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Construction of  Fingerprinting and Analysis of Genetic Diversity with SSR Markers for Eighty-Eight Approved Potato Cultivars(Solanum tuberosum L.)in China

中国88个马铃薯审定品种SSR指纹图谱构建与遗传多样性分析



全 文 :作物学报 ACTA AGRONOMICA SINICA 2009, 35(8): 1451−1457 http://www.chinacrops.org/zwxb/
ISSN 0496-3490; CODEN TSHPA9 E-mail: xbzw@chinajournal.net.cn

本研究由国家“十一五”科技支撑计划项目(2007BAD49B01), 引进国际先进农业科学技术计划(948计划)项目(2006-G12), 农业部园艺作物遗
传改良重点开放实验室资助。
* 通讯作者(Corresponding author): 金黎平, Tel: 010-82109543
第一作者联系方式: E-mail: duanyanfeng1110@163.com; Tel: 13810761380
Received(收稿日期): 2008-12-29; Accepted(接受日期): 2009-04-25.
DOI: 10.3724/SP.J.1006.2009.01451
中国 88个马铃薯审定品种 SSR指纹图谱构建与遗传多样性分析
段艳凤 刘 杰 卞春松 段绍光 徐建飞 金黎平*
中国农业科学院蔬菜花卉研究所, 北京 100081
摘 要: 为对马铃薯品种鉴别、优良杂交组合选配提供分子水平上的依据, 利用 SSR标记构建了中国 2000—2007年
审定的 88个马铃薯品种的指纹图谱并进行了遗传多样性分析。以 138对 SSR引物对 16份遗传差异较大的马铃薯材
料的基因组 DNA 进行了扩增, 筛选出 10 对多态性高、谱带清晰的引物。利用 10 对 SSR 引物对全部供试材料进行
扩增及电泳检测, 共检测到 135 个等位位点, 其中 133 个为多态性位点, 多态性比率达 98.52%。每对 SSR 引物扩增
出的等位位点数 7~22个, 平均 13.5个, 多态性信息量变化范围为 0.7604~0.9375, 平均 0.8501。通过对电泳检测结果
的统计分析, 利用 S180、S25、S7、S151、S184及 S192共 6对引物构建了 88份供试材料的 SSR指纹图谱。聚类分
析表明, 在相似系数 0.620 处, 所有供试材料被被聚为一类, 在相似系数 0.652 处, 81.8%的材料仍然聚在一起, 从分
子水平上表明供试材料遗传基础非常狭窄。聚类分析结果与供试材料系谱来源有较好一致性, 同一栽培区域育成的
品种在不同程度上聚在一类。
关键词: 马铃薯; 审定品种; SSR标记; DNA指纹图谱; 遗传多样性
Construction of Fingerprinting and Analysis of Genetic Diversity with SSR
Markers for Eighty-Eight Approved Potato Cultivars (Solanum tuberosum L.)
in China
DUAN Yan-Feng, LIU Jie, BIAN Chun-Song, DUAN Shao-Guang, XU Jian-Fei, and JIN Li-Ping*
Institute of Vegetables and Flowers of Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing 100081, China
Abstract: Potato (Solanum tuberosum L.) is one of the most important food crops in the world. Approved potato cultivars have
contributed a lot not only to potato production but also to varietal improvement as germplasm resource, and about 110 potato cul-
tivars were approved during 2000–2007 in China. It is necessary to make potato cultivar identification and genetic relationship
analysis for seed production, germplasm management, plant variety protection, and breeding practice. Currently, the simple se-
quence repeats (SSRs) are preferred as molecular markers due to their highly desirable properties. In this study, for the purpose of
cultivar identification and parents combination at the molecular level, SSR markers were employed to analysis on fingerprinting
and genetic diversity of 88 potato cultivars approved in China during 2000–2007. Ten of 138 pairs of SSR primers were screened
out based on 16 accessions distinct in genetics. The 10 primer pairs amplified a total of 135 alleles (including 133 polymorphic
alleles) among the 88 cultivars, and the ratio of polymorphism was as high as 98.52%. Alleles amplified by each pair of primers
ranged from 7 (primer S7) to 22 (primer S189), with a mean of 13.5. The polymorphic information content values (PIC) ranged
from 0.7604 (primer S192) to 0.9375 (primer S189), with a mean of 0.8501. The fragment size varied from 80 to 380 bp. The
fingerprinting of 88 cultivars was constructed by 6 pairs of primers of S180, S25, S7, S151, S184, and S192. Eighty-seven out of
88 cultivars were univocally identified using only five SSR primers (S180, S25, S7, S151, and S184). UPGMA cluster analysis of
genetic similarity showed that all the materials were clustered in to one group at the genetic similarity of 0.620, and 81.8% of the
cultivars were still clustered together at the genetic similarity of 0.652. The genetic relationships of cultivars were identical to the
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family tree basically. It is indicated that the genetic basis of potato cultivars in China is narrow, and the genetic relationship of the
potato cultivars derived from the same district is similar. The fingerprinting and analysis of genetic diversity in this study give a
basis for exploration and utilization of approved potato cultivars as germplasm resources.
Keywords: Potato; Approved cultivars; SSR markers; DNA fingerprinting; Genetic diversity
马铃薯(Solanum tuberosum L.)是粮、菜、饲和
工业原料兼用的主要农作物, 其适应性广、丰产性
好、营养丰富、经济效益高、适于加工, 在促进农
民增收和维护国家粮食安全中发挥着重要作用。我
国是世界马铃薯生产第一大国, 据《中国农业年鉴
统计》, 2005 年种植面积为 488.09 万公顷, 总产量
为 7 086万吨。我国马铃薯育种仍以常规方法为主,
即品种间或种间杂交。据不完全统计, 自 20世纪 40
年代到2000年间, 我国共育成马铃薯品种170多个[1]。
近年来, 随着我国马铃薯育种进程加快, 育成的品
种数量迅速增加, 2000—2007 年省级(含直辖市)以
上共审定品种近 110 个。由于早期对马铃薯品种缺
乏系统完善的鉴定方法, 致使出现同种多名和同名
多种等现象, 品种混乱问题给马铃薯生产造成很大
损失。马铃薯品种鉴定一直基于传统的形态学特征,
如块茎性状、叶类型、花色及芽外观等[2], 这些性状
容易受环境条件影响, 并且对植物及块茎成熟度等
都有一定的要求[3]。此外, 我国育成马铃薯品种的亲
本基本上是五、六十年代引自欧洲的四倍体栽培品
种, 亲缘关系近, 后代的遗传变异停留于近交水平
[4], 从而加大了利用传统形态学鉴定马铃薯品种的
难度。因此, 如何快速准确鉴别马铃薯品种和选配
优良杂交组合培育新品种, 已成为当前马铃薯生产
及科研中急需解决的问题。
SSR (simple sequence repeat)标记在基因组间广
泛分布, 由于其具有共显性、重复性好、多态性高、
扩增结果稳定、检测手段简便易行, 被广泛应用于
马铃薯品种指纹图谱绘制、遗传关系分析[5-9]。本
研究采用 SSR 标记构建我国 2000—2007 年审定的
88 个马铃薯品种的指纹图谱, 并进行遗传多样性分
析, 以期为马铃薯种薯生产、种质资源管理、育种
实践、品种审定及知识产权保护等方面提供一定科
学依据。
1 材料与方法
1.1 材料
88个马铃薯品种均在 2000—2007 年通过省级
(含直辖市)以上审定, 由全国 18个省市 22个育种单
位提供(表 1)。
1.2 DNA提取
取苗期植株幼嫩、健壮且新鲜的叶片 , 利用
CTAB法[10]结合高通量的 Retsch细胞破碎仪(Retsch
Inc., Haan, Germany)快速提取基因组 DNA, 以 1%
琼脂糖凝胶电泳检测。样品稀释到 25 ng μL−1, 置
–20℃冰箱保存。
1.3 SSR标记分析
SSR 引物序列信息来源于公开发表的文献[11-12]
(表 2), 引物均由上海生工生物工程技术服务有限公
司合成。
PCR扩增体系 20 μL, 含 25 ng μL−1 DNA模板
2.0 μL、10 pmol μL−1上游 primer 0.8 μL、10 pmol
μL−1下游 primer 0.8 μL、2.5 mmol L−1 dNTPs 1.6 μL、
10×PCR buffer 2.0 μL、Taq DNA聚合酶(2.5 U μL−1)
0.4 μL、ddH2O 12.4 μL。Taq DNA聚合酶为 Tiangen
公司产品。反应程序为 94℃模板预变性 5 min; 94℃
变性 30 s, 退火 30 s (退火温度范围在 53~64℃), 72
℃延伸 45 s, 35个循环; 最后 72℃下延伸 7 min, 4℃
保存。
PCR 产物用 8%的变性 PAGE 电泳检测。电泳
结束后用硝酸银染色观察结果。
1.4 数据分析
SSR扩增谱带在相同迁移率位置上有带记为 1、
无带记为 0, 组成原始矩阵。多态性位点百分率 p =
(k / n ) ×100%, 其中 k是多态位点数目; n为所测位
点总数。多态性信息量 PIC = 2
1
1
i
if− ∑ , 其中, fi为基
因座位上第 i等位基因的频率。
用 NTSYS-pc2.11 软件的 SAHN 程序和 UPGMA
方法进行聚类分析, 并通过 Tree plot模块生成聚类图。
2 结果与分析
2.1 SSR标记多态性分析
通过系谱分析, 选用 16份遗传差异较大的材料
对 138对 SSR引物进行筛选, 获得 10对多态性高、


第 8期 段艳凤等: 中国 88个马铃薯审定品种 SSR指纹图谱构建与遗传多样性分析

1453


表 1 供试马铃薯品种材料
Table 1 Potato accessions used in this study
编号
Code
材料名称
Accession
编号
Code
材料名称
Accession
编号
Code
材料名称
Accession
1 克新 19 Kexin 19 31 早大白 Zaodabai 61 张薯 7号 Zhangshu 7
2 克新 20 Kexin 20 32 冀张薯 8号 Jizhangshu 8 62 克新 17 Kexin 17
3 春薯 4号 Chunshu 4 33 合作 88 Hezuo 88 63 延薯 4号 Yanshu 4
4 青薯 2号 Qingshu 2 34 合作 23 Hezuo 23 64 宁薯 11 Ningshu 11
5 秦芋 30 Qinyu 30 35 合作 001 Hezuo 001 65 宁薯 9号 Ningshu 9
6 中薯 7号 Zhongshu 7 36 合作 002 Hezuo 002 66 青薯 6号 Qingshu 6
7 青薯 8号 Qingshu 8 37 鄂马铃薯 5号 Emalingshu 5 67 晋薯 16 Jinshu 16
8 青薯 5号 Qingshu 5 38 天薯 8号 Tianshu 8 68 晋薯 17 Jinshu 17
9 青薯 7号 Qingshu 7 39 中薯 6号 Zhongshu 6 69 晋薯 11 Jinshu 11
10 川芋 10号 Chuanyu 10 40 丽薯 2号 Lishu 2 70 晋薯 13 Jinshu 13
11 东农 305 Dongnong 305 41 同薯 23 Tongshu 23 71 晋薯 15 Jinshu 15
12 大西洋 Atlantic 42 蒙薯 10号 Mengshu 10 72 秦芋 31 Qinyu 31
13 川芋 6号 Chuanyu 6 43 蒙薯 12 Mengshu 12 73 川芋 5号 Chuanyu 5
14 双丰 5号 Shuangfeng 5 44 克新 15 Kexin 15 74 川芋 8号 Chuanyu 8
15 中薯 5号 Zhongshu 5 45 云薯 101 Yunshu 101 75 中甸红 Zhongdianhong
16 中薯 9号 Zhongshu 9 46 云薯 201 Yunshu 201 76 会-2号 Hui-2
17 坝薯 10号 Bashu 10 47 克新 14 Kexin 14 77 合作 003 Hezuo 003
18 双丰 6号 Shuangfeng 6 48 鄂马铃薯 4号 Emalingshu 4 78 丽薯 1号 Lishu 1
19 蒙薯 13 Mengshu 13 49 中薯 13 Zhongshu 13 79 云薯 102 Yunshu 102
20 晋薯 12 Jinshu 12 50 中薯 14 Zhongshu 14 80 云薯 301 Yunshu 301
21 晋薯 14 Jinshu 14 51 中薯 3号 Zhongshu 3 81 中薯 4号 Zhongshu 4
22 凉薯 8号 Liangshu 8 52 Favorita 82 中薯 8号 Zhongshu 8
23 凉薯 17 Liangshu 17 53 东农 306 Dongnong 306 83 中大 1号 Zhongda 1
24 同薯 20 Tongshu 20 54 东农 307 Dongnong 307 84 中薯 10号 Zhongshu 10
25 青薯 3号 Qingshu 3 55 新大坪 Xindaping 85 中薯 11 Zhongshu 11
26 郑薯 7号 Zhengshu 7 56 陇薯 5号 Longshu 5 86 中薯 12 Zhongshu 12
27 宁薯 10号 Ningshu 10 57 陇薯 6号 Longshu 6 87 云薯 501 Yunshu 501
28 克新 16 Kexin 16 58 青薯 4号 Qingshu 4 88 渝马铃薯 1号 Yumalingshu 1
29 鄂马铃薯 3号 Emalingshu 3 59 天薯 9号 Tianshu 9
30 克新 18 Kexin 18 60 威芋 3号 Weiyu 3

表 2 SSR引物序列与名称
Table 2 SSR primer sequences used in this study
编号
Code
染色体上的位置
Map location
SSR基序
SSR motif
正向引物
Forward primer (5–3)
反向引物
Reverse primer (5–3)
引物来源
Primer origin
S180 VIII (TAA)n ACTGCTGTGGTTGGCGTC ACGGCATAGATTTGGAAGCATC Feingold S et al.[12]
S25 X (GGC)n(GGT)n GCGAATGACAGGACAAGAGG TGCCACTGCTACCATAACCA Feingold S et al.[12]
S7 II (CA)imp(TC)imp GACTGGCTGACCCTGAACTC GACAAAATTACAGGAACTGCAAA Feingold S et al.[12]
S151 VI (AAG)n GCTGCTAAACACTCAAGCAGAA CAACTACAAGATTCCATCCACAG Feingold S et al.[12]
S184 II (CTT)n TCATCACAACGTGACCCCA GGGCTTGAATGATGTGAAGCTC Feingold S et al.[12]
S192 III (ATA)n ACTTCTGCATCTGGTGAAGC GGTCTGGATTCCCAGGTTG Feingold S et al.[12]
S170 VIII (GAA)n CGCAAATCTTCATCCGATTC TCCGGCGGATAATACTTGTT Feingold S et al.[12]
S174 VII (AGG)n TGAGGGTTTTCAGAAAGGGA CATCCTTGCAACAACCTCCT Feingold S et al.[12]
S118 XII Compound (GT/GC)(GT)8 AGAGATCGATGTAAAACACGT GTGGCATTTTGATGGATT Ghislain M et al.[11]
S189 IX (AAG)n CCTTGTAGAACAGCAGTGGTC TCCGCCAAGACTGATGCA Feingold S et al.[12]
1454 作 物 学 报 第 35卷


带型容易识别的引物, 引物代号为 S192、S184、S25、
S7、S151、S170、S174、S118、S189 和 S180。用
于引物筛选的 16 份材料分别是 Katahdin、Epoka、
Mira、Anemone、小叶子、系薯 1号、虎头、Schwalbe、
克新 2 号、高原 7 号、川芋 6 号、鄂马铃薯 3 号、
Favorita、中薯 3号、蒙薯 10号和 DTO-33。
利用 10对 SSR引物对 88份供试材料进行扩增,
共扩增出 135 个等位位点, 其中 133 个为多态性位
点, 占 98.52%。每个位点的等位基因数目不等, 变
幅为 7(S7)~22(S189)。平均多态性信息量为 0.8501,
变幅为 0.7604(S192)~0.9375(S189)。扩增产物片段
大约在 80~380 bp之间(表 3)。

表 3 SSR引物扩增情况
Table 3 The result of amplifying by selected primers
引物编号
Primer code
退火温度
Annealing tem-
perature(℃)
等位位点数
No. of alleles
多态性位点数
No. of polymorphic
alleles
多态性比率
Ratio of polymorphic
alleles (%)
扩增片段范围
Range of allele size
(bp)
多态性信息量
PIC
S180 55 15 15 100 130–200 0.8971
S25 55 13 12 92.31 180–380 0.8185
S7 55 7 7 100 135–160 0.7885
S151 55 12 12 100 80–153 0.8428
S184 55 17 17 100 160–290 0.8681
S192 55 9 8 88.89 160–250 0.7604
S170 58 15 15 100 116–270 0.8355
S174 64 14 14 100 120–195 0.8773
S118 53 11 11 100 115–190 0.8755
S189 55 22 22 100 180–380 0.9375
合计 Total — 135 133 — — —
平均 Average — 13.5 13.3 98.52 — 0.8501

2.2 品种指纹分析
通过对 10 对 SSR 引物的扩增谱带进行统计分析,
综合考虑 PIC值大小、扩增带型统计的难易及引物的重
复性高低, 确定 S180、S25、S7、S151、S184 和 S192
共 6对引物用于构建 88份供试材料的指纹图谱。其中,
S180可鉴别克新20、秦芋30、青薯5号等38个品种; S25
可鉴别春薯 4号、青薯 7号、中薯 9号等 33个品种; S7
可鉴别东农 305、大西洋、川芋 6号等 16个品种; S151
可鉴别克新 19、坝薯 10号、蒙薯 10号等 13个品种; S184
可鉴别双丰 5号、晋薯 14、合作 88等 11个品种; S192
可鉴别克新 20、合作 001、中薯 13及中甸红 4个品种。
根据上述 6 对 SSR 引物的 0、1 统计结果, 以
S180一对引物进行鉴定, 可将 43.2% (38个)的品种
区分开; 结合 S180、S25 两对引物进行鉴定, 可将
85.2% (75 个)的品种区分开 ; 结合 S180、S25、S7
三对引物进行鉴定 , 可将 93.2% (82个)的品种区分
开; 结合 S180、S25、S7、S151四对引物进行鉴定,
可将 95.5% (84个)的品种区分开; 结合 S180、S25、
S7、S151、S184五对引物进行鉴定, 可将 98.9% (87
个)的品种区分开; 结合 S180、S25、S7、S151、S184、
S192 六对引物进行鉴定, 可将 88 个品种完全区分
开。本研究按照 S180/S25/S7/S151/S184/S192 组合,
构建了 88份供试材料的指纹图谱(本文未列出)。图
1为引物 S184对部分马铃薯审定品种的扩增结果。

图 1 引物 S184在部分马铃薯审定品种中的扩增结果
Fig. 1 DNA fragments amplified by SSR primer S184 in some potato cultivars
M: 分子量标准; 34~63: 对应供试材料编号(编号与表 1相同)。
M: marker; 34–63: the codes of cultivars corresponding with those in Table 1.
第 8期 段艳凤等: 中国 88个马铃薯审定品种 SSR指纹图谱构建与遗传多样性分析

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2.3 聚类分析
按照 UPGMA进行聚类分析, 得到 88份供试材
料的遗传关系树状图(图 2)。以遗传相似系数 0.640
为标准 , 可将所有供试材料分为 4个类群, 一个大
类 A 和 3 个较小的 B、C、D 类。聚类结果与系谱
来源有较好一致性, 且品种的亲缘关系与来源地区
有较为明显的关系, 即同一栽培区域育成的品种在
不同程度上聚在一起。
A类包括 79份品种, 占所有供试材料的 89.8%,
在相似系数 0.652处可被分为 3个亚类, 即 A1、A2
和 A3。其中 A1亚类包括 72份品种, 且可进一步划
分为 6组。I组 50份品种中, 74%来自北方和西北一
季作区, 其中包括中薯系列 10 份品种、克新系列 5
份品种、晋薯系列 4 份品种、青薯系列 4 份品种及
东农系列的 3 份品种。本组中含有美国品种
Katahdin、小叶子血缘的品种占 28%, 含有德国品种
工业、Jubel血缘的品种占 28%, 含有新型栽培种血
缘的品种占 12%, 含有波兰、加拿大、荷兰品种血
缘的分别占 6%、8%、6%, 由国际马铃薯中心(CIP)
种质资源育成的品种占 8%。II组包括 7份品种, 其
中 5 份来自西南一二季作垂直分布区。云薯 201、
云薯 101、云薯 102 含有新型栽培种血缘, 均为
S95-105 与内薯 7 号杂交后代系统选育而成。III 组
包括 7份品种, 6份来自北方一季作区, 1份来自南方
冬作区。其中 3 份含有美国品种早玫瑰、小叶子的
血缘。IV 组延薯 4 号来自北方一季作区, 是由莫斯
科列思基茎尖剥离组织培养过程中产生的自然芽变
单株系统选育而成, 与其他品种亲缘关系较远, 单
独分为一组。V 组包括川芋 10 号和晋薯 17 两份品
种, 分别来自西南一二季作垂直分布区和北方一季
作区, 均含有德国品种德友 7号的血缘。VI组 5 份
品种, 其中北方一季作区 4 份。该组中 3 份品种含
有德国品种工业和 Jubel的血缘。A2 亚类包含 6份
品种, 3 份来自北方和西北一季作区, 3 份来自西南
一二季作垂直分布区。其中丽薯 2号和蒙薯 10号由
新型栽培种资源育成, 合作 88号和合作 003由 CIP
资源育成。A3亚类则只包含双丰 6号一个品种, 来
自中原二季作区, 由 CIP资源育成。
B 类包括 6 份品种即青薯 2 号、中薯 7 号、凉
薯 8 号、青薯 6 号、冀张薯 8 号及大西洋。5 份属
于北方和西北一二季作区。大西洋为美国引进品种,
青薯 2号、中薯 7号均含有美国品种 Katahdin的血缘。
C 类包括合作 001 和川芋 5 号两个品种, 均来
自西南一、二季作垂直分布区, 均由 CIP 种质资源
选育而成。
D类只包含克新 15一个品种, 来自北方一季作
区, 由新型栽培种种质资源选育而成。
在聚类分析中, 同一育种单位培育的品种多聚
在相同类群, 如中国农业科学院蔬菜花卉研究所培
育的中薯 3 号、中薯 8 号、中薯 12、中薯 13 聚在
A1亚类第 1组; 云南省农科院经济作物研究所培育
的云薯 201、云薯 301、云薯 101、云薯 102 聚在
A1亚类第 2组; 陕西省安康市农业科学研究所培育
的秦芋 30和秦芋 31聚在 A2亚类。
3 讨论
本研究从筛选出的 10对遗传多态性较强的 SSR
引物中, 选取扩增谱带稳定性较好、分辨率较高的 6
对, 利用它们的指纹组合构成了供试马铃薯材料特
有的 DNA指纹, 将这些材料逐一区分开。SSR标记
的高分辨力特性及共显性的遗传方式使其成为品种
DNA指纹分析较为理想的技术。马铃薯 SSR标记的
不断开发及引物序列的公开发表 , 极大地促进了
SSR 技术在马铃薯品种鉴定及种质资源研究中的应
用。Norero等[2]利用 4对 SSR引物对 37个马铃薯品
种进行分子鉴定, 其中 3对引物可将其中的 36个品
种区分开, 4 对引物可将所有品种完全区分; Kaw-
chuk 等[13]利用 3 对引物区分开 95 份马铃薯材料中
的 73份; Ashkenazi等[14]利用其开发的 30个 SSR标
记中的 7个来鉴定 12个不同的马铃薯栽培品种, 结
果表明 2个 SSR标记即可将所有品种完全区分。SSR
标记在马铃薯材料鉴定上的成功应用, 将十分有助
于马铃薯遗传资源的进一步挖掘和利用, 对知识产
权保护也起到了积极作用。
本研究表明, 我国近年审定的马铃薯品种从遗
传组成上差异小, 遗传基础狭窄, 与邸宏等[15]的研
究结论一致。我国育成品种的亲本资源绝大多数是
从国外引入的, 属于普通栽培种类型(S. tuberosum),
少数含有原始栽培种及野生种血缘[16], 后代遗传变
异停留于近交水平。本研究聚类分析表明品种的遗
传关系与来源的四大栽培区域有较为明显的关系 ,
同一栽培区域育成的品种在不同程度上聚在一起 ,
且同一育种单位育成的品种多聚在相同类群, 这可
能与同一栽培区域及各育种单位集中化利用亲本有
关, 此研究结果与邸宏等[17]的研究不符。这可能由于
邸宏等研究其遗传关系利用的是 RAPD 和 AFLP 技
1456 作 物 学 报 第 35卷


图 2 88份马铃薯供试材料的聚类结果
Fig. 2 Dendrogram of 88 cultivars based on SSR analysis
第 8期 段艳凤等: 中国 88个马铃薯审定品种 SSR指纹图谱构建与遗传多样性分析

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术, 而我国现有栽培马铃薯属于染色体基数为 12的
四倍体(2n=4x=48)品种 , 遗传上有极其复杂的异质
性 , 染色体重组频率高 , 后代分离程度大 , 在某些
性状上表现为四体遗传, 而另一些可能表现为二体
遗传, 其遗传组成复杂[16-18]。四体遗传就某个基因
位点而言, 具有 4个等位基因, RAPD和 AFLP主要
为显性标记, 其谱带只能反映不同马铃薯种质基因
组上的部分差异, 不能反映控制某一性状的全部基
因情况[15]; 而本研究应用的是 SSR 标记, 是共显性
标记, 以孟德尔方式遗传, 能较好地揭示供试材料
个体或群体内完整的遗传信息。本研究中有些聚类
分析结果与实际的亲缘关系不符合 , 如中薯 9号、
中薯 13 和中薯 14 均由夏波蒂和中薯 3 号后代系统
选育而成, 却被分在不同的组中, 其可能原因是所
用引物数量少, 扩增获得的多态性条带有限, 不能
充分表现材料本身的特异性。
4 结论
以 6 对 SSR 引物组合构建了我国 2000—2007
年审定的 88个马铃薯品种的指纹图谱。发现近年来
我国审定的马铃薯品种遗传基础狭窄, 并且同一地
区育成的品种亲缘关系相近。

致谢: 对云南省农业科学院经济作物研究所、山西省
农业科学院高寒作物研究所、黑龙江省农业科学院克
山分院等 22个育种单位提供试验材料表示感谢。
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