全 文 ：中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 2 期 2013 年 1 月

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红芪多糖 HPS4-1A 的化学结构特征研究及分子构象初步分析
党子龙，刘小花，赵安娜，梁建娣，梁 瑾，刘子亨，封士兰*
兰州大学药学院，甘肃 兰州 730000
摘 要：目的 研究红芪多糖 HPS4-1A 的化学结构特征，并初步分析其构象。方法 红芪经水提醇沉法提取、Sevage 法脱
蛋白、H2O2脱色素、Sephadex G-200 色谱柱分离纯化得到均一的红芪多糖 HPS4-1A。以 GC 法、高效液相凝胶色谱（HPGC）
法、凝胶渗透色谱-多角度激光散射仪联用（GPC-MALLS）法、元素分析、苯酚硫酸法、Bradford 法研究其理化性质；以
GPC-MALLS 法对其构象进行初步分析。采用甲基化、部分酸水解、以及 NMR 研究其连接方式、主链和支链结构及分支点
状况。结果 HPS4-1A 的绝对分子质量为 7.386×104，相对分子质量 6.68×105以上；由鼠李糖、阿拉伯糖、葡萄糖、半乳
糖组成，其摩尔比为 1∶2∶1∶2，主链骨架由 1, 5、1, 3, 5 连接的 α-L-呋喃阿拉伯糖和 1, 6、1, 2, 6 连接的 α-D-吡喃半乳糖
组成，侧链分支点位于阿拉伯糖的 3 位与半乳糖的 2 位。侧链分支由 1, 4、1, 4, 6-α-D-吡喃葡萄糖，1, 2、1, 2, 4-α-L-呋喃鼠
李糖组成。主链末端连接主要是阿拉伯糖，并且连接在 1, 5 连接的阿拉伯糖的 5 位。侧链末端连接主要是葡萄糖，还有少量
的阿拉伯糖。结论 HPS4-1A 为一种新的中性红芪杂多糖，其构象为无规线团状，并且相对分子质量分布呈单分散性。
关键词：红芪；中性多糖；化学结构；构象；单糖组成
中图分类号：R284.18 文献标志码：A 文章编号：0253 - 2670(2013)02 - 0141 - 06
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2013.02.005
Chemical structural features and primary molecular conformation
of polysaccharide HPS4-1A from Hedysarum polybotrys
DANG Zi-long, LIU Xiao-hua, ZHAO An-na, LIANG Jian-di, LIANG Jin, LIU Zi-heng, FENG Shi-lan
School of Pharmacy, Lanzhou University, Lanzhou 730000, China
Abstract: Objective To study the chemical structural features and conformation of polysaccharide HPS4-1A from Hedysarum
polybotrys. Methods A fraction of water-soluble neutral polysaccharide was obtained from H. polybotrys by aqueous extraction
followed by precipitation with ethanol. The homogeneous polysaccharide named HPS4-1A was obtained after treated with Savage
method and H2O2 , and purified with Sephadex G-200 gel filtration chromatography. Then GC, HPGC, GPC-MALLS, element
alanalyser, phenol sulfuric acid method, and Bradford method were used to study the physicochemical property of HPS4-1A; The
conformation was primarily analyzed with GPC-MALLS method. The connection, main chain and branched-chain structures, and the
condition of branching point were studied by methylation, partial acid hydrolysis, and NMR method. Results The absolute and
relative molecular weights of HPS4-1A were 7.386 × 104 and above 6.68 × 105; HPS4-1A was a heteropolysaccharide and consisted of
L-rhamnose, L-arabinose, D-glucose, and D-galactose (1︰2︰1︰2). HPS4-1A proved to be a neutral sugar, with 1, 6- and 1, 2,
6-α-D-galactopyranosyl and 1, 5- and 1, 3, 5-α-L-arabinofuranosyl residues in backbone, and 1, 4- and 1, 4, 6-α-D-glucopyranosyl and
1, 2- and 1, 2, 4-α-L-rhamnofuranosyl residues in branches. Arabinose mainly connected the end of backbone, and glucose and a
small quantity of arabinose mainly connected the end of branches. Conclusion HPS4-1A is a new neutral heteropolysaccharide from
H. polybotrys. HPS4-1A has a random coil state conformation with monodisperse mass distribution.
Key words: Hedysarum polybotrys Hand. -Mazz; neutral heteropolysaccharide; chemical structure; conformation; monosaccharide
composition

红芪为豆科植物多序岩黄芪 H e d y s a r u m
polybotrys Hand. -Mazz 的干燥根，具有补气升阳、
固表止汗、利水消肿、生津养血、行滞通痹、托毒
排脓、敛疮生肌的功效[1]。红芪中含有多种不同活

收稿日期：2012-11-07
基金项目：甘肃省中小企业创新基金计划资助（0911WCCA005）
作者简介：党子龙（1988—），男，在读硕士研究生。
*通信作者 封士兰 E-mail: fengshl@lzu.edu.cn
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性组分的多糖，其药理作用也不相同。文献报道红
芪多糖具有降血糖[2]、抗氧化[3]、抗肿瘤[4]、免疫调
节[4]以及保肝[5]等药理作用。本课题组提取纯化得
到的多糖 HPS4 经前期研究表明具有抗辐射、抗肿
瘤以及抗氧化的药理作用，本实验分析了从 HPS4
中分离纯化得到的一种新的杂多糖组分红芪多糖-
1A（HPS4-1A）的结构。
1 材料与仪器
BP211D 型与 BS224S 型电子天平（德国
Sartorius 公司）；UV—1700 紫外可见分光光度计（日
本岛津公司）；DHG—9075A 型电热恒温鼓风干燥
箱（上海一恒）；KQ—3200DE 超声波仪器（江苏
昆山公司）；BS—100N 自动部分收集器，BT100N
数显恒流泵（上海青浦沪西仪器厂）。CR22GⅡ离
心机（日本日立）；Freezone 6PWS 型真空冷冻干燥
仪（美国 LABCONCO）；透析袋（截留相对分子质
量 3 500，美国科技发展公司）；multi EA 4000 元素
分析仪（德国 Elementar Analysensysteme 公司）；
Dawn HeleosⅡ型十八角度激光散射仪（美国怀雅特
技术公司）；Waters 600 高效液相色谱仪（美国
Waters 公司）；UltrahydrogelTM 1000、500 色谱柱（美
国 Waters 公司）；GC 2014 型气相色谱仪（日本岛津
公司）；QP2010 GC-MS 仪（日本岛津公司）；OV—
101 毛细管色谱柱（兰州中科安泰分析科技有限责
任公司）；600 MHz Inova 600 NB 核磁共振波谱仪
（德国 Bruker 公司）。
标准单糖：鼠李糖（批号 111683-200401）、阿
拉伯糖（Ala，批号 111506-200001）、木糖（Xyl，
批号 111508-200404）、甘露糖（Man，批号 140651-
200602）、葡萄糖（Glc，批号 110833-200904）、半
乳糖（Gal，批号 100226-201105）、葡萄糖醛酸（批
号140648-200602）、半乳糖醛酸（批号111646-200301）
均购于中国食品药品检定研究院；右旋糖酐（dextran）
对照品（668 000、410 000、273 000、148 000、48 600、
23 800、11 600、5 200）批号为 SDKC-600-200903，
购于美国 PSS 公司。
红芪样品购自甘肃武都，经兰州大学药学院马
志刚教授鉴定为多序岩黄芪 Hedysarum polybotrys
Hand. -Mazz. 的根。干燥、粉碎后备用。
2 方法
2.1 提取与分离
粉碎的红芪（4.0 kg）以 10 倍量的沸水提取 3
次，每次 3 h。水提取液减压浓缩至生药质量浓度
1 mg/mL，加入 95%乙醇至终体积分数为 70%。所
得沉淀复溶于水中（质量分数 1%～3%），加入 95%
乙醇至终体积分数为 40%，取上清液，浓缩后得到
红芪粗多糖 4（HPS4）。HPS4 经 Sevage 法脱蛋白[6]，
H2O2 除色素[7]后再醇沉分级，得到 40%多糖部位
HPS4-1 和 70%多糖部位HPS4-2。HPS4-1 经 Sephadex
G-200 柱色谱，以 0.05 mol/L pH5.2 的 NaAc-HAc 缓
冲液洗脱得到 3 个均一组分：HPS4-1A、HPS4-1B、
HPS4-1C。HPS4-2 经 DEAE-52 柱色谱，以 0.1～1.0
mol/L 的 NaCl 梯度洗脱得到 1 个均一组分 HPS4-2A。
2.2 HPS4-1A 质量分数、相对分子质量、绝对分
子质量、分子构象及分子质量分布
采用高效凝胶色谱法（HPGPC）对 HPS4-1A
进行质量分数鉴定及相对分子质量的测定，流动相
为蒸馏水。采用凝胶渗透色谱与光散射仪（GPC-
MALLS）联用技术测定其绝对分子质量、分子构象
及相对分子质量分布，流动相为 0.1 mol/L NaNO3
与质量分数为 0.02% NaN3 的混合溶液。色谱柱为凝
胶渗透色谱柱 UltrahydrogelTM 1 000、500 串联，体
积流量 0.8 mL/min，柱温 30 ℃，示差折光检测器
温度为 35 ℃。相对分子质量测定时将相对分子质
量分别为 5 200、11 600、23 800、48 600、148 000、
273 000、410 000、668 000 的右旋糖酐标准品用流
动相配成质量浓度为 0.5 mg/mL 的水溶液，按相对
分子质量由小到大顺序依次分别进样，测定保留时
间（t）。以 t 对相对分子质量对数（lgMw）绘制标
准曲线，计算 HPS4-1A 的相对分子质量。
2.3 多糖理化性质的测定
总糖质量分数的测定用苯酚-硫酸法[8]；蛋白质
质量分数的测定用 Bradford 法[9]；糖醛酸的鉴定与
质量分数测定用气相色谱法[8]和硫酸-咔唑法[8]；多
糖中碳（C）、氢（H）、氮（N）、硫（S）元素分析
采用元素分析仪进行分析。
2.4 单糖组成分析
取 10 mg HPS4-1A、加 2.0 mL 2.0 mol/L 三氟乙
酸（TFA）置于特弗伦管中，封管后 120 ℃水解 3 h，
冷却后于 60 ℃减压旋蒸除去 TFA，加入 1.5 mL 甲
醇溶解，减压蒸干，重复 3 次，除尽 TFA。向已水
解的样品中加入 10 mg 盐酸羟胺、7 mg 内标肌醇六
乙酰酯、0.5 mL 吡啶，置烘箱中 90 ℃恒温 30 min。
取出后冷至室温，加入 0.5 mL 醋酸酐，在 90 ℃下
继续反应 30 min（乙酰化）。反应产物减压蒸干，溶
于 1.0 mL 氯仿中，进行 GC 分析[10]。
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气相色谱条件：色谱柱为 OV-101 柱；进样口
温度为 210 ℃；检测器温度为 260 ℃；载气压力
0.5 mPa；程序升温：起始温度 175 ℃，以 15 ℃/min
的速度升至 225 ℃，保持 5 min，然后以 5 ℃/min
的速度升至 250 ℃，保持 1.5 min。
2.5 甲基化分析
HPS4-1A 5 mg 充分干燥，溶于 DMSO，用改
良的 Hakomori 法[8]甲基化，经 IR 分析无羟基后，
水解，还原，乙酰化后进行 GC-MS 分析。
气相色谱条件：柱温 175 ℃；载气为氦气；进
样口温度 210 ℃；载气体积流量 1.00 mL/min；进
样模式为分流；分流比 50.0；进样体积 1 μL。
质谱条件：离子源温度 200 ℃；接口温度 210
℃；溶剂延迟 4 min；阈值 1 000；起始时间为 4.00
min；结束时间为 14.83 min；采集方式为 Scan；质
谱检测范围（m/z）为 33.00～630.00。
2.6 部分酸水解分析[8]
取 HPS4-1A（50 mg）用 0.1 mol/L TFA 100 ℃
水解1 h，冷却至室温后于60 ℃减压旋蒸除去TFA，
加入 1.5 mL 甲醇溶解，减压蒸干，重复 3 次，除尽
TFA。用蒸馏水溶解，透析（截留相对分子质量 3 500）。
袋内部分经 Sephadex G-200 柱色谱纯化后得到次级
多糖组分 HPS4-1A-H；袋外部分经 Sephadex-25 柱色
谱纯化得一低聚糖 HPS4-1A-L 和混合的单糖组分。
然后按“2.4”项方法进行单糖组成分析。
2.7 NMR 分析
精密称取充分干燥的 HPS4-1A 15 mg，溶于 0.5
mL 重水中，冷冻干燥，如此重复用重水交换 3 次，
再溶于 0.5 mL 重水后，用微孔滤膜（0.45 μm）滤
过后在 Bruker DRX—600 核磁共振光谱仪上进行
1H-HMR 和 13C-NMR 分析。
3 结果
3.1 HPS4-1 的分离纯化
HPS4-1 经 Sephadex G-200 排阻色谱分离，
HPS4-2 经 DEAE-52 分离得白色絮状红芪多糖
HPS4-1A、HPS4-1B、HPS4-1C，以及 HPS4-2A；
得率分别为 0.4%、0.6%、0.3%、10%。经过 HPGPC
检测，各多糖均呈单一对称峰（峰面积归一化法计
算质量分数均在 98%以上，其中 HPS4-2A 质量分数
达到 99.64%），说明以上 4 组分都是均一多糖。
3.2 HPS4-1A 相对分子质量、绝对分子质量、分
子构象及分子质量分布
以右旋糖酐系列标准葡聚糖的保留时间（t）为
横坐标和相对分子质量的对数（lgMw）为纵坐标计
算得回归方程为 lgMw＝s－3.20e－001t^1＋2.39e－
003t^2，r2＝0.998 1。如图 1 所示，色谱峰 A 为
HPS4-1A 的色谱峰，HPS4-1A 的相对分子质量大于
6.68×105。

A-HPS4-1A B-对照品中的杂质 1～7-右旋糖酐对照品（相对分子
质量从大到小）
A-HPS4-1A B-impurities in reference substance 1—7-dextran
reference substance (relative molecular weight is in a decreasing order)
图 1 HPS4-1A 及右旋糖酐对照品 HPLC 图
Fig. 1 HPLC chromatogram of HPS4-1A and dextran
reference substance
采用示差折光检测器和激光检测器分别记录供
试品质量浓度和供试品在不同角度的光散射强度；
dn/dc 值为 0.174，通过多角度激光散射仪自带ASTRA
V 软件计算得到 HPS4-1A 的绝对分子质量为 7.386×
104、分布指数 d＝ wM / nM ＝1.057；以旋转均方根半
径对摩尔质量作图（图 2）得到的斜率为 0.45，说


图 2 HPS4-1A 均方根旋转半径对摩尔质量图
Fig. 2 Root mean square turning radius
to molar mass of HPS4-1A

60
50
40
30
20
1.0×105
摩尔质量 / (g·mol−1)
旋
转
均
方
根
半
径
/
n
m


10 20 30
t / min
1
A B
2
3
4
5
6
7
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明 HPS4-1A 的构象为无规则线团；分布指数接近
1.00，说明 HPS4-1A 相对分子质量分布呈单分散性，
即表明摩尔质量分布范围较集中，分子大小较均一。
3.3 多糖理化性质
HPS4-1A 的总糖质量分数为 99.32%，蛋白质质
量分数为 0.00%，糖醛酸测定呈阴性，即不含有糖醛
酸。元素分析 C、H、O、S、N 的质量分数分别为
38.81%、6.92%、54.27%、0.00%、0.00%，经计算得
C、H、O 的摩尔比约为 1∶2∶1，符合多糖的元素及
组成比例，此结果也证明 HPS4-1A 不含硫酸基和蛋
白质。由于 HPS4-1A 不含氮元素，说明不含氨基；并
且不含糖醛酸，说明 HPS4-1A 为中性多糖。
3.4 单糖组成分析
HPS4-1A 经气相色谱分析后，用面积归一化法
得 HPS4-1A 的单糖组成及其比例为 Rha-Ara-Glc-Gal
（1∶2∶1∶2）。色谱图见图 3 和图 4。

1-鼠李糖 2-阿拉伯糖 3-木糖 4-甘露糖 5-葡萄糖 6-半乳糖
7-内标, 下图同
1-Rha 2-Ara 3-Xyl 4-Man 5-Glc 6-Gal 7-internal standard, same as below
图 3 混合单糖对照品的气相色谱图
Fig. 3 GC chromatogram of mixed monose
reference substances

图 4 HPS4-1A 的气相色谱图
Fig. 4 GC chromatogram of HPS4-1A
3.5 甲基化分析
经改良的 Hakomori 甲基化后结果见表 1。
表 1 HPS4-1A 甲基化结果
Table 1 Methylating results of HPS4-1A
部分甲基化的糖基 摩尔比 糖基连接方式
2, 3, 5-tri-O-Me-Araf 1.47 Araf (1→
2, 3-di-O-Me-Araf 24.09 →5) Araf (1→
2-O-Me-Araf 7.63 →3, 5) Araf (1→
3, 4-di-O-Me-Rha 5.22 →2) Rhap (1→
3-O-Me-Rha 2.78 →2, 4) Rhap (1→
2, 3, 4, 6-tetra-O-Me-Glc 4.67 Glcp (1→
2, 3, 6-tri-O-Me-Glc 24.84 →4) Glcp (1→
2, 3-di-O-Me-Glc 2.67 →4, 6) Glcp (1→
2, 3, 4-tri-O-Me-Gal 16.02 →6) Galp (1→
3, 4-di-O-Me-Gal 9.35 →2, 6) Galp (1→

3.6 部分酸水解结果分析
HPS4-1A 部分酸水解后经气相色谱对其单糖
组成分析知，HPS4-1A-L 的单糖组成及其比例为
Rha-Glc-Ara（1.0∶1.1∶0.2）；HPS4-1A-H 的单糖
组成及其比例为 Ara-Gal（2.6∶2.7≈1∶1）。从部
分酸水解结果可知主链骨架由阿拉伯糖和半乳糖组
成，支链主要由葡萄糖和鼠李糖组成，也有少量的
阿拉伯糖存在于支链中。
3.7 NMR 分析
HPS4-1A 的 NMR 分析后数据见表 2。参考文
献报道的 α-L-Araf异头碳的化学位移位于 δ 113.4～
107.6；α-L-Rhap 异头碳的化学位移位于 δ 101.0～
100.0；α-D-Glcp 异头碳的化学位移位于 δ 102.0～
100.0；α-D-Galp 异头碳的化学位移位于 δ 102.0～
100.0。因此可以确定 HPS4-1A 中的阿拉伯糖为
α-L-Araf；鼠李糖为 α-L-Rhap；葡萄糖为 α-D-Glcp；
半乳糖为 α-D-Galp；由碳谱和氢谱的数据推知多糖
HPS4-1A 的主要连接方式与甲基化的结果一致。表
1 中鼠李糖、葡萄糖连接方式的摩尔比总和与阿拉
伯糖、半乳糖连接方式的摩尔比总和接近 2∶3，虽
然与气相色谱的结论（1∶1）有偏差，偏差的原因
可能是由于在甲基化过程中超声使支链断裂造成，
但足以说明 HPS4-1A 为多分支的多糖。
4 讨论
由于相对分子质量和绝对分子质量测定时溶剂
系统不同，所以多糖伸展和皱缩的程度不同[22]。多
糖在水中呈伸展状态，在盐溶液中呈皱缩状态[23]，

7 8 9 10 11 12 13 14
t / min
1
2
3
4
5
6 7

7 8 9 10 11 12 13 14
t / min
1
2
5
6
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表 2 HPS4-1A 的 1H-NMR 和 13C-NMR 化学位移
Table 2 1H-NMR and 13C-NMR chemical shifts of HPS4-1A
多糖残基 C-1/H-1 C-2/H-2 C-3/H-3 C-4/H-4 C-5/H-5 C-6/H-6 参考文献
A α-L-Araf(1→ 113.4/― 84.2/4.20 76.8/3.95 86.5/4.00 64.9/3.82, 3.86 11-12
B →5)α-L-Araf(1→ 107.6/5.06 81.3/4.20 75.6/4.05 86.5/4.27 69.6/3.79, 3.91 13-14
C →3, 5)α-L-Araf(1→ 108.5/5.04 80.7/4.27 84.2/4.04 81.2/4.45 72.8/3.82, 3.96 13-14
D →2)α-L-Rhap(1→ 101.0/― 78.6/4.10 72.7/3.87 76.0/3.41 70.2/3.74 20.73/1.11 13,15
E →2, 4)α-L-Rhap(1→ 101.0/― 79.2/4.20 72.8/3.92 84.2/3.82 72.8/3.47 21.0/1.12 13,16-17
F α-D-Glcp (1→ 102.0/4.87 74.3/3.61 76.0/3.96 73.6/3.87 75.6/3.74 72.7/3.44 17-18
G →4) α-D-Glcp (1→ 102.6/5.06 74.3/3.60 76.0/3.84 79.3/3.50 73.7/3.63 65.0/3.63, 3.68 19-20
H →4, 6) α-D-Glcp (1→ 101.8/4.97 74.3/3.61 75.6/3.70 78.6/3.41 72.8/3.68 76.0/4.00 19-20
I →6) α-D-Galp (1→ 101.8/5.04 72.0/3.91 72.8/4.10 71.0/3.87 72.7/4.27 69.6/3.79, 4.00 19-21
K →2, 6) α-D-Galp (1→ 102.0/5.06 80.7/3.87 73.7/3.10 72.8/3.92 72.0/4.30 70.2/3.82, 4.05 21-23
“―”表示图谱中未解析出此位置的归属
“―” indicates that the data was not assigned
与前者相比后者的分子半径变小，在通过凝胶色谱
柱时后出峰，而前者先出峰，从而导致相对分子质
量测定结果不一致。另外，相对分子质量测定时使
用的是葡聚糖的对照品，而 HPS4-1A 是由 4 种单糖
组成的杂多糖，两者结构差异较大，推测 HPS4-1A
的分支较多，分子半径较大，此结论在甲基化和部
分酸水解的结果中也得到了印证。
综上分析可知 HPS4-1A 主链骨架由 1, 5、1, 3,
5-α-L-Araf 和 1, 6、1, 2, 6-α-D-Galp 组成，侧链分支
点位于阿拉伯糖的 3 位与半乳糖的 2 位。侧链分支
由 1, 4、1, 4, 6-α-D-Glcp，1, 2、1, 2, 4-α-L-Rhap 组
成。主链非还原末端连接主要是阿拉伯糖，并且是
连接在 1, 5 连接的阿拉伯糖的 5 位[13-14]。侧链非还
原末端连接主要是葡萄糖，可能还有少量的阿拉伯
糖。HPS4-1A 为中性杂多糖，其构象为无规线团状，
并且具有单分散性，即表明摩尔质量分布范围较集
中，分子大小较均一。
体外实验表明，该多糖大剂量具有抗辐射、抗
肿瘤以及及抗氧化作用，其作用机制还在进一步研
究中。
参考文献
[1] 中国药典 [S]. 一部. 2010.
[2] 赵良功, 李晓东, 赵建辉, 等. 4 种红芪多糖对实验性
糖尿病小鼠血糖的影响 [J]. 中药材 , 2009, 32(10):
1590-1592.
[3] 惠和平, 封士兰, 胡芳弟, 等. 红芪多糖的体外抗氧化
活性研究 [J]. 安徽农业科学, 2010, 38(8): 4056-4057.
[4] 王希玉, 路 莉, 胡 燕, 等. 不同红芪多糖抗肿瘤和
免疫调节作用研究 [J]. 中药药理与临床, 2009, 25(5):
72-74.
[5] 任 远, 马 骏. 红芪多糖对实验性肝损伤的保护作
用 [J]. 甘肃中医学院学报, 2000, 17(4): 10-11.
[6] 惠和平, 封士兰, 赵良功, 等. 红芪多糖的纯化及初步
结构鉴定 [J]. 时珍国医国药, 2010, 21(9): 2302-2303.
[7] 方积年, 丁 侃. 天然药物——多糖的主要生物活性
及分离纯化方法 [J]. 中国天然药物, 2007, 5(5): 341.
[8] 张惟杰. 糖复合物生化研究技术 [M]. 第 2 版. 杭州:
浙江大学出版社, 1999.
[9] Bradford M M. A rapid and sensitive method for the
quantitation of microgram quantities of protein utilizing
the principle of protein-dye binding [J]. Anal Biochem,
1976, 72(7): 248-254.
[10] 黄 凯, 李志孝, 邓永康, 等. 药用真菌马勃多糖的分
离纯化及结构分析 [J]. 华西药学杂志, 2008, 23(5):
516-518.
[11] Sun Y L, Cui S W, Tang J, et al. Structural features of
pectic polysaccharide from Angelica sinensis (Oliv.) Diels
[J]. Carbohydr Polym, 2010, 80: 544-550.
[12] Khramova D S, Golovchenko V V, Shashkov A S.
Chemical composition and immunomodulatory activity of
a pectic polysaccharide from the ground thistle Cirsium
esculentum Siev [J]. Food Chem, 2011, 126: 870-877.
[13] Cordeiro L M C, Reinhardt V F, Baggio C H, et al.
Arabinan and arabinan-rich pectic polysaccharides from
quinoa (Chenopodium bquinoa) seeds: Structure and
gastroprotective activity [J]. Food Chem, 2012, 130:
937-944.
[14] Kang J, Cui S W, Phillips G O, et al. New studies on gum
ghatti (Anogeissus latifolia) Part III: Structure
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 2 期 2013 年 1 月

• 146 •
characterization of a globular polysaccharide fraction by
1D, 2D NMR spectroscopy and ethylation analysis [J].
Food Hydrocolloid, 2011, 25: 1999-2007.
[15] Cui W W, Michael N A E, Costas G B, et al.
Characterization of a 4-O-methyl-3-D-glucuronic acid-
containing rhamnogalacturonan from yellow mustard
(Sinapis alba L.) mucilage [J]. Carbohydr Res, 1996, 292:
173-183.
[16] Shi Y K, Zhao L G, Liu X H, et al. Structural
characterization of a sulfated glucan isolated from the
aqueous extract of Hedysarum polybotrys Hand. -Mazz
[J]. Carbohydr Polym, 2012, 87: 160-169.
[17] Raisa G O, Victoria V G, Sergey V P, et al. Chemical
composition and anti-inflammatory activity of pectic
polysaccharide isolated from celery stalks [J]. Food
Chem, 2009, 114: 610-615.
[18] Niu Y G, Wang H Y, Xie Z H, et al. Structural analysis
and bioactivity of a polysaccharide from the roots of
Astragalus membranaceus (Fisch) Bge. var. mongolicus
(Bge.) Hsiao [J]. Food Chem, 2011, 128: 620-626.
[19] Ye L B, Zhang J S, Yang Y, et al. Structural
characterisation of a heteropolysaccharide by NMR
spectra [J]. Food Chem, 2009, 112: 962-966.
[20] Zhang A Q, Sun P L, Zhang J S, et al. Structural
investigation of a novel fucoglucogalactan isolated from
the fruiting bodies of the fungus Hericium erinaceus [J].
Food Chem, 2007, 104: 451-456.
[21] Kambiz J H, Ahmad R G, Sohrab M, et al. Isolation,
structural characterization and antioxidant activity of a
new water-soluble polysaccharide from Acanthophyllum
bracteatum roots [J]. Int J Biol Macromol, 2011, 49:
567-572.
[22] 魏远安, 方积年. 高效凝胶渗透色谱法测定多糖纯度
及分子量 [J]. 药学学报, 1989, 24(7): 532-536.
[23] 易剑平, 叶 晓, 闫 红, 等. 姬松茸多糖硫酸酯分子
量测定方法的研究 [J]. 食用菌, 2006(1): 36-38.