全 文 ：ＤＯＩ：ＣＮＫＩ：４６－１０４９／Ｒ．２０１１１２２３．１２２９．０１９
网络出版地址：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｎｋｉ．ｎｅｔ／ｋｃｍｓ／ｄｅｔａｉｌ／４６．１０４９．Ｒ．２０１１１２２３．１２２９．０１９．ｈｔｍｌ
［收稿日期］２０１１－１２－０８　　［修回日期］２０１１－１２－２０　　网络出版时间：２０１１－１２－２３　１２：２９
［基金项目］海南省教育厅高等学校科学研究资助项目（Ｈｊｋｊ２０１０－３６）
［作者简介］王勇（１９８２－），男，硕士，药学与中药学实验师，电话：０８９８－３１３５０７７３，电子信箱：ｗａｎｇｙｏｎｇ１９８２＿２００４＠ｙａｈｏｏ．ｃｏｍ．ｃｎ。
高效液相色谱法测定海南香茅中绿原酸的含量
王　勇，魏　娜，董静静
（海南医学院药学院，海南 海口　５７１１０１）
　　［摘要］目的：建立海南香茅中绿原酸的高效液相色谱含量测定方法。方法：采用高效液相色谱法，ｐｈｅ－
ｎｏｍｅｎｏｘ　ｌｕｎａ　Ｃ１　８ 色谱柱（２５０ｍｍ ×４．６ｍｍ，５μｍ），以乙腈－水－冰醋酸（１２∶８８∶１）为流动相，流速
为１．０ｍＬ／ｍｉｎ，检测波长为３２７ｎｍ。结果：绿原酸在０．１６６　４～１．６６４　０μｇ范围内，峰面积与绿原酸
的进样质量呈良好线性关系，线性方程为Ｙ＝１　３３４　２６７．８　Ｘ－２　３９２．２（ｒ＝０．９９９　９），平均回收率为
１０１．５８％，ＲＳＤ为１．８４％。结论：建立的高效液相色谱测定法简便、快速，重复性好，准确度高，可作为
香茅药材的质量控制方法。
［关键词］香茅；绿原酸；含量；高效液相色谱法
［中图分类号］Ｒ２８４．１；Ｏ６５７．７２　［文献标识码］Ｂ　［文章编号］１００７－１２３７（２０１２）０４－０４４５－０３
Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｈｅｒｂ　ｏｆ　Ｃｙｍｂｏｐｏｇｏｎ　ｃｉｔｒｕｓ　ｆｒｏｍ　Ｈａｉｎａｎ　ｂｙ　ＨＰＬＣ
ＷＡＮＧ　Ｙｏｎｇ，ＷＥＩ　Ｎａ，ＤＯＮＧ　Ｊｉｎｇ－ｊｉｎｇ
（Ｓｃｈｏｏｌ　ｏｆ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｈａｉｎａｎ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｈａｉｋｏｕ　５７１１０１，Ｃｈｉｎａ）
［Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ　Ｐｒｏｊｅｃｔ］：Ｈｉｇｈｅｒ　Ｓｃｈｏｏｌ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｆｕｎｄｅｄ　Ｐｒｏｊｅｃｔ　ｏｆ　Ｈａｉｎａｎ　Ｐｒｏｖｉｎｃｉａｌ　Ｅｄｕｃａｔｉｏｎ　Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ
（Ｈｊｋｊ２０１０－３６）
［Ａｕｔｈｏｒ］：ＷＡＮＧ　Ｙｏｎｇ （１９８２－），Ｍａｌｅ，Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｉｓｔ，Ｍ．Ｍ．，Ｔｅｌ：０８９８－３１３５０７７３，Ｅ－ｍａｉｌ：
ｗａｎｇｙｏｎｇ１９８２＿２００４＠ｙａｈｏｏ．ｃｏｍ．ｃｎ．
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ：２０１１－１２－０８　　Ｒｅｖｉｓｅｄ：２０１１－１２－２０　 ＪＨＭＣ，２０１２；１８（４）：４４５－４４７
Ｖｉｅｗ　ｆｒｏｍ　ｓｐｅｃｉａｌｉｓｔ：Ｉｔ　ｉｓ　ｃｒｅａｔｉｖｅ，ａｎｄ　ｏｆ　ｃｅｒｔａｉｎ　ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　ａｎｄ　ｅｄｕｃａｔｉｏｎａｌ　ｖａｌｕｅ．
［ＡＢＳＴＲＡＣＴ］Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：Ｔｏ　ｅｓｔａｂｌｉｓｈ　ａ　ｍｅｔｈｏｄ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｈｅｒｂ
ｏｆ　Ｃｙｍｂｏｐｏｇｏｎ　ｃｉｔｒｕｓ　ｆｒｏｍ　Ｈａｉｎａｎ　ｂｙ　ＨＰＬＣ．Ｍｅｔｈｏｄｓ：ＨＰＬＣ　ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｃａｒｒｉｅｄ　ｏｕｔ　ｏｎ　ａ　ｐｈｅ－
ｎｏｍｅｎｏｘ　ｌｕｎａ　Ｃ１　８ｃｏｌｕｍｎ（２５０ｍｍ×４．６ｍｍ，５μｍ）ｗｉｔｈ　ａｃｅｔｏｎｉｔｒｉｌｅ－ｗａｔｅｒ－ａｃｅｔｉｃ　ａｃｉｄ（１２∶８８∶１）ａｓ
ｍｏｂｉｌｅ　ｐｈａｓｅ　ａｔ　ａ　ｆｌｏｗ　ｒａｔｅ　ｏｆ　１．０ｍＬ／ｍｉｎ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　ｗａｖｅｌｅｎｇｔｈ　ｗａｓ　ｓｅｔ　ａｓ　２４０ｎｍ．Ｒｅｓｕｌｔｓ：Ｔｈｅｒｅ
ｗａｓ　ｇｏｏｄ　ｌｉｎｅａｒ　ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ　ｆｏｒ　ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒａｎｇｅ　ｏｆ　０．１６６　４－１．６６４　０μｇ．Ｔｈｅ　ｌｉｎｅａｒｉｔｙ　ｅｑｕａｔｉｏｎ
ｗａｓ　Ｙ＝１　３３４　２６７．８　Ｘ－２　３９２．２（ｒ＝０．９９９　９）．Ｔｈｅ　ａｖｅｒａｇｅ　ｒｅｃｏｖｅｒｙ　ｗａｓ　１０１．５８％ａｎｄ　ＲＳＤ　ｗａｓ　１．８４％．
Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎｓ：Ｔｈｅ　ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ　ｍｅｔｈｏｄ　ｉｓ　ｓｉｍｐｌｅ，ｑｕｉｃｋ，ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｌｅ　ａｎｄ　ａｃｃｕｒａｔｅ，ｗｈｉｃｈ　ｃａｎ　ｂｅ　ｕｓｅｄ　ｆｏｒ　ｔｈｅ
ｑｕａｌｉｔｙ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｏｆ　Ｃｙｍｂｏｐｏｇｏｎ　ｃｉｔｒｕｓ．
［ＫＥＹ　ＷＯＲＤＳ］Ｃｙｍｂｏｐｏｇｏｎ　ｃｉｔｒｕｓ；Ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ；Ａｓｓａｙ；ＨＰＬＣ
　　香茅为禾本科香茅属植物香茅Ｃｙｍｂｏｐｏｇｏｎ
ｃｉｔｒａｔｕｓ（ＤＣ．）Ｓｔａｐｆ的干燥全草，具有抑菌、消炎、
抗病毒、抗氧化、降压、免疫调节与肿瘤抑制等药理
活性，其主要成分有挥发油类成分如柠檬醛、月桂烯
等，黄酮类成分如芹菜素、山奈酚、槲皮素、木樨草素
等，苯丙素类化合物如绿原酸、咖啡酸、对羟基桂皮
酸等［１］。近年来药理学研究表明绿原酸具有抗氧
化、抗肿瘤、抗病毒、免疫调节及降糖等多种作用［２］，
与香茅全草的药理作用具有一定相关性，可能是其
发挥药理活性的主要成分之一。目前关于香茅化学
５４４
海南医学院学报　２０１２，１８（４）
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｈａｉｎａｎ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ
　
DOI:10.13210/j.cnki.jhmu.2012.04.003
成分尤其是水溶性成分质量控制的文献报道较少，
本实验采用高效液相色谱法对香茅药材中的绿原酸
含量进行测定，以期为香茅药材的质量控制提供参
考。
１　仪器与试药
ＬＣ－６ＡＤ高效液相色谱仪，配以ＬＣ－１０ＡＤｖｐ紫
外检测器（日本岛津仪器公司），Ｎ２０００色谱工作站
（浙江智达有限公司），ＡＵＷ２２０Ｄ电子分析天平（日
本岛津仪器公司），ＪＡＳＣＯ紫外可见分光光度计（日
本分光光度仪器公司），ＳＫ５２００ＬＨＣ超声波清洗器
（上海科导超声仪器有限公司），手提式多功能粉碎
机（上海广沙工贸有限公司）。
３批 香 茅 药 材 （批 号 ２０１００７１２、２０１００８１５、
２０１１０８０３）均购自海南凤生香草园，经海南医学院药
学院药用植物学与生药学教研室曾念开副教授鉴定
为禾本科香茅属植物Ｃｙｍｂｏｐｏｇｏｎ　ｃｉｔｒａｔｕｓ（ＤＣ．）
Ｓｔａｐｆ的干燥全草；乙腈（Ｔｅｄｉａ公司）为色谱纯，水
为超纯水，甲醇、冰醋酸均为分析纯，绿原酸对照品
（批号：１１０７５３－２００４１３）由中国药品生物制品检定所
提供。
２　方法与结果
２．１　溶液的配制
２．１．１　对照品溶液的制备　取经减压干燥１２ｈ后
的绿原酸对照品适量，置２５ｍＬ棕色量瓶中，加
５０％甲醇超声使溶解，配成浓度为０．０８３　２ｍｇ／ｍＬ
的溶液，摇匀，过０．４５μｍ微孔滤膜，续滤液作为对
照品溶液。
２．１．２　供试品溶液的制备　取香茅药材适量，低温
干燥后粉碎，过４０目筛。取药材粉末２　ｇ，精密称定，
置具塞锥形瓶中，精密加入２５　ｍＬ５０％甲醇，称重，
超声提取４５　ｍｉｎ，放冷，用５０％甲醇补足减失的重
量，摇匀，滤过，取续滤液过０．４５μｍ 微孔滤膜，即
得。
２．２　检测波长的选择
取绿原酸对照品溶液适量，加５０％甲醇稀释
后，在２００～４００ｎｍ波长范围内扫描，结果绿原酸
对照品在３２７ｎｍ处有最大吸收（图１），因此，确定
其检测波长为３２７ｎｍ。
图１　 绿原酸对照品溶液紫外扫描图
２．３　色谱条件与系统适用性试验
色谱柱为ｐｈｅｎｏｍｅｎｏｘ　ｌｕｎａ　Ｃ１　８（２５０ｍｍ ×
４．６ｍｍ，５μｍ ），流动相为乙腈－水－冰醋酸（１２∶
８８∶１），流速：１．０ｍＬ／ｍｉｎ，检测波长：３２７ｎｍ，进
样量１０μＬ。在此条件下供试品溶液中绿原酸与相
邻色谱峰的分离度大于１．５，对照品与供试品溶液
色谱图中理论塔板数按绿原酸计分别为１０　３７３、１１
３５９，拖尾因子分别为１．０６５、１．０６６。对照品与供试
品溶液色谱图如图２Ａ、Ｂ所示。
　　　　　　　　　　Ａ　 Ｂ
图２　对照品（Ａ）与供试品（Ｂ）溶液的ＨＰＬＣ图
６４４ 　海南医学院学报 Ｖｏｌ．１８Ｎｏ．４Ａｐｒ．２０１２
２．４　线性关系的考察
分别精密吸取对照品溶液２、４、８、１０、１６、２０μＬ
进样，记录绿原酸峰面积，结果如表１所示，以峰面
积对进样量进行线性回归，回归方程为：Ｙ＝１　３３４
２６７．８　Ｘ－２　３９２．２（ｒ＝０．９９９　９）。结果表明绿原
酸进样量在０．１６６　４～１．６６４　０μｇ范围内，与峰面积
呈良好线性关系。
２．５　精密度试验
取对照品溶液１０μＬ，连续进样６次，记录色谱
图峰面积值。绿原酸峰面积ＲＳＤ为０．６０％，表明
该方法精密度良好。
２．６　重复性试验
取同一批号样品（２０１１０８０３），按“２．１项”中供
试品溶液制备方法制备６份供试品溶液，分别进样
１０μＬ，记录色谱图峰面积值，按外标法计算绿原酸
含量。绿原酸含量的ＲＳＤ值为１．０８％，表明该方
法重复性良好。
２．７　稳定性试验
取同一供试品溶液分别于配制后０、１、２、４、６、８
ｈ 进 样 １０ μＬ，测 得 绿 原 酸 峰 面 积 的 ＲＳＤ
为１．３２％，表明供试品溶液在８ｈ内稳定性良好。
２．８　加样回收率试验
取已 知 含 量 的 香 茅 药 材 粉 末 （绿 原 酸 含
量０．７５１ｍｇ／ｇ）６份，每份约１ｇ，精密称定，分别精
密加入绿原酸对照品溶液（０．８１２ｍｇ／ｍＬ）１．０ｍＬ，
按“２．１项”中供试品溶液制备方法制备溶液。在
“２．３项”色谱条件下进样１０μＬ，记录色谱图峰面积
值，计算回收率，结果见表２，平均回收率为１０１．
５８％，ＲＳＤ为１．８４％。
表１　线性关系测定结果
１　 ２　 ３　 ４　 ５　 ６
进样量（μｇ） ０．１６６　４　 ０．３３２　８　 ０．６６５　６　 ０．８３２　０　 １．３３１　２　 １．６６４　０
峰面积 ２１１　６６１．５　 ４３８　５８６．５　 ８９９　８６９．５　 １　１０９　５５６　 １　７７４　７９４　 ２　２１１　８４５
表２　绿原酸加样回收率试验（ｎ＝６）
Ｎｏ
称样量
（ｇ）
样品含量
（ｍｇ）
加入量
（ｍｇ）
测得量
（ｍｇ）
回收率
（％）
平均回收率
（％）
ＲＳＤ（％）
１　 １．０００　３　 ０．７７５　３
２　 １．０００　１　 ０．７７５　２
３　 １．０００　１　 ０．７７５　２
４　 １．０００　２　 ０．７７５　３
５　 １．０００　３　 ０．７７５　３
６　 １．０００　５　 ０．７７５　５
０．８１２　０
１．５８６　７　 ９９．９３
１．５９２　５　 １００．６６
１．６０５　６　 １０２．２７
１．６２３　１　 ９９．８９
１．６２６　５　 １０４．８２
１．６０３　１　 １０１．９２
１０１．５８　 １．８４
２．９　样品含量测定
取３批香茅药材粉末，按“２．１项”供试品溶液
制备方法制备，平行３份，按“２．３项”色谱条件分别
进样，按外标法计算样品中绿原酸的含量，结果见表
３。
表３　３批香茅药材绿原酸含量测定结果（ｎ＝３）
批号 绿原酸含量（ｍｇ／ｇ）
２０１００７１２　 ０．７６２　８
２０１００８１５　 ０．７７５　１
２０１１０８０３　 ０．７６１　１
３　结论
３．１　提取溶剂的选择
曾考察过直接用甲醇超声提取，但发现甲醇提
取溶液含叶绿素较多，溶液颜色较深，杂质干扰严
重，后参考文献［３－５］改用５０％甲醇超声提取，叶绿
素明显减少，分离效果较好。
３．２　提取时间的考察
曾考察过香茅药材粉末用５０％甲醇超声提取
１５、３０、４５、６０ｍｉｎ，结果发现超声１５、３０ｍｉｎ提取不
完全。超声提取４５ｍｉｎ和６０ｍｉｎ，绿原酸含量差
别较小，因此最终选取超声提取时间为４５ｍｉｎ。
３．３　流动相的选择
实验中曾对甲醇－水－冰醋酸（２０∶８０∶１）、乙腈－
水（１０∶９０）、乙腈－０．４％磷酸（１０∶９０）、乙腈－水－冰
醋酸（８∶９２∶１）、乙腈－水－冰醋酸（１０∶９０∶１）、乙
腈－水－冰醋酸（１２∶８８∶１）等流动相系统进行考察，
结果以乙腈－水－冰醋酸（１２∶８８∶１）出峰时间早，分
离效果好。
３．４　低温避光保存
绿原酸对光照较敏感，长时间光照易分解，药材
应低温避光保存，实验操作中也应注意避光，溶液应
置于棕色量瓶中。
（下转第４５１页）
７４４王勇等．高效液相色谱法测定海南香茅中绿原酸的含量　
侵入、粘附牙本质小管的能力，早期便可进入牙本质
小管。随感染时间的增加，细菌侵入牙本质小管的
深度加深，生物膜的形态也发生变化。形态的变化
表现为微集落间有通道相隔到通道相隔逐渐缩小，
从细菌菌体表面光滑到表面出现点状突起以及细菌
表面由丝状纤维建立联接。感染后３周可观察到粪
肠球菌生物膜微集落相互结合，细菌间普遍由丝状
纤维建立联接，细菌间建立通信，成熟、稳定的生物
膜形成。提示单一的粪肠球菌菌种在没有其他种类
细菌协同作用下可在离体牙内形成根管生物膜，并
造成根管深层的感染，细菌在根管内不是以单一的
个体存在，而是相互间建立通信。粪肠球菌形成生
物膜的能力，反映了在感染根管内该菌种具有较强
致病性的原因。粪肠球菌粘附、侵入牙本质小管深
处的能力，提示在根管治疗的过程中，随着根管的清
理、扩大，根管内及管壁浅层的细菌及其产物可随病
变牙本质的去除而明显减少，但存在于感染根管牙
本质小管深层内的细菌，难以被清除干净并可再度
进入根管内未充填严密的间隙，成为导致根管治疗
失败的潜在因素。同时提示临床上应早期进行根管
内感染的控制和清除，防止细菌增殖和入侵根管系
统隐蔽部位而增加清除的难度。粪肠球菌根管感染
模型的成功建立，可利用这一模型评价各种感染清
除措施的效果，以利于临床选择更有效的治疗方式
及提高根管治疗的成功率。
参考文献
１　Ｓｉｑｕｅｉｒａ　ＪＦ　Ｊｒ，Ｒｏｃａｓ　ＩＮ．Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　ｃｈａｉｎ　ｒｅａｃｔｉｏｎ－
ｂａｓｅｄ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ｆａｉｌｅｄ
ｅｎｄｏｄｏｎｔｉｃ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ［Ｊ］．Ｏｒａｌ　Ｓｕｒｇ　Ｏｒａｌ　Ｍｅｄ　Ｏｒａｌ
Ｐａｔｈｏｌ　Ｏｒａｌ　Ｒａｄｉｏｌ　Ｅｎｄｏｄ，２００４，９７（１）：８５－９４．
２　Ｏｚｂｅｋ　ＳＭ，Ｏｚｂｅｋ　Ａ，Ｅｒｄｏｒｇａｎ　ＡＳ．Ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　Ｅｎ－
ｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ　ｆａｅｃａｌｉｓ　ｉｎ　ｓａｍｐｌｅｓ　ｆｒｏｍ　Ｔｕｒｋｉｓｈ　ｐａｔｉｅｎｔｓ
ｗｉｔｈ　ｐｒｉｍａｒｙ　ｅｎｄｏｄｏｎｔｉｃ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｎｓ　ａｎｄ　ｆａｉｌｅｄ　ｅｎｄｏｄｏｎｔｉｃ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｂｙ　ｒｅａｌ－ｔｉｍｅ　ＰＣＲ　ＳＹＢＲ　ｇｒｅｅｎ　ｍｅｔｈｏｄ［Ｊ］．Ｊ
Ａｐｐｌ　Ｏｒａｌ　Ｓｃｉ，２００９，１７（５）：３７０－３７４．
３　Ｅｖａｎｓ　Ｍ，Ｄａｖｉｅｓ　ＪＫ，Ｓｕｎｄｑｖｉｓｔ　Ｇ，ｅｔ　ａｌ．Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ
ｉｎｖｏｌｖｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ　ｏｆ　Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ　ｆａｅｃａｌｉｓ　ｔｏ　ｃａｌ－
ｃｉｕｍ　ｈｙｄｒｏｘｉｄｅ［Ｊ］．Ｉｎｔ　Ｅｎｄｏｄ　Ｊ，２００２，３５（３）：２２１－２２８．
４　Ｍｏｌａｎｄｅｒ　Ａ，Ｒｅｉｔ　Ｃ，Ｄａｈｌéｎ　Ｇ，ｅｔ　ａｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
ｓｔａｔｕｓ　ｏｆ　ｒｏｏｔ　ｆｉｌｅｄ　ｔｅｅｔｈ　ｗｉｔｈ　ａｐｉｃａｌ　ｐｅｒｉｏｄｏｎｔｉｔｉｓ［Ｊ］．
Ｉｎｔ　Ｅｎｄｏｄ　Ｊ，１９９８，３１（１）：１－７．
５　Ｓｕｎｄｑｖｉｓｔ　Ｇ，Ｆｉｇｄｏｒ　Ｄ，Ｐｅｒｓｓｏｎ　Ｓ，ｅｔ　ａｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃ
ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｔｅｅｔｈ　ｗｉｔｈ　ｆａｉｌｅｄ　ｅｎｄｏｄｏｎｔｉｃ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ａｎｄ
ｔｈｅ　ｏｕｔｃｏｍｅ　ｏｆ　ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｖｅ　ｒｅ－ｔｒｅａｔｍｅｎｔ［Ｊ］．Ｏｒａｌ　Ｓｕｒｇ
Ｏｒａｌ　Ｍｅｄ　Ｏｒａｌ　Ｐａｔｈｏｌ　Ｏｒａｌ　Ｒａｄｉｏｌ　Ｅｎｄｏｄ，１９９８，８５
（１）：８６－９３．
６　Ｓｉｑｕｅｉｒａ　ＪＦ　Ｊｒ．Ａｅｔｉｏｌｏｇｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｅｎｄｏｄｏｎｔｉｃ　ｆａｉｌｕｒｅ：ｗｈｙ
ｗｅｌ　ｔｒｅａｔｅｄ　ｔｅｅｔｈ　ｃａｎ　ｆａｉｌ［Ｊ］．Ｉｎｔ　Ｅｎｄｏｄ　Ｊ，２００１，３４
（１）：１－１０．
７　Ｆｉｇｄｏｒ　Ｄ，Ｄａｖｉｅｓ　ＪＫ，Ｓｕｎｄｑｕｉｓｔ　Ｇ，ｅｔ　ａｌ．Ｓｔａｒｖａｔｉｏｎ　ｓｕｒ－
ｖｉｖａｌ，ｇｒｏｗｔｈ　ａｎｄ　ｒｅｃｏｖｅｒｙ　ｏｆ　Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ　ｆａｅｃａｌｉｓ　ｉｎ
ｈｕｍａｎ　ｓｅｒｕｍ［Ｊ］．Ｏｒａｌ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ　Ｉｍｍｕｎｏｌ，２００３，１８
（４）：２３４－２３９．
８　Ｇｕｎｎｅｌ　Ｓ，Ｇｕｎｎａｒ　Ｂ．Ｂｉｏｆｉｌｍｓ　ｉｎ　ｅｎｄｏｄｏｎｔｉｃ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｎｓ
［Ｊ］．Ｅｎｄｏｄｏｎｔｉｃ　Ｔｏｐｉｃｓ，２００４，９（１）：２７－３６．
９　Ｌｅｗｉｓ　Ｋ．Ｒｉｄｄｌｅ　ｏｆ　ｂｉｏｆｉｌｍ　ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ［Ｊ］．Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ
Ａｇｅｎｔｓ　Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ，２００１，４５（４）：９９９－１００７．
１０　冯朝华，高学军，沈嵩．次氯酸钠对根管内粪肠球菌杀
菌效果的体外实验［Ｊ］．中华口腔医学杂志，２００７，４２
（６）：３５５－３５６．
（Ｅｄｉｔｏｒ　Ｊｉｎｇ　Ｌｉ）
檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪檪
（上接第４４７页）
参考文献
１　Ｋｕｍａｒ　Ｒ，Ｋｒｉｓｈａｎ　Ｐ，Ｓｗａｍｉ　Ｇ，ｅｔ　ａｌ．Ｐｈａｒｍａｃｏｇｎｏｓ－
ｔｉｃａｌ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｃｙｍｂｏｐｏｇｏｎ　ｃｉｔｒａｔｕｓ （ＤＣ）Ｓｔａｐｆ
［Ｊ］．Ｄｅｒ　Ｐｈａｒｍａｃｉａ　Ｌｅｔｔｒｅ，２０１０，２（２）：１８１－１８９．
２　吴卫华，康桢，欧阳冬生，等．绿原酸的药理学研究进展
［Ｊ］．天然产物研究与开发，２００６，１８（４）：６９１－６９４．
３　张亚明．ＨＰＬＣ－ＥＬＳＤ法测定抗感颗粒中绿原酸含量
［Ｊ］．实用临床医药杂志，２０１１，１５（５）：８９－９０．
４　刘燕，彭章明，粟珊，等．ＨＰＬＣ同时测定宜宾产蒲公英
中的咖啡酸和绿原酸［Ｊ］．华西药学杂志，２０１０，２５（２）：
１９８－１９９．
５　王美琴，徐圣秋，雷雨，等．高效液相色谱法测定不同采
收期苍耳草中绿原酸的含量［Ｊ］．现代中药研究与实
践，２０１１，２５（６）：８３－８５．
（Ｅｄｉｔｏｒ　Ｊｉｎｇ　Ｌｉ）
１５４邢莉等．粪肠球菌根管感染模型的扫描电镜观察