全 文 ：广 西 植 物 Ｇｕｉｈａｉａ　３２（１）：１２９－１３３　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ２０１２ 年 １ 月
　
ＤＯＩ：１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１０００－３１４２．２０１２．０１．０２５
Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＥＳＩ－ＭＳ　ｃｏｍｂｉｎｅｄ　ｗｉｔｈ　１Ｈ　ＮＭＲ　ｉｎ
ａｎａｌｙｚｉｎｇｓｅｅｄ　ｐｈｏｓｐｏｌｉｐｉｄｓ　ｏｆ　ｓｉｘ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｏｆ　Ｍｉｃｈｅｌｉａ
ＴＡＮＧ　Ａｎ－Ｊｕｎ１，Ｎａｏｍｉｃｈｉ　ＢＡＢＡ２
（１．Ｃｏｌｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｃｈｏｎｇｑｉｎｇ　Ｎｏｒｍａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｃｈｏｎｇｑｉｎｇ　４０００４７，Ｃｈｉｎａ；２．Ｇｒａｄｕａｔｅ　Ｓｃｈｏｏｌ
ｏｆ　Ｎａｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｏｋａｙａｍａ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｔｓｕｓｈｉｍａｎａｋａ　Ｏｋａｙａｍａ　７００－８５３０，Ｊａｐａｎ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｏ　ｄａｔｅ，ｔｈｅｒｅ　ｗａｓ　ｎｏ　ｅｘａｍｐｌｅ　ｔｏ　ａｕｔｈｅｎｔｉｃａｔｅ　ｓｅｅｄ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ　ｂａｓｅｄ　ｏｎ　ｔｈｅｉｒ　ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ．Ｂｙ　ｍｅａｎｓ
ｏｆ　ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ　ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ　ｍａｓｓ　ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ（ＥＳＩ　ＭＳ）ａｎｄ　ｐｒｏｔｏｎ　ｎｕｃｌｅａｒ　ｍａｇｎｅｔｉｃ　ｒｅｓｏｎａｎｃｅ（１　Ｈ　ＮＭＲ）ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏ－
ｐｙ，ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｅｘｔｒａｃｔｅｄ　ｆｒｏｍ　ｓｅｅｄｓ　ｏｆ　ｓｉｘ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｇｅｎｕｓ　Ｍｉｃｈｅｌｉａ　ｗｅｒｅ　ｄｅｔｅｃｔｅｄ．Ｉｔ　ｗａｓ　ｆｉｒｓｔｌｙ
ｆｏｕｎｄ　ｔｈａｔ　ｄｉｓｔｉｎｃｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ｉｎ　ｓｐｅｃｔｒａｌ　ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ　ｒｅｇｉｏｎ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｍ／ｚ８９５－９１０ｉｎ　ＥＳＩ　ＭＳ　ａｎｄ　５．３０－５．４０ｍｇ／
Ｌ　ｉｎ　１　Ｈ　ＮＭＲ　ａｍｏｎｇ　ｔｈｅｓｅ　ｓｉｘ　ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｔｈｕｓ，ｉｔ　ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｓｐｅｃｔｒａｌ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ　ｓｈｏｗｎ　ｂｙ　ＥＳＩ　ＭＳ　ａｎｄ　１　Ｈ
ＮＭＲ　ａｍｏｎｇ　ｓｅｅｄｓ　ｏｆ　ｔｈｅｓｅ　ｓｉｘ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｃｏｕｌｄ　ｂｅ　ａｐｐｌｉｅｄ　ｔｏ　ｉｄｅｎｔｉｆｙ　ｔｈｅｍ．Ａｎｄ　ｉｎ　ａ　ｗｉｄｅｒ　ｓｅｎｓｅ，ｆｏｒ　ａｎａｌｙｚｉｎｇ　ｓｅｅｄ
ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ　ｏｆ　ｏｔｈｅｒ　ｐｌａｎｔ　ｓｐｅｃｉｅｓ，ａ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＥＳＩ　ＭＳ　ＡＮＤ　ＮＭＲ　ｗａｓ　ａｎ　ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ　ｔｏｏｌ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｓｅｅｄ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ；ＥＳＩ　ＭＳ；ＮＭＲ；Ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ；Ｍｉｃｈｅｌｉａ
ＣＬＣ　Ｎｕｍｂｅｒ：Ｑ９４５　　Ｄｏｃｕｍｅｎｔ　Ｃｏｄｅ：Ａ　　Ａｒｔｉｃｌｅ　ＩＤ：１０００－３１４２（２０１２）０１－０１２９－０５
＊
联合应用ＥＳＩ　ＭＳ和１Ｈ　ＮＭＲ分析
含笑属植物种子磷脂
唐安军１，Ｎａｏｍｉｃｈｉ　ＢＡｂＡ２
（１．重庆市重庆师范大学生命科学学院，重庆４０１３３１，中国；２．日本冈山大学
自然科学与技术研究生院，冈山县津岛北７００－８５３０，日本 ）
摘　要：首次尝试利用电喷雾电离质谱（ＥＳＩ　ＭＳ）和氢原子核磁共振（１　Ｈ　ＮＭＲ）技术分析了含笑属六种植物
种子的磷脂特性，发现在两个指纹图谱区发现明显的差异，即在质荷比（ｍ／ｚ）８９５－９１０（ＥＳＩ　ＭＳ）和５．３０～５．４０
ｍｇ／Ｌ（１　Ｈ　ＮＭＲ）两个特异的区域存在显著差异。这些源于种子磷脂ＥＳＩ／ＭＳ和１　Ｈ　ＮＭＲ的谱带差异可以被
用来分析不同植物的种子的磷脂特征。而且，相似地，在更广的层面上，特异性的谱带差异可用于分析其他植
物种子的磷脂组成和特性，辅助鉴定种子。
关键词：种子磷脂；质谱；核磁共振；指纹；含笑属
　　Ａｓ　ｆｏｒ　ｌｉｐｉｄｓ，ｔｈｅｙ　ｐｒｏｖｉｄｅ　ｂｏｔｈ　ｔｈｅ　ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ　ｂａ－
ｓｉｓ　ｏｆ　ｃｅｌ　ｍｅｍｂｒａｎｅｓ　ａｎｄ　ｆｕｅｌ　ｆｏｒ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ．Ｌｉｐｉｄｓ
ｃｏｎｓｉｓｔ　ｏｆ　ｄｉｖｅｒｓｅ　ｔｙｐｅｓ　ｏｆ　ｈｙｄｒｏｐｈｏｂｉｃ　ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ．
Ｏｎｅ　ｌｉｐｉｄ　ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｓｙｓｔｅｍ　ｃｏｎｔｒａｓｔｓ　ｎｅｕｔｒａｌ　ｌｉｐｉｄｓ，
ｓｕｃｈ　ａｓ　ｓｔｅｒｏｌｓ　ａｎｄ　ａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌｓ，ｗｉｔｈ　ｐｏｌａｒ　ｌｉｐｉｄｓ．
Ａｎｏｔｈｅｒ　ｓｃｈｅｍｅ　ｃｏｎｔｒａｓｔｓ　ｃｏｍｐｌｅｘ　ｌｉｐｉｄｓ，ｗｈｉｃｈ　ｗｅｒｅ
ｌｉｐｉｄｓ　ｔｈａｔ　ｃｏｎｔａｉｎ　ｏｎｅ　ｏｒ　ｍｏｒｅ　ｆａｔｔｙ　ａｃｙｌ　ｓｐｅｃｉｅｓ，ｗｉｔｈ
ｓｉｍｐｌｅ　ｌｉｐｉｄｓ　ｔｈａｔ　ｃｏｎｔａｉｎ　ｏｎｌｙ　ａ　ｓｉｎｇｌｅ　ｂｕｉｌｄｉｎｇ　ｂｌｏｃｋ，
ｓｕｃｈ　ａｓ　ｆａｔｔｙ　ａｃｉｄｓ　ｏｒ　ｓｔｅｒｏｌｓ（Ｆａｈｙ　ｅｔ　ａｌ．，２００５）．Ｐｏｌａｒ
ｌｉｐｉｄ　ｃｌａｓｓｅｓ，ｗｈｉｃｈ　ｉｎｃｌｕｄｅ　ｔｈｅ　ｍａｊｏｒ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ｌｉｐｉｄｓ，
＊ 收稿日期：２０１１－０５－０６　　修回日期：２０１１－０９－００８
基金项目：中国科学院生物保护专项（ＫＳＣＸ２－ＹＷ－Ｚ－０９２５）；重庆市教委科技项目（ＫＪ１００６１０）［Ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ　ｂｙ　ｔｈｅ　Ｐａｒｔｉｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ
Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（ＫＳＣＸ２－ＹＷ－Ｚ－０９２５）；Ｃｈｏｎｇｑｉｎｇ　Ｅｄｕｃａｔｉｏｎ　Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ（ＫＪ１００６１０）］
作者简介：唐安军（１９７６－），男，湖南永州人，博士，主要从事植物生理与分子生态学研究，（Ｅ－ｍａｉｌ）ｔａｎｇａｎｊｕｎ＠ｍａｉｌ．ｋｉｂ．ａｃ．ｃｎ。
ｗｅｒｅ　ｄｅｆｉｎｅｄ　ｂｙ　ａ　ｓｐｅｃｉｆｉｃ‘ｈｅａｄ　ｇｒｏｕｐ’ｏｒ　ｐｏｌａｒ　ｍｏｉｅｔｙ
（Ｆｉｇ．１）．Ｅａｃｈ　ｐｏｌａｒ　ｌｉｐｉｄ　ｃｌａｓｓ　ｗａｓ　ｃｏｍｐｏｓｅｄ　ｏｆ　ｖａｒｉ－
ｏｕｓ　ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｗｈｏｓｅ　ｆａｔｔｙ　ａｃｉｄｓ　ｏｒ　ｏｔｈｅｒ　ｈｙｄｒｏ－
ｃａｒｂｏｎ　ｐｏｒｔｉｏｎｓ　ｖａｒｙ　ｉｎ　ｃｈａｉｎ　ｌｅｎｇｔｈ　ａｎｄ　ｄｅｇｒｅｅ　ｏｆ　ｓａｔ－
ｕｒａｔｉｏｎ（Ｂｒüｇｇｅｒ　ｅｔ　ａｌ．，１９９７）．Ｉｎ　ｐｌａｎｔｓ，ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ　ｅｖ－
ｉｄｅｎｃｅ　ｈａｓ　ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ　ｒｏｌｅｓ　ｆｏｒ　ｌｉｐｉｄｓ　ｉｎ　ｃｅｌｕｌａｒ
ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ　ｔｈａｔ　ｉｎｃｌｕｄｅ　ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，ｓｉｇｎａｌ　ｔｒａｎｓｄｕｃ－
ｔｉｏｎ，ｖｅｓｉｃｌｅ　ｔｒａｆｉｃｋｉｎｇ，ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｃｙｔｏｓｋｅｌｅｔａｌ　ｒｅａｒ－
ｒａｎｇｅｍｅｎｔ（Ｈａｌｅｔｔ　ａｎｄ　Ｂｅｗｌｅｙ，２００２；Ｗａｎｇ，２００２；
Ｗｅｌｔｉ　ａｎｄ　Ｗａｎｇ，２００４；Ｍｅｉｊｅｒ　ａｎｄ　Ｍｕｎｎｉｋ，２００３）．
Ｐｒｅｓｕｍｅｄｌｙ，ｔｈｅｒｅ　ｗａｓ　ｃｅｒｔａｉｎ　ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｌｉｐ－
ｉｄ　ｐｒｏｆｉｌｅｓ　ａｎｄ　ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｔｏ　ｄａｔｅ，ａｌ－
ｔｈｏｕｇｈ　ｖａｒｉｏｕｓ　ｍａｓｓ　ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ（ＭＳ）ａｎｄ　ｎｕｃｌｅａｒ
ｍａｇｎｅｔｉｃ　ｒｅｓｏｎａｎｃｅ（ＮＭＲ）ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ　ｗｅｒｅ　ｕｓｕａｌｙ
ｔｈｅ　ｍｅｔｈｏｄｓ　ｏｆ　ｃｈｏｉｃｅ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ　ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
ｏｆ　ｎａｔｕｒａｌ（ｏｒ　ｓｙｎｔｈｅｓｉｚｅｄ）ｐｒｏｄｕｃｔ　ａｎｄ　ｆｏｒ　ｂｏｔｈ　ｉｄｅｎｔｉｆ－
ｙｉｎｇ　ａｎｄ　ｑｕａｎｔｉｆｙｉｎｇ　ｔｈｅ　ｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ　ｉｎ　ａ　ｃｅｌ　ｏｒ　ｔｉｓｓｕｅ
ｔｙｐｅ　ｆｏｒ　ｂｅｉｎｇ　ｅｘｔｒｅｍｅｌｙ　ｒａｐｉｄ　ａｎｄ　ｗｉｔｈｏｕｔ　ｂｉａｓ（Ｋｒｉｓｈ－
ｎａｎ　ｅｔ　ａｌ．，２００５；Ｗａｒｄ　ｅｔ　ａｌ．，２００７；Ｃｏｌｑｕｈｏｕｎ，２００７）．
Ｔｏ　ｏｕｒ　ｋｎｏｗｌｅｄｇｅ，ＮＭＲ　ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ　ｉｎ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ
ｗｉｔｈ　ｍｕｌｔｉｖａｒｉａｔｅ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｈａｓ　ｂｅｅｎ　ａｐｐｌｉｅｄ　ｔｏ　ａ　ｎｕｍｂｅｒ
ｏｆ　ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｐｒｏｂｌｅｍｓ　ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ａｎｄ　ｃｕｌｔｉｖａｒ
ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｑｕａｌｉｔｙ　ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ　ｏｆ　ｆｏｏｄｓ　ａｎｄ
ｈｅｒｂａｌ　ｍｅｄｉｃｉｎｅｓ（Ｌｅ　Ｇａｌ　ｅｔ　ａｌ．，２００３；Ｗａｌｉｓ　ａｎｄ
Ｂｒｏｗｓｅ，２００２；Ｃｏｌｑｕｈｏｕｎ，２００７），ｂｕｔ　ｆｅｗ　ｆｉｎｄｉｎｇｓ　ｏｎ
ｓｅｅｄ　ｌｉｐｉｄｓ　ｆｏｒ　Ｍｉｃｈｅｌｉａ　ｐｌａｎｔｓ　ｂｙ　ｍｅａｎｓ　ｏｆ　ｂｏｔｈ　ＭＳ
ａｎｄ　ＮＭＲ　ｈａｖｅ　ｂｅｅｎ　ｒｅｐｏｒｔｅｄ．Ｍａｓｓ　ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ　ｈａｓ
ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ　ｉｔｓｅｌｆ　ａｓ　ｔｈｅ　ｍｅｔｈｏｄ　ｏｆ　ｃｈｏｉｃｅ，ｂｕｔ　ｃｏｍｐｌｅ－
ｍｅｎｔａｒｙ　ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ　ｆｒｏｍ　ｏｔｈｅｒ　ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，ｐａｒｔｉｃｕｌａｒｌｙ
ＮＭＲ　ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ　ｗａｓ　ｐｏｔｅｎｔｉａｌｙ　ｕｓｅｆｕｌ　ｉｎ　ｅｘｔｅｎｄｉｎｇ
Ｆｉｇ．１　Ａ　ｇｅｎｅｒａｌ　ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ　ｏｆ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ　ｗｉｔｈ　ｄｏｕｂｌｅ　ｂｏｎｄｓ（ｏｌｅｆｉｎｉｃ　ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ）
ａｎｄ　ｃｈｅｍｉｃａｌ　ｓｈｉｆｔ（δ，ｍｇ／Ｌ）ｉｎ　ＮＭＲ　ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｒｙ
ｔｈｅ　ｃｏｖｅｒａｇｅ　ｏｆ　ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ．
　　Ｔｏ　ｅｘａｃｔｌｙ　ｔｅｓｔ　ｗｈｅｔｈｅｒ　ｔｈｅ　ｎｅｗ　ｍｅｔｈｏｄ　ｗａｓ　ｒｅｌｉ－
ａｂｌｅ，ｗｅ　ｕｓｅｄ　ｓｉｘ　ｓｐｅｃｉｅｓ（ｗｈｉｃｈ　ｗｅｒｅ　ｗｅｌ　ｃｌａｓｓｉｆｉｅｄ　ｔｏ
ｃｅｒｔａｉｎ　ｓｙｓｔｅｒｍａｔｉｃ　ｐｏｓｉｔｉｏｎ）ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｇｅｎｕｓ　Ｍｉｃｈｅｌｉａ．
Ｉｎ　ｔｈｅ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ，ｂｏｔｈ　ｔａｎｄｅｍ　ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ　ｉｏｎｉｚａ－
ｔｉｏｎ（ＥＳＩ）ＭＳ　ａｎｄ　１　Ｈ　ＮＭＲ　ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ　ｗｅｒｅ　ｈａｒｎｅｓｓｅｄ，
ｗｈｉｃｈ　ｗｅｒｅ　ａｌｒｅａｄｙ　ｗｅｌ－ｓｕｉｔｅｄ　ｔｏ　ｇｅｎｅｒａｔｉｎｇ　ｔｈｅ　ｎｅｃｅｓ－
ｓａｒｙ　ｄａｔａ　ｉｎ　ｔｈｉｓ　ｓｔｕｄｙ．Ｓｅｅｄ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ　ｐｒｏｆｉｌｅｓ　ｏｆ
Ｍ．ｈｅｄｙｏｓｐｅｒｍａ，Ｍ．ｆｕｌｇｅｎｓ，Ｍ．ｙｕｎｎａｎｅｎｓｉｓ，Ｍ．ｃｈａ－
ｐｅｎｓｉｓ，Ｍ．ｆｏｖｅｏｌａｔａａｎｄ　Ｍ．ｆｌｏｒｉｂｕｎｄａ　ｗｅｒｅ　ａｎａｌｙｚｅｄ，
ｗｈｉｃｈ　ｃａｎ　ｂｅ　ｈａｒｄｌｙ　ｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｅｄ　ｂｙ　ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ
ｆｅａｔｕｒｅｓ（Ｎｏｏｔｅｂｏｏｍ，２０００；Ｌｉｕ　ｅｔ　ａｌ．，２００４）ｂｙ　ｍｅａｎｓ
ｏｆ　ｔａｎｄｅｍ　ＥＳＩ　ＭＳ　ａｎｄ　１　Ｈ　ＮＭＲ，ｕｓｉｎｇ　ｓｐｅｃｔｒａｌ　ｄａｔａ
ｏｎ　ｓｅｅｄ　ｌｉｐｉｄｓ　ｏｆ　ｅａｃｈ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ａｓ　ｃｈｅｍｉｃａｌ　ｄｅｓｃｒｉｐｔｏｒｓ．
１　Ｍａｔｅｒｉａｌｓ　ａｎｄ　Ｍｅｔｈｏｄｓ
Ｍａｔｕｒｅ　ｓｅｅｄｓ　ｏｆ　Ｍ．ｙｕｎｎａｎｅｎｓｉｓ，Ｍ．ｃｈａｐｅｎｓｉｓ，Ｍ．
ｆｌｏｒｉｂｕｎｄａａｎｄ　Ｍ．ｈｅｄｙｏｓｐｅｒｎｉａ　ｗｅｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ａｔ　ｔｈｅ
Ｍａｇｎｏｌｉａ　ｇａｒｄｅｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｋｕｎｍｉｎｇ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｂｏｔａｎｙ，
Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（２５°０７′２４″Ｎ，１０２°４４′３７″
Ｅ，Ａｌｔ．１　９８２ｍ）ｏｎ　Ｏｃｔｏｂｅｒ　３，２００９．Ｓｅｅｄｓ　ｏｆ　Ｍ．ｆｏｖｅ－
ｏｌａｔａａｎｄ　Ｍ．ｆｕｌｇｅｎｓ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｉｎ　ｅａｓｔ　Ｙｕｎｎａｎ　ｐｒｏｖ－
ｉｎｃｅ，Ｃｈｉｎａ　ｗｅｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ（２３°２２．２８′Ｎ，１０３°４７．７１′Ｅ，
Ａｌｔ．２　１０３ｍ）ｏｎ　１７Ｏｃｔｏｂｅｒ，２００９．
Ｓｅｅｄｓ（０．５ｇ）ｗｅｒｅ　ｃｒａｓｈｅｄ　ｉｎ　ａ　ｃｈｉｎａ　ｍｏｒｔａｒ　ｗｉｔｈ
０３１ 广　西　植　物　　　 　　　　　　　　　　　　　　３２卷
ｐｅｓｔｌｅ，ａｎｄ　ｔｈｅｎ　ｔｏｔａｌ　ｌｉｐｉｄｓ　ｗｅｒｅ　ｅｘｔｒａｃｔｅｄ　ｉｎ　ａ　ｍｉｘｔｕｒｅ
ｏｆ　ＣＨＣｌ３／ＣＨ３ＯＨ（２∶１，ｖ／ｖ）ｗｉｔｈ　ａｄｄｉｔｉｏｎ　ｏｆ　ａ　ｔｒａｃｅ
ｏｆ　ｂｕｔｙｌａｔｅｄ　ｈｙｄｒｏｘｙｔｏｌｕｅｎｅ（ＢＨＴ）ａｓ　ａｎ　ａｎｔｉ－ｏｘｉｄａｎｔ
ｔｏ　ｐｒｅｖｅｎｔ　ｆｕｒｔｈｅｒ　ｏｘｉｄａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｎｏｎ－ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ　ｏｌｅｆｉｎｉｃ
ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ　ｉｎ　ｐｏｌｙｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄ　ｆａｔｔｙ　ａｃｙｌ　ｇｒｏｕｐ．Ａｆｔｅｒ　ｅ－
ｖａｐｏｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｓｏｌｖｅｎｔ　ｕｎｄｅｒ　ｒｅｄｕｃｅｄ　ｐｒｅｓｓｕｒｅ，ｔｈｅ
ｒｅｓｉｄｕｅ　ｗａｓ　ｒｉｎｓｅｄ　ｗｉｔｈ　ａｃｅｔｏｎｅ　ｔｏ　ｒｅｍｏｖｅ　ｎｅｕｔｒａｌ　ｌｉｐｉｄ
ｓｕｃｈ　ａｓ　ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ　ａｎｄ　ｔｒｉｇｌｙｃｅｒｉｄｅ　ｔｏ　ｏｂｔａｉｎ　ｐｏｌａｒ
ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ　ｓｕｃｈ　ａｓ　ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ（ＰＣ），ｐｈｏｓ－
ｐｈａｔｉｄｙｌｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ（ＰＥ），ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｓｅｒｉｎｅ（ＰＳ），
ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｉｎｓｉｔｏｌ（ＰＩ），ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ（ＰＧ）ａｎｄ
ｓｐｈｉｎｇｏｌｉｐｉｄｓ（Ｂｌｉｇｈ　＆ Ｄｙｅｒ，１９５９）．Ｔｈｅ　ｐｏｌａｒ　ｌｉｐｉｄ
ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｄｉｓｓｏｌｖｅｄ　ｉｎ　ａ　ｍｉｘｔｕｒｅ　ｏｆ　ｍｅｔｈａｎｏｌ／ａｃｅｔｏ－
ｎｉｔｒｉｌｅ／ｗａｔｅｒ（１９４∶２１５∶１６）ｗｉｔｈ　０．１％ａｍｍｏｎｉｕｍ
ａｃｅｔａｔｅ　ｔｏ　ｅｎｈａｎｃｅ　ｐｒｏｔｏｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ　ｆｏｒ　ＥＳＩ
ＭＳ　ｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔ．Ｔｈｅ　ｔｅｓｔｓ　ｏｆ　ｂｏｔｈ　ＥＳＩ　ＭＳ　ａｎｄ　ｆｏｌ－
ｌｏｗｉｎｇ　１　Ｈ　ＮＭＲ　ｗｅｒｅ　ｒｅｐｅａｔｅｄ　ｔｈｒｅｅ　ｔｉｍｅｓ．ＥＳＩ　ＭＳ
ｗａｓ　ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ　ｕｓｉｎｇ　ａ　Ｐｅｒｋｉｎ－Ｅｌｍｅｒ　ＳＣＩＥＸ（Ｔｈｏｒｎ－
ｈｉｌ，ＯＮ，Ｃａｎａｄａ）ＡＰＩ－ＩＩＩ　ｔａｎｄｅｍ　ｑｕａｄｒａｐｏｌｅ　ｍａｓｓ
ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ．Ｔｈｅ　ｓａｍｐｌｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ　ｂｙ
ｄｉｒｅｃｔ　ｉｎｆｕｓｉｏｎ　ｆｏｒ　ｓｐｅｃｔｒａｌ　ａｃｑｕｉｓｉｔｉｏｎ．Ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｉｏｎ　ｗａｓ
ｓｃａｎｎｅｄ　ｆｒｏｍｍ／ｚ５００－９００ｆｏｒ　ｍｏｓｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｐｏｌａｒ　ｐｈｏｓ－
ｐｈｏｌｉｐｉｄｓ．１　Ｈ　ＮＭＲ　ｓｐｅｃｔｒａ　ｗｅｒｅ　ｒｅｃｏｒｄｅｄ　ｏｎ　６００ＭＨｚ
Ｖａｒｉａｎ　ＩＮＯＶＡ　ＵＮＩＴＹ　６００ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ　ａｎｄ
ｃｈｅｍｉｃａｌ　ｓｈｉｆｔ（δ）ｗｅｒｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ　ｉｎ　ｍｇ／Ｌ　ｇｉｖｅｎ　ｒｅｌａｔｉｖｅ
ｔｏ　ＣＤ３ＯＤ（３．３０ｍｇ／Ｌ）．
Ｆｉｇ．２　ＥＳＩ　ＭＳ　ｓｐｅｃｔｒａ　ｏｆ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｏｆ　ｓｉｘ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｇｅｎｕｓ　Ｍｉｃｈｅｌｉａ
２　Ｒｅｓｕｌｔｓ　ａｎｄ　Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
Ａｎ　ＥＳＩ　ＭＳ　ｓｐｅｃｔｒｕｍ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｆｒｏｍ　Ｍ．
ｆｌｏｒｉｄｕｎｄａ　ｗａｓ　ｇｉｖｅｎ　ｉｎ　Ｆｉｇ．２－Ａ．Ａｌｔｈｏｕｇｈ　ａ
ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｓｉｇｎａｌｓ　ｗｅｒｅ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ，ｔｈｅ　ｃｏｍｐｌｅｘ
ｓｐｅｃｔｒｕｍ　ｗａｓ　ｓｕｒｐｒｉｓｉｎｇｌｙ　ｓｉｍｉｌａｒ　ｔｏ　ｔｈｏｓｅ　ｏｆ　ｐｈｏｓ－
ｐｈｏｌｉｐｉｄｓ　ｆｒｏｍ　ｏｔｈｅｒ　ｓｅｅｄ　ｓｐｅｃｉｅｓ （ｄａｔａ　ｎｏｔ
ｓｈｏｗｎ）．Ｗｈｅｎ　ａ　ｒｅｇｉｏｎ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｍ／ｚ８９５－９１０ｗａｓ
ｅｘｐａｎｄｅｄ　ｔｏ　ａ　ｆｕｌ　ｓｃａｌｅ（Ｆｉｇ．２），ｄｉｓｔｉｎｃｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ
ｉｎ　ｓｉｇｎａｌ　ｐａｔｔｅｒｎｓ　ｗｅｒｅ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ａｍｏｎｇ　ｓｅｅｄ　ｓｐｅ－
ｃｉｅｓ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ（ｓｐｅｃｔｒａ　Ａ－Ｆ）．Ｆｏｒ　ｅｘａｍｐｌｅ，ｂｅ－
ｔｗｅｅｎ　ｍ／ｚ　８９５－９１０ｉｎ　ｓｐｅｃｔｒｕｍ　Ａ，ｔｈｅｒｅ　ｗｅｒｅ　ａｔ
ｌｅａｓｔ　ｔｈｒｅｅ　ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｓｉｇｎａｌｓ　ａｔ　ｍ／ｚ８９６．６（ｐｅａｋ　ａ），
８９８．６（ｐｅａｋ　ｂ）ａｎｄ　９００．６（ｐｅａｋ　ｃ）．Ｔｈｅ　ｓｉｇｎａｌ　ａｔ
ｍ／ｚ８９６．６（ｐｅａｋ　ｃ）ｏｖｅｒｌａｐｅｄ　ａ　ｓｅｃｏｎｄ　ｉｓｏｔｏｐｉｃ　ｐｅａｋ
ｏｆ　ｍ／ｚ　８９６．６（ｐｅａｋ　ａ）．Ａｌｓｏ，ｔｈｅ　ｓｉｇｎａｌ　ａｔ　ｍ／ｚ
９００．６（ｐｅａｋ　ｃ）ｏｖｅｒｌａｐｅｄ　ａ　ｓｅｃｏｎｄ　ｉｓｏｔｏｐｉｃ　ｐｅａｋ　ｏｆ
ｍ／ｚ８９８．６．Ｔｈｅ　ｆｉｒｓｔ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｐｏｉｎｔ　ｗａｓ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ｉｎ　ｍ／ｚｂｅｔｗｅｅｎ　ｐｅａｋ　ａ　ａｎｄ　ｂ，ａｎｄ　ｐｅａｋ　ｂ
ａｎｄ　ｃ　ｗａｓ　ｅｑｕａｌ　ｔｏ　２．Ｔｈｉｓ　ｒｅｓｕｌｔ　ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ　ｔｈａｔ
ｃｈｅｍｉｃａｌ　ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ
（ｐｅａｋ　ａ，ｂ　ａｎｄ　ｃ）ｗｅｒｅ　ｖｅｒｙ　ｓｉｍｉｌａｒ，ａｎｄ　ｔｈｅ　ｄｉｆｆｅｒ－
ｅｎｃｅｓ　ｉｎ　ｍ／ｚ　２ｂｅｔｗｅｅｎ　ｔｈｅｍ　ｉｎｄｉｃａｔｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ
１３１１期　　　　　　　唐安军等：联合应用ＥＳＩ　ＭＳ和１　Ｈ　ＮＭＲ分析含笑属植物种子磷脂
ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ｗａｓ　ｄｕｅ　ｔｏ　ｔｈｅ　ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｄｏｕｂｌｅ　ｂｏｎｄ
（Ｆｉｇ．１）ｓｉｎｃｅ　ｔｈｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ｉｎ　ｍａｓｓ　ｎｕｍｂｅｒ　ｂｅ－
ｔｗｅｅｎ－ＣＨ２－ＣＨ２－ａｎｄ－ＣＨ＝ＣＨ－ｗａｓ　ｅｑｕａｌ　ｔｏ　２．Ａ
ｓｉｍｉｌａｒ　ｐａｔｔｅｒｎ　ｃａｎ　ｂｅ　ｓｅｅｎ　ｉｎ　Ｆｉｇ．２Ｂ－１Ｆｆｏｒ　ｔｈｅ
ｏｔｈｅｒ　ｆｉｖｅ　ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｔｈｅ　ｓｅｃｏｎｄ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｆｅａｔｕｒｅ
ｗａｓ　ｔｈａｔ，ａｌｔｈｏｕｇｈ　ｔｈｒｅｅ　ｐｅａｋｓ　ａｔ　ｍ／ｚ　８９６．６（ｐｅａｋ
ａ），８９８．６（ｐｅａｋ　ｂ）ａｎｄ　９００．６（ｐｅａｋ　ｃ）ｗｅｒｅ　ｆｏｕｎｄ　ｆｏｒ
ａｌ　ｔｈｅ　ｓｐｅｃｔｒａ，ｔｈｅｉｒ　ｒｅｌａｔｉｖｅ　ｉｎｔｅｎｓｉｔｉｅｓ　ｗｅｒｅ　ｓｉｇｎｉｆ－
ｉｃａｎｔｌｙ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ａｍｏｎｇ　ｓｅｅｄ　ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｔｈｉｓ　ｉｎｄｉｃａ－
ｔｅｄ　ｔｈａｔ　ａｌ　ｔｈｅ　ｓｅｅｄ　ｌｉｐｉｄｓ　ｃｏｎｔａｉｎｅｄ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｔｈｒｅｅ
ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ，ｔｈｅｉｒ　ｒｅｌａｔｉｖｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｗｅｒｅ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｂｙ　ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｕｓｉｎｇ　ｔｈｉｓ　ｍｅｔｈｏｄ（ｅ．
ｇ．，ＥＳＩ　ＭＳ），ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ　ｏｆ　ｔｏｔａｌ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ　ｍｏｌｅｃ－
ｕｌａｒ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｗａｓ　ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ　ｂｅｔｔｅｒ　ｔｏ　ａｎａｌｙｚｅ　ｌｉｐｉｄ
Ｆｉｇ．３　１　Ｈ　ＮＭＲ　ｓｐｅｃｔｒａ　ｏｆ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｏｆ　ｓｉｘ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｆｒｏｍ　Ｍｉｃｈｅｌｉａ
Ｓｏｌｖｅｎｔ：ｄｅｕｔｅｒｉｏｍｅｔｈａｎｏｌ；Ａｂｓｃｉｓｓａ：ｃｈｅｍｉｃａｌ　ｓｈｉｆｔ（δ，ｍｇ／Ｌ）
ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｉｎ　ｓｅｅｄｓ．
　　Ａｓ　ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ　ａｂｏｖｅ，ｔｈｅ　ｄｉｆｅｒｅｎｃｅ　ｉｎ　ＥＳＩ　ＭＳ
ｓｐｅｃｔｒｕｍ（ｍ／ｚ８８５－９１０）ａｍｏｎｇ　６ｓｐｅｃｉｅｓ　ｗａｓ　ｓｕｐｐｏｓｅｄ
ｔｏ　ｂｅ　ｏｒｉｇｉｎａｔｅｄ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｄｉｆｅｒｅｎｃｅ　ｉｎ　ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ　ｏｆ　ＰＣ
ａｎｄ　ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｏｌｅｆｉｎｉｃ　ｂｏｎｄ（Ｆｉｇ．１），ｓｉｍｉｌａｒ　ｓｐｅｃ－
ｔｒａｌ　ｄｉｆｅｒｅｎｃｅ　ｓｈｏｕｌｄ　ｂｅ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｉｎ　１　Ｈ　ＮＭＲ　ｓｉｎｃｅ
ｎｏｎ－ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ　ｏｌｅｆｉｎｉｃ　ｐｒｏｔｏｎｓ（Ｓｃｈｅｍｅ　１）ｇａｖｅ　ｒｅｓｏ－
ｎａｎｃｅ　ｓｉｇｎａｌｓ　ｓｐｅｃｉｆｉｃａｌｙ　ａｔδ５．３－５．５ｍｇ／Ｌ　ｉｎ　ｇｅｎｅｒ－
ａｌ．１　Ｈ　ＮＭＲ　ｗａｓ　ｍｅａｓｕｒｅｄ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　６ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ
ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｅｘｔｒａｃｔｅｄ　ｆｒｏｍ　ｅａｃｈ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｉｎ　ｄｅｕｔｅｒｉｏｍｅｔｈａ－
ｎｏｌ．Ｔｈｅ　１　Ｈ　ＮＭＲ　ｓｐｅｃｔｒｕｍ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｅａｃｈ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｗａｓ
ａｌｓｏ　ｆｏｕｎｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｈｉｇｈｌｙ　ｓｉｍｉｌａｒ　ｔｏ　ｅａｃｈ　ｏｔｈｅｒ，ａｎｄ　ｔｈｅｙ
ｗｅｒｅ　ｔｈｏｓｅ　ｏｆ　ｔｙｐｉｃａｌ　ｇｌｙｃｅｒｏｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ．Ｔｅｒｍｉｎａｌ
ｍｅｔｈｙｌ　ｇｒｏｕｐ　ｏｆ　ｆａｔｔｙ　ａｃｙｌ　ｇｒｏｕｐ　ａｔ　ｓｎ－１ａｎｄ　２－ｐｏｓｉｔｉ－
ｔｏｎ　ｏｎ　ｇｌｙｃｅｒｏｌ　ｂａｃｋｂｏｎｅ　ｇａｖｅ　ｒｅｓｏｎａｎｃｅ　ｓｉｇｎａｌ　ａｔ　ｔｙｐｉ－
ｃａｌｙδ０．９ｍｇ／Ｌ　ｆｏｒ　ｍｅｔｈｙｌ　ｐｒｏｔｏｎｓ，δ２．０－２．１ｍｇ／
Ｌ（ｍ，ａｌｙｌｉｃ　ｐｒｏｔｏｎｓ；－ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ＝ＣＨ），δ２．８ｍｇ／Ｌ
（ｍ，ｂｉｓ－ａｌｙｌｉｃ　ｐｒｏｔｏｎｓ；－［ＣＨ＝ＣＨ－ＣＨ２－ＣＨ＝ＣＨ］）
ａｎｄδ５．３０－５．４０ｍｇ／Ｌ（ｍ，ｏｌｅｆｉｎ　ｐｒｏｔｏｎｓ；ＣＨ＝ＣＨ）
ａｎｄδ５．２４－５．２９ｐｍ　ｆｏｒ　ａ　ｍｅｔｈｙｎｅ　ｐｒｏｔｏｎ（Ｂａｂａ　ｅｔ
ａｌ．，２００１；Ｙａｍｏｍｏｔｏ　ｅｔ　ａｌ．，２００７）（Ｆｉｇ．１）．Ｕｎｆｏｒｔｕ－
ｎａｔｅｌｙ，ａｎａｌｙｓｅｓ　ｏｆ　ｍｕｌｔｉｐｌｅｔ　ｓｉｇｎａｌｓ　ａｔδ５．３－５．５ｍｇ／
Ｌ　ｆｏｒ　ｏｌｅｆｉｎｅ　ｐｒｏｔｏｎｓ　ｗａｓ　ｎｏｔ　ｐｏｓｓｉｂｌｅ　ｓｉｎｃｅ　ｔｈｅ　ｍｕｌｔｉ－
ｐｌｉｃｉｔｙ　ｗａｓ　ｄｕｅ　ｔｏ　ｐｒｏｔｏｎ－ｐｒｏｔｏｎ　ｃｏｕｐｌｉｎｇ，ｍａｇｎｅｔｉｃ
ｎｏｎ－ｅｑｕｖａｌｅｎｃｅ　ｏｆ　ｅａｃｈ　ｏｌｅｆｉｎｅ　ｐｒｏｔｏｎ　ａｎｄ　ｏｖｅｒｌａｐ　ｏｆ
ｏｌｅｆｉｎｉｃ　ｓｉｇｎａｌｓ　ｆｒｏｍ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ．Ａｌｔｈｏｕｇｈ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ｄｉｆｅｒｅｎｃｅｓ　ｓｅｅｎ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｓｐｅｃｔｒａ，ｔｈｅｙ　ｗｅｒｅ
ｎｏｔ　ａｓ　ｃｌｅａｒ　ａｓ　ＥＳＩ　ＭＳ　ｓｐｅｃｔｒａ　ｉｎ　Ｆｉｇ．２．Ｔｈｅ　ｄｉｆｅｒｅｎｃｅ
ｂｅｔｗｅｅｎ　ｓｐｅｃｔｒｕｍ　Ｂ　ａｎｄ　Ｆ　ｉｎ　Ｆｉｇ．３ｗａｓ　ｎｏｔ　ｃｌｅａｒ．Ａｎ－
ｏｔｈｅｒ　ｆｅａｔｕｒｅ　ｓｅｅｎ　ｆｒｏｍ　Ｆｉｇ．３ｗａｓ　ｔｈｅ　ｒｅｌａｔｉｖｅ　ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ
ｏｆ　ｔｈｅ　ｏｌｅｆｉｎｉｃ　ｐｒｏｔｏｎ　ｓｉｇｎａｌｓ　ｂｅｔｗｅｅｎδ５．２９－５．４０
ｍｇ／Ｌ　ａｎｄ　ｔｈｏｓｅ　ｏｆ　ｍｕｌｔｉｐｌｅｔ　ｓｉｇｎａｌｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｈｙｄｒｏｇｅｎ
２３１ 广　西　植　物　　　 　　　　　　　　　　　　　　３２卷
（５．２５ｍｇ／Ｌ）ｏｎ　ｓｎ－２ｃａｒｂｏｎ　ｏｆ　ｇｌｙｃｅｒｏｌ　ｍｏｉｅｔｙ　ｉｎ
ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ．Ｆｏｒ　ｅｘａｍｐｌｅ，ｔｈｅ　ｓｐｅｃｔｒｕｍ　Ｃ（Ｍ．ｙｕｎ－
ｎａｎｅｎｓｉｓ），ｔｈｅ　ｒａｔｉｏ　ｗａｓ　９∶１ａｎｄ　ｉｎ　ｓｐｅｃｔｒｕｍ　Ｅ（Ｍ．
ｆｏｖｅｏｌａｔａ），ｔｈｅ　ｒａｔｉｏ　ｗａｓ　２７∶１．Ｔｈｉｓ　ｉｎｄｉｃａｔｅｄ　ｔｈａｔ
ｔｈｅ　ｔｏｔａｌ　ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｄｏｕｂｌｅ　ｂｏｎｄｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ
ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｏｆ　ｓｅｅｄ　ｌｉｐｉｄｓ　ｆｒｏｍ　Ｍ．ｙｕｎｎａｎｅｎｓｉｓ　ｗａｓ　ｌｅｓｓ
ｔｈａｎ　ｔｈａｔ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｓｅｅｄ　ｌｉｐｉｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｆｒｏｍＭ．ｆｏｖｅｏｌａｔａ．
Ｔｈｉｓ　ｏｕｔｃｏｍｅ　ｗａｓ　ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ　ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｆｒｏｍ
ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｔｈｅ　ｓｐｅｃｔｒａ　Ｃ　ａｎｄ　Ｅ　ｉｎ　Ｆｉｇ．２．Ｉｎ
ｓｐｅｃｔｒｕｍ　Ｅ，ｔｈｅ　ｈｅｉｇｈｔ　ｏｆ　ａ　ｐｅａｋ　ａｔ　ｍ／ｚ８９６．６ｗａｓ　ａｐ－
ｐａｒｅｎｔｌｙ　ｈｉｇｈｅｒ　ｔｈａｎ　ｔｈｏｓｅ　ａｔ　ｍ／ｚ　８９８．６ａｎｄ　９００．６
ｃｏｍｐａｒｉｎｇ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｒｅｌａｔｉｖｅ　ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｐｅａｋ　ａｔ　ｍ／
ｚ８９６．４ｉｎ　ｔｈｅ　ｓｐｅｃｔｒｕｍ　Ｃ，ｉｎｄｉｃａｔｉｎｇ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｎｕｍｂｅｒ
ｏｆ　ｄｏｕｂｌｅ　ｂｏｎｄｓ　ｉｎ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｆｒｏｍ　Ｍ．ｆｏ－
ｖｅｏｌａｔａ　ａｐｐｅａｒｓ　ｔｏ　ｂｅ　ｍｏｒｅ　ｔｈａｎ　ｔｈｏｓｅ　ｉｎ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ
ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｆｒｏｍＭ．ｙｕｎｎａｎｅｎｓｉｓ．Ｓｉｍｉｌａｒｌｙ，ＮＭＲ　ｆｉｎｇｅｒ－
ｐｒｉｎｔｉｎｇｓ　ｗｅｒｅ　ａｐｐｌｉｅｄ　ｔｏ　ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　Ｅｐｈｅ－
ｄｒａ　ｓｐｅｃｉｅｓ（Ｋｉｍｅｔ　ａｌ．，２００５）ａｎｄ　Ｓｔｒｙｃｈｎｏｓ　ｓｐｅｃｉｅｓ
（Ｆｒéｄéｒｉｃｈｅｔ　ａｌ．，２００４）．Ｂａｓｅｄ　ｏｎ　ｏｕｒ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ａｎｄ　ｏｔｈ－
ｅｒ　ｓｔｕｄｉｅｓ　ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ，ａ　ｓｕｃｃｅｓｓｆｕｌ　ｍｏｄｅｌ　ｃｏｕｌｄ　ｂｅ　ｅｓｔａｂ－
ｌｉｓｈｅｄ　ｆｏｒ　ｅｖｅｒｙ　ｓｐｅｃｉｅｓ，ｂｅｔｔｅｒ　ｉｎ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ　ｗｉｔｈ　ＭＳ
ｓｐｅｃｔｒａｌ　ｄａｔａ．
　　Ａｓ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ＥＳＩ　ＭＳ　ａｎｄ　１　Ｈ　ＮＭＲ　ｓｐｅｃ－
ｔｒａ　ｏｆ　６ｓｐｅｃｉｅｓ，ｔｈｅ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ　ｐａｔｔｅｒｎｓ　ｗｅｒｅ　ｓｉｍｉ－
ｌａｒ，ｂｕｔ　ｔｈｅｉｒ　ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔ　ｒｅｇｉｏｎｓ　ｗｅｒｅ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ　ｄｉｆ－
ｆｅｒｅｎｔ　ｆｒｏｍ　ｏｎｅ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｔｏ　ａｎｏｔｈｅｒ．Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅ，ｉｔ　ｗａｓ
ｐｏｓｓｉｂｌｅ　ｔｈａｔ　ｓｐｅｃｔｒａｌ　ｄｉｆｅｒｅｎｃｅ　ｍａｙ　ｂｅ　ｕｔｉｌｉｚｅｄ　ｔｏ　ａｎａ－
ｌｙｚｅ　ｓｅｅｄ　ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ａｎｄ　ｔｏ　ａ　ｃｅｒｔａｉｎ　ｅｘｔｅｎｔ，
ｐｏｔｅｎｔｉａｌｙ　ｕｓｅｄ　ｔｏ　ｃｌａｓｓｉｆｙ　ｐｌａｎｔ　ｓｐｅｃｉｅｓ．Ｉｔ　ｓｈｏｕｌｄ　ｂｅ　ａ
ｖａｌｕａｂｌｅ　ａｐｐｒｏａｃｈ　ｔｏ　ｄｅｔｅｃｔ　ｌｉｐｉｄ　ｂａｓｅｄ　ｏｎ　ｓｐｅｃｔｒａｌ　ａｎａ－
ｌｙｔｉｃａｌ　ｍｅｔｈｏｄｏｌｏｇｙ　ｉｎ　ｓｅｅｄｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｕｔｕｒｅ．
　　Ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｅｍｅｎｔｓ　Ｗｅ　ｗｏｕｌｄ　ｌｉｋｅ　ｔｏ　ｅｘｐｒｅｓｓ　ｏｕｒ
ｗａｒｍｅｓｔ　ｇｒａｔｉｔｕｄｅ　ｔｏ　Ｐｒｏｆｅｓｓｏｒ　Ｋｙｏｚｏ　Ｃｈｉｂａ，ｔｈｅ　Ｐｒｅｓｉ－
ｄｅｎｔ　ｏｆ　Ｏｋａｙａｍａ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｔｈｒｏｕｇｈ　ｔｈｅ　Ｃｅｎｔｅｒ　ｏｆ　Ｅｘ－
ｃｅｌｅｎｃｅ　ｏｆ　Ｏｋａｙａｍａ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｆｏｒ　ｐｒｏｖｉｄｉｎｇ　ｆｉｎａｎｃｉａｌ
ｓｕｐｐｏｒｔ　ｔｏ　ｄｏ　ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｓｔｕｄｉｅｓ．Ａｌｓｏ，ｗｅ　ｔｈａｎｋ　ｔｈｅ
ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｏｆ　ＳＣ－ＮＭＲ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　ＡＰＩ
Ⅲ Ｍａｓｓ　ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ　ｉｎ　Ｏｋａｙａｍａ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｊａｐａｎ．
Ｔｈｉｓ　ｗｏｒｋ　ｗａｓ　ｐａｒｔｌｙ　ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ　ｂｙ　ｔｈｅ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ａｃａｄｅ－
ｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（ＫＳＣＸ２－ＹＷ－Ｚ－０９２５）ａｎｄ　Ｃｈｏｎｇｑｉｎｇ
Ｎｏｒｍａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（０９ＸＬＢ０１６）．
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ：
Ｂａｂａ　Ｎ，Ａｌａｍ　Ｍｄ　Ｋ，Ｍｏｒｉ　Ｙ，ｅｔ　ａｌ．２００１．Ａ　ｆｉｒｓｔ　ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　ｏｆ
ｐｈｏｓｐｈａｔｏｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ　ｂｅａｒｉｎｇ　ｄｏｃｏｓａｈｅｘａｅｎｏｉｃ　ａｎｄ　ｔｅｔｒａｃｏｓａ－
ｈｅｘａｅｎｏｉｃ　ａｃｉｄｓ［Ｊ］．Ｊ　Ｃｈｅｍ　Ｓｏｃ　Ｐｅｒｋｉｎ　Ｔｒａｎｓ，１：２２１－２２３
Ｂｌｉｇｈ　ＥＧ，Ｄｙｅｒ　ＷＪ．１９５９．Ａ　ｒａｐｉｄ　ｍｅｔｈｏｄ　ｏｆ　ｔｏｔａｌ　ｌｉｐｉｄ　ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ
ａｎｄ　ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｃａｎ　Ｊ　Ｂｉｏｃｈｅｍ　Ｐｈｙｓｉｏｌ，３７：９１１－９１７
Ｂｒüｇｇｅｒ　Ｂ，Ｅｒｂｅｎ　Ｇ，Ｓａｎｄｈｏｆｆ　Ｒ，ｅｔ　ａｌ．１９９７．Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ　ａｎａｌｙｓｉｓ
ｏｆ　ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ｌｉｐｉｄｓ　ａｔ　ｔｈｅ　ｌｏｗ　ｐｉｃｏｍｏｌｅ　ｌｅｖｅｌ　ｂｙ　ｎａｎｏ－
ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ　ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ　ｔａｎｄｅｍ　ｍａｓｓ　ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ［Ｊ］．Ｃｅｌｌ　Ｂｉｏｌ－
ｏｇｙ，９４：２　３３９－２　３４４
Ｃｏｌｇｕｈｏｕｎ　ＩＪ．２００７．Ｕｓｅ　ｏｆ　ＮＭＲ　ｆｏｒ　ｍｅｔａｂｏｌｉｃ　ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ　ｉｎ　ｐｌａｎｔ
ｓｙｓｔｅｍｓ［Ｊ］．Ｊ　Ｐｅｓｔｉｃ　Ｓｃｉ，３２（３）：２００－２１２
Ｆａｈｙ　Ｅ，Ｓｕｂｒａｍａｎｉａｍ　Ｓ，Ｂｒｏｗｎ　ＨＡ，ｅｔ　ａｌ．２００５．Ａ　ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ
ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｓｙｓｔｅｍ　ｆｏｒ　ｌｉｐｉｄｓ［Ｊ］．Ｊ　Ｌｉｐｉｄ　Ｒｅｓ，４６：８３９－８６２
Ｆｒéｄéｒｉｃｈ　Ｍ，Ｃｈｏｉ　ＹＨ，Ａｎｇｅｎｏｔ　Ｇ，Ｈａｒｎｉｓｃｈｆｅｇｅｒ　Ｇ，ｅｔ　ａｌ．２００４．
Ｍｅｔａｂｏｌｏｍｉｃ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｓｔｒｙｃｈｎｏｓ　ｎｕｘｖｏｍｉｃａ，Ｓｔｒｙｃｈｎｏｓ　ｉｃａｊａ
ａｎｄ　Ｓｔｒｙｃｈｎｏｓ　ｉｇｎａｔｉ　ｅｘｔｒａｃｔｓ　ｂｙ　１　Ｈ　ｎｕｃｌｅａｒ　ｍａｇｎｅｔｉｃ　ｒｅｓｏｎａｎｃｅ
ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ　ａｎｄ　ｍｕｌｔｉｖａｒｉａｔｅ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ［Ｊ］．Ｐｈｙｔｏ－
ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，６５：１　９９３－２　００１
Ｈａｌｅｔｔ　ＢＰ，Ｂｅｗｌｅｙ　ＪＤ．２００２．Ｍｅｍｂｒａｎｅ　ａｎｄ　ｓｅｅｄ　ｄｏｒｍａｎｃｙ：ｂｅ－
ｙｏｎｄ　ｔｈｅ　ａｎａｅｓｔｈｅｔｉｃ　ｈｙｐｏｔｈｅｓｉｓ［Ｊ］．Ｓｅｅｄ　Ｓｃｉ　Ｒｅｓ，１２：６９－８２
Ｋｉｍ　ＨＫ，Ｃｈｏｉ　ＹＨ，Ｅｒｋｅｌｅｎｓ　Ｃ，ｅｔ　ａｌ．２００５．Ｍｅｔａｂｌｉｃ　ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔ－
ｉｎｇ　ｏｆ　ｅｐｈｅｒａ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｕｓｉｎｇ　１　Ｈ　ＮＭＲ　ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ　ａｎｄ　ｐｒｉｎｃｉｐａｌ
ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ　ａｎａｌｙｓｉｓ［Ｊ］．Ｃｈｅｍ　Ｐｈａｒｍ　Ｂｕｌｌ，５３：１０５－１０９
Ｋｒｉｓｈｎａｎ　Ｐ，Ｋｒｕｇｅｒ　ＮＪ，Ｒａｔｃｌｉｆｆｅ　ＲＧ．２００５．Ｍｅｔａｂｏｌｉｔｅ　ｆｉｎｇｅｒ－
ｐｒｉｎｔｉｎｇ　ａｎｄ　ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ　ｉｎ　ｐｌａｎｔｓ　ｕｓｉｎｇ　ＮＭＲ［Ｊ］．Ｊ　Ｅｘｐ　Ｂｏｔ，５６
（４１０）：２５５－２６５
Ｌｅ　Ｇａｌ　Ｇ，Ｃｏｌｑｕｈｏｕｎ　ＪＪ．２００３．ＮＭＲ　Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ　ｉｎ　Ｆｏｏｄ　Ａｕ－
ｔｈｅｎｔｉｃａｔｉｏｎ［Ｍ］／／Ｌｅｅｓ　Ｍ（ｅｄ）．ＵＫ：Ｆｏｏｄ　Ａｕｔｈｅｎｔｉｃｉｔｙ　ａｎｄ
Ｔｒａｃｅａｂｉｌｉｔｙ；Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ：Ｗｏｏｄｈｅａｄ　Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ：１３１－１５５
Ｌｉｕ　ＹＨ．２００４．Ｍａｇｎｏｌｉａｓ　ｏｆ　Ｃｈｉｎａ［Ｍ］．Ｂｅｉｊｉｎｇ：Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ
Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　Ｐｒｅｓｓ
Ｍｅｉｊｅｒ　ＨＪ，Ｍｕｎｎｉｋ　Ｔ．２００３．Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ－ｂａｓｅｄ　ｏｎ　ｓｉｇｎａｌｉｎｇ　ｉｎ
ｐｌａｎｔｓ［Ｊ］．Ａｎｎｕ　Ｒｅｖ　Ｐｌａｎｔ　Ｂｉｏｌ，５４：２６５－３０６
Ｎｏｏｔｅｂｏｏｍ　ＨＰ．２０００．Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　Ｌｏｏｋｓ　ａｔ　ｔｈｅ　Ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ
Ｍａｇｎｏｌｉａｃｅａｅ［Ｍ］／／Ｌａｗ　ＹＨ，Ｆａｎ　ＨＭ，Ｃｈｅｎ　ＺＹ（ｅｄｓ）．Ｐｒｏ－
ｃｅｅｄｉｎｇｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ　Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｆａｍｉｌｙ　Ｍａｇｎｏｌｉ－
ａｃｅａｅ．Ｂｅｉｊｉｎｇ：Ｓｃｉｅｎｃｅ　Ｐｒｅｓｓ：２６－３７
Ｗａｌｉｓ　ＪＧ，Ｂｒｏｗｓｅ　Ｊ．２００２．Ｍｕｔａｎｔｓ　ｏｆ　Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ　ｒｅｖｅａｌ　ｍａｎｙ
ｒｏｌｅｓ　ｆｏｒ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ｌｉｐｉｄｓ［Ｊ］．Ｐｒｏｇｒｅｓｓ　Ｌｉｐｉｄ　Ｒｅｓ，４１：２５４－２７８
Ｗａｎｇ　Ｘ．２００２．Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ　Ｄ　ｉｎ　ｈｏｒｍｏｎｅ　ａｎｄ　ｓｔｒｅｓｓ　ｓｉｇｎａｌｉｎｇ
［Ｊ］．Ｃｕｒｒ　Ｏｐｉｎ　Ｐｌａｎｔ　Ｂｉｏｌ，５：４０８－４１４
Ｗａｒｄ　ＪＬ，Ｂａｋｅｒ　ＪＭ，Ｂｅａｌｅ　ＭＨ．２００７．Ｒｅｃｅｎｔ　ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ　ｏｆ
ＮＭＲ　ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ　ｉｎ　ｐｌａｎｔ　ｍｅｔａｂｏｌｏｍｉｃｓ［Ｊ］．ＦＥＢＳ　Ｊ，２７４：
１　１２６－１　１３１
Ｗｅｌｔｉ　Ｒ，Ｗａｎｇ　ＸＭ．２００４．Ｌｉｐｉｄ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ：ａ　ｈｉｇｈ－ｔｈｒｏｕｇｈ－
ｐｕｔ　ａｐｐｒｏａｃｈ　ｔｏ　ｉｄｅｎｔｉｆｙ　ｌｉｐｉｄ　ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎａｌ　ｃｈａｎｇｅｓ　ａｎｄ　ｄｅｔｅｒ－
ｍｉｎｅ　ｔｈｅ　ｆｕｎｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｇｅｎｅｓ　ｉｎｖｏｌｖｅｄ　ｉｎ　ｌｉｐｉｄ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ　ａｎｄ　ｓｉｇ－
ｎａｌｉｎｇ［Ｊ］．Ｃｕｒｒ　Ｏｐｉｎ　Ｐｌａｎｔ　Ｂｉｏｌ，７：３３７－３４４
Ｙａｍａｍｏｔｏ　Ｍ，Ｚｈｕ　ＣＪ，Ｙｉ　Ｌ，ｅｔ　ａｌ．２００７．Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　ｏｆ　ｌｉｐｉｄ　ｄｅｒｉｖａ－
ｔｉｖｅｓ　ｏｆ　ｐｙｒｒｏｌｅ　ｐｏｌｙａｍｉｄｅ　ａｎｄ　ｔｈｅｉｒ　ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｃｔｉｖｉｔｙ［Ｊ］．Ｂｉｏｓｃｉ
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ　Ｂｉｏｃｈｅｍ，７１（４）：１　０７８－１　０８２
３３１１期　　　　　　　唐安军等：联合应用ＥＳＩ　ＭＳ和１　Ｈ　ＮＭＲ分析含笑属植物种子磷脂