全 文 ：农药学学报 2015，17(5) :616 － 621
Chinese Journal of Pesticide Science http:/ /www ． nyxxb． com． cn
收稿日期:2015-07-09;录用日期:2015-08-18．
作者简介:曹艳，女，硕士研究生;E-mail:756929806@ qq． com;* 姬志勤，通信作者 (Author for correspondence) ，男，副研究员，主要从事天
然产物化学研究，E-mail:jizhiqin@ nwsuaf． edu． cn
基金项目:国家自然科学基金资助项目(31371973，31301700) ;中央高校基本科研业务费专项(QN2013009)．
·研究简报· DOI:10. 3969 / j． issn． 1008-7303. 2015. 05. 17
冬青卫矛内生放线菌 Streptomyces flavofuscus G1
发酵液中抑菌活性成分研究
曹 艳， 魏少鹏， 姬志勤*
(西北农林科技大学 植物保护学院，陕西 杨凌 712100)
摘 要:从冬青卫矛内生放线菌 Streptomyces flavofuscus G1 的发酵液中分离得到化合物 G13 和
G19。经核磁共振波谱及质谱分析，并结合相关文献，两个化合物分别被鉴定为 phencomycin
(G13)和 4-deacetyl-(-)-griseusin A(G19)。抑菌活性测定结果表明:G19 对水稻白叶枯病菌
Xanthomonas oryzae pv ． oryzae、铜绿假单孢菌 Pseudomonas aeruginosa(1. 203 1)、蜡状芽孢杆菌
Bacillus cereus(1. 184 6)及金黄色葡萄球菌 Staphyloccocus aureus(1. 008 9)等供试病原细菌具有
强烈的抑制作用，其最低抑菌浓度(MIC)值均为 1. 56 μg /mL;对苹果树腐烂病菌 Valsa mali 和小
麦赤霉病菌 Fusarium graminearum 菌丝生长亦有明显的抑制作用，其 IC50值分别为 14. 70 和
24. 35 μg /mL。而 G13 对植物病原真菌油菜菌核病菌 Sclerotinia sclerotiorum 和苹果树腐烂病菌
V． mali菌丝生长有强烈的抑制作用，其 IC50值分别为 5. 21 和 4. 82 μg /mL。
关键词:冬青卫矛;内生菌;Streptomyces flavofuscus G1;抑菌活性
中图分类号:S482. 28 文献标志码:A 文章编号:1008-7303(2015)05-0616-06
Investigation on antimicrobial compounds from fermentation
broth of Streptomyces flavofuscus G1，an endophyte isolated
from Euonymus japonicas
Cao Yan， Wei Shaopeng， Ji Zhiqin*
(College of Plant Protection，Northwest A ＆ F University，Yangling 712100，Shaanxi Province，China)
Abstract:Two antimicrobial compounds，G13 and G19，were isolated from fermentation broth of
actinomycete Streptomyces flavofuscus G1，an endophyte isolated from Euonymus japonicas． The
structures of G13 and G19 were identified as phencomycin(G13)and 4-deacetyl-(-)-griseusin A
(G19) ，respectively，based on the 1H NMＲ and 13C NMＲ and ESI-MS data，as well as the published
literatures． G19 showed strong antibacterial activity against Xanthomonas oryzae pv ． oryzae，
Pseudomonas aeruginosa，Bacillus cereus and Staphylococcus aureuse，with minimum inhibitory
concentration (MIC)value of 1. 56 μg /mL． In addition，G19 could also effectively inhibit the
mycelial growth of plant pathogenic fungi Valsa mali and Fusarium graminearum，and the IC50 values
were 14. 70 and 24. 35 μg /mL，respectively． G13 exhibited strong antifungal activity against the
mycelial growth of Sclerotinia sclerotiorum and V． mali，with IC50 values of 5. 21 and 4. 82 μg /mL，
No． 5 曹 艳等:冬青卫矛内生放线菌 Streptomyces flavofuscus G1 发酵液中抑菌活性成分研究 617
respectively．
Keywords:Euonymus japonicas;endophytes;Streptomyces flavofuscus G1;antimicrobial activity
农用抗生素是现代农药的重要组成部分，从微
生物中寻找新型农用抗生素则是新农药创制的重要
途径之一［1］。植物内生菌(endophytes)是指在其生
活史的一定阶段或全部阶段生活于健康植物的各种
组织和器官内部的一类微生物，并且不会引起植物
组织出现明显的病变［2］。作为一种重要的微生物
类群，从植物内生菌次生代谢物中发现具有新颖分
子骨架的生物活性化合物，是近年来天然产物药物
研究的一个热点领域［3］。植物内生菌也是筛选抗
菌、杀虫和除草活性物质的一个重要资源［4–5］。在
从内生菌代谢物中寻找具有新的农药活性物质的研
究中，本课题组从冬青卫矛植株中分离出一株具良
好抗菌活性的菌株(编号:G1)。初步抑菌活性研究
表明，G1 菌株发酵液对多种病原菌具有良好的抑制
作用，为明确其发酵液的抑菌活性成分，本研究采用
大孔树脂吸附和硅胶柱层析等技术，从 G1 菌株发
酵液中分离出其主要抑菌活性成分为 G13 和 G19。
通过核磁共振波谱及质谱技术，结合相关文献对其
结构进行了鉴定，并对其抑菌活性进行了初步评价。
1 材料与方法
1. 1 供试材料
1. 1. 1 供试菌株 放线菌 G1，于 2014 年 9 月从西
北农林科技大学校园一株冬青卫矛根部分离获得，
初步鉴定为 Streptomyces flavofuscus G1，保存于西
北农林科技大学农药研究所。
1. 1. 2 培养基 高氏一号培养基(可溶性淀粉
20 g、NaCl 0. 5 g、KNO3 1. 0 g、K2HPO4·3H2O
0. 5 g、MgSO4·7H2O 0. 5 g、FeSO4·7H2O 0. 01 g、琼
脂 15. 0 g、纯净水 1 000 mL，pH值 7. 4 ～ 7. 6) ，用于
G1 菌株斜面及平板培养;小米液体培养基(小米
10. 0 g、葡萄糖 10. 0 g、氯化钠 2. 5 g、蛋白胨 3. 0 g、
碳酸钙 1. 0 g、硫酸铵 1. 0 g、纯净水 1 000 mL) ，用
于 G1 菌株摇瓶发酵;牛肉膏蛋白胨琼脂培养基(牛
肉膏 3. 0 g、蛋白胨 10. 0 g、氯化钠 5. 0 g、琼脂
15. 0 g、纯净水 1 000 mL，pH 值 7. 2 ～ 7. 4)和
Mueller-Hinton肉汤培养基(杭州大和微生物试剂
有限公司)用于病原细菌培养;PDA 培养基(马铃薯
200 g、葡萄糖 20. 0 g、琼 脂 15. 0 g、纯 净 水
1 000 mL)用于病原真菌培养。所有培养基均在
121 ℃、1 × 105 Pa高压下灭菌 30 min备用。
1. 1. 3 供试病原细菌 枯草芽孢杆菌 Bacillus
subtilis(1. 008 8)、蜡状芽孢杆菌 Bacillus cereus
(1. 184 6)、铜绿假单孢菌 Pseudomonas aeruginosa
(1. 203 1)、金黄色葡萄球菌 Staphyloccocus aureus
(1. 008 9 )、大 肠 埃 希 氏 菌 Escherichia coli
(1. 163 6) ，购自中国普通微生物菌种保藏管理中
心。白菜软腐病菌 Erwinia carotovora 和猕猴桃溃
疡病菌 Pseudomonas syringae pv． actinidiae，由西北
农林科技大学植物病理研究室提供;烟草青枯病菌
Ｒalstonia solanacearum，由西南大学植物保护学院
提供;水稻白叶枯病菌 Xanthomonas oryzae pv．
oryzae，由西北农林科技大学无公害农药研究中心
提供。将病原细菌接种于牛肉膏蛋白胨琼脂培养
基，于 37 ℃下培养 1 d。
1. 1. 4 供试病原真菌 番茄灰霉病菌 Botrytis
cinerea、小麦赤霉病菌 Fusarium graminearum、苹果
炭疽病菌 Colletotrichum gloeosporioides、玉米弯孢
病菌 Curvularia lunata、烟草赤星病菌 Alternaria
alternate、茄子黄萎病菌 Verticillium dahlia、西瓜枯
萎病菌 Fusarium oxysporum、苹果树腐烂病菌 Valsa
mali和油菜菌核病菌 Sclerotinia sclerotiorum，由西
北农林科技大学农药研究所提供;棉花枯萎病菌
Fusarium oxysporum f ． sp． vasinfectum，由西北农林
科技大学植物病理研究室提供。将病原真菌接种于
PDA 培养基，于 25 ℃下培养 3 ～ 7 d。
1. 1. 5 主要仪器及试剂 HPD-100 大孔吸附树脂，
河北宝恩树脂科技有限公司;甲醇(HPLC 级) ，美国
Tedia公司;柱层析硅胶(粒径 54 ～ 74 μm) ，青岛海
洋化工厂;氨苄青霉素(USP 级) ，国药集团化学试
剂有限公司;95%嘧菌酯(azoxystrobin)原药，先正
达(中国)投资有限公司;石油醚和乙酸乙酯均为市
售分析纯。
分析型 HPLC 系统:Shimadzu LC-6AD 高效液
相色谱仪，具二极管阵列检测器，日本岛津公司;
Bruker ＲPX 500 MHz 核磁共振仪，德国 Bruker 公
司;Thermo LCQ Advantage MAX 质谱仪，美国
Thermo 公司。
1. 2 试验方法
1. 2. 1 菌株鉴定 参照文献中的方法进行 G1 菌
株基因组 DNA 的提取，并以此为模板进行 PCＲ 扩
增、扩增产物纯化后测序，利用 16S rDNA 序列对比
618 农 药 学 学 报 Vol． 17
分析对其进行分类鉴定［6］。
1. 2. 2 种子液制备 将 G1 菌株接种于高氏一号
培养基上，于 25 ℃下培养 7 d，接种于 100 mL 小米
液体培养基中，于 180 r /min、28 ℃下振荡培养16 h。
1. 2. 3 发酵液制备 将 20 mL 种子液接种于
80 mL 小米液体培养基中，于 180 r /min、28 ℃下振
荡培养 7 d。
1. 2. 4 活性成分的分离及鉴定 将 20 L 发酵液用
多层纱布过滤后经大孔吸附树脂 HPD-100(1. 0 kg)
吸附，甲醇(3. 0 L)解析，将甲醇解析液减压浓缩至
约 200 mL，浓缩液用少量硅胶拌匀晾干后进行硅胶
柱层析，依次用 V(石油醚)∶ V(乙酸乙酯)= 8∶ 1、
6∶ 1、4∶ 1、2∶ 1、1∶ 1，乙酸乙酯，V(乙酸乙酯)∶ V(甲
醇)= 8 ∶ 1、6 ∶ 1、4 ∶ 1、2 ∶ 1、1 ∶ 1及甲醇梯度洗脱，每
100 mL 收集 1 份，经薄层层析(TLC)检测后合并相
同组分，共得 7 个组分:Fr． 1 (11 mg)、Fr． 2
(90 mg)、Fr． 3(48 mg)、Fr． 4(244 mg)、Fr． 5(291
mg)、Fr． 6(356 mg)和 Fr． 7(387 mg) ，其中 Fr． 3 和
Fr． 4 具有较强的抑菌活性。经 HPLC 检测发现 Fr．
3 为纯化合物，标记为化合物 G13(48 mg) ;Fr． 4 经
进一步硅胶柱层析纯化，得化合物 G19(39mg)。
1. 2. 5 抑菌活性测定
1. 2. 5. 1 对病原细菌的抑制作用 采用肉汤微量
稀释法［7］。从琼脂培养基中挑取 4 ～ 5 个相同形态
的供试菌菌落，接入 1. 0 mL 灭菌的 Mueller-Hinton
肉汤中，于 35 ℃下培养至轻度混浊后转入 0. 9%生
理盐水中，调整到麦氏浊度为 0. 5，再用 Mueller-
Hinton 肉汤稀释 200 倍，其接种量相当于 7. 5 ×
105 CFU /mL。将稀释好的接种液转入 96 孔板中，
每孔加接种液 100 μL，再分别加入 100 μL 不同质
量浓度的药液，使最终浓度分别为 100、50、25、
12. 5、6. 25、3. 13、1. 56、0. 78 和 0. 39 μg /mL，每板
另设不加药剂的空白对照、氨苄青霉素(ampicillin)
阳性对照和加药不接菌阴性对照。每处理重复
3 次。于 35 ℃下培养 20 h，记录药剂对供试细菌的
最低抑菌浓度(MIC)。
1. 2. 5. 2 对病原真菌的抑制作用 采用菌丝生长
速率法［8］。准确称取 10 mg 待测化合物，先用
500 μL 二甲基亚砜(DMSO)溶解后，用无菌水配制
成 10 mg /mL 的母液，再用无菌水梯度稀释得到系
列浓度药液。将 1. 0 mL 不同质量浓度的供试药液
与 9. 0 mL 融化的 PDA 培养基混匀，倒入无菌培养
皿中制成带药培养基平板。待培养基凝固后，接入
直径为 4 mm 的菌饼，菌丝面朝下。以嘧菌酯
(azoxystrobin)作为阳性对照。每处理设 3 次重复。
于 25 ℃恒温箱中培养 72 ～ 96 h，用十字交叉法测量
菌落生长直径，按(1)式计算菌丝生长抑制率。
菌丝生长抑制率 /% =［(对照菌落直径 －处理
菌落直径)/(对照菌落直径 －菌饼直径) ］× 100
(1)
所得数据用 SPSS 软件求出毒力回归方程及抑
制中浓度(IC50值) ，并进行相关性分析。
2 结果与分析
2. 1 G1 菌株的分类鉴定
序列分析结果表明，菌株 G1 的 16S rDNA 序列
长度为 1 457 bp，将该序列上传至 NCBI GenBank，
获得登记号 KT252874，与 GenBank 中的序列进行
相似性比较发现，其与 Streptomyces flavofuscus
(EU593623. 1)的亲缘关系最近，因此初步鉴定其为
Streptomyces flavofuscus G1。
2. 2 活性成分分离及结构鉴定
以活性追踪为指导，经大孔吸附树脂吸附，甲醇
解析，硅胶柱层析等方法从菌株 S． flavofuscus G1
发酵液中分离鉴定出 2 个活性化合物 G13(48 mg)
和 G19(39 mg)。
G13，黄色结晶，熔点:260. 1 ～ 262. 4 ℃(文献
值［9］:263 ℃) ;UV (λMeOH) :251，365 nm;ESI-MS:
［M + H］+，m/z 283，相对分子质量为 282。1H NMＲ
(CDCl3，500 MHz) ，δ:4. 13 (s，3H) ，8. 01 ～ 8. 08
(m，2H) ，8. 35 (d，J = 7. 0 Hz，1H) ，8. 40 (d，J =
7. 0 Hz，1H) ，8. 60 (dd，J = 1. 0，7. 5 Hz，1H) ，
9. 00 (dd，J = 1. 0，7. 5 Hz，1H) ，15. 17 (br s，
1H) ;1 3C NMＲ (CDCl3，125 MHz) ，δ:52. 9，125. 1，
130. 8，131. 5，131. 8，132. 1，133. 0，135. 7，138. 2，
139. 3，140. 0，141. 5，143. 6，165. 5，166. 2。1H、13 C
NMＲ 数据与 Chatterjee 等［10］报道的 phencomycin
基本一致，故将化合物 G13 鉴定为 phencomycin(图
式 1)。
G19，橘黄色粉末，熔点:169. 4 ～ 171. 2 ℃ (文
献值［11］:172 ～ 174 ℃) ; ［α］ D
24 = － 201(c0. 1，
MeOH) ［文献值［11］［α］D
24 = － 198(c0. 1，MeOH) ］;
UV (λMeOH) :252，430 nm;ESI-MS: ［M + H］
+，m/z
403，相对分子质量为 402。1H NMＲ (CDCl3，
500 MHz) ，δ:1. 25 (d，J = 6. 0 Hz，3H) ，1. 94 ～
1. 96 (m，1H) ，2. 07 ～ 2. 08 (m，1H) ，2. 61 ～ 2. 62
(m，1H) ，2. 70 ～ 2. 72 (m，1H) ，2. 75 ～ 2. 76 (m，
1H) ，3. 03 (dd，J = 5. 0，18. 0 Hz，1H) ，4. 16 ～ 4. 18
No． 5 曹 艳等:冬青卫矛内生放线菌 Streptomyces flavofuscus G1 发酵液中抑菌活性成分研究 619
图式 1 化合物 phencomycin (G13)和 4-deacetyl-
(－)-griseusins A (G19)的结构
Scheme 1 Structure of phencomycin (G13)and
4-deacetyl-(-)-griseusins A (G19)
(m，1H) ，4. 22 ～ 4. 23 (m，1H) ，4. 82 ～ 4. 84 (m，
2H) ，5. 27 (d，J = 2. 5 Hz，1H) ，7. 27 ～ 7. 29 (m，
1H) ，7. 62 (d，J = 4. 5 Hz，2H) ，11. 9 (s，1H) ;
1 3C NMＲ (CDCl3，125 MHz) ，δ:20. 6，36. 4，39. 1，
62. 7，66. 4，68. 1，68. 3，68. 7，98. 5，115. 4，119. 4，
125. 4，131. 2，136. 9，138. 4，143. 1，162. 1，174. 0，
181. 8，187. 4。1H、13C NMＲ 数据与 Igarashi 等［11］报
道的 4-deacetyl-(－)-griseusins A 基本一致，故将
化合物 G19 鉴定为 4- deacetyl-(－)-griseusins A
(图式 1)。
2. 3 化合物的抑菌活性
2. 3. 1 对病原细菌的抑制作用 由表 1 可以看出:
化合物 G19 对 9 种供试病原细菌均有明显的抑制
作用，对水稻白叶枯病菌、铜绿假单孢菌、蜡状芽孢
杆菌及金黄色葡萄球菌的抑菌活性尤为突出，其
MIC 值均为 1. 56 μg /mL;而化合物 G13 仅有微弱
的抗细菌活性。
表 1 化合物 G13 和 G19 对 9 种供试病原细菌的MIC值
Table 1 MIC values of G13 and G19 against nine strains of bacteria
供试病原细菌
Tested bacteria
最低抑菌浓度 MIC /(μg /mL)
G1-13 G1-19 氨苄青霉素钠 ampicillin
大肠埃希氏菌 E． coli 100 12. 5 3. 13
水稻白叶枯病菌 X． oryzae pv． oryzae 50 1. 56 6. 25
铜绿假单孢菌 P． aeruginosa ＞ 100 1. 56 ＞ 100
猕猴桃溃疡病菌 P． syringae pv． actinidiae 100 6. 25 12. 5
烟草青枯病菌 Ｒ． solanacearum 100 3. 13 12. 5
白菜软腐病菌 E． carotovora ＞ 100 50 6. 25
蜡状芽孢杆菌 B． cereus 50 1. 56 6. 25
枯草芽孢杆菌 B． subtilis ＞ 100 50 1. 56
金黄色葡萄球菌 S． aureus 100 1. 56 6. 25
2. 3. 2 对病原真菌的抑制作用 由表 2 可以看
出:化合物 G13 对油菜菌核病菌和苹果树腐烂病
菌菌丝生长有强烈的抑制作用，在 50 μg /mL 下
抑制率分别为 94. 7% 和 87. 5%;对番茄灰霉病
菌抑菌活性次之，抑制率为 57. 1%。化合物 G19
对苹果树腐烂病菌、小麦赤霉病菌和玉米弯孢病
菌菌丝生长的抑制效果较明显，在 50 μg /mL 下
抑制率分别为 70. 8%、60. 0% 和 54. 2%。进一
步毒力测定结果(表 3)表明:化合物 G13 对油菜
菌核病菌、苹果树腐烂病菌和番茄灰霉病菌 IC50
值分别为 5. 21、4. 82 和 41. 56 μg /mL;化合
物 G19对苹果树腐烂病菌、小麦赤霉病菌和
玉米弯孢病菌的 IC50值分别为 14. 70、24. 35 和
32. 35 μg /mL。
3 讨论
Phencomycin最初由 Chatterjee等［10］于 1995 年
从印度土壤放线菌 Streptomyces sp． HIL Y-9031725
代谢产物中首次分离获得。抑菌研究结果表明:
Phencomycin 对革兰氏阳性细菌表现出较弱的活
性，且无任何抗真菌活性;1997 年，德国学者
Pusecker等［9］从一株海洋链霉菌发酵液中再次分离
到该化合物，仅测定了其对两种革兰氏阳性菌的抑
菌活性;2009 年，我国学者韩晓等［12］从经核糖体工
程改造的野生放线菌菌株代谢物中分离得到
phencomycin，并研究了其抗肿瘤活性;2014 年，韩国
学者 Han等［13］从 Burkholderia glumae strain 411 gr-
6 代谢产物中分离到该化合物，评价了其对革兰氏
620 农 药 学 学 报 Vol． 17
阳性细菌抑菌活性。本研究首次从冬青卫矛内生放
线 菌 Streptomyces flavofuscus G1 分 离 获 得
phencomycin，系统评价了其对多种农用致病细菌和
致病真菌的抑菌活性，结果表明，phencomycin 对油
菜菌核病菌和苹果树腐烂病菌的菌丝生长具有强烈
抑制作用，但对供试细菌仅表现出微弱的抑菌活性。
表 2 化合物 G13 和 G19 对 10 种供试病原真菌菌丝生长的抑制作用(50 μg /mL)
Table 2 Inhibition of G13 and G19 against the mycelial growth of ten tested fungi (50 μg /mL)
供试病原真菌
Tested fungi
抑制率 Inhibition rate /%
G13 G19 嘧菌酯 azoxystrobin
番茄灰霉病菌 B． cinerea 57. 1 47. 6 85. 7
苹果树腐烂病菌 V． mali 87. 5 70. 8 100. 0
小麦赤霉病菌 F． graminearum 35. 0 60. 0 80. 0
玉米弯孢病菌 C． lunata 37. 5 54. 2 58. 3
烟草赤星病菌 A． alternate 33. 3 23. 8 71. 4
茄子黄萎病菌 V． dahliae 31. 6 31. 6 52. 6
油菜菌核病菌 S． sclerotiorum 94. 7 52. 6 100. 0
西瓜枯萎病菌 F． oxysporum 25. 0 25. 0 75. 0
苹果炭疽病菌 C． gloeosporioides 29. 4 29. 4 94. 1
棉花枯萎病菌 F． oxysporum f． sp． vasinfectum 29. 4 17. 7 58. 8
表 3 化合物 G13 和 G19 对供试病原真菌毒力
Table 3 Toxicity of G13 and G19 against tested fungi
化合物
Compounds
供试真菌
Pathogenic fungi
回归方程
Ｒegression equation Ｒ
2 IC50(95% CL)/
(μg /mL)
G-13 苹果树腐烂病菌 V． mali y = － 0. 69 + 1. 07x 0. 991 4. 82(2. 11 ～ 7. 65)
番茄灰霉病菌 B． cinerea y = － 2. 45 + 1. 51x 0. 993 41. 56(28. 20 ～ 71. 73)
油菜菌核病菌 S． sclerotiorum y = － 1. 21 + 1. 69x 0. 993 5. 21(2. 63 ～ 7. 80)
G-19 苹果树腐烂病菌 V． mali y = － 1. 15 + 0. 98x 0. 997 14. 70(8. 04 ～ 24. 96)
玉米弯孢病菌 C． lunata y = － 1. 20 + 0. 80x 0. 996 32. 35(17. 46 ～ 91. 51)
小麦赤霉病菌 F． graminearum y = － 1. 13 + 0. 81x 0. 995 24. 35(12. 16 ～ 63. 61)
嘧菌酯
azoxystrobin
苹果树腐烂病菌 V． mali y = － 0. 85 + 1. 84x 0. 985 2. 91(2. 09 ～ 4. 80)
番茄灰霉病菌 B． cinerea y = － 2. 41 + 1. 97x 0. 981 17. 12(12. 45 ～ 24. 87)
油菜菌核病菌 S． sclerotiorum y = － 0. 64 + 1. 98x 0. 996 2. 13(1. 52 ～ 3. 33)
玉米弯孢病菌 C． lunata y = － 1. 27 + 0. 88x 0. 993 27. 76(15. 81 ～ 61. 85)
小麦赤霉病菌 F． graminearum y = － 2. 66 + 2. 00x 0. 991 21. 87(15. 77 ～ 33. 72)
4-Deacetyl-(－)-griseusin A 最初由日本学者
Igarashi等［11］于 1995 年从放线菌 MJ932-SF3 的发
酵液中分离得到，并报道了其抑菌活性，发现其对革
兰氏阳性菌具有良好的抑制作用。2009 年，土耳其
学者 Urgen 等［14］ 从 Streptomyces griseus strain
M-33-5 的代谢产物中再次分离到该化合物，报道其
对两种革兰氏阳性细菌和两种肿瘤细胞表现出显著
的抑制效果。4-deacetyl-(－)-griseusin A 对植物
病原菌抑菌活性的研究未见报道。本研究结果表
明，4-deacetyl-(－)-griseusin A 对供试 10 种病原
真菌具有一定的抑制作用，其对苹果树腐烂病菌和
小麦赤霉病菌菌丝生长的抑制效果尤为突出;对水
稻白叶枯病菌、铜绿假单孢菌、蜡状芽孢杆菌、金黄
色葡萄球菌及烟草青枯病菌均有强烈的抑制作用。
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(责任编辑:金淑惠)