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不同激素配比对蜘蛛兰组织培养的影响



全 文 :基金项目 湖南省林业厅科技项目。
作者简介 田英翠(1974-),女,湖南湘西人,硕士,讲师,从事园林方
面的教学和研究工作。
收稿日期 2006!09!26
蜘蛛兰(HymenoCalissalisb)属石蒜科水鬼蕉属的球根
花卉,其观赏价值及经济价值都较高。但目前蜘蛛兰的生产
周期较长,其分球繁殖系数低,一些珍贵品种繁殖比较困
难,这都不利于蜘蛛兰的种植及应用。为此,笔者在相关研
究[1-6]的基础上进行组织培养研究,对推动其快速繁殖及生
产具有重要意义。
1 材料与方法
1.1 材料 试材采自长沙市鸿飞花卉公司提供的优良品
种蓝花蜘蛛兰(H.calathina)。
1.2 方法 采集蜘蛛兰鳞茎,用浓度为70%的酒精和0.1%
的氯化汞消毒获得无菌材料。以MS为基本培养基,设置6!
BA单因子,将 6!BA浓度分别设 1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、
15、20mg/L12个不同处理;采用6!BA配合NAA双因子,仍
以MS为基本培养基,将NAA浓度固定为2mg/L,6!BA浓
度分别为1、1.5、2、2.5、3mg/L5个不同处理;将 NAA浓度
固定为1mg/L,6!BA浓度分别为1、1.5、2、2.5、3mg/L5个不
同处理;以 LS为基本培养基,将 NAA浓度固定为 2mg/L,
6!BA浓度分别为 1、1.5、2、2.5、3mg/L5个不同处理;将
NAA浓度固定为 1mg/L,6!BA浓度分别为 1、1.5、2、2.5、3
mg/L5个不同处理;采用 NAA配合 6!BA双因子,以 LS为
基本培养基,将 6!BA浓度固定为1mg/L,NAA浓度分别为
1、1.5、2、2.5、3mg/L组合5个不同处理;以MS为基本培养
基,将6!BA浓度固定为2mg/L,NAA浓度分别为1、1.5、2、2.5、
3mg/L5个不同处理。以上各试验,附加3%的蔗糖,5g/L
的琼脂粉,调节pH值至 5.0~6.0,光照强度为 700~1000lx,
每日光照时间为12h左右,温度为23℃±2℃的环境条件下
进行培养定期检查并统计结果。
2 结果与分析
2.1 6!BA直接诱导再生植株
2.2.1 6!BA单因子对鳞茎诱导再生植株的影响(表1)。从
表1可以看出,用单因子6!BA诱导效果很不理想。浓度在
1~4mg/L时,诱导率在10%左右;当浓度大于 5mg/L时,第
10天培养基变黑,第 20天培养基黑色加深,不能继续诱导
分化不定芽,第30天后自然枯萎。总之,用6!BA单因子直
接诱导再生植株不可取。
2.2.2 6!BA配合 NAA双因子对鳞茎诱导再生植株的影
响。从表2可以看出,以MS为基本培养基,固定NAA浓度
2mg/L不变,随着 6!BA浓度增加,诱导不定芽数、诱导率、
叶数、叶长也逐渐增加。其中,MS+2mg/LNAA+2mg/L6!BA
组合诱导不定芽数为 5.9个,诱导率为 90.2%,叶数为 2.16
个,叶长为4.78cm,效果最好;固定NAA浓度1mg/L不变,
增加6!BA浓度,诱导效果同样逐渐增加,MS+1mg/LNAA+
2mg/L6!BA组合诱导效果最好,诱导率达88.6%。
在此基础上,针对蜘蛛兰的特性,调节基本培养基,以
LS为基本培养基,其结果见表3。从表3可以看出,固定
NAA浓度2mg/L不变,增加 6!BA浓度,其中,LS+2mg/L
NAA+2mg/L6!BA组合诱导不定芽数为 11.9个,诱导率
91.6%,叶数为 2.15个,叶长为 4.67cm,效果最好;固定
NAA浓度 1mg/L不变,随着 6!BA浓度增加,LS+1mg/L
NAA+2mg/L6!BA是直接诱导蜘蛛兰再生植株的最佳组
合,诱导率最高达93.7%。
2.2 NAA配合 6!BA双因子对鳞茎诱导再生植株的影
响(表 4) 从表 4可以看出,以 LS为基本培养基,固定 6!
BA浓度为 1mg/L不变,当增加生长素 NAA浓度时,LS+2
mg/LNAA+1mg/L6!BA组合诱导不定芽数为11.2个,诱导
率为91.8%,叶数为2.35个,叶长为4.97cm,效果最好。
调整基本培养基 LS培养基。为MS培养基,其结果见
表5。从表5可以看出,固定6!BA浓度2mg/L不变,NAA浓
(下转第6449页)
处理序号 浓度∥mg/L诱导不定芽数 诱导率∥% 叶数∥个 叶长∥cm
1 1 2.0 10.2 2.3 2.5
2 2 2.5 12.7 2.6 2.0
3 3 1.9 8.2 2.4 2.1
4 4 1.8 3.9 0.7 0.8
5 5 0 0
6 6 0 0
7 7 0 0
8 8 0 0
9 9 0 0
10 10 0 0
11 15 0 0
12 20 0 0
表1 6!BA(单因子)对鳞茎诱导再生植株的影响
处理
序号
NAA
mg/L
6!BA
mg/L
诱导不定
芽数∥个
诱导率
%
叶数

叶长
cm
1 2 1.0 2.7 57.6 1.13 1.97
2 1.5 3.6 62.6 1.18 3.76
3 2.0 5.9 90.2 2.16 4.78
4 2.5 3.9 70.7 1.87 3.50
5 3.0 3.4 69.2 1.84 3.20
6 1 1.0 2.1 54.3 1.08 1.78
7 1.5 3.0 67.5 1.15 2.10
8 2.0 4.6 88.6 1.17 2.50
9 2.5 3.5 74.2 1.21 3.20
10 3.0 3.7 73.6 1.54 3.10
表2 6!BA配合NAA(双因子)对鳞茎诱导再生植株的影响
注:基本培养基为MS培养基。表5同。
不同激素配比对蜘蛛兰组织培养的影响
田英翠,杨柳青 (中南林业科技大学,湖南长沙410004)
摘要 在组织培养过程中,以蜘蛛兰为试材,以鳞茎为外植体,研究不同激素配比对其直接诱导再生植株的影响。结果表明:MS+2
mg/L6!BA+2mg/LNAA是直接诱导鳞茎再生植株的最好组合;而LS+1mg/L6!BA+2mg/LNAA是直接诱导鳞茎再生植株的理想培养基。
关键词 蜘蛛兰;组织培养;6!BA;NAA
中图分类号 Q943.1 文献标识码 A 文章编号 0517-6611(2006)24-6445-01
安徽农业科学,JournalofAnhuiAgri.Sci.2006,34(24):6445,6449 责任编辑 姜 丽 责任校对 胡剑胜
DOI:10.13989/j.cnki.0517-6611.2006.24.025
度增加,诱导不定芽数、诱导率、叶数、叶长也逐渐增加,其
中,MS+2mg/LNAA+2mg/L6!BA组合诱导不定芽数为 5.9
个,诱导率为93.6%,叶数为6.8个,叶长为7.81cm,效果最好。
3 结论与讨论
在组织培养的过程中,以鳞茎为外植体,6!BA和NAA
不同浓度对蜘蛛兰直接诱导再生植株的影响非常大。以MS
为基本培养基时,6!BA单因子直接诱导再生植株,浓度不
能超过 5mg/L。6!BA和 NAA双因子以不同浓度配合时,
MS+2mg/L6!BA+2mg/LNAA是直接诱导鳞茎再生植株的
最好组合,而LS+1mg/L6!BA+2mg/LNAA是直接诱导鳞茎
再生植株的理想培养基。
参考文献
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处理序号 NAA
mg/L
诱导不定
芽数∥个
诱导率
%
叶数

叶长
cm
1 1.0 3.7 62.5 1.25 3.68
2 1.5 5.6 78.6 1.78 3.89
3 2.0 11.2 91.8 2.35 4.97
4 2.5 8.1 85.4 2.17 4.32
5 3.0 7.6 84.6 1.94 4.29
表4 NAA配合6!BA(双因子)对鳞茎诱导再生植株的影响
注:6!BA浓度为1mg/L。
处理
序号
NAA
mg/L
6!BA
mg/L
诱导不定
芽数∥个
诱导率
%
叶数

叶长
cm
1 2 1.0 3.5 64.5 1.29 3.65
2 1.5 4.9 84.3 1.73 3.79
3 2.0 11.9 91.6 2.15 4.67
4 2.5 7.8 79.6 2.07 4.52
5 3.0 7.2 73.2 1.98 4.25
6 1 1.0 5.6 67.3 1.58 4.12
7 1.5 7.5 88.4 2.17 3.95
8 2.0 14.6 93.7 2.36 4.67
9 2.5 9.0 81.2 2.01 4.21
10 3.0 8.6 80.3 2.06 4.32
表3 6!BA配合NAA(双因子)对鳞茎诱导再生植株的影响
注:基本培养基为LS培养基。表4同。
处理序号 NAA
mg/L
诱导不定
芽数∥个
诱导率
%
叶数

叶长
cm
1 1.0 2.7 56.9 4.30 4.80
2 1.5 3.3 69.8 5.2 5.87
3 2.0 5.9 93.6 6.8 7.81
4 2.5 3.9 77.5 5.3 5.90
5 3.0 3.7 76.3 5.2 5.89
注:6!BA浓度为2mg/L。
表5 NAA配合6!BA(双因子)对鳞茎诱导再生植株的影响(上接第6445页)
是唯一有关的蛋白酶水解系统[16]。
5 前景与展望
CAPN1引起肌肉中蛋白质的水解是导致宰后肌肉嫩
化及其增长的主要原因,这已成定论。从目前的研究来看,
CAPN1基因可以作为肌肉嫩度的侯选基因,但侯选基因多
态位点与性状间相关的研究还不够,而且有关的报道也不
多。CAPN1基因能否作为一个影响肉嫩度的侯选基因还需
要进一步研究。随着分子生物学技术的发展,标记辅助选择
(MAS)为解决这一问题提供了新的思路。选择与数量性状
位点(QTL)相连锁的分子遗传标记(基因或非基因标记),
通过这种基因的多态性分析进行基因型选择,提高选择的
准确性,将传统的和现代的分子遗传学方法结合起来进行
家禽的育种实践必将是今后畜禽育种的方向,也是快速改
良并培育优良畜禽品种(品系)的最佳途径。
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