免费文献传递   相关文献

黄杞叶总黄酮的提取纯化工艺优化及3种有效成分的含量测定



全 文 :中国药房 2016年第27卷第25期 China Pharmacy 2016 Vol. 27 No. 25
Δ基金项目:天津市应用基础及前沿技术研究计划(青年基金项
目)(No.12JCQNJC08700)
*硕士研究生。研究方向:天然药物。E-mail:741465087@qq.
com
# 通信作者:研究员,博士。研究方向:天然药物。电话:022-
23006295。E-mail:houwb@tjipr.com
黄杞叶为胡桃科黄杞属植物黄杞(Engelhardia roxburghi- ana Wall)的干燥叶,主要分布在广东、广西、云南、福建等地,
资源丰富。在广西等地,黄杞叶又被称为罗汉茶,具有清热解
毒、生津止渴、解暑胜湿的功效,可以消除暑热口渴、食滞、腹
痛[1-3]。孙彤等[4]分离并鉴定了来源于广西的黄杞叶中的13个
黄酮类化合物。落新妇苷、花旗松素和黄杞苷等二氢黄酮是
黄杞叶中的主要活性成分[5],其中,尤以落新妇苷的含量非常
高[6]。现代研究表明,落新妇苷能够降低胆固醇[7],保护肝脏以
黄杞叶总黄酮的提取纯化工艺优化及3种有效成分的含量测定Δ
郑义静 1*,单 淇 2,3,周福军 2,3,华 洁 2,3,王红敏 4,侯文彬 2,3 #(1.天津医科大学研究生院,天津 300070;2.天津
药物研究院,天津 300193;3.天津市中药质量控制技术工程实验室,天津 300193;4.天津中医药大学研究生
院,天津 300193)
中图分类号 R284.2 文献标志码 A 文章编号 1001-0408(2016)25-3545-04
DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2016.25.27
摘 要 目的:优化黄杞叶总黄酮的提取与纯化工艺,并建立其中3种有效成分的含量测定方法。方法:以落新妇苷的提取转移
率为指标,采用单因素试验对提取工艺中的提取溶剂、提取方式、渗漉溶剂乙醇的体积分数、渗漉料液比、渗漉前浸泡时间、渗漉速
度和AB-8树脂纯化工艺中洗脱剂乙醇的体积分数进行考察,并采用正交试验优化提取工艺。采用高效液相色谱法对纯化后黄杞
叶总黄酮中3种有效成分(落新妇苷、花旗松素、黄杞苷)进行含量测定。结果:优化后的黄杞总黄酮的提取工艺为以70%乙醇体
积为提取和渗漉溶剂,采用渗漉法提取,渗漉前浸泡8 h,渗漉料液比1 ∶ 16(g/ml),渗漉速度30 ml/(min·kg);纯化工艺为取渗漉液
加水稀释至0.5 g(生药)/ml,乙酸乙酯萃取,萃取液蒸干后以50%乙醇溶解,AB-8树脂上样,50%乙醇洗脱,浓缩、干燥;验证试验
中落新妇苷提取转移率>80%(RSD=0.42%,n=3)。纯化后黄杞叶总黄酮中落新妇苷、花旗松素、黄杞苷的含量分别为57.94%、
3.72%、2.83%,三者含量之和占总黄酮的64.00%。结论:建立的提取和纯化工艺稳定、合理、可靠;黄杞叶总黄酮中3种有效成分
的含量测定方法准确、简单、重复性好。
关键词 黄杞叶;总黄酮;提取工艺;纯化工艺;正交试验;AB-8树脂;落新妇苷;花旗松素;黄杞苷;含量测定
Optimization of Extraction and Purification Technology of Total Flavonoids from Engelhardia roxburghi-
ana and Content Determination of 3 Kinds of Effective Components
ZHENG Yijing1,SHAN Qi2,3,ZHOU Fujun2,3,HUA Jie2,3,WANG Hongmin4,HOU Wenbin2,3(1.Graduate School,
Tianjin Medical University,Tianjin 300070,China;2.Tianjin Institute of Pharmaceutical Research,Tianjin
300193,China;3.Tianjin Engineering Laboratory for Quality Control Technology of Chinese Herbal Medicines,
Tianjin 300193,China;4.Graduate School,Tianjin University of Traditional Chinese Medicine,Tianjin 300193,
China)
ABSTRACT OBJECTIVE:To optimize the extraction and purification technology of total flavonoids from Engelhardia roxburghi-
ana,and to establish the method for the content determination of 3 kinds of effective components. METHODS:Using the extrac-
tion transfer rate of astilbin as index,single factor test was used to investigate extraction solvent,extraction method,volume frac-
tion of percolation solvent ethanol,percolation material-liquid ration,soaking time before percolation and percolation rate of extrac-
tion technology,and volume fraction of eluant ethanol in AB-8 resin purification technology. The contents of 3 effective compo-
nents as astilbin,texifolin and engelitin in total flavonoids from E. roxburghiana were determined by HPLC. RESULTS:The opti-
mal extraction technology was using 70% ethanol as extraction and percolation solvent,percolation extraction,soaking for 8 h be-
fore percolation,percolation material-liquid ratio of 1 ∶ 16(g/ml),percolation rate of 30 ml/(min·kg). The purification technology
was diluting the solution to 0.5 g(crude drug)/ml with water,ethyl acetate extraction,dissolved extract with 50% ethanol after
evaporated to dryness,AB-8 resin for sampling,eluted with 50% ethanol,concentrating and drying. In verification test,extraction
transfer rate of astilbin was more than 80%(RSD=0.42%,n=3). The contents of astilbin,taxifolin and engeletin in total flavo-
noids from E. roxburghiana by purified were 57.94%,3.72% and 2.83%,respectively;the contents of 3 components accounted
for 64.00% of total flavonoids. CONCLUSIONS:The extraction and purification technology is stable,rational and reliable;the
content determination method of 3 effective components in total flavonoids of E. roxburghiana is accurate,simple and producible.
KEYWORDS Engelhardia roxburghiana;Total flavonoid;Extraction technology;Purification technology;Orthogonal test;
AB-8 resin;Astilbin;Taxifolin;Engeletin;Cotent determination
··3545
China Pharmacy 2016 Vol. 27 No. 25 中国药房 2016年第27卷第25期
及具有镇痛、抗水肿作用[8];此外,落新妇苷还具有选择性免疫
抑制等多种生物活性作用[9]。花旗松素为落新妇苷的苷元,具
有抗癌、抗炎、抗病毒[10]等作用;黄杞苷为二氢黄酮醇类化合
物,有较强的抗氧化活性[11]。为更合理地利用黄杞叶资源,本
试验以落新妇苷为指标成分,对黄杞叶中总黄酮的提取工艺
进行了研究;并以落新妇苷、花旗松素、黄杞苷为有效成分,对
黄杞叶总黄酮的质量控制方法进行了研究。
1 材料
1.1 仪器
Agilent-1260高效液相色谱(HPLC)仪,包括四通道梯度
泵、自动进样器、柱温箱、二极管阵列检测器(美国Agilent公
司);BP211D分析天平(德国Sartorius公司);SB-3200DTN超
声波清洗机(宁波新芝生物科技有限公司);DZF-6050真空干
燥箱(巩义市予华仪器有限责任公司)。
1.2 药材、药品、试剂与树脂
黄杞叶产地为广西[采摘日期:2014年 10月,经天津药物
研究院中药部侯文彬研究员鉴定为胡桃科植物黄杞(Engel-
hardia roxburghiana Wall)的干燥叶];落新妇苷对照品(批号:
111798-201303,纯度:92.4%)、黄杞苷对照品(批号:111906-
201102,纯度:93.7%)、花旗松素对照品(批号:111816-201102,
纯度:98.9%)均来源于中国食品药品检定研究院;磷酸、甲
醇、乙醇(95%)均为分析纯;水为纯净水(杭州娃哈哈集团有
限公司)。
AB-8大孔吸附树脂(南开大学化工厂)。
2 方法与结果
2.1 药材中落新妇苷的含量测定
2.1.1 色谱条件 参考2015年版《中国药典》(一部)[12]土茯苓
中落新妇苷的含量测定方法和文献[3,13]方法,并对其进行优化,
最终确定以下色谱条件:色谱柱为Acchrom Unitary C18(250
mm×4.6 mm,5 μm);流动相为甲醇(A)-0.1%甲酸水(B),梯度
洗脱(0~35 min,33% A;35~50 min,33%~40% A;50~65
min,40%~50% A;65~75 min,50%~70% A;75~80 min,
70%~90% A;80~90 min,100% A;90.1~100 min,33%
A);流速为1.0 ml/min;检测波长为290 nm;进样量为10 μl;柱
温为30℃。
2.1.2 对照品溶液的制备 取落新妇苷对照品适量,精密称
定,用 60%甲醇充分溶解并定容至 50 ml,即得 0.039 6 mg/ml
落新妇苷对照品溶液。
2.1.3 供试品溶液的制备 取2份黄杞叶粗粉250 mg,精密称
定,置于 100 ml三角瓶中,加入 60%甲醇 50 ml,精密称定,超
声60 min(180W,40 kHz,30℃),再用60%甲醇补足减失的质
量,摇匀,滤过,取续滤液,稀释10倍即得。
2.1.4 落新妇苷的含量测定 方法学考察内容见“2.4.2”项。
经测定,药材中落新妇苷的含量为8.06%。
2.2 总黄酮提取工艺
2.2.1 提取溶剂选择 称取10份黄杞叶粉末,每份2.5 g,每2
份药材为 1组,各组药材分别以 50 ml水和 30%、50%、70%、
95%乙醇超声提取1 h。提取液稀释100倍,进样测定,根据药
材中落新妇苷的含量计算提取转移率(药材提取溶液中落新
妇苷的含量×提取溶液体积/药材中应含落新妇苷的量×药材质
量×100%)。结果,以水和 30%、50%、70%、95%乙醇为溶剂
的提取转移率依次为53.7%、83.9%、88.9%、95.8%、75.6%(以
落新妇苷计,n=2)。据此确定以70%乙醇为提取溶剂进行进
一步考察。
2.2.2 提取方法选择 称取 6份黄杞叶粉末,每份 100 g,每 2
份药材为 1组,各组药材分别以冷浸、回流和渗漉方式进行提
取。冷浸组以70%乙醇浸泡药材24 h;回流组以1 000 ml 70%
乙醇回流提取,连续提取2次;渗漉组以70%乙醇渗漉提取,渗
漉速度控制在 10 ml/(min·kg)(kg为药材量)。每份药材的提
取总溶剂量均为2 000 ml,提取液稀释100倍后进样检测,根据
药材中落新妇苷的含量,计算提取转移率。结果,冷浸、回流、
渗漉 3种提取方式的平均提取转移率分别为 70.1%、87.9%、
95.3%(n=2),以渗漉提取的转移率最高。因此选择渗漉法提
取黄杞叶中的落新妇苷。
2.2.3 渗漉溶剂选择 称取 6份黄杞叶粉末,每份 100 g,每 2
份药材为 1组,各组药材分别以 60%、70%、80%乙醇浸泡 8 h
后进行渗漉提取。每份药材的提取总溶剂量均为2 000 ml,提
取液稀释 100倍后进样检测,根据药材中落新妇苷的含量,计
算提取转移率。结果,60%、70%、80%乙醇的平均提取转移
率分别为 93.9%、95.5%、90.1%(n=2)。故确定以 70%乙醇
为渗漉溶剂。
2.2.4 料液比选择 称取5份黄杞叶粉末,每份100 g,以药材
量 5、10、15、20、25倍(即料液比为 1 ∶ 5、1 ∶ 10、1 ∶ 15、1 ∶ 20、1 ∶
25,g/ml)体积的 70%乙醇浸泡 8 h后,进行渗漉提取,渗漉速
度为 30 ml/(min·kg),计算落新妇苷的提取转移率。结果,各
倍量下提取转移率分别为 75.2%、97.7%、98.5%、98.7%、
94.5%。为节约溶剂,选取中间水平的料液比1 ∶ 8、1 ∶ 12、1 ∶ 16
进行下一步考察。
2.2.5 浸泡时间选择 称取4份黄杞叶粉末,每份100 g,药材
浸泡4、8、16、24 h后以药材量10倍体积(ml)的70%乙醇进行
渗漉提取,渗漉速度为 30 ml/(min·kg),计算落新妇苷的提取
转移率,结果分别为80.0%、98.2%、98.5%、98.7%。为提高提
取效率,选取浸泡时间为8、16、24 h进行下一步考察。
2.2.6 渗漉速度选择 称取3份黄杞叶粉末,每份100 g,药材
浸泡8 h后以药材量10倍体积(ml)的70%乙醇进行渗漉提取,
渗漉速度分别为10、30、50 ml/(min·kg),计算落新妇苷的提取
转移率,结果分别为 98.5%、98.1%、80.7%。选取渗漉速度为
10、20、30 ml/(min·kg)进行下一步考察。
2.2.7 正交试验法优化渗漉条件 结合落新妇苷的提取转移
率,确定提取料液比(A)为1 ∶ 8、1 ∶ 12、1 ∶ 16,浸泡时间(B)为8、
16、24 h,渗漉速度(C)为 10、20、30 ml/(min·kg)进行正交试
验。因素与水平见表1。
表1 因素与水平
Tab 1 Factors and levels
水平
1
2
3
因素
A(料液比),g/ml
1 ∶ 8
1 ∶ 12
1 ∶ 16
B(浸泡时间),h
8
16
24
C(渗漉速度),ml/(min·kg)
10
20
30
D(空白)
1
2
3
称取9份黄杞叶粉末,每份100 g,各份药材进行正交试验
后取样检测,计算提取转移率。正交设计及试验结果、方差分
析结果分别见表2、表3。
由表2、表3可知,因素A有显著性,考虑试验效率和操作
的方便,优化的渗漉工艺确定为A3B1C3:渗漉前浸泡 8 h,以药
材量16倍的70%乙醇渗漉,渗漉速度控制在30 ml/(min·kg)。
称取3份黄杞叶粉末,每份100 g,各份药材按优化后的渗
漉条件进行提取。结果落新妇苷的提取转移率分别为97.8%、
98.0%、98.1%(RSD=0.16%,n=3),表明该渗漉提取工艺稳
定、可靠。
2.3 总黄酮纯化工艺
2.3.1 萃取除杂 由于落新妇苷等二氢黄酮苷具有一定的脂
溶性,故考虑采用有机溶剂萃取的方法来除去部分极性大的
杂质。
··3546
中国药房 2016年第27卷第25期 China Pharmacy 2016 Vol. 27 No. 25
表2 正交试验设计与结果
Tab 2 Orthogonal design and test results
试验号
1
2
3
4
5
6
7
8
9
K1
K2
K3
K1
K2
K3
R
A
1
1
1
2
2
2
3
3
3
2.323
2.696
2.804
0.774
0.899
0.935
0.160
B
1
2
3
1
2
3
1
2
3
2.693
2.651
2.480
0.898
0.884
0.827
0.071
C
1
2
3
2
3
1
3
1
2
2.541
2.620
2.661
0.847
0.873
0.887
0.040
D
1
2
3
3
1
2
2
3
1
2.664
2.610
2.549
0.888
0.870
0.850
0.038
提取转移率,%
80.7
79.4
72.3
90.4
95.7
83.4
98.2
90.0
92.2
表3 方差分析结果
Tab 3 Analysis results of variance
变异来源
A
B
C
D
离均差平方和
0.084 6
0.017 0
0.005 0
0.004 4
自由度
2
2
2
2
均方差
0.042 3
0.008 5
0.002 5
0.002 2
F
19.23
3.86
1.13
1
P
<0.05
注:F0.1(2,2)=9.00;F0.05(2,2)=19.00;F0.01(2,2)=99.00
Note:F0.1(2,2)=9.00;F0.05(2,2)=19.00;F0.01(2,2)=99.00
将黄杞叶渗漉液(5 kg药材加入80 L渗漉液)浓缩至无醇
味,再以水稀释至20 L[相当于0.25 g(生药)/ml]。加入同体积
的乙酸乙酯萃取,50℃加热破乳分层,重复萃取2次,第3次无
需加热。将 3次萃取液合并蒸干,得干膏 686.56 g(1 g干膏相
当于 7.28 g药材)。经检测得落新妇苷的含量由粗提物(未经
除杂)的 35%富集至 48%,提取物色泽较深,仍有进一步纯化
的必要。
2.3.2 萃取后再纯化 (1)树脂动态洗脱曲线的绘制。前期
研究表明,大孔树脂对落新妇苷的吸附和解析性能较好。取
AB-8大孔树脂40 ml(水中)装柱,以蒸馏水平衡。取黄杞叶萃
取后干膏适量,用水溶解至落新妇苷质量浓度约10 mg/ml,将
析出的沉淀过滤,滤液上样120 ml,再分别用水和10%、20%、
30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%的乙醇洗脱。色谱法
检测洗脱液中的落新妇苷的质量浓度,以确定洗脱剂乙醇体
积分数。AB-8大孔树脂的动态洗脱曲线见图1。
(2)树脂纯化 由动态洗脱曲线可知,当乙醇的体积分数
为 50%以上时落新妇苷的累积洗脱量几乎不再增大。因此,
采用 2.5倍柱体积(BV)的 50%乙醇进行复溶上样(树脂量约
为药材量的 5倍,V/m),之后用 50%乙醇洗脱,洗脱液与上样
流出液合并蒸干,称质量。经测定并计算得落新妇苷含量为
57.2%,总转移率(相对于药材)为84.3%。
萃取后再经树脂纯化所得的含落新妇苷的总黄酮中,落
新妇苷的含量接近60%,颜色微黄。
2.3.3 验证试验 取100 g黄杞叶样品,按上述确定的提取纯
化工艺制备 3批黄杞叶总黄酮,测定落新妇苷总转移率,结果
分别为 85.1%、85.3%、85.8%(RSD<2%)。3批总转移率相
近,表明该工艺稳定,可用于提取纯化黄杞叶中的总黄酮。
2.4 纯化后质量控制
2.4.1 含量测定 由于黄杞苷、花旗松素的紫外吸收特征与
落新妇苷基本一致,因此可在同一波长(290 nm)按“2.1.1”项
相同条件下对3个化合物进行测定。
(1)对照品溶液的制备。取落新妇苷、黄杞苷、花旗松素
对照品适量,精密称定,加甲醇充分溶解制成含落新妇苷、黄
杞苷、花旗松素质量浓度分别为0.579 0、0.177 2、0.135 2 mg/ml
的对照品贮备液各 25 ml;从中均分别精密量取 0.2、0.5、1.0、
1.5、2.0、2.5 ml,以甲醇稀释定容至 10 ml,制成各对照品的浓
度梯度溶液。(2)供试品溶液的制备。称取纯化后黄杞叶总黄
酮5 mg,精密称定,置于25 ml量瓶中,以甲醇充分溶解并定容
至刻度,过滤得供试品溶液。取落新妇苷、黄杞苷、花旗松素
对照品与供试品溶液进样分析,结果3个指标峰的纯度分别达
到999.408、999.209、998.653,色谱图见图2。
2.4.2 方法学考察 (1)线性关系考察。取落新妇苷、黄杞
苷、花旗松素对照品各浓度梯度溶液10 μl注入色谱仪,以质量
浓度(x)为横坐标、峰面积(y)为纵坐标绘制标准曲线,并进行
线性回归分析,结果见表4。
表4 3种对照品的线性关系考察
Tab 4 Linear relationship of 3 kinds of substance control
成分
落新妇苷
黄杞苷
花旗松素
回归方程
y=25.472 3x-1.517 9
y=19.764x+6.217 6
y=39.598 7x+6.594 6
r
0.999 8
0.999 9
0.999 9
线性范围,μg/ml
14.48~144.75
3.54~44.30
3.38~33.80
(2)定量限考察。分别取“2.4.1(1)”项下对照品溶液,等
倍逐步稀释,进样测定,记录峰面积。当信噪比为10 ∶ 1时,得
落新妇苷、黄杞苷、花旗松素的定量限分别为3.2、3.1、0.9 ng。
(3)精密度试验。分别精密吸取质量浓度为115.80 μg/ml
图1 动态洗脱曲线
Fig 1 Dynamic elution curves
3
2.5
2
1.5
1
0.5
0
0 50 100
乙醇体积分数,%




,m
g/
m
l
80
70
60
50
40
30
20
10
0





,%
落新妇苷质量浓度
落新妇苷洗脱转移率
图2 高效液相色谱图
1.落新妇苷;2.黄杞苷;3.花旗松素
Fig 2 HPLC chromatograms
1. astilbin;2.engeletin;3. taxifolin
35
30
25
20
15
10
5
0
1
m
A
U
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90
t,min
A.落新妇苷对照品
35
30
25
20
15
10
5
0
2
m
A
U
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90
t,min
B.黄杞苷对照品
35
30
25
20
15
10
5
0
3
m
A
U
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90
t,min
C.花旗松素对照品
80706050403020100
2
m
A
U
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90
t,min
D.供试品溶液
1
3
··3547
China Pharmacy 2016 Vol. 27 No. 25 中国药房 2016年第27卷第25期
的落新妇苷、8.64 μg/ml的黄杞苷和 6.76 μg/ml的花旗松素对
照品溶液 10 μl,各连续进样 6次,记录峰面积。结果 3种成分
峰面积的RSD分别为0.12%、0.21%、0.29%(n=6),表明仪器
精密度较好。
(4)重复性试验。按“2.4.1(2)”项下方法制备 6份供试品
溶液,进样分析。结果落新妇苷、黄杞苷、花旗松素的平均含
量分别为57.72%、3.35%、2.67%(RSD分别为0.31%、0.43%、
0.36%,n=6),表明该方法重复性较好。
(5)稳定性试验。精密称取“2.4.2(4)”项下供试品溶液10
μl,分别于制备后的0、3、6、9、12 h进样,记录峰面积。结果落
新妇苷、黄杞苷、花旗松素峰面积的 RSD分别为 0.72%、
0.85%、0.91%(n=5),表明供试品溶液在12 h内稳定。
(6)加样回收率试验。取已知含量的样品共 9份,每份 5
mg,精密称定,平均分为3组,各分别加入“2.4.1(1)”项下的落
新妇苷对照品贮备液 4.0、5.0、6.0 ml,黄杞苷和花旗松素对照
品贮备液各0.8、1.0、1.2 ml,以甲醇稀释定容至50 ml。进样测
定,计算加样回收率。结果,3种成分的平均回收率分别为
100.41%、97.54%、98.70%(RSD分别为0.94%、1.40%、2.88%,
n=3)。
2.4.3 样品含量测定 取“2.3.3”项下制备的 3批黄杞叶总黄
酮按“2.4.1(1)”项下方法制成供试品溶液,各精密吸取10 μl进
样分析,计算黄杞叶总黄酮中落新妇苷、花旗松素、黄杞苷的
含量,结果见表5。
表5 3批纯化后黄杞叶总黄酮中3种成分的含量测定结果
Tab 5 Content determination results of 3 effective compo-
nents in purified total flavonoids from 3 batches of E.
roxburghiana
批号
1
2
3
平均值
落新妇苷,%
57.72
57.87
58.22
57.94
黄杞苷,%
3.35
3.42
3.03
3.27
花旗松素,%
2.67
2.96
2.76
2.83
总含量,%
63.74
64.25
64.01
64.00
3 讨论
本研究提取的总黄酮中主要成分是二氢黄酮类化合物,
这也是黄杞总黄酮中的主要生物活性成分。落新妇苷在黄杞
叶药材中的含量达到了 8.06%,在黄杞总黄酮中的含量高达
50%以上,是黄杞叶中含量最为丰富的化合物。本试验以落
新妇苷以指标,不仅因为其含量最高,还因为其理化性质、极
性等与其他类二氢黄酮成分相似,可以用同样的方法提取纯
化得到。除此之外,采用高效液相色谱法测定落新妇苷的含
量比采用紫外-可见分光光度法测定总黄酮的含量具有更强的
专属性。
不同填料对落新妇苷的吸附解析性能差异较大,本研究
的前期工作完成了对聚酰胺(100目)、HPD-417、NKA-9、
AB-8、HPD-100、HPD-400、D101-I等吸附填料的静态、动态吸
附以及解吸附数据的比较,优选出了载样量大且指标成分能
够被中、低体积分数的乙醇洗脱完全的AB-8和NKA-9树脂。
考虑成本优势,最终在工艺研究中使用AB-8树脂纯化黄杞总
二氢黄酮。
黄杞叶粗提物的水溶性不佳,混悬液上样大孔树脂后,大
量固体析出阻塞树脂,不仅造成操作不便,更影响树脂的洗脱
效果。本试验增加了乙酸乙酯萃取这步操作,代替大孔树脂
的水洗或低体积分数醇洗步骤,以除去大极性杂质。萃取精
制后的提取物可用一定体积的中等体积分数(30%~60%)的
乙醇溶解澄清。根据树脂性能优选乙醇体积分数(50%)后,
可在保证二氢黄酮类成分被洗脱的同时,实现脱色除杂的目的。
随着对二氢黄酮类衍生物药理活性的深入研究,该类成
分的成药性前景逐渐受到更多关注。天然来源的二氢黄酮成
分具有储量丰富、立体选择性高的特点,成为新药开发的重要
资源。作为地方绿化树种的黄杞是获取落新妇苷等二氢黄酮
类成分的理想来源,其叶中的落新妇苷含量远高于以此为指
标成分的百合科菝葜属植物。黄杞可以落叶入药,适于持续
开发,成本低廉。
本研究通过对黄杞叶总黄酮制备纯化工艺研究,可获得
高纯度的总二氢黄酮。笔者曾采用紫外法测定了总黄酮的含
量,在确定的工艺条件下制备的黄杞总黄酮中,总黄酮的含量
为82.4%,落新妇苷、黄杞苷、花旗松素三者含量之和占总黄酮
的 77.7%;这与本试验采用高效液相色谱法测定的结果有一
定差异。
本试验可为二氢黄酮类成分的富集纯化以及该地方药材
品种的深入开发提供技术支持。
参考文献
[ 1 ] 王芬,张雪玲,李建绪.大孔树脂分离黄杞叶总黄酮的研
究[J].中国医药指南,2014,12(34):22.
[ 2 ] 张霞,傅旭春,白海波.广西地产黄杞叶指纹图谱研究[J].
中国现代应用药学,2014,31(1):54.
[ 3 ] 曲佳,周军,侯文彬,等. HPLC法测定黄杞叶中落新妇苷
和黄杞苷[J].中草药,2009,40(2):306.
[ 4 ] 孙彤,邓安珺,李志宏,等.黄杞叶中黄酮类化学成分的研
究[J].中国药学杂志,2012,47(20):1 617.
[ 5 ] 李翔,陈冠铭,王明强.我国代茶植物资源及其开发利用
现状[J].饮料工业,2008,11(2):4.
[ 6 ] 姚毅,周翔,陈婷.高效液相色谱法测定罗汉茶中落新妇
苷的含量[J].中国现代应用药学,2006,23(9):920.
[ 7 ] Chen TH,Liu JC,Chang JJ,et al. The in vitro inhibitory
effect of flavonoid astilbin on 3-hydroxy-3-methylglutaryl
coenzyme A reductase on vero cells[J]. Chinese Medical
Journal:Taipei,2001,64(7):382.
[ 8 ] Haraguchi H,Ohmi I,Fukuda A,et al. Inhibition of al-
dose reductase and sorbitol accumulation by astilbin and
taxifolin dihydroflavonols in Engelhardtia chrysolepis[J].
Bioscience,Biotechnology and Biochemistry,1997,61
(4):651.
[ 9 ] Chen T,Li J,Cao J,et al. A new flavanone isolated from
rhizoma smilacis glabrae and the structural requirements
of its derivatives for preventing immunological hepato-
cyte damage[J]. Planta Medica,1999,65(1):56.
[10] Zhang XX,Xiao XF,Shan Q,et al. Recent advance on
plant sources,bioactivities,pharmacological effects and
pharmacokinetic studies of taxifolin[J]. Asian Journal of
Pharmacodynamics and Pharmacokinetics,2010,10(1):
35.
[11] 周艳林,闵建国,王力生,等. TLC-生物自显影法导向分
离菝葜中抗氧化活性成分[J].中华中医药杂志,2012,27
(4):799.
[12] 国家药典委员会.中华人民共和国药典:一部[S]. 2015年
版.北京:中国医药科技出版社,2015:18.
[13] 蔡果,龚春燕,申国庆. HPLC法同时测定复方土茯苓胶
囊中落新妇苷和芦丁的含量 [J].中国药房,2012,23
(47):4 486.
(收稿日期:2016-04-12 修回日期:2016-05-23)
(编辑:刘 萍)
··3548