全 文 ：第 39 卷 第 10 期 东 北 林 业 大 学 学 报 Vol． 39 No． 10
2011 年 10 月 JOURNAL OF NORTHEAST FORESTRY UNIVERSITY Oct． 2011
1)通化师范学院自然科学科研项目(200842)。
第一作者简介:刘雪莲，女，1978 年 10 月生，通化师范学院生物
系，讲师。
收稿日期:2011 年 3 月 23 日。
责任编辑:潘 华。
植物生长调节剂对紫丁香花粉离体萌发的影响1)
刘雪莲 杨晴晴 秦佳梅 刘丽娟
(通化师范学院，通化，134002) (扬州大学) (通化师范学院)
摘 要 以紫丁香盛花期的新鲜花粉为材料，采用单因素试验研究不同质量浓度的赤霉素(GA3)、6－苄基腺
嘌呤(6－BA)、2，4－二氯苯氧乙酸(2，4－D)、萘乙酸(NAA)4 种生长调节物质对紫丁香花粉离体萌发和花粉管生长
的影响。结果表明，较低质量浓度的 GA3、6－BA、NAA能促进紫丁香花粉萌发和花粉管的生长，超过一定质量浓度
则起抑制作用。最适宜花粉萌发和花粉管伸长的赤霉素质量浓度为 100 mg·L－1，6－BA为 10 mg·L－1，NAA为 10
mg·L－1，2，4－D对紫丁香花粉萌发和花粉管生长有抑制作用，抑制程度随质量浓度的提高而增强。
关键词 紫丁香;植物生长调节剂;花粉萌发
分类号 Q945
Effects of Plant Growth Regulators on in Vitro Pollen Germination of Syringa oblata /Liu Xuelian(Department of Biolo-
gy，Tonghua Normal University，Tonghua 134002，P． R． China) ;Yang Qingqing(Yangzhou University) ;Qin Jiamei，
Liu Lijuan(Tonghua Normal University)/ / Journal of Northeast Forestry University． －2011，39(10)． －54 ～ 55
An experiment was conducted to study the effects of four plant growth regulators (GA3，6-BA，2，4-D and NAA)on
pollen germination and tube growth of Syringa oblata through single-factor design using fresh pollens as the testing material．
Results showed that lower concentrations of GA3，6-BA，NAA could stimulate pollen germination and tube growth，while
GA3，6-BA，NAA would have an inhibitory effect when the concentrations were higher than a certain level． The most suit-
able concentrations of GA3，6-BA，NAA for pollen germination and tube growth were 100，10 and 10 mg·L－1 respective-
ly． However，2，4-D inhibited pollen germination and tube growth，and the inhibitory effect became stronger with increas-
ing concentration．
Keywords Syringa oblata;Plant growth regulators;Pollen germination
紫丁香(Syringa oblata Lindl) ，木犀科丁香属落叶灌木，原
产我国华北地区，在中国已有 1 000多 a的栽培历史，现已成为
庭院中著名的观赏花木，并广泛栽培于世界各温带地区，有栽
培品种 1 000种以上［1］。近年来，很多学者通过研究植物生长
调节剂对花粉萌发和花粉管生长的影响［2－6］，确定能促进花粉
受精的植物生长调节物质种类及其使用浓度，为提高人工授粉
的效率提供了理论依据。目前，植物生长调节剂在紫丁香花粉
萌发上的研究未见报道，为此，本文探讨了不同植物生长调节
剂对紫丁香花粉离体萌发的影响，以期为紫丁香花粉的生殖生
物学研究、植物的杂交育种提供理论依据。
1 材料与方法
供试植物为通化师范学院校园内栽植的紫丁香，于 5 月
盛花期采集新鲜花粉作为试验材料。
采用固体培养法，基本培养基为蔗糖 20 g·L－1 +硼酸 0． 06
g·L－1 +硝酸钙 0． 06 g·L－1 +琼脂粉 5 g·L－1［7］，培养基 pH值
6． 0。将添加不同植物生长调节剂的培养基均匀涂抹在载玻
片上，采集新鲜花粉，将其抖落在培养基表面，每个培养基用
2 ～ 3 个花蕾，每个处理 3 次重复，将载玻片放入垫有湿润滤
纸的培养皿中，置于 25 ℃条件下培养，3 h后在光学显微镜 10
倍物镜下观察花粉萌发和花粉管生长情况，以花粉管长度超
过花粉粒直径作为萌发标准，每处理统计约 100 粒花粉和 10
个花粉管，重复 3 次。
花粉萌发率=萌发花粉数 /观察花粉总数×100%。
选用生产上常用的 4 种生长调节物质，分别按以下质量
浓度配制培养基。试验所用试剂均为分析纯。
赤霉素:25、50、100、200、400 mg·L－1;6－苄基腺嘌呤:10、
25、50、100、200 mg·L－1;2，4－二氯苯氧乙酸:5、10、25、50、100
mg·L－1;萘乙酸:5、10、25、50、100 mg·L－1。
以不加生长调节物质的基本培养基为对照，进行紫丁香
花粉离体培养。
试验所得数据采用 DPS统计软件进行方差分析。
2 结果与分析
2． 1 赤霉素对紫丁香花粉离体萌发的影响
赤霉素作用效果如表 1 所示，其对花粉萌发和花粉管生
长的影响趋势基本一致，即在一定质量浓度范围内起促进作
用，超过一定质量浓度后则起抑制作用，但其最适宜质量浓度
各不相同。其中，赤霉素质量浓度为 50 mg·L－1时，紫丁香花
粉萌发率最大，为 50． 81%，显著高于对照;当质量浓度超过
50 mg·L－1时，随质量浓度的提高花粉萌发率逐渐降低;赤霉
素质量浓度为 25 ～ 100 mg·L－1时，对花粉管生长起促进作
用，花粉管随赤霉素质量浓度的提高而加长;质量浓度为 100
mg·L－1时，花粉管最长为 0． 47 mm，与对照(0． 28 mm)相比差
异显著;当质量浓度超过 100 mg·L－1时，花粉管生长明显受
到抑制。一般地说，花粉管生长长度比花粉萌发率更能代表
花粉的代谢活力，与能否完成受精关系更为密切，所以认为赤
霉素在 50 ～ 100 mg·L－1内更有利于紫丁香花粉的萌发和花
粉管的生长，最适质量浓度为 100 mg·L－1。
表 1 不同质量浓度 GA3 对紫丁香花粉萌发和花粉管长度的影响
GA3 质量浓度 /mg·L－1 萌发率 /% 花粉管长度 /mm
0 (9． 46±5． 20)b (0． 28±0． 018)b
25 (15． 43±1． 55)b (0． 29±0． 012)b
50 (50． 81±11． 19)a (0． 32±0． 056)b
100 (43． 79±7． 61)a (0． 47±0． 006)a
200 (11． 55±1． 71)b (0． 17±0． 008)c
400 (0． 62±1． 07)b (0． 03±0． 058)d
注:表中不同字母表示 5%水平差异性显著。
DOI:10.13759/j.cnki.dlxb.2011.10.017
2． 2 6－苄基腺嘌呤对紫丁香花粉离体萌发的影响
由表 2 可见，不同质量浓度 6－BA 处理的培养基中花粉
萌发率和花粉管长度各不相同。低质量浓度的 6－BA对花粉
萌发和花粉管生长起促进作用，高质量浓度的 6－BA 对花粉
萌发和花粉管生长有显著抑制作用，质量浓度越大抑制作用
越强，达到一定质量浓度时，花粉的萌发则完全被抑制。适宜
花粉萌发和花粉管生长的质量浓度为 10 mg·L－1，花粉萌发
率达 33． 86%，花粉管长度为 0． 31 mm。
表 2 不同质量浓度 6－BA对紫丁香花粉萌发和花粉管长度的影响
6－BA质量浓度 /mg·L－1 萌发率 /% 花粉管长度 /mm
0 (9． 46±5． 20)b (0． 28±0． 018)a
10 (33． 86±2． 46)a (0． 31±0． 016)a
25 (2． 42±2． 23)c (0． 11±0． 026)b
50 (1． 00±0． 19)c (0． 08±0． 019)b
100 0c 0c
200 0c 0c
注:表中不同字母表示 5%水平差异性显著。
2． 3 2，4－二氯苯氧乙酸对紫丁香花粉离体萌发的影响
试验结果见表 3，2，4－D 对花粉萌发和花粉管生长有显
著的抑制作用，随 2，4－D 质量浓度的提高，花粉萌发率明显
下降，花粉管生长受到明显抑制。质量浓度超过 10 mg·L－1
时花粉萌发率和花粉管长度与对照相比差异达显著水平。不
加 2，4－D的对照培养基上，花粉萌发率最高为 9． 46%，花粉
管长度为 0． 28 mm，当质量浓度增加到 100 mg·L－1时，萌发
率为 0。
表 3 不同质量浓度 2，4－D对紫丁香花粉萌发和花粉管长度的影响
2，4－D质量浓度 /mg·L－1 萌发率 /% 花粉管长度 /mm
0 (9． 46±5． 20)a (0． 28±0． 018)a
5 (7． 05±0． 69)ab (0． 21±0． 048)ab
10 (4． 77±3． 32)abc (0． 13±0． 026)bc
25 (0． 65±0． 59)bc (0． 06±0． 049)cd
50 (0． 55±0． 49)bc (0． 07±0． 056)cd
100 0c 0d
注:表中不同字母表示 5%水平差异性显著。
2． 4 萘乙酸对紫丁香花粉离体萌发的影响
结果如表 4 所示，NAA在一定质量浓度范围内对花粉萌
发和花粉管生长有显著的促进作用，超过一定质量浓度反而
起抑制作用，且抑制作用随质量浓度的提高而增强。质量浓
度为 10 mg·L－1时，花粉萌发率最高为 36． 02%，花粉管长度
为 0． 34 mm，当质量浓度增加到 100 mg·L－1时，萌发率仅为
0． 31%，花粉管长度为 0． 03 mm。
表 4 不同质量浓度 NAA对紫丁香花粉萌发和花粉管长度的影响
NAA质量浓度 /mg·L－1 萌发率 /% 花粉管长度 /mm
0 (9． 46±5． 20)cd (0． 28±0． 018)ab
5 (20． 36±5． 56)b (0． 21±0． 028)b
10 (36． 02±3． 63)a (0． 34±0． 031)a
25 (14． 36±2． 76)bc (0． 19±0． 027)bc
50 (1． 73±1． 54)d (0． 09±0． 077)cd
100 (0． 31±0． 54)d (0． 03±0． 043)d
注:表中不同字母表示 5%水平差异性显著。
3 结论与讨论
植物生长调节剂是人工合成的激素具有与内源激素同样
的生理功能，对调节植物的生长发育有重要作用。很多学者
通过研究植物生长调节剂对植物花粉离体萌发的影响对其花
期人工授粉、提高结实率、杂交育种等方面提供了相应的理论
支持。研究报道结果显示不同植物其所适宜的植物生长调节
剂种类及质量浓度各不相同，同一植物生长调节剂对不同植
物花粉离体萌发的影响亦不尽相同。有学者研究认为赤霉
素、三十烷醇、吲哚乙酸、6－BA 和 2，4－D 在低质量浓度时能
促进花粉萌发和花粉管生长，超过一定质量浓度时则起抑制
作用，萘乙酸对花粉萌发和花粉管生长有抑制作用［2－3，8］。也
有试验结果表明，萘乙酸在低质量浓度时起促进作用，超过一
定质量浓度时起抑制作用，高质量浓度的赤霉素对花粉萌发
有促进作用，低质量浓度的赤霉素对花粉萌发的作用效果不
显著［9］。本研究结果与前者相近，即赤霉素、6－BA、NAA 在
一定质量浓度范围内对花粉离体萌发起促进作用，超过一定
质量浓度后则起抑制作用，其赤霉素适宜质量浓度范围为 50 ～
100 mg·L－1，最适质量浓度为 100 mg·L－1。最适 6－BA质量
浓度为 10 mg·L－1，最适 NAA质量浓度为 10 mg·L－1。2，4－
D对紫丁香花粉离体萌发起抑制作用。
目前，有关较低质量浓度的赤霉素和 6－BA 能促进花粉
的萌发和花粉管生长的机制尚不清楚。但已有研究表明，花
粉自身富含生长素及赤霉素等生长激素类物质，这些物质的
多少对花粉自身的萌发、生长及贮藏寿命均有较大影响，对花
粉管在花柱内生长、受精及果实膨大也有重要作用［10］。此
外，赤霉素能抑制植物体内生长素分解系统的活动，以保证体
内生长素含量水平，因此，一定质量浓度的外源赤霉素处理，
能促进花粉萌发和花粉管生长［2］。
本试验条件下同为生长素的 NAA和 2，4－D 对花粉萌发
及花粉管生长的影响不同，一定质量浓度的 NAA起促进作用
而 2，4－D却表现出抑制作用，且抑制作用随其质量浓度的增
加而增强，结果与其他学者研究结果不同，其原因可能是花粉
自身含有 2，4－D 生长素的质量浓度较高，或者试验误差所
至。另外，不同植物生长调节剂组合及其质量浓度配比和低
温条件下添加植物生长调节剂对紫丁香花粉萌发的影响还有
待于进一步研究。
参 考 文 献
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