z H, Zhang L P, Sun D J, Morris C F, Fuerst E P, Xia
X C. Allelic variation of polyphenol oxidase (PPO) genes located
on chromosomes 2A and 2D and development of functional
markers for the PPO genes in common wheat. Theor Appl Genet,
2007, 115: 47–58
[19] Borrelli G M, Troccoli A, Di Fonzo N, Fares C. Durum wheat
lipoxygenase activity and other quality parameters that affect
pasta color. Cereal Chem, 1999, 76: 335–340
[20] Arda S, Vural G. Effects of β-carotene on soybean lipoxygenase
activity: kinetic studies. Eur Food Res Technol, 2007, 224:
743–748
[21] Carrera A, Eehenique V, Zhang W, Helguera M, Manthey F,
Schrager A, Picca A, Cervigni G, Dubcovsky J. A deletion at the
Lpx-B1 locus is associated with low lipoxygenase activity and
improved pasta color in durum wheat. J Cereal Sci, 2007, 45:
67–77
[22] Parker G D, Chalmers K J, Rathjen A J, Langridge P. Mapping
loci associated with flour color in wheat (Triticum aestivum L.).
Theor Appl Genet, 1998, 97: 238–245
[23] Hessler T G, Thomson M J, Benseher D, Nachit M M, Sorrells M
E. Association of a lipoxygenase locus, Lpx-Bl, with variation in
lipoxygenase activity in durum wheat seeds. Crop Sci, 2002, 42:
1695–1700
[24] Hidalgo A, Brandolini A, Pompei C. Carotenoids evolution dur-
ing pasta, bread and water biscuit preparation from wheat flours.
Food Chem, 2010, 121: 746–751
[25] Geng H W, Xia X C, Zhang L P, Qu Y Y, He Z H. Development
of functional markers for a lipoxygenase gene TaLox-B1 on
chromosome 4BS in common wheat. Crop Sci, 2012, 52:
568–576
[26] 芦静, 张新忠, 吴新元, 黄天荣. 小麦品质性状与面制食品加
工特性相关性研究. 新疆农业科学, 2002, 39: 290–292
Lu J, Zhang X Z, Wu X Y, Huang T R. Investigation on correla-
第 1期 相吉山等: 新疆小麦 Psy-A1、Ppo-A1、Ppo-D1、TaLox-B1等位变异对面粉色泽的影响 79
tion between quality characters of wheat and processing quality
of food. Xinjiang Agric Sci, 2002, 39: 290–292 (in Chinese with
English abstract)
[27] 穆培源, 桑伟, 王亮, 庄丽, 王祥军, 芦静, 徐红军, 韩新年,
于芳祥. 新疆市售小麦面粉制作新疆拉面的加工品质特性及
其专用粉品质评价指标的研究. 麦类作物学报, 2008, 27:
1034–1041
Mu P Y, Sang W, Wang L, Zhuang L, Wang X J, Lu J, Xu H J,
Han X N, Yu F X. Study on processing quality of Xinjiang
hand-stretched noodle and quality evaluation parameters of spe-
cific flour for the commercial wheat flours in Xinjiang. J Trit-
iceae Crops, 2008, 27: 1034–1041 (in Chinese with English ab-
stract)
[28] 王亮, 穆培源, 徐红军, 庄丽, 桑伟, 聂迎彬, 韩新年, 邹波.
新疆小麦品种黄色素含量基因(Psy-A1)等位变异的分子检测.
麦类作物学报, 2009, 29: 782–786
Wang L, Mu P Y, Xu H J, Zhaung L, Sang W, Nie Y B, Han X N,
Zou B. Allelic variations of Psy-A1 gene for yellow pigment
content in Xinjiang wheat cultivars. J Triticeae Crops, 2009, 29:
782–786 (in Chinese with English abstract)
[29] 王亮, 穆培源, 徐红军, 庄丽, 桑伟, 韩新年, 聂迎彬, 夏先春,
何中虎. 新疆小麦品种多酚氧化酶(PPO)活性基因等位变异检
测. 麦类作物学报, 2008, 28: 766–771
Wang L, Mu P Y, Xu H J, Zhaung L, Sang W, Han X N, Nie Y B,
Xia X C, He Z H. Distribution of allelic variations of polyphenol
oxidase genes in Xinjiang wheat cultivars. J Triticeae Crops,
2008, 28: 766–771 (in Chinese with English abstract)
[30] 相吉山, 穆培源, 桑伟, 聂迎彬, 徐红军, 崔凤娟, 韩新年, 邹
波. 新疆小麦品种资源脂肪氧化酶活性基因 TaLox-B1 的分布
特征. 麦类作物学报, 2013, 33: 279–285
Xiang J S, Mu P Y, Sang W, Nie Y B, Xu H J, Cui F J, Han X N,
Zou B. Distribution characteristics of lipoxygenase gene Ta-
Lox-B1 in wheat varieties from Xinjiang. J Triticeae Crops,
2013, 33: 279–285 (in Chinese with English abstract)
[31] 汪帆, 郑文寅, 黄建华, 王冠球, 崔文礼, 张文明, 姚大年. 20
个小麦品种(系)籽粒 LOX 活性和类胡萝卜素含量及全麦粉色
泽的研究. 麦类作物学报, 2012, 32: 68–73
Wang F, Zheng W Y, Huang J H, Wang G Q, Cui W L, Zhang W
M, Yao D N. Lipoxygenase acticity, carotenoids content and
wholemill color in grains of twenty wheat varieties. J Triticeae
Crops, 2012, 32: 68–73 (in Chinese with English abstract)
[32] Lagudah E S, Apples R, McNeil D. The Nor-D3 locus of Triticum
tauschii: naturiation variation and genetic linkage to markers in
chromosome 5. Genome, 1991, 34: 387–395
[33] Symons S J. Computer analysis of fluoreseence for the measure-
ment of flour refinement as determined by flour ash content, flour
grade colour, and tristimulus colour measurements. Cereal Chem,
1991, 68: 454–460
[34] Oh N H, Seib P A, Chung D S. Noodles: III. Effects of processing
variables on quality characteristics of dry noodles. Cereal Chem,
1985, 62: 437–440
[35] Moss H J, Miskelly D M, Moss R. The effect of alkaline condi-
tions on the properties of wheat flour dough and Cantonese-style
noodles. J Cereal Sci, 1986, 4: 261–268
[36] Belitz H D, Grosch W. Food Chemistry. Berlin: Springer-Verlag,
1987
[37] Kumagai M H, Donson J, Della-Cioppa G, Harvey D, Hanley K,
Grill L K. Cytoplasmic inhibition of carotenoid biosynthesis with
virus-derived RNA. Proc Natl Acad Sci USA, 1995, 92:
1679–1683
[38] 孙道杰, 何中虎, 王辉. 小麦面粉黄色素相关基因研究. 西北
植物学报, 2006, 26: 655–660
Sun D J, He Z H, Wang H. Genes related with yellow pigments in
wheat flour. Acta Bot Boreali-Occident Sin, 2006, 26: 655–660
(in Chinese with English abstract)
[39] Leenhardt F, Lyan B, Rock E, Boussard A, Potus J, Chanliaud E,
Remesy C. Genetic variability of carotenoid concentration, and
lipoxygenase and peroxidase activities among cultivated wheat
species and bread wheat varieties. Eur J Agron, 2006, 25: 170–176
[40] Irvine G N, Winkler C A. Factors affecting the color of macaroni:
II. Kinetic studies of pigment destruction during mixing. Cereal
Chem, 1950, 27: 205–218
[41] 桑伟, 穆培源, 徐红军, 庄丽, 聂迎彬, 崔凤娟, 邹波. 新疆春
小麦品种磨粉品质与新疆拉面加工品质的关系. 西北农业学
报, 2012, 21: 54–59
Sang W, Mu P Y, Xu H J, Zhuang L, Nie Y B, Cui F J, Zou B.
Correlations between milling qualities of spring wheats and
hand-stretched noodle in Xinjiang. Acta Agric Boreali-Occident
Sin, 2012, 21: 54–59 (in Chinese with English abstract)
[42] 桑伟, 穆培源, 徐红军, 庄丽, 王亮, 邹波. 新疆小麦品种籽
粒性状、磨粉品质及其关系的研究. 麦类作物学报, 2010, 30:
50–55
Sang W, Mu P Y, Xu H J, Zhuang L, Wang L, Zou B. Study on
the grain traits, milling quality and their relationships in Xinjiang
winter and spring wheat cultivars. J Triticeae Crops, 2010, 30:
50–55 (in Chinese with English abstract)