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第１４卷第１期
２０１２年２月
安顺学院学报
ＪＯＵＲＮＡＬ　ＯＦ　ＡＮＳＨＵＮ　ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ
Ｖｏｌ．１４　Ｎｏ．１
Ｆｅｂ．２０１２
收稿日期：２０１１－０６－２８
基金项目：国家自然科学基金 （８１１０２７９６）；贵州省教育厅自然科学研究项目 （黔教科２００５２２４）。
作者简介：张来 （１９７７．０７～），安顺学院化学与生物农学系副教授，博士。研究方向：药用植物基因工程与代谢。
贵州矮杨梅叶总黄酮的提取工艺和测定方法
张　来１　杨碧昌２　刘　宁３
（１．安顺学院化学与生物农学系，贵州　安顺５６１０００）
（２．安顺学院附属中学，贵州　安顺５６１０００）　　　　
（３．贵州师范大学，贵州　贵阳５５０００１）　　　　　　
摘　要：目的：建立矮杨梅叶总黄酮的提取工艺和含量测定方法。方法：利用Ｌ９ （３４）进行
矮杨梅叶总黄酮提取影响因素即乙醇浓度、提取时间、料液比的优化组合；应用分光光度计考
察其含量测定方法。结果：矮杨梅叶总黄酮的提取工艺为提取时间为１．５ｈ，乙醇浓度为
５０％，材液比为１：３５，提取率为４．８８％；总黄酮提取液在０－６０ｍｉｎ内测定，线性关系良好
（０．９９９６），仪器较为稳定，测定结果准确、重现性好，回收率高。结论：矮杨梅叶总黄酮的提
取工艺可行、测定方法可信。这一研究结果对于杨梅属植物中总黄酮的提取和测定具有可操作
性和推广应用价值。
关键词：矮杨梅叶；总黄酮；提取工艺；测定方法
中图分类号：Ｒ２８３．６　文献标识码：Ａ　文章编号：１６７３－９５０７（２０１２）０１－０１２５－０４
　　矮杨梅 （Ｍｙｒｉｃａ　ｎａｎａ　Ｃｈｅｖａｌ．）隶属杨梅科杨梅
属植物［１］，自然分布于我国西部部分省区，生长于
海拔１５００－３５００ｍ的山坡、林缘及灌木丛中。矮杨
梅是生态幅狭窄物种，为我国特有，经济价值极高
的植物，特别在药用方面具有较大的开发应用价值。
矮杨梅根皮、茎皮、叶和果实在民间早为药用，有
治疗痢疾、腹泻、消化不良、直肠出血、脱肛、风
湿痛等疗效［２－４］。近些年有不少关于矮杨梅综合开
发利用的研究报道［５－１３］，其中涉及该物种黄酮类化
合物的研究主要有［１４－２０］：刘昆云、陈善信在对矮杨
梅根的生药学理化实验中发现，其内含有丰富的黄
酮类化合物；文旭从矮杨梅根中分离出多种黄酮类
化合物，经鉴定含量最高的一类为黄酮醇类的杨梅
素甙；刘宁、乙引、陈蓉蓉等通过高效液相色谱法，
测定了矮杨梅叶中黄酮醇类的芦丁和槲皮素含量；
并通过抑菌实验证实，矮杨梅叶有很强的抗金黄色
葡萄球菌、志贺氏痢疾的作用；周志宏、杨崇仁从
矮杨梅鲜叶中分离出１０种酚性化合物，指出黄酮类
化合物为其主要成分，其中以黄酮醇类的杨梅素为
其代表性物质；孙文基、绳金房［２１］在所著书中记载
了杨梅素有抗菌、抗癌、抑酶等作用。这些资料表
明，矮杨梅植物具有可开发利用的黄酮类化合物，
值得深入研究；但同时也指出，矮杨梅植物叶中黄
酮类化合物的提取工艺未见报道。因此，研究拟通
过对野生矮杨梅叶中总黄酮的提取工艺进行研究，
同时建立其含量测定方法，旨为发掘黄酮类物质新
的植物资源、为矮杨梅生理生化研究及药用资源开
发利用提供理论依据和新资料。
１　材料与方法
１．１　仪器与试剂
ＵＶ７５５Ｂ型紫外可见光分光光度计 （北京普析
通用器设备有限公司），ＡＲ－２０１型电子分析天平，
ＤＫ－９８－Ｉ型电子恒温水浴加热器，德国ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ
Ｒｅｓｅａｒｃｈ移液器，瑞士ＢＵＣＨＩＲ－２００旋转蒸发仪，
粉碎机，恒温鼓风干燥箱。芦丁对照品 （００８０－
９７０５） （中国药品检验所），乙醇，盐酸、硝酸铝、
氢氧化钠、亚硝酸钠等试剂均为分析纯。
１．２　实验材料
实验材料来至贵州省六盘水市水城县杨梅杨乡
法尔村。随机选取株高１ｍ、冠幅１ｍ×１．５ｍ左右的
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矮杨梅５株。分别于当年９月下旬 （营养期）、当年
１２月下旬 （孕花期）、次年３月中旬 （盛花期）、次
年６月下旬 （果期）４个不同生育期进行采集。茎
取自植株东、南、西、北四个方位的上、中、下三
个部位；叶取自所取枝条的４－７位功能叶。样品用
水清洗，用蒸溜水漂洗２－３次，晾干后于１０５℃的
烘箱中１５～２０分钟，再在６５℃条件下烘干至恒重。
将样品粉碎过４０目细筛，保存备用。
１．３　实验方法
１．３．１　总黄酮的提取 根据笔者的单因素预试
验结果，得出影响矮杨梅叶总黄酮提取率的主要因
素有材液比 （ｇ／ｍＬ）、时间 （ｈ）、乙醇浓度 （％）。
因此，以Ｌ９ （３４）正交表进行正交试验，其中以矮
杨梅叶粉碎样品４．０００ｇ、提取次数２次为固定因
素，以乙醇浓度、提取时间、料液比为可变因素作
正交试验设计。提取液方法采用超声波提取［２２］。
１．３．２　对照品与供试品溶液的配制 精确称取
１０５℃干燥的芦丁对照品１０．０００ｍｇ，用９５％乙醇溶
解，摇匀，定容至１０ｍＬ，配制成１ｍｇ／ｍＬ的芦丁
对照品溶液。取矮杨梅叶总黄酮提取物，用相同乙
醇浓度定容于１００ｍＬ容量瓶中，再精密量取０．５ｍＬ
于１０ｍＬ的容量瓶中，定容至刻度获得供试样品液。
１．３．３　总黄酮的含量测定和计算 取制备好的
供试样品液，分别置分光光度计５１０ｎｍ波长处测定
吸光度值。以芦丁回归方程计算供试液中总黄酮的
浓度，用公式 Ｍ （％）＝ ［（Ｖ×Ｎ×Ｘ）／ （Ｗ×
１０００）］×１００％［２３］计算其百分含量。式中，Ｍ－样
品总黄酮百分含量，Ｖ－原提取液体积 （ｍＬ），Ｎ－
稀释倍数，Ｘ－提取液中总黄酮浓度 （ｍｇ／ｍＬ），Ｗ
－矮杨梅叶粉末质量 （ｇ）。
２　结果与讨论
２．１　线性关系考察
精密量取芦丁对照品溶液０、０．１、０．２、０．３、
０．４、０．５、０．６ｍＬ分别于１０ｍＬ容量瓶中，分别加
蒸馏水２．５ｍＬ，加５％ ＮａＮＯ２溶液０．５ｍＬ后，再
加１０％ Ａｌ（ＮＯ３）３溶液０．５ｍＬ，混合均匀后放置
５ｍｉｎ，加入５％ ＮａＯＨ 溶液２．５ｍＬ，摇匀，放置
５ｍｉｎ后，用蒸馏水定容至刻度。在波长５１０ｎｍ处测
吸光度值。以波长为横坐标、吸光度值为纵坐标作
曲线。线性回归方程Ｙ＝８．５２５７Ｘ－０．０１８４，Ｙ吸光
度值，Ｘ为芦丁含量 （ｍｇ），相关系数Ｒ＝０．９９９６。
２．２　稳定性考察
精密量取０．５ｍＬ的芦丁对照品溶液和矮杨梅测
试样品 （叶）溶液各１份，按２．１方法加入显色试
剂，在 ０，１０ｍｉｎ，２０ｍｉｎ，３０ｍｉｎ，４０ｍｉｎ，５０ｍｉｎ，
６０ｍｉｎ时测定吸光度值，计算平均值、ＳＤ和ＲＳＤ。
结果显示，芦丁标准样品与矮杨梅叶供试样品溶液
加显色剂后，在０～６０ｍｉｎ范围内测定，吸光度基本
不变，标准偏差和相对标准偏差分别是１．７３×１０－３
（１．９×１０－３）和０．４３ （０．６０），均较小，说明芦丁
对照样品与矮杨梅测试样品显色较稳定。
２．３　精密度考察
精密量取芦丁标样溶液０．５ｍＬ，按２．１方法加
入显色试剂。连续测定５次，计算平均值、标准偏
差 （ＳＤ）、相对标准偏差 （ＲＳＤ）。结果显示，吸光
度值在０．２３０－０．２３２之间波动，平均值为０．２３２，
标准偏差 （ＳＤ＝８．３６×１０－４）和相对标准偏差
（ＲＳＤ＝０．３６）较小，表明仪器精密度良好。
２．４　重复性考察
精密量取０．５ｍＬ芦丁溶液５份，每份分别按
２．１方法加入显色试剂。用分光光度计，在波长
５１０ｎｍ处测吸光度值，计算平均值、ＳＤ、ＲＳＤ。结
果显示，芦丁吸光度的ＳＤ为１．４０２×１０－３，ＲＳＤ为
０．３４，二者均较小，说明该仪器测定结果重现性好，
所得数据精确。
２．５　加样回收率考察
精密量取５份供试样品预实验含量为０．０２９ｍｇ／
ｍＬ的提取液，各加入芦丁对照品溶液，按２．１方法
加入显色试剂，置分光光度计波长５１０ｎｍ处测吸光
度值 （Ａ），计算ＲＳＤ值和平均回收率。结果 （１）
显示，供试样品平均加样回收率为１００．３％，ＲＳＤ为
２．１３％，说明该方法偏差小，回收率高。
表１　加样回收率试验
样品号
（Ｎｏ）
总黄酮
含量
（ｍｇ）
芦丁加
入量
（ｍｇ）
测定量
（ｍｇ）
回收率
（％）
平均回
收率
（％）
ＲＳＤ
（％）
１　 ０．０２９　 ２．５　 ２．５１１　９９．２８
２　 ０．０２９　 ２．０　 ２．０３３　１００．２０
３　 ０．０２９　 １．５　 １．５３５　１００．４０　１００．３０　２．１３
４　 ０．０２９　 １．０　 １．０３２　１００．３０
５　 ０．０２９　 ０．５　 ０．５３６　１０１．４０
２．６　总黄酮的提取工艺
表２的极差Ｒ值可以看出，三个因素对叶中总
黄酮提取效果的主次顺序依次为材液比＞提取时间
＞乙醇浓度；提取时间所对应的Ｋ值最大为Ｋ２＝
１１．８，乙醇浓度所对应的 Ｋ值最大为 Ｋ１＝１１．６２，
材液比所对应的Ｋ值最大为Ｋ３＝１１．７。因此，矮杨
梅叶中总黄酮的提取条件为Ａ２Ｂ１Ｃ３，即提取时间为
１．５ｈ，乙醇浓度为５０％ ，材液比为１：３５。矮杨梅
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安顺学院学报　２０１２年第１期
叶中总黄酮提取工艺结果方差分析 （表３）指出，
提取时间、乙醇浓度、材液比对矮杨梅叶中总黄酮
提取率的影响均达到极显著水平 （Ｆ﹥Ｆ０．０１ （２，
９）＝８．０２）；从Ｆ值也可以看出，影响矮杨梅叶总
黄酮提取的主次因数依次是材液比、提取时间和乙
醇浓度，这一结果与极差值 （Ｒ）的分析完全吻合。
根据所筛选出来的最佳工艺参数，按照提取方法进
行工艺验证，即材液比为１：３５，乙醇浓度为５０％，
提取时间为１．５ｈ，结果矮杨梅叶中总黄酮的提取率
为４．８８％，高于正交试验中的任何一个试验组合，
从而验证了该工艺的合理性和科学系性。
表２　矮杨梅叶中总黄酮提取正交试验结果分析
实验号 （Ｎｏ） Ａ （时间／ｈ）Ｂ （浓度／％）
Ｃ （材液比
／ｇ／ｍＬ）
Ｄ （误差）
吸光度
（ＯＤ）
浓度 （ｍｇ／ｍＬ）提取率 （％）
１　 １　 ５０　 １：２０　 １　 ０．２９９　 ０．０３７　 ２．９６
２　 １　 ７５　 １：３０ ２ ０．２３１ ０．０２９３．４８
３　 １　 ９５　 １：３５　 ３　 ０．１７７　 ０．０２３　 ３．２２
４　 １．５　 ５０　 １：３０　 ３　 ０．２８７　 ０．０３６　 ４．３２
５　 １．５　 ７５　 １：３５　 １　 ０．２３７　 ０．０３０　 ４．２０
６　 １．５　 ９５　 １：２０　 ２　 ０．３２８　 ０．０４１　 ３．２８
７　 ２　 ５０　 １：３５　 ２　 ０．２４８　 ０．０３１　 ４．３４
８　 ２　 ７５　 １：２０　 ３　 ０．３４３　 ０．０４２　 ３．３６
９　 ２　 ９５　 １：３０　 １　 ０．２３８　 ０．０３０　 ３．６０
Ｋ１ ９．６６　 １１．６２　 ９．６０　 １０．７
Ｋ２ １１．８０　 １１．０４　 １１．４０　 １１．１０
Ｋ３ １１．３０　 １０．１０　 １１．７６　 １０．９０
Ｒ　 ０．７１３　 ０．５０７　 ０．７２０　 ０．１１３
表３　正交试验结果方差分析
方差来源 离均差平方和 自由度 均　方 Ｆ　 Ｆ０．０１ Ｆ０．０５
提取时间 ０．８３５５　 ２　 ０．４１７８　 ３０．７２
乙醇浓度 ０．４６４３　 ２　 ０．２３２２　 １７．０７　 ８．０２　 ４．２６
材 液 比 ０．８９２８　 ２　 ０．４４６４　 ３２．８２
误　　差 ０．０２７１　 ２　 ０．０１３６
　　３　结论
采用超声波乙醇提取矮杨梅叶中总黄酮。正交
试验得出影响总黄酮提取效果诸因素的主次关系依
次为材液比、提取时间、乙醇浓度；矮杨梅叶中总
黄酮优化提取条件是Ａ２Ｂ１Ｃ３，即提取时间为１．５ｈ，
乙醇浓度为５０％ ，材液比为１：３５。根据此提取工
艺得出矮杨梅叶中总黄酮的提取率为４．８８％。用分
光光度法对矮杨梅叶总黄酮提取液进行测定，其线
性回归方程为Ｙ＝８．５２５７Ｘ－０．０１８４，相关系数Ｒ＝
０．９９９６，在０－６０ｍｉｎ内测定，测定结果准确、重现
性好，回收率高。与目前行内公认，植物中只要含
有１．５％的黄酮类化合物就有开发利用价值一说，
笔者认为矮杨梅应属于具有开发利用该类物质的新
植物资源。同时矮杨梅叶中总黄酮的提取工艺和测
定方法对于杨梅属植物总黄酮物质的提取和含量测
定具有一定的可操作性和推广应用价值。
参考文献：
［１］中国高等植物图鉴编委·中国高等植物图鉴［Ｍ］．北
京：科技出版社．１９７２：３７４．
［２］江苏新医学院·中药大辞典（下册）［Ｍ］．上海：上海
人民出版社，２４９０．
［３］贵州省中医研究所·贵州中草药名录［Ｍ］．贵阳：贵
州人民出版社，１９８８：７８－７９．
［４］贵州省中药普查办公室，贵州省中医研究所·贵州
中药资源［Ｍ］．北京：中国医药科技出版社，１９９６：６３７．
［５］张喜焕，刘宁·种类型矮杨梅花粉形态扫描电镜观
察［Ｊ］．贵州师范大学学报（自然科学版），２００５（２）：６－９．
［６］刘娅·矮杨梅的光合作用及耐荫性研究［Ｊ］．贵阳学
·７２１·
安顺学院学报　２０１２年第１期
院学报（自然科学版）（季刊），２００８（２）：２６－３１．
［７］刘宁，林铁·矮杨梅叶挥发油ＧＣ－ＭＳ分析［Ｊ］．中
国实验方剂学杂志，２００４（６）：１４－１６．
［８］刘宁，李正芬·贵州野生植物矮杨梅种质资源研究
［Ｊ］．种子，２００４（８）：８０－８２．
［９］谢小波，求盈盈等·杨梅种间杂交及杂种Ｆ１的胚培
养［Ｊ］．果树学报２００９（４）：５０７－５１０．
［１０］刘宁，李正芬·矮杨梅茎的生药学研究［Ｊ］．贵州师
范大学学报（自然科学版），２００４（２）：１０－１２．
［１１］张喜焕，刘宁等·杨梅属两种植物光合特性对ＣＯ２
浓度升高响应的比较研究［Ｊ］．贵州科学，２００６（２）：７１－７５．
［１２］董丽萍，杨宗金等·大理州野生矮杨梅生物学特性
及驯化栽培研究［Ｊ］．林业调查规划，２００４（３）：１１６－１１９．
［１３］张来，刘宁等·贵州西部杨梅属植物的民族植物学
研究［Ｊ］．安顺学院学报２００６（３）：９７－１００．
［１４］刘昆云，陈善信·民族药杨梅根的生药鉴定［Ｊ］．中
国民族民间医药杂志，１９９９（２０）：３５－３８．
［１５］文旭·云南民间药矮杨梅根的化学成分研究［Ｊ］．中
国民族民间医药志，１９９７（２６）：３９－４１．
［１６］刘宁，陈蓉蓉·矮杨梅叶中的芦丁含量［Ｊ］．贵阳中
医学院学报，１９９７（４）：５７．
［１７］刘宁，乙引·矮杨梅槲皮素的种内差异［Ｊ］．贵州师
范大学学报，２０００（４）：３７－３８．
［１８］乙引，刘宁·不同类型矮杨梅叶中槲皮素含量比较
［Ｊ］．资源与环境学报，２０００（３）：５９－６０．
［１９］周志宏，杨崇仁·矮杨梅叶的酚性化学成分［Ｊ］．云
南植物研究，２０００（２）：２１９－２２４．
［２０］刘宁，陈蓉蓉等·矮杨梅叶的抑菌作用研究［Ｊ］．贵
州师范大学学报，１９９８（１）：１－３．
［２１］孙文基，绳金房·天然活性成分简明手册［Ｍ］．北
京：中国医药科技出版社，１９９６：８９４．
［２２］史艳财，韦记青等·战骨总黄酮提取工艺及不同部
位含量测定研究［Ｊ］．广西师范大学学报（自然科学版），２０１０
（２）：５７－６０．
［２３］姜秀娟，唐金成等·可见分光光度法测定刺山柑花
蕾中总黄酮含量［Ｊ］．２０１０（１８）：２５２－２５４．
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（责任编辑：王德红）
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