全 文 :华西药学杂志
W C J·P S 2010,25(1)∶074 ~ 075
含量能反映槐角中总的山柰酚苷的含量,更能反映
槐角的内在质量。
参考文献:
[1] Adlercreutz H,Mazur W. Phytoestrogens and western disease[J].
Ann Med,1997,29(2) :95 - 120.
[2] 陈勇川,穆海川,刘松青.高效毛细管电泳法测定槐花和槐角
中芦丁的含量[J].华西药学杂志,2002,17(4) :284 - 285.
[3] 丛维涛,崔健,陈新,等.不同产地槐角的质量分析[J]. 吉林
中医药,2005,25(6) :51.
[4] 王剑波,郭萍,赵小兵,等. RP - HPLC 法测定槐角提取物中
染料木素的含量[J].中草药,2004,35(4) :402 - 403.
[5] Wang J,Lou F,Wang Y,et al. A flavonol tetraglycoside from So-
phora japonica seeds[J]. Phytochemistry,2003,63(4) :463 -465.
[6] Qi Y,Sun A,Liu R,et al. Isolation and purification of flavonoid
and isoflavonoid compounds from the pericarp of Sophora japonica
L. by adsorption chromatography on 12% cross - linked agarose
gel media[J]. J Chromatogr A,2007,1140 (1) :219 - 224.
收稿日期:2009 - 03 - 18
作者简介:薛敬(1982—) ,女,正攻读药物分析专业的硕士学位。Email:hbxuejing@ 126. com
HPLC测定细叶亚菊中的绿原酸
薛 敬,卢永昌,薛 楠
(青海民族学院化学系,青海 西宁 810007)
摘要:目的 采用 HPLC测定细叶亚菊中的绿原酸含量。方法 采用 Hypersil ODS - 2 柱(250 mm × 4. 6 mm,5 μm) ,流动相
为甲醇 -含 0. 04%磷酸的水溶液(19∶81) ,流速 1 mL·min -1,检测波长 328 nm,柱温 30 ℃。结果 绿原酸进样量的线性范
围为 0. 0306 ~ 1. 530 μg,与峰面积呈良好的线性关系(r = 0. 9999) ,平均回收率为 99. 7%,RSD = 2. 6%(n = 5) ,细叶亚菊中绿
原酸的含量为 9. 457 mg·g -1。结论 所建方法快速、简便、准确、重复性好,绿原酸可作为细叶亚菊的质量控制指标。
关键词:高效液相色谱法;细叶亚菊;绿原酸;含量测定
中图分类号:R917 文献标志码:A 文章编号:1006 - 0103(2010)01 - 0074 - 02
Determination of chlorogenic acid in Ajania tenuifolia by HPLC
XUE Jing,LU Yong - chang,XUE Nan
(Department of Chemistry,Qinghai University for Nationalities,Xining,Qinghai,810007 P. R. China)
Abstract:OBJECTIVE To establish an HPLC method for the determination of chlorogenic acid in Ajania tenuifolia.METHODS
The sample was separated on column of Hypersil ODS - 2(4. 6 mm × 250 mm,5 μm)which eluted with a mixture of 19% of methanol
and 81% of water (containing 0. 04% phosphoric acid). The flow rate was 1mL·min -1 . The detective wavelength was at 328 nm and
the column temperature was 30 ℃ . RESULTS The peak area and concentration of chlorogenic acid showed a good linear relationship
within the ranges of 0. 0306 - 1. 530 μg with r of 0. 9999 and the average recovery rate was 99. 7% with RSD of 2. 6%(n = 5). The
content of chlorogenic acid in Ajania tenuifolia was 9. 457 mg·g -1 . CONCLUTION The method is rapid,simple,accurate and
reproducible. Chlorogenic acid as a probe component can be used for the quality control of Ajania tenuifolia.
Key words:HPLC;Ajania tenuifolia;Chlorogenic acid;Content determination
CLC number:R917 Document code:A Article ID:1006 - 0103(2010)01 - 0074 - 02
细叶亚菊 Ajania tenuifolia(Jacq.)Tzvel.为菊科
多年生草本植物,广泛分布于青海、西藏、四川、甘肃
等省区海拔 2. 0 ~ 3. 8 km的草坡,为藏医常用草药,
其叶片白而油润,花朵黄色且味香,植株铺地成簇状
生长[1]。细叶亚菊味苦、性温而平,具有止血、消散
四肢肿胀等功效,尤其对疮伤、肾病有益。细叶亚菊
的质量控制以传统的性状和显微鉴别确定真伪,无
含量测定控制项[2]。绿原酸是细叶亚菊的主要药
用成分,具有清热解毒、抗菌消炎的作用[3 - 6]。为有
效控制药材的质量,现采用 HPLC 法测定细叶亚菊
中的绿原酸,方法简便、准确,适用于细叶亚菊的质
量分析,还可供细叶亚菊制剂借鉴。
1 实验部分
1. 1 仪器与材料
1100 高效液相色谱系统 (美国 Agilent) ;
KQ3200B超声波清洗器(昆仑超声仪器有限公司) ;
FZ102 微型植物试样粉碎机(天津市泰斯特仪器有
限公司)。绿原酸对照品(中国药品生物制品检定
所,批号:110753 - 200413) ;细叶亚菊样品于 2008
DOI:10.13375/j.cnki.wcjps.2010.01.029
年 8 月采自青海省互助北山林场,由中国科学院西
北高原生物研究所孙洪发研究员鉴定,样品阴干后
粉碎过 80 目筛,冷藏保存;甲醇为色谱纯;水为三重
蒸水;磷酸为分析纯。
1. 2 方法与结果
1. 2. 1 色谱条件 色谱柱为 Hypersil ODS - 2 柱
(250 mm ×4. 6 mm,5 μm) ,流动相用为醇 -0. 04%磷
酸的水溶液(19∶81) ,流速 1 mL·min -1,检测波长
328 nm,柱温 30 ℃,进样量 5 μL。该色谱条件下绿原
酸被洗脱且达到基线分离,tR =13. 57 min(图 1)。
t/min
0 5 10 15 0 5 10 15
ch
lo
ro
ge
ni
c
ac
id
ch
lo
ro
ge
ni
c
ac
id
A B
图 1 对照品(A)和样品(B)溶液的色谱图
Fig 1 Chromatograms of control solution(A)and sample solution(B)
1. 2. 2 溶液的配制 精密称取 0. 306 mg 绿原酸对
照品,置 1 mL 量瓶中,以甲醇定容,配成对照品溶
液。精密称取 0. 50 g 细叶亚菊样品粉末,加入 60
mL 75%的甲醇,超声提取 1. 5 h,抽滤,滤液浓缩后
定容至 50 mL量瓶中,过 0. 45 μm 滤膜,即得样品
溶液。
1. 2. 3 线性关系 精密量取绿原酸对照品溶液适
量,用甲醇准确稀释成 6. 12、30. 60、61. 20、122. 40、
183. 60、244. 80、306. 00 mg·L -1的系列对照品稀释
液,取各稀释液进样 5 μL,记录峰面积。以峰面积
为纵坐标、进样量(μg)为横坐标,求得绿原酸的回
归方程为:Y = 1. 592 × 103X + 4. 023(r = 0. 9999)。
线性范围为 0. 0306 ~ 1. 5300 μg。当 S /N = 3 时,绿
原酸的检测限为 0. 25 ng。
1. 2. 4 精密度试验 精密吸取 30. 60 mg·L -1的绿
原酸对照品稀释液 5 μL,在“1. 2. 1”项色谱条件下
重复进样 5 次,记录峰面积,计算 RSD = 0. 71%(n =
5) ,表明仪器精密度良好。
1. 2. 5 重复性实验 精密称取 0. 50 g 细叶亚菊样
品共 5 份,分别按“1. 2. 2”项下方法制备成样品溶
液,然后在“1. 2. 1”色谱条件下测定绿原酸的含量,
计算得 RSD = 1. 2%(n = 5) ,表明方法重复性良好。
1. 2. 6 稳定性试验 取新配制的样品溶液,分别在
0、2、4、6、8 h时进样,测定绿原酸的峰面积,计算得
RSD = 1. 1%(n = 5) ,表明样品溶液在 8 h内稳定。
1. 2. 7 回收率试验 精密称取已测知含量的细叶
亚菊 0. 50 g共 5 份,添加 30. 60 g·L -1绿原酸对照品
稀释液 10 μL,按“1. 2. 2”项下方法操作,测得绿原
酸的平均回收率为 99. 7%,RSD = 2. 6%(n = 5)。
1. 2. 8 样品的测定 取“1. 2. 2”项下制备的样品
溶液,按“1. 2. 1”项条件进行分析,经 DAD 检测器
验证绿原酸的峰纯度后,按外标法以峰面积计算,得
样品中绿原酸的含量为 9. 457 mg·g -1(n = 3)。
2 讨论
利用 DAD检测器在 200 ~ 400 nm 扫描对照品
溶液的吸收光谱,在 328 nm处有最大吸收,因此,选
择该波长为检测波长。绿原酸的色谱峰易拖尾,当
在水中加入 0. 01% ~0. 10%磷酸时,可改善绿原酸
的峰形,故选择甲醇 - 0. 04%的磷酸水溶液(19∶
81)为流动相。
曾考察冷浸、超声和回流对细叶亚菊中绿原酸
含量的影响。结果:超声法提取时间短,提取率最
高。又分别以水、甲醇、乙醇为溶剂,考察不同溶剂
对分析结果的影响,发现甲醇对绿原酸提取率最高。
利用正交试验进一步考察不同浓度甲醇、不同溶剂
量、不同提取时间和提取次数对绿原酸含量的影响,
方差分析结果表明:绿原酸提取率的影响因素依次
为甲醇浓度 >提取时间 >溶剂量 >提取次数。考虑
实际工作的方便、快捷,确定最佳提取方法为 75%
甲醇,溶剂量 60 mL,提取 1. 5 h、1 次。
参考文献:
[1] 中国科学院西北高原生物研究所. 青海植物志[M].第三卷.
青海:青海人民出版社,1999:372 - 373.
[2] 青海省药品检验所,青海省藏医药研究所.中国藏药[M]. 第
二卷.上海:上海科学技术出版社,1996:28 - 29.
[3] 张囡,杜丽丽,王冬,等.中药酚酸类成分的研究进展[J]. 中
国现代中药,2006,8(2) :26 - 27.
[4] 李春红,何兵,田吉.川渝产山银花中绿原酸和总绿原酸的测
定[J].华西药学杂志,2009,24(1) :95 - 96.
[5] 程静,侯小涛,戴航,等. 鸡骨草肝炎颗粒的薄层鉴别和绿原
酸、槲皮素的测定[J]. 华西药学杂志,2009,24(4) :409 -
411.
[6] 张建华,姚素波,刘洁,等. 绿原酸对小鼠免疫功能的影响
[J].华西药学杂志,2009,24(4) :343 - 344.
收稿日期:2009 - 05 - 20
57第 1 期 薛 敬,等。HPLC测定细叶亚菊中的绿原酸