全 文 ：珍稀濒危植物硬叶兜兰的遗传多样性及遗传结构研究∗
黄家林１ꎬ２ꎬ 李树云１ꎬ 胡 虹１∗∗
(１ 中国科学院昆明植物研究所ꎬ 云南 昆明 ６５０２０１ꎻ ２ 中国科学院大学ꎬ 北京 １０００４９)
摘要: 由于人为采集、 走私贩卖以及生境的破坏ꎬ 分布于中国西南石灰岩地区的野生硬叶兜兰居群受到严
重的干扰与威胁ꎮ 为有效地保护这种珍稀野生植物ꎬ 本研究采用 ＩＳＳＲ和 ＳＲＡＰ 两种分子标记对 １５个硬叶
兜兰野生居群进行遗传多样性及遗传结构的研究ꎮ 结果表明ꎬ 硬叶兜兰在物种水平上具有较高的遗传多样
性 (ＩＳＳＲ: ＰＰＢ＝ ９１ ６６％ꎬ Ｈｅ ＝ ０ ３８３９ꎻ ＳＲＡＰ: ＰＰＢ＝ ９９ ２９％ꎬ Ｈｅ ＝ ０ ２８０６)ꎮ 硬叶兜兰居群间存在一定程
度的遗传分化 ( ＩＳＳＲ: Ｇｓｔ ＝ ０ ２５７７ꎻ ＳＲＡＰ: Ｇｓｔ ＝ ０ ２３８３)ꎬ 可能由于较低的基因流 ( ＩＳＳＲ: Ｎｍ ＝ ０ ７２０１ꎻ
ＳＲＡＰ: Ｎｍ＝ ０ ７９９１) 所致ꎮ ＵＰＧＭＡ聚类分析以及主成分分析均把 １５ 个居群分成 ２ 个主要分支ꎮ 居群间
的地理距离和海拔差距是引起居群遗传分化的自然因素ꎮ
关键词: 资源保护ꎻ 分子标记ꎻ 遗传多样性ꎻ 遗传分化ꎻ 硬叶兜兰
中图分类号: Ｑ １６ 文献标识码: Ａ 文章编号: ２０９５－０８４５(２０１４)０２－２０９－１０
ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ
Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ａｎ Ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ Ｓｌｉｐｐｅｒ Ｏｒｃｈｉｄꎬ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ
ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ)
ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ１ꎬ２ꎬ ＬＩ Ｓｈｕ￣Ｙｕｎ１ꎬ ＨＵ Ｈｏｎｇ１∗∗
(１ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｏｆ Ｅｃｏｎｏｍｉｃ Ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ
Ｋｕｎｍｉｎｇ ６５０２０１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ２ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｂｅｉｊｉｎｇ １０００４９ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｉｓ ａｎ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｐｉｎｋ ｓｌｉｐｐｅｒ ｏｒｃｈｉｄ ｍａｉｎｌｙ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ａｒｅａｓ
ｏｆ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａ. Ｗｉｌｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｓｅｒｉｏｕｓｌｙ ｔｈｒｅａｔｅｎｅｄ ｂｙ ｅｘｃｅｓｓｉｖｅ ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎｓꎬ ｒａｍ￣
ｐａｎｔ ｓｍｕｇｇｌｉｎｇ ｆｏｒ ｅｘｐｏｒｔꎬ ａｎｄ ｈａｂｉｔａｔ ｄｅｓｔｒｕｃｔｉｏｎ. Ｗｅ ｕｓｅｄ １５ ＩＳＳＲ ｍａｒｋｅｒｓ ａｎｄ １１ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒｓ ｔｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ
ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ １５ ｎａｔｕｒａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ａ ｈｉｇｈ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｗａｓ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｌｅｖｅｌ (ＩＳＳＲ: ＰＰＢ＝ ９１ ６６％ꎬ Ｈｅ ＝ ０ ３８３９ꎻ ＳＲＡＰ: ＰＰＢ＝ ９９ ２９％ꎬ Ｈｅ ＝ ０ ２８０６). Ｃｅｒｔａｉｎ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒ￣
ｅｎｔｉａｔｉｏｎ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ (ＩＳＳＲ: Ｇｓｔ ＝ ０ ２５７７ꎻ ＳＲＡＰ: Ｇｓｔ ＝ ０ ２３８３) ｗａｓ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｍａｙｂｅ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｌｏｗ ｇｅｎｅ
ｆｌｏｗ (ＩＳＳＲ: Ｎｍ＝ ０ ７２０１ꎻ ＳＲＡＰ: Ｎｍ＝ ０ ７９９１). Ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ Ｃｏｏｒｄｉｎａｔｅ Ａｎａｌｙｓｉｓꎬ ｔｈｅ
ＵＰＧＭＡ ｄｅｎｄｒｏｇｒａｍ ａｎａｌｙｓｉｓ ｄｉｖｉｄｅｄ ｔｈｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｍａｉｎ ｃｌａｄｅｓ. Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎ ｔｏ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅꎬ
ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｉｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎ ｗａｓ ａｎｏｔｈｅｒ ｎａｔｕｒａｌ ｆａｃｔｏｒ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｉｎｇ ｔｏ ｔｈｉｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ. Ｋｎｏｗｌｅｄｇｅ ａｂｏｕｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉ￣
ｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｇａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｏｕｒ ｓｔｕｄｙ ｗｉｌｌ ｂｅ ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ ｆｏｒ ｔｈｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｒｅａｓｏｎａｂｌｅ ａｎｄ ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ
ｔｏ ｃｏｎｓｅｒｖｅ ｔｈｉｓ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎꎻ ＤＮＡ ｍａｒｋｅｒｓꎻ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎻ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎꎻ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ
Ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ Ｐｆｉｔｚ.ꎬ ａ ｐｒｉｍｉｔｉｖｅ ｇｒｏｕｐ ｗｉｔｈｉｎ Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅꎬ ｉｓ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｆｒｏｍ ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｃｈｉｎａ
植 物 分 类 与 资 源 学 报 ２０１４ꎬ ３６ (２): ２０９~２１８
Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ＤＯＩ: １０.７６７７ / ｙｎｚｗｙｊ２０１４１３０８５
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Ｆｕｎｄｉｎｇ: Ｔｈｅ Ｂａｓｉｃ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｐｒｏｇｒａｍ ｏｆ Ｙｕｎｎａｎ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ (２００７Ｃ００１Ｚ) ａｎｄ ｔｈｅ Ｌａｒｇｅ￣Ｓｃａｌｅ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｆａｃｉｌｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ
ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ (２００９￣ＬＳＦ￣ＧＢＯＷＳ￣０１)
Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅꎻ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｈｕｈｏｎｇ＠ｍａｉｌ ｋｉｂ ａｃ ｃｎ
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ ｄａｔｅ: ２０１３－０４－１１ꎬ Ａｃｃｅｐｔｅｄ ｄａｔｅ: ２０１３－０９－０４
作者简介: 黄家林 (１９７４－) 男ꎬ 助理研究员ꎬ 主要从事兰科植物的资源保护与开发利用ꎮ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｈｕａｎｇｊｉａｌｉｎ＠ｍａｉｌ ｋｉｂ ａｃ ｃｎ
ｔｏ Ｎｅｗ Ｇｕｉｎｅａ ｉｎ ｔｒｏｐｉｃａｌ ａｎｄ ｓｕｂｔｒｏｐｉｃａｌ Ａｓｉａ (Ｌｉｕ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９). Ｔｈｅｓｅ ｓｌｉｐｐｅｒ ｏｒｃｈｉｄｓ ａｒｅ ｎａｍｅｄ ｆｏｒ
ｔｈｅ ｓｈａｐｅ ｏｆ ｔｈｅ ｄｅｅｐｌｙ ｓａｃｃａｔｅ ｌｉｐ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ｆｌｏｗｅｒｓ.
Ｇｒｏｗｅｒｓ ｐｒｉｚｅ ｔｈｅｍ ｆｏｒ ｔｈｅｉｒ ｖｅｒｙ ｇｒｅａｔ ｏｒｎａｍｅｎｔａｌ
ｖａｌｕｅꎬ ｐａｒｔｉｃｕｌａｒｌｙ ｂｅｃａｕｓｅ ｔｈｅｓｅ ｓｍａｌｌ ｐｌａｎｔｓ ｈａｖｅ
ｓｐｅｃｔａｃｕｌａｒꎬ ｌａｒｇｅ ｆｌｏｗｅｒｓ ( Ｃｒｉｂｂꎬ １９９８ ). Ｍｏｒｅ
ｔｈａｎ ２０ ０００ ｓｌｉｐｐｅｒ ｏｒｃｈｉｄ ｈｙｂｒｉｄ ｇｒｅｘｅｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ
ｒｅｇｉｓｔｅｒｅｄꎬ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｉｎｇ ｔｈｅｉｒ ｒｅｍａｒｋａｂｌｅ ｒｉｓｅ ｉｎ
ｐｏｐｕｌａｒｉｔｙ (Ｚｅｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０). Ｐｒｏｖｉｎｃｅｓ ｉｎ ｓｏｕｔｈ￣
ｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｓｏｕｔｈｅａｓｔｅｒｎ Ｙｕｎｎａｎꎬ
ｎｏｒｔｈｅｒｎ ａｎｄ ｗｅｓｔｅｒｎ Ｇｕａｎｇｘｉꎬ ａｎｄ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ
Ｇｕｉｚｈｏｕꎬ ａｒｅ ｋｎｏｗｎ ａｓ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ
ｈｏｔｓｐｏｔｓ ｆｏｒ ｔｈｉｓ ｇｅｎｕｓ ( Ｌｕｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３ꎻ Ｌｉｕ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２０１０). Ｔｈｅｒｅ ａｒｅ ２５ ｏｆ ８０ ｓｐｅｃｉｅｓ ｇｒｏｗ ｏｎ ｌｉｍｅ￣
ｓｔｏｎｅ ｈｉｌｌｓ ｉｎ ｔｈａｔ ｒｅｇｉｏｎ. Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎ ｔｏ ｔｈｒｅａｔｓ ｆｒｏｍ
ｒａｐｉｄ ｈａｂｉｔａｔ ｄｅｓｔｒｕｃｔｉｏｎ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｆａｓｔｅｒ ｅｃｏ￣
ｎｏｍｉｃ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｒｕｒａｌ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｐａｓｔ
ｔｈｒｅｅ ｄｅｃａｄｅｓꎬ ｗｉｌｄ ｓｌｉｐｐｅｒ ｏｒｃｈｉｄｓ ａｒｅ ｆａｃｉｎｇ ｄｅ￣
ｓｔｒｕｃｔｉｖｅ ｃｏｌｌｅｃｔｉｎｇ ｐｒｅｓｓｕｒｅｓ ｄｕｅ ｔｏ ｌａｒｇｅ ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｌ
ａｎｄ ｃｏｍｍｅｒｃｉａｌ ｄｅｍａｎｄｓ ｉｎ Ｃｈｉｎａ (Ｌｕｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３ꎻ
Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９). Ｔｈｉｓ ｖｕｌｎｅｒａｂｉｌｉｔｙ ｂｙ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉ￣
ｌｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｏ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｃｈａｎｇｅ ｃａｎ ｂｅ ａｌｓｏ
ｔｒａｃｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｌｉｍｉｔｅｄ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｎｙ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ
ｔｈｅ ｗｉｌｄ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｔｈａｔ ｏｆｔｅｎ
ｃｏｎｔａｉｎ ｏｎｌｙ ａ ｆｅｗ ｐｌａｎｔｓ ｅａｃｈ (Ｃｒｉｂｂ ａｎｄ ＭｃＧｏｕｇｈꎬ
１９９７). Ｉｔ ｉｓ ｕｒｇｅｎｔ ｔｏ ｔａｋｅ ｐｒｏｐｅｒ ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｔｏ ｃｏｎ￣
ｓｅｒｖｅ ｔｈｅｓｅ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ.
Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｉｓ ｒｅｓｔｒｉｃｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ
ｌｉｍｅｓｔｏｎｅ ｈｉｌｌｓ ｏｆ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａ. Ｉｎ ｔｈｅ ｅａｒｌｙ
１９８０ｓꎬ ｐｌａｎｔｓ ｗｅｒｅ ｅｘｐｏｒｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｃｈｉｎａ ａｎｄ ｄｅｓｅｒｖ￣
ｅｄｌｙ ｒｅｃｅｉｖｅｄ Ｆｉｒｓｔ Ｃｌａｓｓ Ｃｅｒｔｉｆｉｃａｔｅｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ Ａｍｅｒｉ￣
ｃａｎ Ｏｒｃｈｉｄ Ｓｏｃｉｅｔｙꎬ ｔｈｅ Ｒｏｙａｌ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙꎬ
ａｎｄ ｍａｎｙ ｏｔｈｅｒ ａｗａｒｄｉｎｇ ｇｒｏｕｐｓ ｂｅｃａｕｓｅ ｔｈｅｓｅ ｂｅａｕ￣
ｔｉｆｕｌ ｐｌａｎｔｓ ｈａｖｅ ｐｉｎｋ ｆｌｏｗｅｒｓ ｔｈａｔ ａｒｅ ｌａｒｇｅｒ ｔｈａｎ
ｔｈｏｓｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｋｎｏｗｎ (Ｃｒｉｂｂꎬ １９９８). Ｓｉｎｃｅ ｔｈｅｎꎬ
ｔｈｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ ｉｎ ｌａｒｇｅ ｑｕａｎｔｉｔｉｅｓ
ｗｈｉｌｅ ｗｉｌｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｈａｖｅ ｄｅｃｌｉｎｅｄ ｓｈａｒｐｌｙ (Ｌｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００２ｂ). Ｔｏ ｐｒｅｓｅｒｖｅ ａｎｄ ｅｘｐｌｏｉｔ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ
ａｎｄ ｉｔｓ ａｌｌｉｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ
ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｅｆ￣
ｆｏｒｔｓ (Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００４ꎻ ２００６)ꎬ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｅｃｏｌｏ￣
ｇｙ (Ｃｈａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１)ꎬ ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ ｂｉｏｌｏｇｙ (Ｓｈｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００７)ꎬ ａｎｄ ｂｒｅｅｄｉｎｇ ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ( Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００４ꎻ Ｌｉａｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１ꎻ Ｃｈｕｎｇ ａｎｄ Ｃｈｏｉꎬ ２０１２).
Ｃｌａｒｉｆｙｉｎｇ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ
ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ｅｘｔａｎｔ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｎｏｔ ｏｎｌｙ ｐｒｏｖｉｄｅｓ ｉｎ￣
ｓｉｇｈｔｓ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ａｎｄ ｄｅｍｏｇｒａｐｈｉｃ ｈｉｓｔｏｒｙ
ｏｆ ｔｈｒｅａｔｅｎｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｈａｍｒｉｃｋ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９８２ꎻ Ｈａｍ￣
ｒｉｃｋ ａｎｄ Ｇｏｄｔꎬ １９９０)ꎬ ｂｕｔ ａｌｓｏ ｆａｃｉｌｉｔａｔｅｓ ｔｈｅ ｄｅｓｉｇｎ
ｏｆ ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ａｎｄ ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ
(Ｊｉａｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｏｎｌｙ ａ ｆｅｗ ｓｔｕｄｉｅｓ
ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ ｂｅｃａｕｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｄｉｆｆｉｃｕｌｔｙ ａｓｓｏｃｉ￣
ａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｃｏｌｌｅｃｔｉｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｓａｍｐｌｅｓ ｆｏｒ ｓｌｉｐｐｅｒ
ｏｒｃｈｉｄｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｏｎｅ ｔｈａｔ ｕｓｅｄ ｒａｎｄｏｍ ａｍｐｌｉｆｉｅｄ
ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ ＤＮＡ (ＲＡＰＤ) ｍａｒｋｅｒｓ ｔｏ ｅｘａｍｉｎｅ ｔｈｅ
ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｗｉｔｈｉｎ ｆｏｕｒ ｎａｔｕｒａｌｌｙ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ
Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ (Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ｂ).
Ｉｎｔｅｒ￣ｓｉｍｐｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｒｅｐｅａｔｓ ( ＩＳＳＲ) ａｎｄ ｓｅ￣
ｑｕｅｎｃｅ￣ｒｅｌａｔｅｄ ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ (ＳＲＡＰ) ａｒｅ
ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｓｉｍｐｌｅ ａｎｄ ｈｉｇｈｌｙ ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｌｅ ｍａｒｋｅｒ
ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ｔｈａｔ ｄｏ ｎｏｔ ｒｅｌｙ ｏｎ ｐｒｉｏｒ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａ￣
ｂｏｕｔ ａ ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅꎬ ａｎｄ ｗｈｉｃｈ ｒｅｑｕｉｒｅ ｖｅｒｙ ｌｉｔｔｌｅ
ｓｔａｒｔｉｎｇ ＤＮＡ ｔｅｍｐｌａｔｅ (Ｚｉｅｔｋｉｅｗｉｃｚ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９４ꎻ Ｌｉ
ａｎｄ Ｑｕｉｒｏｓꎬ ２００１). Ｔｈｅｓｅ ｔｗｏ ｓｙｓｔｅｍｓ ｈａｖｅ ｐｒｏｖｅｎ
ｔｏ ｂｅ ｐｏｗｅｒｆｕｌ ａｎｄ ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｆｏｒ ａｎａｌｙｓｅｓ
ｏｆ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ
ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｍａｒｋｅｒ￣ａｓｓｉｓｔｅｄ ｂｒｅｅｄｉｎｇ ｉｎ ｍａｎｙ
ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｗａｌｌａｃｅꎬ ２００３ꎻ
Ｄｉｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｇｅｏｒｇｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９ꎻ Ｗａｎｇ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００９ꎻ Ｃａｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１). Ｗｅ ｔｈｕｓ ａｐｐｌｙ ｔｈｅｓｅ
ｔｗｏ ｍａｒｋｅｒｓ ｔｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ
ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｉｎ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ￣
ｅｒｎ Ｃｈｉｎａ. Ｏｕｒ ｍａｉｎ ｇｏａｌｓ ｗｅｒｅ ｔｏ １) ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ
ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ ａｎｄ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａ￣
ｔｉｏｎｓꎬ ２) ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚｅ ｔｈｅ ｅｘｔｅｎｔ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎ￣
ｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ａｎｄ ３ ) ｉｄｅｎｔｉｆｙ ｔｈｅ
ｃａｕｓｅｓ ｆｏｒ ｔｈｉｓ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ.
１ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｓ
１ １ Ｓａｍｐｌｉｎｇ ａｎｄ ｐｌａｎｔ ｍａｔｅｒｉａｌ ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ
Ｗｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ４０７ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｏｆ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ
ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｆｒｏｍ １５ ｗｉｌｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｔｈｒｅｅ ｐｒｏｖ￣
ｉｎｃｅｓ ｏｆ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａ (Ｆｉｇ １ꎻ Ｔａｂｌｅ １). Ｂｅ￣
ｃａｕｓｅ ｔｈｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｓ ｒｈｉｚｏｍａｔｏｕｓ ａｎｄ ｆｏｒｍｓ ｃｌｕｍｐｓ
０１２ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３６卷
ｏｆ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｐｌａｎｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ｗｉｌｄ (Ｔｓｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９)ꎬ ｗｅ
ｔｒｉｅｄ ｔｏ ａｖｏｉｄ ｃｏｌｌｅｃｔｉｎｇ ｒａｍｅｔｓ ｏｆ ｏｎｌｙ ａ ｓｉｎｇｌｅ ｇｅｎｏ￣
ｔｙｐｅ ｂｙ ｒａｎｄｏｍｌｙ ｓｅｌｅｃｔｉｎｇ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｔｈａｔ ｗｅｒｅ
ｓｐａｃｅｄ ａｔ ｌｅａｓｔ ３ ｍ ａｐａｒｔ. Ｙｏｕｎｇ ｌｅａｖｅｓ ｗｅｒｅ ｈａｒｖｅｓ￣
ｔｅｄ ａｎｄ ｄｒｉｅｄ ｂｙ ｓｉｌｉｃａ ｇｅｌ ｆｏｒ ｆｕｒｔｈｅｒ ＤＮＡ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ.
Ｔｈｅ ｇｅｎｏｍｉｃ ＤＮＡ ｏｆ ｅａｃｈ ｓａｍｐｌｅ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｆｒｏｍ
ｌｅａｖｅｓ ｂｙ ｔｈｅ ｓｔａｎｄａｒｄ ＣＴＡＢ (ｃｅｔｙｌｔｒｉｍｅｔｈｙｌ ａｍｍｏ￣
ｎｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ) ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ Ｄｏｙｌｅ ａｎｄ Ｄｏｙｌｅ (１９８７).
Ｆｉｇ １ Ｓａｍｐｌｉｎｇ ｓｉｔｅｓ ｆｏｒ ｗｉｌｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ
ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｉｎ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａ. Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ
ｃｏｄｅｓ ａｒｅ ｅｘｐｌａｉｎｅｄ ｗｉｔｈ Ｔａｂｌｅ １
１ ２ ＩＳＳＲ ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ
Ｔｈｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｆｏｒ ｏｕｒ ＩＳＳＲ ｐｒｉｍｅｒｓ ｗｅｒｅ ｐｒｏ￣
ｖｉｄｅｄ ｂｙ ｔｈｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙꎬ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ
Ｂｒｉｔｉｓｈ Ｃｏｌｕｍｂｉａꎬ Ｃａｎａｄａ. Ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ １５ (Ｔａｂｌｅ ２)
ｆｒｏｍ ９０ ａｒｂｉｔｒａｒｙ ｐｒｉｍｅｒｓ ｓｈｏｗｉｎｇ ｇｏｏｄ ｒｅｐｅｔｉｔｉｏｎꎬ
ｓｐｅｃｉａｌ ｂａｎｄｓꎬ ａｎｄ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ. Ｅａｃｈ ＩＳ￣
ＳＲ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｍｉｘｔｕｒｅ ( ２０ μＬ) ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ５０ ｎｇ ｏｆ
ｔｅｍｐｌａｔｅ ＤＮＡꎬ ８ μＬ ｏｆ ２ × Ｔａｑ ＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ
(０ １ Ｕ ｏｆ Ｔａｑ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｐｅｒ μＬꎬ ０ ５ ｍｍｏｌＬ－１
ｄＮＴＰꎬ ２０ ｍｍｏｌＬ－１ Ｔｒｉｓ￣ＨＣｌꎬ １００ ｍｍｏｌＬ－１ ＫＣｌꎬ
ａｎｄ ３ ｍｍｏｌＬ－１ ＭｇＣｌ２)ꎬ ｐｌｕｓ ２％ ｆｏｒｍａｍｉｄｅꎬ １００
ｎｍｏｌＬ－１ ｐｒｉｍｅｒꎬ ａｎｄ ｄｏｕｂｌｅ￣ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ. Ｔｈｅ
ＰＣＲ ｐｒｏｇｒａｍ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ａｎ ｉｎｉｔｉａｌ ｄｅｎａｔｕｒａｔｉｏｎ ａｔ ９４ ℃
ｆｏｒ ５ ｍｉｎꎻ ｔｈｅｎ ４０ ｃｙｃｌｅｓ ｏｆ ９４ ℃ ｆｏｒ ４５ ｓꎬ ５３ ℃ ｆｏｒ
１ ｍｉｎꎬ ａｎｄ ７２ ℃ ｆｏｒ ２ ｍｉｎꎻ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ａ ｆｉｎａｌ ｅｘ￣
ｔｅｎｓｉｏｎ ａｔ ７２ ℃ ｆｏｒ ７ ｍｉｎ. Ｔｈｅ ＩＳＳＲ￣ＰＣＲ ｐｒｏｄｕｃｔｓ
ｗｅｒｅ ｓｅｐａｒａｔｅｄ ｉｎ ２ ０％ ａｇａｒｏｓｅ ｇｅｌｓ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｗｉｔｈ
０ ５ × ＴＢＥ. Ａ １００ ｂｐ ＤＮＡ ｌａｄｄｅｒ (Ｆｅｒｍｅｎｔａｓ) ｗａｓ
ｕｓｅｄ ａｓ ａ ｓｉｚｅ ｍａｒｋｅｒ. Ａｆｔｅｒ ｓｔａｉｎｉｎｇ ｗｉｔｈ ｅｔｈｉｄｉｕｍ
ｂｒｏｍｉｄｅꎬ ｔｈｅ ＤＮＡ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｂｙ ｉｍａｇｅ
ａｎａｌｙｓｉｓ ｓｏｆｔｗａｒｅ ｆｏｒ ｇｅｌ ｄｏｃｕｍｅｎｔａｔｉｏｎ (Ｌａｂ Ｗｏｒｋｓ
Ｓｏｆｔｗａｒｅꎬ ｖｅｒｓｉｏｎ ３ ０ꎻ ＵＶＰꎬ Ｕｐｌａｎｄꎬ ＣＡꎬ ＵＳＡ).
１ ３ ＳＲＡＰ ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ
Ｔｈｅ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒ ａｎａｌｙｓｉｓ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ａｓ ｄｅ￣
ｓｃｒｉｂｅｄ ｂｙ Ｌｉ ａｎｄ Ｑｕｉｒｏｓ (２００１). Ｆｒｏｍ ８８ ａｒｂｉｔｒａｒｙ
ｐｒｉｍｅｒ ｐａｉｒｓꎬ ｗｅ ｓｅｌｅｃｔｅｄ １１ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ ｔｈａｔ ｓｈｏｗｅｄ
ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ (Ｔａｂｌｅ ２). Ｅａｃｈ ＳＲＡＰ ｒｅａｃｔｉｏｎ
ｍｉｘｔｕｒｅ (２０ μＬ) ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ４０ ｎｇ ｏｆ ｔｅｍｐｌａｔｅ ＤＮＡꎬ
８ μＬ ｏｆ ２ × Ｔａｑ ＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘꎬ １００ ｎｍｏｌＬ－１
ｅａｃｈ ｆｏｒ ｆｏｒｗａｒｄ ａｎｄ ｒｅｖｅｒｓｅ ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ａｎｄ ｄｏｕｂｌｅ￣
ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ. Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｕｎｄｅｒ ｔｈｅ
ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ: ９４℃ / ３ ｍｉｎꎻ ｆｉｖｅ ｃｙｃｌｅｓ ｏｆ ９４ ℃
/ １ ｍｉｎꎬ ３５ ℃ / １ ｍｉｎꎬ ７２ ℃ / １ ｍｉｎꎻ ｔｈｅｎ ３０ ｃｙｃｌｅｓ
Ｔａｂｌｅ １ Ｓａｍｐｌｉｎｇ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｆｏｒ １５ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｃｏｄｅ Ｌｏｃａｔｉｏｎ Ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｓａｍｐｌｅｓ Ｅｌｅｖａｔｉｏｎ / ｍ Ｌｏｎｇｉｔｕｄｅ (Ｅ) Ｌａｔｉｔｕｄｅ (Ｎ)
ＹＷ Ｗｅｎｓｈａｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ ３６ １５５０ １０４°１８′４２″ ２３°１０′２２″
ＹＧ Ｇｕａｎｇｎａｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ ３６ １５３０ １０５°０４′１５″ ２４°１１′３１″
ＹＴ Ｔｉａｎｂａｏꎬ Ｙｕｎｎａｎ ２４ １３５０ １０４°４４′２６″ ２３°０３′４１″
ＹＸ Ｘｉｃｈｏｕꎬ Ｙｕｎｎａｎ ２７ １５４０ １０４°３１′５１″ ２３°２０′１３″
ＹＦ Ｆａｄｏｕꎬ Ｙｕｎｎａｎ ２９ １５８０ １０４°４５′１９″ ２３°２４′１１″
ＹＪ Ｊｉｎｃｈａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ ２４ １４９０ １０４°４９′１７″ ２３°０７′４７″
ＹＭ Ｍａｇｕａｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ ２１ １４３８ １０４°２２′２０″ ２２°５６′４８″
ＸＬ Ｌｅｙｅꎬ Ｇｕａｎｇｘｉ ２３ １０２０ １０６°２１′１４″ ２４°４８′５４″
ＸＮ Ｎａｐｏꎬ Ｇｕａｎｇｘｉ ２４ １０７７ １０５°５７′２１″ ２３°２４′２９″
ＸＹ Ｌｉｎｙｕｎꎬ Ｇｕａｎｇｘｉ １９ １０５０ １０６°４４′１３″ ２４°３４′１４″
ＧＣ Ｃｅｈｅｎｇꎬ Ｇｕｉｚｈｏｕ ２９ １２７３ １０５°３９′５９″ ２４°５９′２２″
ＧＮ Ｎｉｄａｎｇꎬ Ｇｕｉｚｈｏｕ ２９ １４７９ １０４°４８′２４″ ２４°４９′４９″
ＧＷ Ｗａｎｇｍｏꎬ Ｇｕｉｚｈｏｕ ２８ １２７４ １０６°２３′１２″ ２５°１４′５４″
ＧＺ Ｚｈａｏｊｉａｄｕｉꎬ Ｇｕｉｚｈｏｕ ３０ １３７５ １０５°００′２３″ ２５°０１′５７″
ＧＢ Ｂａｊｉｅꎬ Ｇｕｉｚｈｏｕ ２８ １１８２ １０４°５９′４１″ ２４°５４′３９″
１１２２期 ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ ｅｔ ａｌ.: ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ
Ｔａｂｌｅ ２ Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ １５ ＩＳＳＲ ｐｒｉｍｅｒｓ ａｎｄ １１ ＳＲＡＰ Ｐｒｉｍｅｒｓ
ＩＳＳＲ ｐｒｉｍｅｒｓ Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ＳＲＡＰ ｐｒｉｍｅｒ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ Ｆｏｒｗａｒｄ ｐｒｉｍｅｒ Ｒｅｖｅｒｓｅ ｐｒｉｍｅｒ
ＵＢＣ８１１ (ＧＡ) ８Ｃ Ｍｅ１￣Ｅｍ９ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＴＡ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＧＡ
ＵＢＣ８１４ (ＣＴ) ８Ａ Ｍｅ２￣Ｅｍ３ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＧＣ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＧＡＣ
ＵＢＣ８１５ (ＧＡ) ８Ｇ Ｍｅ３￣Ｅｍ１１ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＴ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＣＡ
ＵＢＣ８２２ (ＴＣ) ８Ａ Ｍｅ５￣Ｅｍ２ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＧ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＴＧＣ
ＵＢＣ８２３ (ＴＣ) ８Ｃ Ｍｅ５￣Ｅｍ５ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＧ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＡＡＣ
ＵＢＣ８２５ (ＡＣ) ８Ｔ Ｍｅ５￣Ｅｍ７ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＧ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＡＡ
ＵＢＣ８２７ (ＴＣ) ８Ｇ Ｍｅ５￣Ｅｍ９ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＡＡＧ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＧＡ
ＵＢＣ８３４ (ＡＧ) ８ＹＴ Ｍｅ６￣Ｅｍ３ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＴＡＡ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＧＡＣ
ＵＢＣ８３５ (ＡＧ) ８ＹＣ Ｍｅ６￣Ｅｍ４ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＴＡＡ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＴＧＡ
ＵＢＣ８４４ (ＣＴ) ８ＲＣ Ｍｅ７￣Ｅｍ１０ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＴＣＣ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＣＡＧ
ＵＢＣ８４５ (ＣＴ) ８ＲＧ Ｍｅ８￣Ｅｍ３ ＴＧＡＧＴＣＣＡＡＡＣＣＧＧＴＧＣ ＧＡＣＴＧＣＧＴＡＣＧＡＡＴＴＧＡＣ
ＵＢＣ８５３ (ＴＣ) ８ＲＴ
ＵＢＣ８５７ (ＡＣ) ８ＹＧ
ＵＢＣ８５９ (ＣＧ) ８ＲＣ
ＵＢＣ８７３ (ＧＡＣＡ) ４
ｏｆ ９４ ℃ / １ ｍｉｎꎬ ５０ ℃ / １ ｍｉｎꎬ ７２ ℃ / １ ｍｉｎꎻ ａｎｄ ａ ｆｉ￣
ｎａｌ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｏｆ ７２ ℃ / １０ ｍｉｎ. Ａｌｌ ＰＣＲ ｒｅａｃｔｉｏｎｓ
ｗｅｒｅ ｒｕｎ ｉｎ ｔｈｅ ＡＢＩ ２７２０ Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ. Ｔｈｅ ＳＲＡＰ￣
ＰＣＲ ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ ｏｎ ６％ ｎｏｎ￣ｄｅｎａｔｕｒｅｄ
ｐｏｌｙａｃｒｙｌａｍｉｄｅ ｇｅｌｓ ｉｎ １ × ＴＢＥ ｂｕｆｆｅｒ ｒｕｎｎｉｎｇ ａｔ ３８０ Ｖ
ｃｏｎｓｔａｎｔ ｖｏｌｔａｇｅ ｆｏｒ １ ０ ｈ. Ａｆｔｅｒｗａｒｄꎬ ｓｉｌｖｅｒ￣ｓｔａｉｎｉｎｇ
ｗａｓ ｄｏｎｅ ａｓ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｂｙ Ｂａｓｓａｍ ｅｔ ａｌ. (１９９１).
Ｔｏ ｅｎｓｕｒｅ ｔｈｅ ｒｅｌｉａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｇｅｎｏｔｙｐｅꎬ ｎｅｇａ￣
ｔｉｖｅ ｃｏｎｔｒｏｌｓ ｗｅｒｅ ｒｕｎ ａｔ ｅａｃｈ ｓｔｅｐ ｔｏ ｃｈｅｃｋ ｆｏｒ ｅｘｏｇ￣
ｅｎｏｕｓ ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ ｆｏｒ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ. Ｔｈｅ ｅｘｐｅｒ￣
ｉｍｅｎｔ ｗａｓ ｒｅｐｅａｔｅｄ ｔｗｉｃｅꎬ ａｎｄ ｏｎｌｙ ｄａｔａ ｆｒｏｍ ｉｎ￣
ｔｅｎｓｅｌｙ ｓｔａｉｎｅｄꎬ ｕｎａｍｂｉｇｕｏｕｓ ｂａｎｄｓ ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｆｏｒ
ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ａｎａｌｙｓｉｓ.
１ ４ Ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｂａｎｄｓ ｗｅｒｅ ｓｃｏｒｅｄ ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ
ｐｒｅｓｅｎｃｅ (１) ｏｒ ａｂｓｅｎｃｅ (０) ｏｆ ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ ｂａｎｄｓ
ｆｏｒ ａｌｌ ｓａｍｐｌｅｓꎬ ａｎｄ ｗｅｒｅ ｄｉｓｐｌａｙｅｄ ａｓ ｐａｒｔ ｏｆ ａ ｂｉ￣
ｎａｒｙ ｍａｔｒｉｘ. Ｔｈｅｓｅ ｄａｔａ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ ｂｙ ＰＯＰＧＥＮＥ
ｖｅｒｓｉｏｎ １ ３２ (Ｆｒａｎｃｉｓ ａｎｄ Ｙａｎｇꎬ ２０００) ｔｏ ｅｓｔｉｍａｔｅ
ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ.
Ｓｏｍｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｐａｒａｍｅｔｅｒｓꎬ ｅ ｇ.ꎬ ｐｅｒｃｅｎｔ￣
ａｇｅ ｏｆ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ ｂａｎｄｓ (ＰＰＢ)ꎬ Ｓｈａｎｎｏｎ’ｓ ｉｎｆｏｒ￣
ｍａｔｉｏｎ ｉｎｄｅｘ Ｉ (Ｓｈａｎｎｏｎ ａｎｄ Ｗｅａｖｅｒꎬ １９４９)ꎬ ａｎｄ
Ｎｅｉ’ｓ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｈｅ (Ｎｅｉꎬ １９７８)ꎬ ｗｅｒｅ ｅｖａｌ￣
ｕａｔｅｄ ａｔ ｂｏｔｈ ｔｈｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｌｅｖｅｌｓ. Ｇｅ￣
ｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｗａｓ ｅｓｔｉ￣
ｍａｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔｓ ｆｏｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ
(Ｇｓｔ ) ａｎｄ ｇｅｎｅ ｆｌｏｗ (Ｎｍ ) ( Ｓｌａｔｋｉｎ ａｎｄ Ｂａｒｔｏｎꎬ
１９８９). Ｔｏ ｅｘａｍｉｎｅ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ａｍｏｎｇ
ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ｗｅ ｇｅｎｅｒａｔｅｄ ａ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ｍａｐ
ｖｉａ ＰＯＰＧＥＮＥ. Ｗｅ ａｌｓｏ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｅｄ ａ ｄｅｎｄｒｏｇｒａｍ
ｐｅｒ Ｎｅｉ’ｓ (１９７８) ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ｍｅｔｈｏｄꎬ ｕｓｉｎｇ
ｔｈｅ ｕｎｗｅｉｇｈｔｅｄ ｐａｉｒ￣ｇｒｏｕｐ ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ ａｖｅｒａｇｅｓ (ＵＰ￣
ＧＭＡ) ａｎｄ １ ０００ ｐｅｒｍｕｔａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｂｏｏｔｓｔｒａｐｐｉｎｇꎬ
ｗｉｔｈ ＴＦＰＧＡ ｖｅｒｓｉｏｎ １ ３ (Ｍｉｌｌｅｒꎬ １９９７). Ａ Ｍａｎｔｅｌ
ｔｅｓｔ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｔｏ ｅｓｔｉｍａｔｅ ａｎｙ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ
ｔｈｅ ｍａｔｒｉｃｅｓ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ａｎｄ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ
ｄｉｓｔａｎｃｅｓꎬ ｕｓｉｎｇ ＧｅｎＡｌＥｘ ｖｅｒｓｉｏｎ ６ ５ (Ｐｅａｋａｌｌ ａｎｄ
Ｓｍｏｕｓｅꎬ ２００６). Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ Ｃｏｏｒｄｉｎａｔｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ (ＰＣｏＡ)
ｗａｓ ａｌｓｏ ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ ｗｉｔｈ ＧｅｎＡｌＥｘ ｖｅｒｓｉｏｎ ６ ５ꎬ
ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ Ｊａｃｃａｒｄ’ｓ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｃｏｅｆｆｉ￣
ｃｉｅｎｔｓ. Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ
ａｎｄ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ｗｅｒｅ ｅｓｔｉｍａｔｅｄ ｂｙ ＰＡＳＳＡＧＥ
ｖｅｒｓｉｏｎ ２ (Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ ａｎｄ Ａｎｄｅｒｓｏｎꎬ ２０１１).
２ Ｒｅｓｕｌｔｓ
２ １ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
Ａ ｔｏｔａｌ ｏｆ ８８ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂａｎｄｓ ｗｅｒｅ ｓｃｏｒｅｄ ｆｒｏｍ
１５ ＩＳＳＲ ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ｏｆ ｗｈｉｃｈ ８１ ｗｅｒｅ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ
(９２ ０４％). Ｏｕｒ １１ ＳＲＡＰ ｐｒｉｍｅｒ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ ｐｒｏ￣
ｄｕｃｅｄ ２８０ ｂａｎｄｓꎬ ｆｒｏｍ １００ ｔｏ ５００ ｂｐ ｌｏｎｇꎬ ａｃｒｏｓｓ
ａｌｌ ４０７ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ. Ｏｆ ｔｈｏｓｅꎬ ２７８ ｗｅｒｅ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ
(９９ ２９％). Ａ ｓｕｍｍａｒｙ ｏｆ ｔｈｅ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｄａｔａ
ｆｒｏｍ ｅａｃｈ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｉｓ
２１２ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３６卷
ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｉｎ Ｔａｂｌｅ ３. Ｔｈｅ ＩＳＳＲ ａｎａｌｙｓｅｓ ｒｅｓｕｌｔｅｄ ｉｎ
ａ Ｈｅ ｖａｌｕｅ ｏｆ ０ ３８３９ ａｎｄ ａｎ Ｉ ｖａｌｕｅ ｏｆ ０ ５６４６ ａｔ ｔｈｅ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｌｅｖｅｌ. Ｗｉｔｈｉｎ ｅａｃｈ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎꎬ ｔｈｅ ＰＰＢ ｖａｒ￣
ｉｅｄ ｆｒｏｍ ６４ ８９％ (ＹＪ ａｎｄ ＸＬ) ｔｏ ８９ ３６％ (ＹＷ).
Ｔｈｅ ｍｅａｎ Ｈｅ ｗａｓ ０ ２８４７ꎬ ｒａｎｇｉｎｇ ｆｒｏｍ ０ １９７５
(ＸＬ) ｔｏ ０ ３２３８ (ＹＷ). Ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ Ｉ ｓｈｏｗｅｄ ｓｉｍｉｌａｒ
ｔｒｅｎｄｓꎬ ｒａｎｇｉｎｇ ｆｒｏｍ ０ ３０２４ ( ＸＬ ) ｔｏ ０ ４７９９
(ＹＷ). Ｔｈｅ ＳＲＡＰ ａｎａｌｙｓｅｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ａ Ｈｅ ｖａｌｕｅ ｏｆ
０ ２８０６ ａｎｄ ａｎ Ｉ ｏｆ ０ ４３５９ ａｔ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｌｅｖｅｌ.
Ｗｉｔｈｉｎ ｅａｃｈ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎꎬ ｔｈｅ ＰＰＢ ｖａｒｉｅｄ ｆｒｏｍ
６２ ５４％ (ＸＬ) ｔｏ ８２ ６９％ (ＹＷ). Ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ Ｈｅ
ｗｅｒｅ ０ １９６３ ｔｏ ０ ２４１０ ( ｍｅａｎ ０ ２１６６)ꎻ ｆｏｒ Ｉꎬ
０ ２９７４ ｔｏ ０ ３７０１ (ｍｅａｎ ０ ３３０１). Ｔｈｅｓｅ ｄａｔａ ｆｒｏｍ
ｂｏｔｈ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔꎬ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ １５
ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ
ｗａｓ ｒｉｃｈｅｓｔ ｗｉｔｈｉｎ ＹＷ ａｎｄ ｐｏｏｒｅｓｔ ｗｉｔｈｉｎ ＸＬ.
２ ２ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ ａｎｄ ａｍｏｎｇ
ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
ＡＭＯＶＡ ａｎａｌｙｓｉｓ ｗｉｔｈ ＧｅｎＡｌＥｘ ６ ５ ｓｏｆｔｗａｒｅ
ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ (Ｐ < ０ ００１)
ａｍｏｎｇ ａｎｄ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳＳＲ
ａｎａｌｙｓｉｓꎬ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ (６９％) ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ ｔｏ￣
ｔａｌ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｖａｒｉａｎｃｅ ｗａｓ ａｔｔｒｉｂｕｔｅｄ ｔｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ
ｂｅｔｗｅｅｎ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｗｉｔｈｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｅ￣
ｍａｉｎｄｅｒ ( ３１％) ｃｏｍｉｎｇ ｆｒｏｍ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
(Ｔａｂｌｅ ４). Ｔｈｉｓ ｗａｓ ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ＰＯＰＧＥＮＥ
ｒｅｓｕｌｔｓ (Ｇｓｔ ＝ ０ ２５７７). Ｓｉｍｉｌａｒｌｙꎬ ｗｈｅｎ ｔｈｅ ＳＲＡＰ
ｄａｔａ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄꎬ ｍｏｄｅｒａｔｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ
(Ｇｓｔ ＝０ ２３８３) ｗａｓ ｆｏｕｎｄ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｔｈｅ ａｖ￣
ｅｒａｇｅ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｅｘｃｈａｎｇｅｄ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕ￣
ｌａｔｉｏｎｓ ｐｅｒ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ (Ｎｍ) ｗａｓ ０ ７２０１ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳ￣
ＳＲ ｍａｒｋｅｒｓ ａｎｄ ０ ７９９１ ｗｈｅｎ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒｓ ｗｅｒｅ
ｕｓｅｄ (Ｔａｂｌｅ ３). Ｔｈｉｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｌｉｍｉｔｅｄ ｐｏｌｌｅｎ
ａｎｄ ｓｅｅｄ ｄｉｓｐｅｒｓａｌ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ.
２ ３ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
Ｔｈｅ Ｍａｎｔｅｌ ｔｅｓｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｃｏｒ￣
ｒｅｌａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｇｅｎｅｔｉｃ ａｎｄ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ
ｆｏｒ ｂｏｔｈ ＩＳＳＲｓ ( ｒ＝ ０ ４５５ꎻ Ｐ＝ ０ ００１) ａｎｄ ＳＲＡＰｓ
Ｔａｂｌｅ ３ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ａｎａｌｙｓｅｓ
Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ
ＩＳＳＲ
ＰＰＢ / ％ Ｈｅ Ｉ Ｇｓｔ Ｎｍ
ＳＲＡＰ
ＰＰＢ / ％ Ｈｅ Ｉ Ｇｓｔ Ｎｍ
ＹＷ ８９ ３６ ０ ３２３８ ０ ４７９９ ８２ ６９ ０ ２４１０ ０ ３７０１
ＹＧ ８７ ２３ ０ ３０８７ ０ ４５９８ ６８ ９０ ０ ２０１５ ０ ３０７６
ＹＴ ７７ ６６ ０ ２８７３ ０ ４２３９ ６４ ６６ ０ ２０８４ ０ ３１５９
ＹＸ ８０ ８５ ０ ２８３１ ０ ４１９６ ７５ ２７ ０ ２１７７ ０ ３３４６
ＹＦ ７５ ５３ ０ ２７８７ ０ ４１１３ ７０ ６７ ０ ２１５４ ０ ３２７４
ＹＪ ６４ ８９ ０ ２３１４ ０ ３４４８ ６３ ６０ ０ ２０５３ ０ ３１０６
ＹＭ ８７ ２３ ０ ３２２０ ０ ４７６７ ６７ １４ ０ ２０４０ ０ ３０９５
ＸＬ ６４ ８９ ０ １９７５ ０ ３０２４ ６２ ５４ ０ １９６３ ０ ２９７４
ＸＮ ７５ ５１ ０ ２６０２ ０ ３９０７ ６４ ３２ ０ ２１９９ ０ ３２８９
ＸＹ ７７ ６６ ０ ２８５１ ０ ４２１９ ６９ ２６ ０ ２１３６ ０ ３３０１
ＧＣ ８１ ９１ ０ ３０２６ ０ ４４６８ ７１ ３８ ０ ２２２７ ０ ３３８４
ＧＮ ８７ ２３ ０ ３１７７ ０ ４６９４ ７４ ９１ ０ ２２７３ ０ ３４７９
ＧＷ ８２ ９８ ０ ２８３８ ０ ４２５５ ７９ ８６ ０ ２３６２ ０ ３６５０
ＧＺ ８８ ３０ ０ ３０３５ ０ ４５０６ ７９ ９５ ０ ２３８４ ０ ３６５１
ＧＢ ８２ ９８ ０ ２９１２ ０ ４３１２ ６７ ４９ ０ ２０１８ ０ ３０７７
Ｍｅａｎ ８０ ２８ ０ ２８４７ ０ ４２３６ ７０ ６７ ０ ２１６６ ０ ３３０１
Ｓｐｅｃｉｅｓ ｌｅｖｅｌ ９１ ６６ ０ ３８３９ ０ ５６４６ ０ ２５７７ ０ ７２０１ ９９ ２９ ０ ２８０６ ０ ４３５９ ０ ２３８３ ０ ７９９１
Ｔａｂｌｅ ４ ＡＭＯＶＡ ｒｅｓｕｌｔｓ ｆｏｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｎｃｅ ｗｉｔｈｉｎ ａｎｄ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｂｙ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ
Ｍａｒｋｅｒｓ Ｓｏｕｒｃｅ ｏｆ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｄｆ Ｓｕｍ ｏｆ ｓｑｕａｒｅｓ Ｍｅａｎ ｓｑｕａｒｅｓ Ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ Ｔｏｔａｌ ｖａｒｉａｔｉｏｎ / ％ Ｐ￣ｖａｌｕｅ
ＩＳＳＲ Ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓＷｉｔｈｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
１４
３９２
２４２５ ０７２
５０８６ ６０６
１７３ ２１９
１２ ９７６
５ ９１８
１２ ９７６
３１
６９
<０ ００１
<０ ００１
ＳＲＡＰ Ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓＷｉｔｈｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
１４
３９２
４５６９ ３１９
１２７０９ ８７５
３２６ ３８０
３２ ４２３
１０ ８５７
３２ ４２３
２５
７５
<０ ００１
<０ ００１
３１２２期 ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ ｅｔ ａｌ.: ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ
(ｒ＝ ０ ４２１ꎻ Ｐ ＝ ０ ００３) (Ｔａｂｌｅ ５). Ｔｏ ｅｘａｍｉｎｅ ｆｕｒ￣
ｔｈｅｒ ｗｈｙ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ｆｏｒｍｅｄ ａｍｏｎｇ ｔｈｅｓｅ ｐｏｐｕ￣
ｌａｔｉｏｎｓꎬ ｗｅ ｕｓｅｄ ａ Ｍａｎｔｅｌ ｔｅｓｔ ｗｉｔｈ ＰＡＳＳＡＧＥ ｔｏ ｉｎ￣
ｖｅｓｔｉｇａｔｅ ａｎｙ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒ￣
ｅｎｃｅｓ ａｎｄ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ. Ｈｅｒｅꎬ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｃｏｒｒｅｌａ￣
ｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｏｓｅ ｔｗｏ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ
ｆｒｏｍ ｂｏｔｈ ＩＳＳＲ ａｎａｌｙｓｉｓ ( ｒ ＝ ０ ４３５６ꎻ Ｐ ＝ ０ ０００６)
ａｎｄ ＳＲＡＰ ａｎａｌｙｓｉｓ ( ｒ＝ ０ ３９５３ꎻ Ｐ＝ ０ ００２５).
Ｔｈｅ ＵＰＧＭＡ ａｎａｌｙｓｅｓ ａｐｐｌｙｉｎｇ ｂｏｔｈ ＩＳＳＲｓ
(Ｆｉｇ ２Ａ) ａｎｄ ＳＲＡＰｓ ( Ｆｉｇ ２Ｂ) ｃｌｅａｒｌｙ ｒｅｓｏｌｖｅｄ
ｔｈｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｍａｊｏｒ ｃｌｕｓｔｅｒｓ. Ｃｌｕｓｔｅｒ Ｉ
Ｔａｂｌｅ ５ Ｍａｎｔｅｌ ｔｅｓｔｓ ｔｏ ｅｖａｌｕａｔｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓꎬ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ
ｄｉｓｔａｎｃｅｓꎬ ａｎｄ ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｆｏｒ １５
Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ｖｅｒｓｕｓ
Ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ
Ｐ ｒ
Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ｖｅｒｓｕｓ
Ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ
Ｐ ｒ
ＩＳＳＲ ０ ４５５ ０ ００１ ０ ４３６ ０ ００１
ＳＲＡＰ ０ ４２１ ０ ００３ ０ ３９５ ０ ００３
ｉｎｃｌｕｄｅｄ １２ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ Ｇｕｉｚｈｏｕꎬ Ｇｕａｎｇｘｉꎬ
ａｎｄ Ｙｕｎｎａｎ ｐｒｏｖｉｎｃｅｓ ｗｈｉｌｅ Ｃｌｕｓｔｅｒ ＩＩ ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｔｈｅ
ＸＬꎬ ＧＷꎬ ａｎｄ ＸＹ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ Ｇｕｉｚｈｏｕ ａｎｄ
Ｇｕａｎｇｘｉ ｐｒｏｖｉｎｃｅｓ. Ｔｈｅ ＰＣｏＡ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ＩＳＳＲ ａｎｄ
ＳＲＡＰ ｄａｔａ ｗｅｒｅ ｓｈｏｗｎ ｉｎ Ｆｉｇｕｒｅ ３Ａ ａｎｄ Ｆｉｇｕｒｅ ３Ｂꎬ
ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ＵＰＧＭＡ ｄｅｎｄｒｏ￣
ｇｒａｍꎬ ＰＣｏＡ ａｌｓｏ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｓｅｐａｒａｔｅｄ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｍａｉｎ ｃｌｕｓｔｅｒｓ.
３ Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
３ １ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ
Ｗｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ４０７ ｓａｍｐｌｅｓ ｏｆ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｆｒｏｍ
ｎａｔｉｖｅ １５ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉ￣
ｎａ ａｎｄ ａｎａｌｙｚｅｄ ｔｈｅｉｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ.
Ｔｈｅ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒｓ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｈｉｇｈｅｒ ｇｅｎｅｔｉｃ
ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ｏｆ ｏｔｈｅｒ ｏｒｃｈｉｄｓꎬ ｅ ｇ.ꎬ Ｃｙｍｂｉｄｉ￣
ｕｍ ｇｏｅｒｉｎｇｉｉꎬ Ｇｏｏｄｙｅｒａ ｐｒｏｃｅｒａꎬ Ｃｈａｎｇｎｉｅｎｉａ ａｍｏｅ￣
ｎａꎬ ａｎｄ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｆｌａｖｕｍ (Ｔａｂｌｅ ６). Ｍｏｒｅｏｖｅｒꎬ
Ｆｉｇ ２ Ａ. ＵＰＧＭＡ ｄｅｎｄｒｏｇｒａｍ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳＳＲ ｄａｔａꎻ Ｂ. ＵＰＧＭＡ ｄｅｎｄｒｏｇｒａｍ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＳＲＡＰ ｄａｔａ
Ｆｉｇ ３ Ａ. Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ Ｃｏｏｒｄｉｎａｔｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ４０７ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓꎬ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳＳＲ ｄａｔａꎻ
Ｂ. Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ Ｃｏｏｒｄｉｎａｔｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ４０７ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓꎬ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＳＲＡＰ ｄａｔａ
４１２ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３６卷
Ｔａｂｌｅ ６ Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ ｏｆ ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ (ＰＰＢ ａｎｄ Ｈｅ) ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ (Ｇｓｔ) ｂｅｔｗｅｅｎ
Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ａｎｄ ｏｔｈｅｒ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ
Ｓｐｅｃｉｅｓ ＰＰＢ / ％ Ｈｅ Ｇｓｔ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ
Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ９１ ６６９９ ２９
０ ３８３９
０ ２８０６
０ ２５７７
０ ２３８３
ＩＳＳＲ
ＳＲＡＰ
Ｔｈｉｓ ｐａｐｅｒ
Ｔｈｉｓ ｐａｐｅｒ
Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ７３ ３０ ０ ２１７０ ——— ＲＡＰＤ Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ｂ
Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｆｌｖｕｍ ８２ ６９ ０ ２８８４ ０ １５４０ ＡＦＬＰ Ｃａｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８
Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｃａｌｃｅｏｌｕｓ ３６ ４０ ０ １４９０ ０ ０５９０ Ａｌｌｏｚｙｍｅ Ｂｒｚｏｓｋｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１
Ｃｙｍｂｉｄｉｕｍ ｇｏｅｒｉｇｉｉ ８８ １９ ０ ２６２８ ０ ２４４０ ＩＳＳＲ Ｇａｏ ａｎｄ Ｙａｎｇꎬ ２００６
Ｇｏｏｄｙｅｒａ ｐｒｏｃｅｒａ ９７ ０３ ０ ２９３０ ０ ３９００ ＲＡＰＤ Ｗｏｎｇ ａｎｄ Ｓｕｎꎬ １９９９
Ｃｈａｎｇｎｉｅｎｉａ ａｍｏｅｎａ ７６ ５０ ０ １９４１ ——— ＲＡＰＤ Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ａ
Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ (ａｖｅｒａｇｅ) ——— ——— ０ １８７０ ——— Ｆｏｒｒｅｓｔ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００４
ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｆｏｒ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｆｏｕｎｄ ｈｅｒｅ
ｗａｓ ｇｒｅａｔｅｒ ｔｈａｎ ｔｈａｔ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｗｈｅｎ ＲＡＰＤ ｍａｒｋｅｒｓ
ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｗｉｔｈ ｆｏｕｒ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈａｔ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ (ＰＰＢ＝７３ ３％ꎻ Ｈｅ ＝ ０ ２１７) (Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ｂ).
Ｔｈｅ ｐｒｉｍａｒｙ ｒｅａｓｏｎ ｆｏｒ ｔｈｉｓ ｄｉｓｃｒｅｐａｎｃｙ ｍａｙ ｌｉｅ ｉｎ
ｔｈｅ ｃｈｏｉｃｅ ｏｆ ｍａｒｋｅｒｓ. Ｔｈｅ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ ｏｆ ｐｒｏｄｕｃｔｓ
ｗａｓ ｈｉｇｈｅｒ ｗｉｔｈ ＩＳＳＲｓ ａｎｄ ＳＲＡＰｓ ｔｈａｎ ｗｉｔｈ ＲＡＰ￣
Ｄｓꎬ ｔｈｅｒｅｂｙ ｐｒｏｖｉｄｉｎｇ ｍｏｒｅ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｂｏｕｔ ａ ｐａｒ￣
ｔｉｃｕｌａｒ ｇｅｎｏｍｅ. Ｍｏｒｅｏｖｅｒꎬ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｍｏｌｅｃｕ￣
ｌａｒ ｍａｒｋｅｒｓ ａｒｅ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｍｏｒｅ ｓｔａｂｌｅ ａｎｄ ｒｅｌｉａｂｌｅ
ｗｈｅｎ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ＲＡＰＤ ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ ( Ｄｉｒｌｅ￣
ｗａｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９８ꎻ Ｅｓｓｅｌｍａｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｇｉｌｂｅｒｔ
ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９). Ａｎｏｔｈｅｒ ｅｘｐｌａｎａｔｉｏｎ ｉｓ ｔｈａｔ ｗｅ ｕｓｅｄ
ｍｏｒｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌ ｓａｍｐｌｅｓ ｔｈａｎ ｗｅｒｅ
ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ａｎ ｅａｒｌｉｅｒ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ ｂｙ Ｌｉ ｅｔ ａｌ.
(２００２ｂ). Ｓｏｍｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ (Ｈｅ) ａｒｅ ｓｅｎｓｉ￣
ｔｉｖｅ ｔｏ ｓａｍｐｌｅ ｓｉｚｅꎬ ｔｈｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｃｉｎｇ ｈｏｗ ｗｅｌｌ ｔｈｏｓｅ
ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ ｃａｎ ｂｅ ｅｓｔｉｍａｔｅｄ (Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００).
Ｐｌａｎｔｓ ｏｆ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ａｒｅ ｐｅｒｅｎｎｉａｌ ａｎｄ ｈｅｒｂａ￣
ｃｅｏｕｓ. Ｔｈｅｉｒ ｄｅｃａｄｅｓ￣ｌｏｎｇ ｌｉｆｅ ｓｐａｎｓ ｍａｙ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅ
ｔｏ ｔｈｅｉｒ ｈｉｇｈ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ (Ｎｙｂｏｍꎬ ２００４). Ｍｏ￣
ｒｅｏｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｂｒｅｅｄｉｎｇ ｍｏｄｅ ｉｓ ａｎ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｆａｃｔｏｒ ａｆ￣
ｆｅｃｔｉｎｇ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ (Ｈａｍｒｉｃｋꎬ １９８２ꎻ Ｈａｍｒｉｃｋ
ａｎｄ Ｇｏｄｔꎬ １９９０). Ｔｈｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｒｅｐｒｏｄｕｃｅｓ ｂｙ ｂｏｔｈ
ｓｅｘｕａｌｌｙ ａｎｄ ａｓｅｘｕａｌｌｙꎬ ｗｈｉｃｈ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ
ａｓ ａ ｓｔｒａｔｅｇｙ ｔｏ ｍａｘｉｍｉｚｅ ｈｅｔｅｒｏｚｙｇｏｓｉｔｙ ａｎｄ ｒｅｐｒｏ￣
ｄｕｃｔｉｖｅ ｓｕｃｃｅｓｓ (Ｙａｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９). Ｏｎｅ ｃａｐｓｕｌｅ ｏｆ
Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｃｏｎｔａｉｎｓ ｍｏｒｅ ｔｈａｎ ５ ０００ ｓｅｅｄｓꎬ ｗｈｉｃｈ
ｃａｎ ｅｎｓｕｒｅ ａ ｌａｒｇｅ ｇｅｎｅ ｐｏｏｌ ｔｈａｔ ｃａｎ ｐｒｏｖｉｄｅ ａｂｕｎ￣
ｄａｎｔ ｈｅｔｅｒｏｚｙｇｏｔｅｓ (Ｌｕｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３). Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ
Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｈａｓ ｓｔｒｏｎｇ ｃａｐａｃｉｔｙ ｏｆ ｃｌｏｎａｌ ｒｅｐｒｏｄｕｃ￣
ｔｉｏｎꎬ ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇ ｒｈｉｚｏｍｅｓ ｔｈａｔ ｏｆｔｅｎ ｆｏｒｍ ｎｕｍｅｒｏｕｓ
ｒａｍｅｔｓ ａｎｄ ｓｕｐｐｏｒｔ ａｎ ａｐｐａｒｅｎｔ ｐｌｅｘｉｆｏｒｍ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ
(Ｔｓｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９). Ａｌｔｈｏｕｇｈ ａ ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ｈａｓ
ｎｏｔ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｆｏｒ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍꎬ Ｃｒｉｂｂ ａｎｄ Ｍｃ￣
Ｇｏｕｇｈ (１９９７) ｈａｓ ｃｌａｓｓｉｆｉｅｄ ｉｔ ａｓ ｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙ ａｎ ｏｕｔ￣
ｂｒｅｅｄｉｎｇ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｈａｔ ｕｔｉｌｉｚｅｓ ｉｎｓｅｃｔ ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ.
Ｔｈｅｎꎬ ｉｔｓ ｏｕｔ￣ｃｒｏｓｓｉｎｇ ｓｔｒａｔｅｇｙ ｍｉｇｈｔ ａｌｓｏ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅ
ｔｏ ｉｔｓ ｈｉｇｈｅｒ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｃｏｍｐａｒｉｎｇ ｗｉｔｈ ｔｈａｔ ｏｆ ｉｎｂｒｅｅｄ￣
ｉｎｇ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｅｈｌｅｒｓ ａｎｄ Ｐｅｄｅｒｓｅｎꎬ ２０００).
３ ２ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ
Ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ａｓｓｕｍｐｔｉｏｎ ｏｆ Ｈａｒｄｙ－Ｗｅｉｎｂｅｒｇ ｅ￣
ｑｕｉｌｉｂｒｉｕｍꎬ ｗｅ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｍｏｄｅｒａｔｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａ￣
ｔｉｏｎ ａｍｏｎｇ ｏｕｒ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ (Ｇｓｔꎬ
０ ２５７７ ｂｙ ＩＳＳＲꎻ ０ ２３８３ꎬ ｂｙ ＳＲＡＰ). ＡＭＯＶＡ ａｎａ￣
ｌｙｓｉｓ ａｌｓｏ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ３１％ (ＩＳＳＲ) ａｎｄ ２５％ (ＳＲＡＰ)
ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｅｘｉｓｔｅｄ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ａｓ ｗｅｌｌ
ａｓ ６９％ (ＩＳＳＲ) ａｎｄ ７５％ (ＳＲＡＰ) ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ
ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ (Ｔａｂｌｅ ４). Ｔｈｉｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｉｓ ｈｉｇｈｅｒ
ｃｏｍｐａｒｉｎｇ ｗｉｔｈ ａｆｆｉｎｉｔｉｖｅꎬ ｉｎｓｅｃｔ￣ｐｏｌｌｉｎａｔｅｄ ｏｒｃｈｉｄ
ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｃａｌｃｅｏｌｕｓ (Ｇｓｔ ＝ ０ ０５９ꎻ
Ｂｒｚｏｓｋｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１) ａｎｄ Ｃ ｆｌａｖｕｍ (Ｇｓｔ ＝ ０ １５４ꎻ
Ｃａｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８)ꎬ ｆｏｒ ｗｈｉｃｈ ｓｅｅｄｓ ａｒｅ ｗｉｎｄ￣ｄｉｓｐｅｒ￣
ｓｅｄ. Ｆｏｒｒｅｓｔ ｅｔ ａｌ. (２００４) ｈａｖｅ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｔｈａｔ ｏｒｃｈｉｄ
Ｇｓｔ ｖａｌｕｅｓ ｒａｎｇｅ ｆｒｏｍ ０ ０１２ ｔｏ ０ ９２４ ( ａｖｅｒａｇｅ
０ １８７)ꎬ ａｎｄ ｔｈａｔ ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ａｒｅ ｈｕｇｅ ｂｅｔｗｅｅｎ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ. Ａｓ
ｓｈｏｗｎ ｈｅｒｅꎬ ｔｈｅ Ｇｓｔ ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ (０ ２５７７
ａｎｄ ０ ２３８３) ｗｅｒｅ ｈｉｇｈｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｅ ａｖｅｒａｇｅ ｏｆ ０ １８７
ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｆｏｒ ｏｔｈｅｒ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ.
Ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ａ ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｓ ｕｓｕ￣
ａｌｌｙ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｄ ｂｙ ｆａｃｔｏｒｓ ｓｕｃｈ ａｓ ｍａｔｉｎｇ ｓｙｓｔｅｍ ａｎｄ
ｅｘｔｅｎｔ ｏｆ ｇｅｎｅ ｆｌｏｗ (Ｈａｍｒｉｃｋ ａｎｄ Ｇｏｄｔꎬ １９９０). Ｔｈｅ
ｔｈｅｏｒｙ ｏｆ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ｌｏｗ Ｎｍ
５１２２期 ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ ｅｔ ａｌ.: ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ
ｖａｌｕｅｓ (ｉ ｅ.ꎬ <１) ｃａｎｎｏｔ ｐｒｅｖｅｎｔ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ
ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｔｈａｔ ｉｓ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｒｉｆｔ
(Ｗｒｉｇｈｔꎬ １９３１ꎻ Ｈａｒｔｌ ａｎｄ Ｃｌａｒｋꎬ １９８９). Ｏｕｒ ｓｔｕｄｙ
ｐｒｏｄｕｃｅｄ Ｎｍ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ０ ７２０１ (ＩＳＳＲ) ａｎｄ ０ ７９９１
(ＳＲＡＰ)ꎬ ｂｏｔｈ ｌｅｓｓ ｔｈａｎ １ꎬ ｗｈｉｃｈ ａｇｇｒａｖａｔｅｄ ｔｈｅ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｔｈｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ
ｏｆ ｐｏｌｌｅｎ ａｎｄ ｓｅｅｄｓ ｉｓ ａ ｍａｊｏｒ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｎｔ ｏｆ ｇｅｎｅ
ｆｌｏｗ ｉｎ ｎａｔｕｒａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ (Ｌｉ ａｎｄ Ｃｈｅｎꎬ ２００４).
Ｂｅｃａｕｓｅ ｍｏｓｔ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｒｅｌｙ ｐｒｉｍａｒｉｌｙ ｏｎ ｗｉｎｄ
ｄｉｓｐｅｒｓａｌꎬ ｔｈｅｉｒ ｓｅｅｄｓ ｃａｎ ｍｏｖｅ ａｃｒｏｓｓ ｇｒｅａｔ ｄｉｓ￣
ｔａｎｃｅｓ (Ｓｗａｍｙ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００４ꎬ ２００７). Ｉｎ ｃｏｎｔｒａｓｔ ｔｏ
ｒｅｌａｔｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ａｎｄ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍꎬ
ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｓｅｅｄｓ ｏｆ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ａｒｅ ｎｏｔ ｃａｒｒｉｅｄ ａｓ
ｆａｒ (Ｚｈａｎｇꎬ ２０１２). Ｔｈｉｓ ｍｉｇｈｔ ｅｘｐｌａｉｎ ｗｈｙ ｇｅｎｅｔｉｃ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｓ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｈｉｇｈ
ｉｎ ｔｈａｔ ｓｐｅｃｉｅｓ. Ａｎｏｔｈｅｒ ｆａｃｔｏｒ ｉｎ ｔｈｅ ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ
ｇｅｎｅ ｆｌｏｗ ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｓ ａｎｔｈｒｏｐｏｇｅｎｉｃ. Ｂｅ￣
ｃａｕｓｅ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ｈｉｇｈ ｏｒｎａｍｅｎｔａｌ ｖａｌｕｅꎬ ｍｏｓｔ ｏｆ ｔｈｅ ｏｌ￣
ｄｅｒꎬ ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ ｐｌａｎｔｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｗｉｌｄ
ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓꎬ ｌｅａｖｉｎｇ ｂｅｈｉｎｄ ｏｎｌｙ ｔｈｅ ｙｏｕｎｇｅｒ ｓｐｅｃｉ￣
ｍｅｎｓ (Ｌｕｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３).
３ ３ Ｇｅｎｅｔｉｃ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａｍｏｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ
Ｂｏｔｈ ｔｈｅ ＵＰＧＭＡ ａｎｄ ＰＣｏＡ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎｓ ｄｉｖｉｄ￣
ｅｄ ｔｈｅ １５ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ
ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｃｌｕｓｔｅｒｓꎬ ｗｉｔｈ ｏｎｅ ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ １２ ｐｏｐｕｌａ￣
ｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｙｕｎｎａｎ ａｎｄ Ｇｕｉｚｈｏｕ ａｎｄ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｃｏｎｔａｉ￣
ｎｉｎｇ ｔｗｏ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｇｕａｎｘｉ ｐｌｕｓ ｏｎｅ ｉｎ Ｇｕｉｚｈｏｕ.
ＰＣｏＡ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｈｉｇｈ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｉｎ Ｃｌｕｓｔｅｒ Ｉꎬ
ｗｈｅｒｅａｓ Ｃｌｕｓｔｅｒ ＩＩ ｓｈｏｗｅｄ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｉｓｏｌａ￣
ｔｉｏｎ ａｍｏｎｇ ｉｔｓ ｔｈｒｅｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ Ｍａｎｔｅｌ
ｔｅｓｔｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｄａｔａ ｆｒｏｍ ＩＳＳＲ ( ｒ ＝ ０ ４５５ꎬ Ｐ ＝
０ ００１) ａｎｄ ＳＲＡＰ (ｒ ＝ ０ ４２１ꎬ Ｐ＝ ０ ００３) ｉｎｄｉｃａｔｅｄ
ｔｈａｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ｗａｓ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ
ｄｉｓｔａｎｃｅꎬ ａ ｐｈｅｎｏｍｅｎｏｎ ｔｈａｔ ｉｓ ｃｏｍｍｏｎｌｙ ｆｏｕｎｄ ｉｎ
ｅｎｄｅｍｉｃ ａｎｄ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｇｏｄｔ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ
Ｌｕａｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６). Ａｌｔｈｏｕｇｈ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｉｓ ｎｏｔ
ｉｔｓｅｌｆ ｅｎｄｅｍｉｃ ｔｏ Ｃｈｉｎａꎬ ｉｔ ｉｓ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ
ａｎｄ ｐｒｏｔｅｃｔｅｄ ｔｈｅｒｅ.
Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｎａｔｕｒａｌ ｐｏｐｕｌａ￣
ｔｉｏｎｓ ｉｓ ｕｓｕａｌｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ｂａｒｒｉｅｒｓꎬ ｓｕｃｈ
ａｓ ｈｉｇｈ ｍｏｕｎｔａｉｎｓ ａｎｄ ｒｉｖｅｒｓꎬ ｗｈｉｃｈ ｍａｋｅ ｇｅｎｅ ｅｘ￣
ｃｈａｎｇｅ ａｌｍｏｓｔ ｉｍｐｏｓｓｉｂｌｅ ｔｏ ａｃｈｉｅｖｅ ｆｒｏｍ ｏｎｅ ｐｏｐｕ￣
ｌａｔｉｏｎ ｔｏ ａｎｏｔｈｅｒ (Ｇｏｄｔ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５). Ｈｅｒｅꎬ ｈｏｗｅｖ￣
ｅｒꎬ ｗｅ ｃｏｕｌｄ ｎｏｔ ｉｄｅｎｔｉｆｙ ａｎｙ ｓｕｃｈ ｂａｒｒｉｅｒꎬ ｏｔｈｅｒ
ｔｈａｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅꎬ ｂｅｔｗｅｅｎ Ｃｌｕｓｔｅｒｓ Ｉ ａｎｄ
ＩＩ. Ｏｕｒ Ｍａｎｔｅｌ ｔｅｓｔｓ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ａ ｒｅｍａｒｋａｂｌｅ ｃｏｒｒｅｌａ￣
ｔｉｏｎ (Ｐ<０ ０５) ｂｅｔｗｅｅｎ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ａｎｄ ｅｌｅｖａ￣
ｔｉｏｎ. Ｍａｎｙ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｓｈｏｗｎ ｔｈａｔ ｅｌｅｖａｔｉｏｎ￣ａｓｓｏｃｉ￣
ａｔｅｄ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ ｐｌａｙ ａｎ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｒｏｌｅ ｉｎ
ｄｉｒｅｃｔｉｎｇ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ( Ｂａ￣
ｙｅｒꎬ １９９２ꎻ Ｌｉ ａｎｄ Ｃｈｅｎꎬ ２００４ꎻ Ｊｉａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５).
Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ａｍｏｎｇ Ｒｈｏｄｉｏｌａ
ａｎｇｕｓｔａ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ａｔ Ｃｈａｎｇｂａｉ Ｍｏｕｎｔａｉｎ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ
ａｓ ｔｈｅ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｄｅｃｒｅａｓｅｓ ｄｕｅ ｔｏ ｅｌｅｖａｔｉｏｎ (Ｙａｎ
ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９). Ｌｉｋｅｗｉｓｅꎬ ａｐａｒｔ ｆｒｏｍ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ
ｄｉｓｔａｎｃｅꎬ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｉｎ ｅｌｅｖａｔｉｏｎ ｍａｙ ｂｅ ａｎ ｉｍｐｏｒ￣
ｔａｎｔ ｆａｃｔｏｒ ｔｈａｔ ｄｉｖｉｄｅｄ ｏｕｒ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｐｏｐｕｌａ￣
ｔｉｏｎｓ ｉｎｔｏ ｔｗｏ ｇｅｎｅｔｉｃ ｃｌｕｓｔｅｒｓ.
３ ４ Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｒｅｃｏｍｍｅｎｄａｔｉｏｎｓ
Ｆｏｒ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｔｈｅ ｇｏａｌｓ ｏｆ ｃｏｎｓｅｒｖａ￣
ｔｉｏｎ ａｒｅ ｔｏ ｅｎｓｕｒｅ ｔｈｅ ｃｏｎｔｉｎｕｅｄ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｏｆ ｐｏｐｕｌａ￣
ｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｔｏ ｍａｉｎｔａｉｎ ｔｈｅｉｒ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ
(Ｈａｍｒｉｃｋ ａｎｄ Ｇｏｄｔ １９９０ꎻ Ｗｏｎｇ ａｎｄ Ｓｕｎ １９９９).
Ｇｉｖｅｎ ｏｕｒ ｆｉｎｄｉｎｇｓꎬ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｏｆ Ｃｌｕｓｔｅｒ ＩＩ ｃｏｍ￣
ｐｒｉｓｅｄ ｔｈｅ ＸＬꎬ ＧＷꎬ ａｎｄ ＸＹ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ
Ｇｕｉｚｈｏｕ ａｎｄ Ｇｕａｎｇｘｉ ｐｒｏｖｉｎｃｅｓ ｈａｖｅ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｌｏｗ
ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ. Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｗｅ ｒｅｃｏｍｍｅｎｄ ｔｈａｔ
ｔｈｅｓｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｂｅ ｐｒｉｏｒｉｔｉｚｅｄ ｆｏｒ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｐｒｏ￣
ｔｅｃｔｉｏｎ. Ｍｅａｎｗｈｉｌｅꎬ ｉｔ ｉｓ ｎｅｃｅｓｓａｒｙ ｔｏ ｃａｒｒｙ ｏｕｔ ｔｈｅ
ｅｘ￣ｓｉｔｕ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｈｅ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ
Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ａｓ ｓｏｏｎ ａｓ ｐｏｓｓｉｂｌｅꎬ ｔｏ ｓｔｏｒｅ ｕｐ ｍａｓｓ
ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｏｆ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｆｏｒ ｗｉｌｄ
ｒｅ￣ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎꎬ ｔｏ ｒｅｎｅｗ ｔｈｉｓ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｐｅｃｉｅｓ
ａｎｄ ｔｏ ｍａｋｅ ｉｔ ｔｈｒｉｖｉｎｇ.
４ Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ
Ｕｓｉｎｇ ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｍａｒｋｅｒｓꎬ ｗｅ
ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｔｈａｔ ｐｌａｎｔｓ ｏｆ Ｐ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ ｅｘｈｉｂｉｔ ａ
ｈｉｇｈ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ ａｎｄ ｔｈａｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆ￣
ｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｉｓ ｍｏｄｅｒａｔｅ ａｍｏｎｇ ｎａｔｕｒａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ.
Ｗｈｅｎ ｏｕｒ ｓａｍｐｌｅ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ａｓｓｉｇｎｅｄ ｔｏ ｔｗｏ
ｃｌｕｓｔｅｒｓꎬ ｔｈｅ ｏｎｅ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇ ｓｉｔｅｓ ｉｎ Ｙｕｎｎａｎ ａｎｄ
Ｇｕｉｚｈｏｕ ｓｈｏｗｅｄ ｈｉｇｈ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｗｈｉｌｅ ｔｈａｔ ｏｆ ｔｈｅ Ｇｕａｎ￣
ｇｘｉ ｓｉｔｅｓ ｈａｄ ｌｏｗ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ. Ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ
６１２ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３６卷
ｂｅｔｗｅｅｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｗａｓ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｂｉｏｌｏｇ￣
ｉｃａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ｃａｐａｃｉｔｙ ｆｏｒ ｓｅｅｄ ｄｉｓｐｅｒｓ￣
ａｌꎬ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎｓ ｗｉｔｈ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ｄｉｓｔａｎｃｅ
ａｎｄ ｅｌｅｖａｔｉｏｎａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ. Ｏｕｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ｗｉｌｌ ｂｅ ｂｅｎｅｆｉ￣
ｃｉａｌ ｔｏ ｍａｎａｇｅｒｓ ｗｈｏ ｃａｎ ｄｅｖｅｌｏｐ ｒｅａｓｏｎａｂｌｅ ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ
ｆｏｒ ｃｏｎｓｅｒｖｉｎｇ ｔｈｉｓ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｓｌｉｐｐｅｒ ｏｒｃｈｉｄ.
Ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｍｅｎｔｓ: Ｔｈｅ ａｕｔｈｏｒｓ ｔｈａｎｋ Ｙａｎｇ Ｊｕｎ￣Ｂｏꎬ Ｌｉ
Ｈｏｎｇ￣Ｔａｏꎬ ａｎｄ Ｚｈａｎｇ Ｚｈｉ￣Ｒｏｎｇ ｆｏｒ ｈｅｌｐ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ
ｗｏｒｋ ａｎｄ ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ.
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:
Ｂａｓｓａｍ ＢＪꎬ Ｃａｅｔａｎｏ￣Ａｎｏｌｌｅ Ｇꎬ Ｇｒｅｓｓｈｏｆｆ ＰＭꎬ １９９１. Ｆａｓｔ ａｎｄ ｓｅｎｓｉ￣
ｔｉｖｅ ｓｉｌｖｅｒ ｓｔａｉｎｉｎｇ ｏｆ ＤＮＡ ｉｎ ｐｏｌｙａｃｒｙｌａｍｉｄｅ ｇｅｌｓ [Ｊ] . Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ
Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ １９６: ８１—８４
Ｂａｙｅｒ ＲＪꎬ １９９２. Ａｌｌｏｚｙｍｅ ｖａｒｉａｔｉｏｎꎬ ｇｅｎｅｃｏｌｏｇｙꎬ ａｎｄ ｐｈｙｔｏｇｅｏｇｒａｐｈｙ
ｏｆ Ａｎｔｅｎｎａｒｉａ ａｒｃｕａｔａ ( Ａｓｔｅｒａｃｅａｃｅ)ꎬ ａ ｒａｒｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ
ｇｒｅａｔ Ｂａｓｉｎ ａｎｄ Ｒｅｄ Ｄｅｓｅｒｔ ｗｉｔｈ ｓｍａｌｌ ｄｉｓｊｕｎｃｔ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ [Ｊ] .
Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ ７９: ８７２—８８１
Ｂｒｚｏｓｋｏ Ｅꎬ Ｂｌｅｗｓｋａ ＡＷꎬ Ｔａłａłａｊ Ｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ
Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｃａｌｃｅｏｌｕｓ ｉｎ Ｐｏｌａｎｄ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃｓ ａｎｄ Ｅｖｏ￣
ｌｕｔｉｏｎꎬ ２９５: ８３—９６
Ｃａｉ ＮＦꎬ Ｙａｎ Ｎꎬ Ｈｕ Ｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ ｃｌｏｎａｌ ｄｉ￣
ｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ｆｌａｖｕｍ ( Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ
Ｓｏｕｔｈ￣Ｗｅｓｔ Ｃｈｉｎａ [Ｊ] . Ａｃｔａ Ｂｏｔａｎｉｃａ Ｙｕｎｎａｎｉｃａꎬ ３０: ６９—７５
Ｃａｉ ＸＹꎬ Ｆｅｎｇ ＺＹꎬ Ｚｈａｎｇ ＸＸꎬ ２０１１. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ
ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ａｎ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｏｒｃｈｉｄ (Ｄｅｎｄｒｏｂｉｕｍ ｌｏｄｄｉｇｅｓｉｉ Ｒｏｌｆｅ)
ｆｒｏｍ Ｃｈｉｎａ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｂｙ ＳＲＡＰ ｍａｒｋｅｒｓ [ Ｊ] . Ｓｃｉｅｎｔｉａ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕ￣
ｒａｅꎬ １２９: ８７７—８８１
Ｃｈａｎｇ Ｗꎬ Ｚｈａｎｇ ＳＢꎬ Ｌｉ ＳＹꎬ ２０１１. Ｅｃｏｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｏｆ
ｌｅａｆ ｔｒａｉｔｓ ｉｎ Ｃｙｐｒｉｐｅｄｉｕｍ ａｎｄ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ [ Ｊ] . Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａ
Ｐｌａｎｔａｒｕｍꎬ １４１: ３０—３９
Ｃｈｅｎ ＴＹꎬ Ｃｈｅｎ ＪＴꎬ Ｃｈａｎｇ ＷＣꎬ ２００４. Ｐｌａｎｔ ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｔｈｒｏｕｇｈ ｄｉ￣
ｒｅｃｔ ｓｈｏｏｔ ｂｕｄ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｆｒｏｍ ｌｅａｆ ｃｕｌｔｕｒｅｓ ｏｆ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｏｒ￣
ｃｈｉｄｓ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌꎬ Ｔｉｓｓｕｅꎬ ａｎｄ Ｏｒｇａｎ Ｃｕｌｔｕｒｅꎬ ７６: １１—１５
Ｃｈｕｎｇ ＳＹꎬ Ｃｈｏｉ ＳＨꎬ ２０１２. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｂｉｌｉｔｙ ａｎｄ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａ￣
ｍｏｎｇ ｉｎｔｅｒｓｐｅｃｉｆｉｃ ｈｙｂｒｉｄ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ａｎｄ ｐａｒｅｎｔａｌ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ
Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｖｉａ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ
Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃｓ ａｎｄ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ ２９８: １８９７—１９０７
Ｃｒｉｂｂ ＰＪꎬ １９９８. Ｔｈｅ Ｇｅｎｕｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ [Ｍ]. Ｂｏｒｎｅｏꎬ Ｋｏｔａ Ｋｉｎ￣
ａｂａｌｕꎬ ＆ Ｒｏｙａｌ Ｂｏｔａｎｉｃａｌ Ｇａｒｄｅｎꎬ Ｋｅｗꎬ Ｌｏｎｄｏｎꎬ ＵＫ
Ｃｒｉｂｂ ＰＪꎬ ＭｃＧｏｕｇｈ Ｎꎬ １９９７. Ｔｈｅ Ｔｈｉｎ Ｄｉｖｉｄｅ￣Ｓｌｉｐｐｅｒ Ｏｒｃｈｉｄ Ｄｉｓｔｒｉ￣
ｂｕｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｃｈｉｎａ [Ｍ]. Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｏｒｃｈｉｄ Ｃｏｎ￣
ｆｅｒｅｎｃｅꎬ Ｇｅｎｅｖａꎬ Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ
Ｄｉｎｇ Ｇꎬ Ｚｈａｎｇ ＤＺꎬ Ｄｉｎｇ ＸＹꎬ ２００８. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ａｎｄ ｃｏｎｓｅｒｖａ￣
ｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｅｎｄｅｍｉｃ ｈｅｒｂ Ｄｅｎｄｒｏｂｉｕｍ ｏｆｆｉｃｉ￣
ｎａｌｅ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＳＲＡＰ ａｎａｌｙｓｉｓ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃｓ ａｎｄ Ｅｖｏｌｕ￣
ｔｉｏｎꎬ ２７６: １４９—１５６
Ｄｉｒｌｅｗａｎｇｅｒ Ｅꎬ Ｐｒｏｎｉｅｒ Ｖꎬ Ｐａｒｖｅｒｙ Ｃ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９８. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｌｉｎｋａｇｅ
ｍａｐ ｏｆ ｐｅａｃｈ (Ｐｒｕｎｕｓ ｐｅｒｓｉｃａ Ｌ.) ｕｓｉｎｇ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｍｏｌｅｃ￣
ｕｌａｒ ｍａｒｋｅｒｓ [ Ｊ] . Ｔｈｅｏｒｅｔｉｃａｌ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｇｅｎｅｔｉｃｓꎬ ９７: ８８８—
８９５
Ｄｏｙｌｅ ＪＪꎬ Ｄｏｙｌｅ ＪＬꎬ １９８７. Ａ ｒａｐｉｄ ＤＮＡ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ ｆｏｒ ｓｍａｌｌ
ｑｕａｎｔｉｔｉｅｓ ｏｆ ｆｒｅｓｈ ｌｅａｆ ｔｉｓｓｕｅ [ Ｊ] . Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｂｕｌｌｅｔｉｎꎬ １９:
１１—１５
Ｅｈｌｅｒｓ ＢＫꎬ Ｐｅｄｅｒｓｅｎ ＨＡꎬ ２０００. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｒｅｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ
Ｅｐｉｐａｃｔｉｓ (Ｏｒｃｈｉｄａｅｅａｅ): ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｓｃａｌｅ ａｎｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ｉｎ￣
ｆｅｒｅｎｃｅｓ [ Ｊ] . Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ｌｉｎｎｅａｅ Ｓｏｃｉｅｔｙꎬ ６９:
４１１—４３０
Ｅｓｓｅｌｍａｎ ＥＪꎬ Ｌｉ ＪＱꎬ Ｃｒａｗｆｏｒｄ ＤＪ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９. Ｃｌｏｎａｌ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ
ｒａｒｅ Ｃａｌａｍａｇｒｏｓｔｉｓ ｐｏｒｔｅｒｉ ｓｓｐ. ｉｎ ｓｐｅｒａｔａ (Ｐｏａｃｅａｅ): ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ
ｒｅｓｕｌｔｓ ｆｏｒ ａｌｌｏｚｙｍｅｓ ａｎｄ ＲＡＰＤ ａｎｄ ＩＳＳＲ ｍａｒｋｅｒｓ [ Ｊ] . Ｍｏｌｅｃｕ￣
ｌａｒ Ｅｃｏｌｏｇｙꎬ ８: ４４３—４５１
Ｆｏｒｒｅｓｔ ＡＤꎬ Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ＭＬꎬ Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ＰＭ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００４. Ｐｏｐｕ￣
ｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｉｎ Ｅｕｒｏｐｅａｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｓｐｉｒａｎｔｈｅｓ ｒｏ￣
ｍａｎｚｏｆｆｉａｎａ ｓｅｔ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｘｔ ｏｆ ｏｔｈｅｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｎ ｏｒｃｈｉｄｓ
[Ｊ] . Ｈｅｒｅｄｉｔｙꎬ ９２: ２１８—２２７
Ｆｒａｎｃｉｓ ＣＹꎬ Ｙａｎｇ ＲＣꎬ ２０００. ＰＯＰＧＥＮＥꎬ Ｖｅｒｓｉｏｎ １ ３２. ｈｔｔｐ: / /
ｗｗｗ ｕａｌｂｅｒｔａ ｃａ / ＿ ｆｙｅｈ / ｉｎｄｅｘ ｈｔｍ
Ｇａｏ Ｌꎬ Ｙａｎｇ Ｂꎬ ２００６. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｗｉｌｄ Ｃｙｍｂｉｄｉｕｍ ｇｏｅｒｉｎｇｉｉ
(Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｆｒｏｍ Ｈｕｂｅｉ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳＳＲ ａｎａｌｙｓｉｓ
[Ｊ] . Ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｉｅｎｃｅꎬ １４: ２５０—２５７
Ｇｅｏｒｇｅ Ｓꎬ Ｓｈａｒｍａ Ｊꎬ Ｙａｄｏｎ ＶＬꎬ ２００９. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｅｎ￣
ｄａｎｇｅｒｅｄ ａｎｄ ｎａｒｒｏｗ ｅｎｄｅｍｉｃ Ｐｉｐｅｒｉａ ｙａｄｏｎｎｉ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) ａｓ￣
ｓｅｓｓｅｄ ｗｉｔｈ ＩＳＳＲ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍｓ [Ｊ] . Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｔａ￣
ｎｙꎬ ９６: ２０２０—２０２２
Ｇｉｌｂｅｒｔ ＪＥꎬ Ｌｅｗｉｓ ＲＢꎬ Ｗｉｌｋｉｎｓｏｎ ＭＪ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９. Ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇ ａｎ ａｐ￣
ｐｒｏｐｒｉａｔｅ ｓｔｒａｔｅｇｙ ｔｏ ａｃｃｅｓｓ ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｂｉｌｉｔｙ ｉｎ ｐｌａｎｔ ｇｅｒｍｐｌａｓｍ
ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎｓ [ Ｊ] . Ｔｈｅｏｒｅｔｉｃａｌ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｇｅｎｅｔｉｃｓꎬ ９８: １１２５—
１１３１
Ｇｏｄｔ ＭＪＷꎬ Ｃａｐｌｏｗ Ｆꎬ Ｈａｍｒｉｃｋ ＪＬꎬ ２００５. Ａｌｌｏｚｙｍｅ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ
ｆｅｄｅｒａｌｌｙ ｔｈｒｅａｔｅｎｅｄ ｇｏｌｄｅｎ ｐａｉｎｔｂｒｕｓｈꎬ Ｃａｓｔｉｌｌｅｊａ ｌｅｖｉｓｅｃｔａ (Ｓｃｒｏ￣
ｐｈｕｌａｒｉａｃｅａｅ) [Ｊ] . Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓꎬ ６: ８７—９９
Ｈａｍｒｉｃｋ ＪＬꎬ １９８２. Ｐｌａｎｔ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ [ Ｊ] . Ａ￣
ｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ ６９: １６８５—１６９３
Ｈａｍｒｉｃｋ ＪＬꎬ Ｇｏｄｔ ＭＪꎬ １９９０. Ａｌｌｏｚｙｍｅ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ
[Ａ ]. Ｉｎ: Ｂｒｏｗｎ ＡＨＤꎬ Ｃｌｅｇｇ ＭＴꎬ Ｋａｈｌｅｒ ＡＬꎬ Ｗｅｉｒ ＢＳ
(ｅｄｓ.)ꎬ Ｐｌａｎｔ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓꎬ Ｂｒｅｅｄｉｎｇꎬ ａｎｄ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｒｅ￣
ｓｏｕｒｃｅｓ [Ｍ]. Ｓｉｎａｕｅｒꎬ Ｓｕｎｄｅｒｌａｎｄꎬ ＭＡꎬ ＵＳＡꎬ ４３—６３
Ｈａｒｔｌ ＤＬꎬ Ｃｌａｒｋ ＡＧꎬ １９８９. Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅ ｏｆ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓꎬ ２ｎｄ ｅｄｎ
[Ｍ]. Ｓｉｎａｕｅｒꎬ Ｓｕｎｄｅｒｌａｎｄꎬ ＭＡꎬ ＵＳＡ
Ｊｉａｎ ＳＧꎬ Ｚｈｏｎｇ Ｙꎬ Ｌｉｕ Ｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｅｎ￣
ｄａｎｇｅｒｅｄ ｅｎｄｅｍｉｃ ｓｐｅｃｉｅｓ Ｃｙｃａｓ ｆａｉｒｙｌａｋｅａ (Ｃｙｃａｄａｃｅａｅ) ｉｎ Ｃｈｉ￣
ｎａ ａｎｄ ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｆｏｒ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ [Ｊ] . Ｂｉｏｌｏｇｉｃ Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎꎬ
１５: １６８１—１６９４
Ｊｉａｎｇ ＺＬꎬ Ｙａｎｇ ＸＭꎬ Ｗａｎｇ Ｒ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｒｏｅｇ￣
ｎｅｒｉａ ｔｈｏｒｏｌｄｉａｎａ (Ｏｌｉｖ.) Ｋｅｎｇ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＳＳＲ ａｎａｌｙ￣
ｓｅｓ [Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓꎬ ６: ３１５—３３１
７１２２期 ＨＵＡＮＧ Ｊｉａ￣Ｌｉｎ ｅｔ ａｌ.: ＩＳＳＲ ａｎｄ ＳＲＡＰ Ｍａｒｋｅｒｓ Ｒｅｖｅａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ
Ｌｉ Ａꎬ Ｗａｎｇ ＫＱꎬ Ｇｅ Ｓꎬ ２０００. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｗｉｔｈｉｎ ａｎｄ ａｍｏｎｇ
ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｖｉｏｌａ ｔｅｎｕｉｃｏｒｎｉｓ ｗｉｔｈ ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ ｔｏ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｓｔｒａｔｅ￣
ｇｉｅｓ [Ｊ] . Ａｃｔａ Ｂｏｔａｎｉｃａ Ｓｉｎｉｃａꎬ ４２: １０６９—１０７４
Ｌｉ Ａꎬ Ｌｕｏ ＹＢꎬ Ｘｉｏｎｇ ＺＴ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ａ. Ａ ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｃｏｎ￣
ｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｏｒｃｈｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ [ Ｊ] . Ａｃｔａ
Ｂｏｔａｎｉｃａ Ｓｉｎｉｃａꎬ ４４: ２５０—２５２
Ｌｉ Ａꎬ Ｌｕｏ ＹＢꎬ Ｇｅ Ｓꎬ ２００２ｂ. Ａ ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｇｅ￣
ｎｅｔｉｃｓ ｏｆ ａｎ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ ｏｒｃｈｉｄ ( Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｍｉｃｒａｎｔｈｕｍ)
ｆｒｏｍ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａ [Ｊ] . Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃｓꎬ ４０: １９５—
２０１
Ｌｉ Ｇꎬ Ｑｕｉｒｏｓ ＣＦꎬ ２００１. Ｓｅｑｕｅｎｃｅ￣ｒｅｌａｔｅｄ ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ
(ＳＲＡＰ)ꎬ ａ ｎｅｗ ｍａｒｋｅｒ ｓｙｓｔｅｍ ｂａｓｅｄ ｏｎ ａ ｓｉｍｐｌｅ ＰＣＲ ｒｅａｃ￣
ｔｉｏｎ: ｉｔｓ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｔｏ ｍａｐｐｉｎｇ ａｎｄ ｇｅｎｅ ｔａｇｇｉｎｇ ｉｎ Ｂｒａｓｓｉｃａ
[Ｊ] . Ｔｈｅｏｒｅｔｉｃａｌ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｇｅｎｅｔｉｃｓꎬ １０３: ４５５—４６１
Ｌｉ ＨＳꎬ Ｃｈｅｎ ＧＺꎬ ２００４. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｍａｎｇｒｏｖｅ ｐｌａｎｔ Ｓｏｎｎｅｒａ￣
ｔｉａ ｃａｓｅｏｌａｒｉｓ ｉｎ Ｈａｉｎａｎ Ｉｓｌａｎｄ ｂａｓｅｄ ｏｎ ＩＳＳＲ ａｎａｌｙｓｉｓ [Ｊ] . Ａｃｔａ
Ｅｃｏｌｏｇｉｃａ Ｓｉｎｉｃａꎬ ２４: １６５６—１６６２
Ｌｉａｏ ＹＪꎬ Ｔｓａｉ ＹＣꎬ Ｓｕｎ ＹＷꎬ ２０１１. Ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｓｈｏｏｔ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｌａｎｔ
ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｆｒｏｍ ｆｌｏｗｅｒ ｂｕｄｓ ｉｎ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｏｒｃｈｉｄｓ [ Ｊ] . Ｉｎ
ｖｉｔｒｏ Ｃｅｌｌｕｌａｒ ＆ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙꎬ ４７: ７０２—７０９
Ｌｉｕ Ｈꎬ Ｆｅｎｇ ＣＬꎬ Ｌｕｏ ＹＢ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０. Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ ｏｆ ｃｌｉｍａｔｅ
ｃｈａｎｇｅ ｔｏ ｏｒｃｈｉｄ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｉｎ ａ ｗｉｌｄ ｏｒｃｈｉｄ ｈｏｔｓｐｏｔ ｉｎ ｓｏｕｔｈ￣
ｗｅｓｔｅｒｎ Ｃｈｉｎａ [Ｊ] . Ｂｏｔａｎｙ Ｒｅｖｉｅｗꎬ ７６: １７４—１９２
Ｌｉｕ ＺＪꎬ Ｚｈａｎｇ ＪＹꎬ Ｒｕ ＺＺꎬ ２００４. Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉ￣
ｌｕｍ ｐｕｒｐｕｒａｔｕｍ ( Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) [ Ｊ] . Ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｉｅｎｃｅꎬ １２:
５０９—５１６
Ｌｉｕ ＺＪꎬ Ｌｉｕ ＫＷꎬ Ｃｈｅｎ ＬＪꎬ ２００６. Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｅｃｏｌｏｇｙ ｏｆ ｅｎｄａｎｇｅｒｅｄ
ｓｐｅｃｉｅｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ａｒｍｅｎｉａｃｕｍ ( Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ ) [ Ｊ ] . Ａｃｔａ
Ｅｃｏｌｏｇｉｃａ Ｓｉｎｉｃａꎬ ２６: ２７９１—２８００
Ｌｉｕ ＺＪꎬ Ｃｈｅｎ ＳＣꎬ Ｃｈｅｎ ＬＪ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９. Ｔｈｅ Ｇｅｎｕｓ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ ｉｎ
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Ｌｕａｎ ＳＳꎬ Ｃｈｉａｎｇ ＴＹꎬ Ｇｏｎｇ Ｘꎬ ２００６. Ｈｉｇｈ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｖｓ. ｌｏｗ
ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｉｎ Ｎｏｕｅｌｉａ ｉｎｓｉｇｎｉｓ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)ꎬ ａ ｎａｒ￣
ｒｏｗｌｙ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ａｎｄ ｅｎｄｅｍｉｃ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｃｈｉｎａꎬ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｂｙ ＩＳ￣
ＳＲ ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ [Ｊ] . Ａｎｎａｌｓ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ ９８: ５８３—５８９
Ｌｕｏ ＹＢꎬ Ｊｉａ ＪＳꎬ Ｗａｎｇ ＣＬꎬ ２００３. Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｓｔｒａｔｅｇｙ ａｎｄ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ
ａｄｖａｎｔａｇｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ [ Ｊ] . Ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｓｃｉ￣
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ｌａｒ Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄａｔａ [Ｍ]. Ｆｌａｇｓｔａｆｆ: Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｂｉｏ￣
ｌｏｇｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｎｏｒｔｈｅｒｎ Ａｒｉｚｏｎａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ ＡＺꎬ ＵＳＡ
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ｔａｎｃｅ ｆｒｏｍ ａ ｓｍａｌｌ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ [ Ｊ] . Ｇｅｎｅｔｉｃｓꎬ ８９:
５８３—５９０
Ｎｙｂｏｍ Ｈꎬ ２００４. Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｎｕｃｌｅａｒ ＤＮＡ ｍａｒｋｅｒｓ ｆｏｒ ｅｓ￣
ｔｉｍａｔｉｎｇ ｉｎｔｒａｓｐｅｃｉｆｉｃ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ [ Ｊ] . Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
Ｅｃｏｌｏｇｙꎬ １３: １１４３—１１５５
Ｐｅａｋａｌｌ ＲＯＤꎬ Ｓｍｏｕｓｅ ＰＥꎬ ２００６. ＧＥＮＡＬＥＸ ６: ｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｎ
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Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｅｃｏｌｏｇｙ Ｎｏｔｅｓꎬ ６: ２８８—２９５
Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ ＭＳꎬ Ａｎｄｅｒｓｏｎ ＣＤꎬ ２０１１. ＰＡＳＳＡＧＥ: Ｐａｔｔｅｒｎ Ａｎａｌｙｓｉｓꎬ
Ｓｐａｔｉａｌ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃｓ ａｎｄ Ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ Ｅｘｅｇｅｓｉｓ. Ｖｅｒｓｉｏｎ ２ [Ｍ]. Ｍｅｔｈ￣
ｏｄｓ ｉｎ Ｅｃｏｌｏｇｙ ＆ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ ２: ２２７—２３２
Ｓｈｉ Ｊꎬ Ｃｈｅｎｇ Ｊꎬ Ｌｕｏ Ｄꎬ ２００７. Ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ ｓｙｎｄｒｏｍｅｓ ｐｒｅｄｉｃｔ ｂｒｏｏｄ￣
ｓｉｔｅ ｄｅｃｅｐｔｉｖｅ ｐｏｌｌｉｎａｔｉｏｎ ｂｙ ｆｅｍａｌｅ ｈｏｖｅｒｆｌｉｅｓ ｉｎ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ
ｄｉａｎｔｈｕｍ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) [ Ｊ] . Ａｃｔａ Ｐｈｙｔｏｔａｘｏｎｏｍｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ (植
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ｎｉｃａｔｉｏｎ [Ｍ]. Ｕｒｂａｎａ: Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｉｌｌｉｎｏｉｓ Ｐｒｅｓｓꎬ ＩＬꎬ ＵＳＡ
Ｓｌａｔｋｉｎ Ｍꎬ Ｂａｒｔｏｎ ＮＨꎬ １９８９. Ａ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｉｎｄｉｒｅｃｔ ｍｅｔｈｏｄｓ
ｆｏｒ ｅｓｔｉｍａｔｉｎｇ ａｖｅｒａｇｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｇｅｎｅ ｆｌｏｗ [ Ｊ] . Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ ４３:
１３４９—１３６８
Ｓｍｉｔｈ ＪＬꎬ Ｈｕｎｔｅｒ ＫＬꎬ Ｈｕｎｔｅｒ ＲＢꎬ ２００２. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｔｅｒ￣
ｒｅｓｔｒｉａｌ ｏｒｃｈｉｄ Ｔｉｐｕｌａｒｉａ ｄｉｓｃｏｌｏｒ [Ｊ] . Ｓｏｕｔｈｅａｓｔｅｒｎ Ｎａｔｕｒａｌｉｓｔꎬ １:
１７—２６
Ｓｗａｍｙ ＫＫꎬ Ｋｕｍａｒ ＨＮＫꎬ Ｒａｍａｋｒｉｓｈｎａ ＴＭ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００４. Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｎ
ｓｅｅｄ ｍｏｒｐｈｏｍｅｔｒｙ ｏｆ ｅｐｉｐｈｙｔｉｃ ｏｒｃｈｉｄｓ ｆｒｏｍ ｗｅｓｔｅｒｎ ｇｈａｔｓ ｏｆ ｋａｒ￣
ｎａｔａｋａ [Ｊ] . Ｔａｉｗａｎｉａꎬ ４９: １２４—１４０
Ｓｗａｍｙ ＫＫꎬ Ｋｕｍａｒ ＨＮＫꎬ Ｒａｍａｓｗａｍｙ ＳＮꎬ ２００７. Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｎ ｓｅｅｄ ｍｏｒ￣
ｐｈｏｍｅｔｒｙ ｏｆ Ｄｅｎｄｒｏｂｉｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ [ Ｊ ]. Ｐｈｙｔｏｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙꎬ ５７:
３３—４３
Ｔｓｉ ＺＨꎬ Ｌｕｏ ＹＢ. Ｃｒｉｂｂ ＰＪ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９. Ａ ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ ｒｅｐｏｒｔ ｏｎ ｔｈｅ
ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｓｉｚｅꎬ ｅｃｏｌｏｇｙꎬ ａｎｄ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｓｔａｔｕｓ ｏｆ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ
ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) ｉｎ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ Ｃｈｉｎａ [ Ｊ] . Ｌｉｎｄｌｙａｎａ: ｔｈｅ
Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｏｒｃｈｉｄꎬ １４: １２—２３
Ｗａｌｌａｃｅ ＬＥꎬ ２００３ꎬ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ ａｌｌｏｐｏｌｙｐｌｏｉｄ ｓｐｅｃｉａｔｉｏｎ
ａｎｄ ｒｅｃｕｒｒｅｎｔ ｏｒｉｇｉｎｓ ｉｎ Ｐｌａｔａｎｔｈｅｒａ ｈｕｒｏｎｅｎｓｉｓ ( Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ)
[Ｊ] . Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ １６４: ９０７—９１６
Ｗａｎｇ ＨＺꎬ Ｗｕ ＺＸꎬ Ｌｕ ＪＪ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９. Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｒｅｌａ￣
ｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａｍｏｎｇ Ｃｙｍｂｉｄｉｕｍ ｇｏｅｒｉｎｇｉｉ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｉｎｔｅｒ￣
ｓｉｍｐｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｒｅｐｅａｔ ( ＩＳＳＲ) ｍａｒｋｅｒｓ [ Ｊ] . Ｇｅｎｅｔｉｃａꎬ １３６:
３９１—３９９
Ｗｏｎｇ ＫＣꎬ Ｓｕｎ Ｍꎬ １９９９. Ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅ ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｇｅ￣
ｎｅｔｉｃｓ ｏｆ Ｇｏｏｄｙｅｒａ ｐｒｏｃｅｒａ (Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ) [Ｊ] . Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒ￣
ｎａｌ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ ８６: １４０６—１４１３
Ｗｒｉｇｈｔ Ｓꎬ １９３１. Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｉｎ Ｍｅｎｄｅｌｉａｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ [ Ｊ] . Ｇｅｎｅｔｉｃｓꎬ
１６: ９７—１５９
Ｙａｎ ＴＦꎬ Ｚｈｏｕ ＦＪꎬ Ｙａｎ ＸＦ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９. Ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ ｐｏｐｕ￣
ｌａｔｉｏｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｏｆ Ｒｈｏｄｉｏｌａ ａｎｇｕｓｔａ [Ｊ] . Ｂｕｌｌｅｔｉｎ ｏｆ Ｂｏｔａｎｉ￣
ｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈꎬ １９: １８９—１９４
Ｚｅｎｇ ＳＧꎬ Ｔｉａｎ ＲＸꎬ Ｃｈｅｎ ＺＬꎬ ２０１０ꎬ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｏｎ ｃｒｏｓｓ
ｂｒｅｅｄｉｎｇ ｏｆ Ｐａｐｈｉｏｐｅｄｉｌｕｍ [ Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｔｒｏｐｉｃａｌ ａｎｄ Ｓｕｂ￣
ｔｒｏｐｉｃａｌ Ｂｏｔａｎｙꎬ １８: ４５９—４６８
Ｚｈａｎｇ ＪＪꎬ ２０１２. Ｅｍｂｒｙｏ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ａｎｄ Ｓｅｅｄ Ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｐａｐｈｉｏ￣
ｐｅｄｉｌｕｍꎬ Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ (ＭＳ ｄｅｇｒｅｅ) [Ｄ]. Ｋｕｎｍｉｎｇ: Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎ￣
ｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｃｈｉｎａꎬ ２２—３２
Ｚｉｅｔｋｉｅｗｉｃｚ Ｅꎬ Ｆａｆａｌｓｋｉ Ａꎬ Ｌａｂｕｄａ Ｄꎬ １９９４. Ｇｅｎｏｍｅ ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ
ｂｙ ｓｉｍｐｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｒｅｐｅａｔ (ＳＳＲ)￣ａｎｃｈｏｒｅｄ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅ￣
ａｃｔｉｏｎ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ [Ｊ] . Ｇｅｎｏｍｉｃｓꎬ ２０: １７６—１８３
８１２ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３６卷