全 文 :·1450· 中草菊 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第37卷第10期2006年10月
化合物Ⅵ:白色固体,易溶于氯仿,ESI~TOFMS
优/2:333[M+H]+,355[M+Na]+;1H—NMR(CD—
C13,500MHz)艿:3.61(1H,m,H一3),3.66(1H,m,
H一12),6.98(1H,brs,H一16),0.88(3H,s,H一18),
0.86(3H,s,H一19),2.39(3H,s,H一21)。”C—NMR
(CDCl3,125MHz)艿:36.7(t,C一1),31.5(t,C一2),
71.2(tt,C~3),38.0(t,C一4),44.9(d,C一5),28.5(t,
C一6),31.3(t,C一7),32.6(d,C一8),53.2(d,C一9),
35.6(s,C~10),29.3(t,C一11),73.7(d,C一12),52.1
(s,C一13),54.1(d,C一14),32.2(t,C一15);149.8(d,
C一16),155.5(s,C一17),11.7(q,C一18),12.1(q,C一
19),199.0(s,C一20),26.7(q,C一21)。根据1H—NMR、
13C—NMR和2D—NMR以及参考文献数据‘16],推断
化合物Ⅵ为3p,12p二羟基一孕烷一16一烯一20一酮。
化合物Ⅶ:白色固体,易溶于氯仿,ESI—TOFMS
m/z:333[M+H]+,355[M+Na]+;1H—NMR(CD—
C13,500MHz)艿:4.08(1H,in,H一3),3.67(1H,m,
H—12),6.99(1H,brs,H一16),0.88(3H,s,H一18),
0.84(3H,s,H一19),2.39(3H,s,H一21)。13C—NMR
(CDCl3,125MHz)艿:35.7(t,C一1),29.1(t,C一2),
66.5(d,C一3),31.9(t,C一4),39.2(d,C一5),28.3(t,
C一6),31.3(t,C一7),32.6(d,C一8),53.2(d,C一9),
36.2(s,C一10),29.4(t,C一11),73.7(d,C—12),52.1
(s,C一13),54.1(d,C一14),32.1(t,C—15),149.9(d,
C一16),155.5(s,C一17),11.0(q,C一18),11.7(q,C一
19),199.1(s,C一20),26.7(q,C一21)。与化合物Ⅵ对
照,”C—NMR谱C一3信号从艿71.2位移至艿66.5,
其他数据基本一致,所以确定化合物Ⅶ为3a,128一二
羟基一孕烷一16一烯一20一酮。
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苦瓜子蛋白分离纯化及其理化性质鉴定
李 碌,温博贵。,陈爱云,陈玮莹,吴健宜,李冠武
(汕头大学医学院病理系肿瘤分子生物学研究室,广东汕头 515041)
摘 要:目的 建立苦瓜子蛋白分离纯化的方法。方法 应甩阳离子交换色谱和凝胶过滤色谱Hiprep16/lo
收稿日期:2006—03—30
基金项目:广东省教育厅自然科学研究项目(Z02041)
作者简介:李琛(1972一),山西人,博士,主要从事肿瘤分子生物学研究。
*通讯作者温博贵Tel:(0754).8900473E—mail:bgwen@stu.edu.cn
万方数据
中草药 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第37卷第10期2006年10月·1451·
SOURCE30S和HiLoad26/60Superdex75预装柱从苦瓜种仁中分离纯化苦瓜子蛋白。结果分离纯化出14个
组分的苦瓜子蛋白,它们均为碱性蛋白质,相对分子质量在(1.3~2.9)×104,等电点在9.3~9.6。结论应用本法
能获得供生物活性研究用苦瓜子蛋白组分。
关键词:苦瓜;蛋白组分;纯化
中图分类号:R284.1 文献标识码:A 文章编号:0253—2670(2006)10—1450—05
Separationandpurificationofpr teinsinseedsofMomordicachar ntia
andidentificationOftheirphysicochemicalcharacters
LIJing,WENBo—gui,CHENAi—yun,CHENWei—ying,WUJian—yi,L1Guan—wu
(LaboratoryforMolecularBiologyfTumor,DepartmentofPathology,MedicalCollegeofShantouUniversity,
Shantou515041,China)
.Abstract:ObjectiveAmethodwasdevelopedfortheisolationandpurificationofproteinsnthe
seedsofMomordicacharantia.MethodsTheproteinswereisolatedanpurifiedfromtheseedsofM.
charantiabyaprocedureinvolvingextractingwithacetonesanda eriesofchromatographiesonHipr p16/
10SOURCE30SandHiLoad26/60Superdex75.ResultsFourteenproteinfractionswerepurifiedfrom
theseedsofM.charantia.Theyareallbasicproteinswiththemoleculeweightrange(1.3—2.9)×104and
isoelectricpointrange9.3——9.6.ConclusionThebioactiveproteinscanbepurifiedromtheseedsofM.
charantiabyaprocedureinvolvingextractingwithacetonea daseriesofchromatographiesonHipr p16/
10SOURCE30SandHiLoad26/60Superdex75.
Keywords:MomordicacharantiaL.;proteinfractions;purification
苦瓜Momordicachar ntiaL.为葫芦科苦瓜属
一年生草质藤本植物,性味苦寒,具有清热解毒、滋
养强壮等功效,成熟果实常作蔬菜食用,在我国、.东
南亚、土耳其等地均有广泛的栽种和药用历史。土耳
其人自古以来应用苦瓜疗伤和治疗消化性溃疡[1],
印第安人也有应用苦瓜治疗疟疾等传染性疾病的历
史[纠。国内外大量研究证实,苦瓜具有抗感染[2“]、
降血糖‘5~7。、抗肿瘤[8~101和抗HIV病毒Ell,123的功
效。苦瓜因其潜在的药用价值日益引起国内外学者
的关注,人们期望从苦瓜中提取有效的生物活性物
质以用于治疗肿瘤、糖尿病和艾滋病。
本实验应用阳离子交换和凝胶过滤色谱对苦瓜
种仁蛋白的丙酮粗提物进行纯化,并对其基本理化
性质进行了鉴定。
1材料和方法
1.1 材料与试剂:新鲜苦瓜产自潮汕地区,葫芦科
苦瓜属一年生草质藤本植物。蛋白质标准品(相对分
子质量1.9×104~1.19×105)为MBI公司产品;丙
烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺为BBI公司产品;甘氨酸、
SDS、Tris、过硫酸铵、TEMED为Amresco公司产
品;两性电解质(Ampholytes,pH3~10)和考马斯亮
蓝R250为Sigma公司产品;考马斯亮蓝G250购自
华美生物工程公司;牛血清白蛋白(BSA)为B.M公
司产品;NP一40为Fluka公司产品。
1.2仪器设备:AKTA蛋白质纯化仪购自Amer—
shamPharmaciaB otech公司;Hiprep16/10
SOURCE30S预装柱和HiLoad26/60Superdex75
预装柱购自PharmaciaBiotech公司;MAXI冻干机
购自Bio—Rad公司;GL一20B调整冷冻离心机为上
海安亭科学仪器厂产品;Bio—RadMini—proein皿
cell电泳槽;Bio—RADModelPower/PAC3000电
泳仪;DY600型中压电泳仪为汕头市广播仪器厂产
品;岛津UV一120—02紫外分光光度仪;Bio—Rad
UniversalHOODSN75S凝胶成像系统。
1.3苦瓜子蛋白的分离纯化
1.3.1丙酮沉淀苦瓜子蛋白:新鲜苦瓜子去壳取仁
后,称取湿重为250g的苦瓜种仁以预冷的500mL
0.85%NaCI(含2mmol/L巯基乙醇,1mmol/i。
PMSF)浸泡并机械捣烂,4℃放置过夜。离心(6000
r/min,10rain),上清液以0.8倍体积的冷丙酮沉
淀,离心(6000r/min,10min)后取上清液再以1.2
倍体积的冷丙酮沉淀,离心(6000r/rain,30min)后
沉淀部分以双蒸水溶解,置于透析袋中4℃对双蒸
水透析24h,再对0.05mol/LNa2PO。(pH5.O)缓
冲液透析24h。
1.3.2阳离子交换色谱:取上述透析过的苦瓜子蛋
白丙酮粗提物上样于Hiprep16/10SOURCE30S
阳离子交换色谱柱,以0.05mol/LNaH2PO。(pH
万方数据
·1452· 中草菊 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第37卷第10期2006年10月
5.0)和0.05mol/LNa2HP04(pH9.0,含0.3mol/
I.NaCl)B液)做步进梯度洗脱,即0%~lo%B液
1个柱体积(cv),10%~30%B液10CV,30%_
100%B液6CV,体积流量2mL/min。应用SDS—
PAGE电泳检测各洗脱组分,将相同的组分合并,聚
乙二醇浓缩,Bradford法测定蛋白质的量。
1.3.3凝胶过滤:将上述阳离子交换柱洗脱的苦瓜
子蛋白组分上样于HiLoad26/60Superdex75色谱
柱进行凝胶过滤,经0.05mol/I,磷酸缓冲液[含
0.1mol/LNaCI(pH6.8)]洗脱,体积流量2mL/
min。分别收集洗脱峰蛋白组分,SDS—PAGE电泳检
测各洗脱组分,将相同的组分合并,冷冻干燥。
1.4 SDS—PAGE测定苦瓜子蛋白质相对分子质
量:取苦瓜子蛋白丙酮粗提物、纯化各阶段的苦瓜子
蛋白样品和最后的纯化产物20弘I。(大约20肛g蛋
白)在15%分离胶上电泳,电压40V,电泳4h。凝胶
硝酸银染色,后经凝胶成像系统扫描储存,并计算苦
瓜子蛋白的表观相对分子质量。
1.5 等电聚焦法(IEF)测定苦瓜子蛋白的等电点
(pI)[13|:上样量为每管200弘g蛋白。
1.6苦瓜子蛋白的双向凝胶电泳:按文献方法[13。,
电泳条件为40V,4h。
2结果
苦瓜子蛋白丙酮粗提物经Hiprep16/10
SOURCE30S阳离子交换柱洗脱后,得到6个主要
的色谱峰(图1),经SDS—PAGE显示,均为不均一
的蛋白质?昆合物。将上述阳离子交换柱洗脱蛋白质
组分分别在HiLoadSuperdex75柱上进行凝胶过
滤:(1)HPl经凝胶滤过后得到3个色谱峰。经SDS—
PAGE鉴定,峰HPl—751为不均一的蛋白质混合
物,含两个主要蛋白质成分,表观相对分子质量(下
同)分别为2.8×104、1.5×104,峰HPl—753显示为
均一蛋白质,相对分子质量为1.4×104。(2)HP2经
凝胶滤过后得到2个色谱峰,经SDS—PAGE鉴定,
峰HP2—751有两个主要蛋白质成分,相对分子质量
分别为2.9×104、1.5x104,其中2.9×104蛋白质
量远高于1.5×104蛋白质。峰HP2—752显示为均一
蛋白质,相对分子质量为1,5×104。(3)HP3经凝胶
滤过后得到3个色谱峰,峰HP3—751在SDS—PAGE
图谱中显示主要的3个蛋白质条带,其中量最多的
蛋白质成分相对分子质量为2.8×104,峰HP3—752
含有相对分子质量分别为2.9×104和1.4×104的
两个蛋白组分,峰HP3—753显示为均一蛋白质条
带,相对分子质量为1.5×104i(4)HP4经滤胶滤过
后得到1个色谱峰,经SDS—PAGE电泳,凝胶银染
在1.3×104处显示为一负染条带,考马斯亮蓝染色
则显示均一蛋白质条带,相对分子质量1.3×104,
可见此蛋白质为不嗜银的蛋白。(5)HP5经凝胶滤
过后得到3个色谱峰,在SDS—PAGE图谱中均显示
为均一蛋白质条带,相对分子质量分别为1.9×
104、2.2×104和1.4×104。(6)HP6经凝胶滤过后
也得到3个色谱峰,经SDS—PAGE鉴定,含有两个
蛋白质条带,相对分子质量分别为2.2×104和
1.8×104,HP6-752在SDS—PAGE图谱中显示为均
~蛋白质条带,相对分子质量为2.2×104,HP6—753
显示为两个蛋白质条带,相对分子质量分别为2.1×
104和1.3×104。
苦瓜子蛋白HP2—751和HP3—751在双向电泳
图谱中显示为单个斑点。应用等电聚焦(IEP)测定
了苦瓜子蛋白纯化所得9个组分的等电点(PI),见
表1。
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f/mln
图l Hiprep16/10SOURCE30S阳离子交换色谱图
Fig.1Hiprep16/10SOURCE30SChromatogramof
extractfromM.charantiaseedsbyacetone
表J苦瓜子蛋白组分的等电点
Table1 Isoelectricpointofproteinfractions
fromM.charantiaseeds
3讨论
直到目前为止,从苦瓜中分离的所有具有抗肿
瘤活性的蛋白质都属于I型核糖体失活蛋白,包括
万方数据
中草药 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第37卷第10期2006年lo月·1453·
MAP30、a—momorcharin、-momorcharin、mo—
mordin—I、momordin一Ⅲ、7一momorcharin均为单链
碱性蛋白质。纯化的方法多用丙酮分级沉淀、CM—
Sepharose离子交换色谱以及Sepharose6B—CL和
SephadexG一100凝胶过滤色谱。叶国杰等It4]应用丙
酮分级沉淀、CM—SephadexC一50离子交换色谱和
SephadexG一75凝胶过滤色谱法,从苦瓜子中分离
纯化了a—momorcharin和/3-momorcharin,测得它
们的相对分子质量分别为28625和29076,等电点
分别为9.10和9.32。齐文波等Ds]应用Sepharose
6B亲和色谱、CM一23离子交换色谱和SephadexG一
75凝胶过滤色谱亦得均一成分的a—momorcharin
和B—momorcharin,他们测得的n—momorcharin和
-momorcharin的等电点分别为8.9和9.1。Val—
bonesi等n6]应用S—Sepharose柱、SephadexG一50
柱、CM—Sepharose柱和RedSepharose柱成功分离
子momordinI和momordinⅡ。这些分离纯化苦
瓜蛋白的方法均应用了CM—Sepharose或CM—
SephadexC一50,为弱阳离子交换剂,虽然可以很好
地分离苦瓜蛋白,但是柱体积随着离子强度和pH
的变化而有很大的改变,每次纯化完毕后必须将柱
重装才能保证良好的柱效,这给实验带来了一定的
困难。
本实验选用Hiprep16/10SOURCE30S预装
柱,既具有很高的柱效,柱体积又不随离了强度和pH
值而发生变化,无须很高的离子强度(小于0.3mol/
LNaCl)即可使苦瓜子蛋白的丙酮粗提物得到很好
的分离。文献报道应用阳离子交换色谱分离苦瓜蛋白
均采用线性离子梯度洗脱[14““,发现在离子强度低
于30%B液(O.3mol/LNaCl)时,大部分苦瓜子蛋
白被洗脱下来,但是彼此重叠,因此引入了步进梯度
洗脱,使苦瓜子蛋白得到很好的分离。经Hiprep16/
10SOURCE30S阳离子交换色谱,得到6个主要的
色谱峰:HPl、HP2、HP3、HP4、HP5和HP6。经SDS—
PAGE鉴定,他们均为不均一的蛋白质混合物。进一
步将阳离子交换色谱得到的6个色谱峰分别在
HiLoad26/60Superdex75柱(分离蛋白质相对分子
质量范围3000~70ooo)上进行凝胶过滤色谱,最终
得到了14个蛋白质组分。其中HPl—753、HP2—752、
HP3—753、HP4、HP5—751、HP5—752、HP5—753和
HPL6—752均显示为单一蛋白条带,相对分子质量分
另0为:1.4×104、1.5×104、1.5×104、1.3×104、
1.9×104、2.2×104、1.4×104和2.2×104,测得它
们的等电点分别为:9.1(HP2—752);9.4(HP3—753);
9.3(HP4—751);9.3(HP5—751);9.3(HP5—753);9.6
(HP6—752)。这些蛋白质的相对分子质量与等电点与
文献报道[I””]有所,不同,但它们均为碱性蛋白质。
HP2—751含有两个主要的蛋白质成分,相对分子质量
分别为2.9×104和1.5×104,但是以2.9×104蛋白
为主。HP3—751以2.8×104蛋白质量最多。等电聚
集测得其PI均为9.4,相对分子质量与文献报
道[14J5‘~20]的苦瓜蛋白a—momorcharin和7-mo—
morcharin类似,但是等电点略有不同,他们是否为
已知的苦瓜蛋白质尚需进一步纯化后,进行氨基酸序
列测定方可得知。本工作所纯化的苦瓜子蛋白,其抗
肿瘤活性组分的研究将另文发表。
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PuZ。LUBY,I。iuWY,eta1.Characterizationofthenzy—
maticmechanismofga ma—momorcharin。anovelribosome—
inactivatingproteinwithlow&molecularweightofl l 500
purifiedfromtheseedsofbittergour(Momordicacharantia)
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东北红豆杉针叶中两个双重排紫杉烷内酯化合物的结构鉴定
李力更1,涂光忠2,金怡珠2,曹聪梅1,张嫂丽1,史清文”
(1.河北医科大学药学院天然药物化学教研室,河北石家庄050017;2.北京微量化学研究所,北京100091)
摘 要:目的 研究东北红豆杉Taxuscuspidata针叶中的化学成分。方法采用硅胶柱色谱及制备薄层色谱法分
离、纯化化学成分,用一维和二维核磁共振技术鉴定化合物结构。结果从东北红豆杉针叶的甲醇提取物中分离出
两个罕见的双重排紫杉烷内酯类化合物wallifoliol(I)和tasumatrolH(m)。结论此两种化合物为首次从东北红
豆杉中分离得到,在氘代氯仿溶液中化合物1在室温下可以转化成5a一乙酰基一2a一苯甲酰氧基一4a,70,9a,13a,20一五
羟基一11(15—1),11(10—9)双重排紫杉烷一11一烯一10,15一内酯(Ⅱ)。
关键词:东北红豆杉;紫杉科;双重排紫杉烷内酯
中图分类号:R284.1 文献标识码:A 文章编号:0253—2670(2006)10—1454一05
StructuralidentificatiOnOftwobisabeotaxanel ctonesfromneedlesofTaxuscuspidata
L1I。i—gen91,TUGuang—zhon92,JINYi—zhu2,CAOCong—meil,ZHANGMan—lil,SHIQing—wenl
(1.DepartmentofM dicinalNaturalProductChemistry,SchoolofPharmaceuticalSciences,HebeiMedicalUniversity,
Shijiazhuang050017,China;2.BeijingInst tuteofMicrochemistry,Beijing100091,China)
Abstract:ObjectiveTostudych micaIconstituentsfromtheneedlesofTaXltScuspidata.Methods
ChemicalconstituentswereisolatedbycolumnchromatographyandpreparativeTLC.Thestructureswere
identifiedonthebasisof1D—and2DNMRspectralanalyses.ResultsTWOrarebisabeotaxanel ctones
wereisolatedfromthemethanolextractofT.cuspidataneedles.q-、hestructureswereestablisheda 46-
acetoxy一2a—benzoyloxy一7B,9a,13a—trihydroxy一5,20一epoxy一11(15—1),11(10—,9)bisabeotaxa一11一an一
10,15-lactone(wallifoli01)(I)and5a—acetoxy一2a—benzoyloxy一4a,76,9a,13a,20一pentahydroxy一11
(15—1),11(10----9)bisabeotaxa一11一en一10,15-lactone(tasumatrolH)(Ⅲ).ConelusionBothof hem
areisolatedfromthisplantforthefirsttime.CompoundI canbeconvertedinto20一acetoxy一2a—benzoy—
loxy一4a,5a,76,9a,13a—pentahydroxy一11(15—1),11(10÷9)bisabeotaxa一11一an一10,15一lactone(Ⅱ)in
CDCl3solution,butitisstableinacetone-d6solutionatambienttemperature.
Keywords:TaxuscuspidataSieb.etZucc.;Taxaceae;bisabeotaxanelactones
由于紫杉醇对乳腺癌和卵巢癌的神奇疗效、独
特的抗癌机制、新颖的结构及有限的资源,引起全世
界的研究者对紫杉类化合物的强烈关注。尽管已有
超过400个紫杉烷类化合物报道[¨,但是紫杉醇的
生物合成途径目前仍未搞清楚,而且不断有新的紫
杉烷类化合物被分离得到‘2~3。东北红豆杉Taxus
收稿日期:2006—03—26
基金项目:教育部国家留学回国人员科委基金项目(2003AA22352)
作者简介:李力更(1963一),男,河北唐山人,副教授,南开大学化学系毕业,长期从事天然药物化学的教学、科研工作。
一*通讯作者史清文Tel:(0311)86265634E—mail:qing—wen@hotmail.com
万方数据
苦瓜子蛋白分离纯化及其理化性质鉴定
作者: 李璟, 温博贵, 陈爱云, 陈玮莹, 吴健宜, 李冠武, LI Jing, WEN Bo-gui, CHEN
Ai-yun, CHEN Wei-ying, WU Jian-yi, LI Guan-wu
作者单位: 汕头大学医学院,病理系肿瘤分子生物学研究室,广东,汕头,515041
刊名: 中草药
英文刊名: CHINESE TRADITIONAL AND HERBAL DRUGS
年,卷(期): 2006,37(10)
被引用次数: 3次
参考文献(20条)
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