全 文 :252
刘 飞,王鸿飞* ,林 燕,毛方华
( 宁波大学食品科学与工程系,浙江宁波 315211)
摘 要:采用乙醇浸提、超声波辅助的方法从费菜叶中提取总黄酮,在单因素实验的基础上用正交实验进行工艺参数
的优化,采用紫外分光光度法测定总黄酮含量。其适合的工艺条件为:超声时间 50min,乙醇浓度 90%,料液比 1∶50,
乙醇浸提液 pH9,浸提温度 60℃,浸提时间 6h,在此工艺条件下总黄酮的得率为 5822%。
关键词:费菜,总黄酮,超声辅助提取,紫外分光光度法
Study on extraction of total flavonoids from
Sedum kamtschaticum Fisch
LIU Fei,WANG Hong-fei* ,LIN Yan,MAO Fang-hua
( Department of Food Science and Engineering,Ningbo University,Ningbo 315211,China)
Abstract: Total flavonoids from Sedum kamtschaticum Fischwas extracted by ultrasonic waveOn the basis of single
- factor experiments,the orthogonal experiment was used in the optimization of technological parameters The
results showed that the optimum conditions were as follows: supersonic time was 50min,ethanol concentration was
90%,ratio of raw material and liquid was 1∶50,pH 9,optimum extraction temperature and time was 60℃ and 6hBy
the above conditions,the total flavonoids extraction rate was 5822%
Key words: Sedum kamtschaticum Fisch; total flavonoids; ultrasound - assisted extraction; ultraviolet
spectrophotometry
中图分类号: TS2012 文献标识码: B 文 章 编 号: 1002-0306( 2011) 04-0252-04
收稿日期: 2010-03-24 * 通讯联系人
作者简介:刘飞( 1983- ) ,女,硕士,主要从事食品科学方面的研究。
植物黄酮( flavonoids) 是一类低分子天然植物成
分,广泛存在于蔬菜、水果和药用植物中,毒副作用
小,是目前人们比较关注的一类化合物。有很多药
用植物的主要活性成分都是黄酮类,包括黄酮、异黄
酮、黄酮醇等。最初,黄酮类的粗制品仅在染料方面
应用,在上世纪 20 年代,国外把槲皮素、芦丁用于临
床后,才开始引起人们的关注[1]。许多研究表明,黄
酮类化合物具有多种生物活性,除利用其抗菌、消
炎、抗突变、降压、清热解毒、镇静、利尿等作用外,在
抗氧化、抗癌、防癌、抑制脂肪氧化酶等方面也有显
著效果[2]。黄酮类化合物的提取方法一般有有机溶
剂提取法、碱提酸沉淀法、CO2 超临界流体提取法、超
声波提取法、微波提取法、酶法辅助提取法和加压流
体提取等[3-11]。碱提酸沉法需要控制浸提液的 pH,
在强碱性下尤其加热时会破坏黄酮母核,酸性过大
会形成佯盐,致使析出的黄酮类化合物又重新溶解,
降低产品收率。有机溶剂提取法目前应用最为广
泛,如配合超声、微波和酶辅助,这样不仅省时省力,
低污染,节约原料,而且提取率比单纯有机溶剂提取
都显著提高。费菜( Sedum kamtschaticum Fisch) 俗称
救心草、景天三七,系景天科景天属植物费菜的带根
全草,始载于《救荒本草》,其性平、味酸; 具有活血、
止血、宁心、消肿、解毒等功效。民间用于治疗跌打
损伤、咳血、吐血、便血、心悸、痈肿等疾病。费菜含
马栗树皮素、杨梅树皮苷、金丝桃苷、槲皮素、山奈
酚、杨梅黄素 3-葡萄糖苷等黄酮及黄酮甙类[12]。实
验以乙醇为提取溶剂,采用超声波辅助的方法从费
菜叶中提取黄酮类化合物,研究费菜叶中提取总黄
酮的影响因素,并采用正交实验进行从费菜叶中提
取总黄酮的工艺条件优化,从而为生产提供指导。
1 材料与方法
11 材料与仪器
费菜 采自江苏沛县野生蔬菜研究所张寨示范
园,摘功能叶干燥备用;芦丁标准品( 含量≥95% )
国药集团化学试剂有限公司;无水乙醇、结晶三氯化
铝 均为分析纯;水 纯水。
WK-200B型高速药物粉碎机 山东青州市精
诚机械有限公司; SB3200D 型超声波清洗机 宁波
新芝生物科技股份有限公司; Orion 420A +酸度计
美国 Thermo公司; Cary 50 Scan紫外分光光度计 美
国瓦里安技术中国有限公司。
12 实验方法
121 费菜叶总黄酮的提取 将新鲜费菜叶在 70℃
干燥 24h,然后用药物粉碎机粉碎并过 80 目筛,称取
一定量的费菜叶干粉,105℃干燥 2h,使水分含量在
DOI:10.13386/j.issn1002-0306.2011.04.030
253
03%。准确称取原料粉末 1g置入 150mL锥形瓶中,
加入一定浓度、一定量的乙醇溶液超声辅助提取,后
转移到恒温水浴锅中浸提,提取液趁热抽滤,得滤
液,将滤液作为待测液进行含量的测定。
122 测定波长的确定 测定波长的确定参照文
献[13]。
取 4 个 25mL容量瓶,编号 1、2、3、4 号,1、2 号各
加入 1mL样品液,3、4 号各加入 1mL 芦丁标准溶液
( 0244mg /mL) ,在 2、4 号各加入 2%AlCl3 溶液 1mL,
4 个容量瓶都用 30%乙醇定容,混匀后放置 20min,
分别置于 1cm 石英比色皿中,于紫外分光光度计上
在 200~800nm波长范围内扫描。
由图 1 的扫描图谱可见,在紫外区,在 30%乙醇
溶液中,样品提取液中总黄酮最大吸收波长为
270nm,芦丁标准溶液的最大吸收波长为 265nm; 在
三氯化铝 30%乙醇溶液中,样品提取液中总黄酮的
最大吸收波长为 275nm,芦丁标准溶液的最大吸收波
长也为 275nm。三氯化铝的存在使样品黄酮和芦丁
的吸收峰发生了红移,使他们的最大吸收波长重合。
因此,实验以芦丁为标准品在 275nm 测定费菜叶总
黄酮的含量。
图 1 扫描图谱
123 标准溶液的制备和标准曲线的绘制 称取
00244g芦丁( 120℃干燥至恒重) ,置于 100mL 容量
瓶中,加入适量的 30%乙醇,稍加热溶解,冷却后用
30%的乙醇定容至 100mL。此时芦丁的浓度为:
0244mg /mL。精密移取标准溶液 0、02、04、05、06、
08、10mL于 10mL 比色管中,各加入 2%的 AlCl3 溶
液 1mL,以 30%乙醇定容至刻度,静置 20min。以空
白管调零,在 275nm下测定吸光度 A,得到的回归方
程为: y = 38631x + 00016,R = 09999。所得标准曲
线如图 2。
图 2 芦丁标准曲线
124 费菜叶总黄酮的测定 分别吸取 1mL待测液
于 10mL容量瓶中用相应的乙醇溶液定容,再分别吸
取 1mL待测液于 10mL比色管中,各加入 2%的三氯
化铝溶液 1mL,以 30% 的乙醇定容至刻度,静置
20min。以空白管调零,在 275nm 下测定吸光度,计
算总黄酮得率。
总黄酮得率( % ) =样品液中总黄酮的质量干物料的质量
×100%
125 单因素及正交实验设计 一般采用乙醇作为
提取剂,可以避免有毒和有害物质的残留,采用超声
波辅助萃取,可以加速细胞的破碎,有利于有效成分
的溶出。实验利用超声波辅助,通过对乙醇浓度、料
液比、乙醇浸提液 pH、超声时间等影响费菜总黄酮
得率的因素进行单因素实验,并在此基础上设计了
四因素三水平的正交实验,以确定最佳工艺条件。
表 1 L9 ( 3
4 ) 正交实验因素水平表
水平
因素
A料液比
( mL·g -1 )
B浸提液
pH
C浸提温度
( ℃ )
D浸提时间
( h)
1 1∶30 8 40 2
2 1∶50 9 50 4
3 1∶70 10 60 6
2 结果与分析
21 单因素实验
211 超声时间对费菜总黄酮得率的影响 在乙醇
浓度 90%,料液比 1∶40,乙醇浸提液未调 pH,40℃水
浴浸提 1h 的条件下,分别研究超声 10、20、30、40、
50、60min对费菜叶总黄酮得率的影响。实验结果见
图 3。
图 3 超声时间对总黄酮得率的影响
从图 3 中可见,随着超声时间的延长,总黄酮得
率随之增加,50min 后得率增加不大,为了降低时间
和能量消耗,以 50min为宜。
212 乙醇浓度对费菜总黄酮得率的影响 在料液
比 1∶40,乙醇浸提液未调 pH,超声提取 50min,40℃
水浴浸提 1h 的条件下,分别研究乙醇浓度 60%、
70%、80%、90%、95%、100%对费菜总黄酮得率的影
响。实验结果见图 4。
图 4 乙醇浓度对总黄酮得率的影响
由图 4 可见,随着乙醇浓度的升高,总黄酮得率
不断增加,乙醇浓度为 90%时,达到最高,乙醇浓度
高于 90%时,得率反而下降,可能是由于乙醇浓度过
高,其他醇溶性物质会被提出,致使黄酮类化合物溶
254
出率减少。而且随着乙醇浓度的增高,醇溶性色素
也不断被提取出来,影响测定。所以结合图 4,确定
乙醇浓度 90%最为合适。
213 料液比对费菜总黄酮得率的影响 在乙醇浓
度 90%,乙醇浸提液未调 pH,超声提取 50min,40℃
水浴浸提 1h的条件下,分别研究料液比 1∶30、1∶40、
1∶50、1∶60、1∶70 对费菜总黄酮得率的影响。实验结
果见图 5。
图 5 料液比对总黄酮得率的影响
由图 5 可见,随着浸提液用量的增加,总黄酮得
率不断增加,料液比为 1∶50 时得率达到最高,以后随
着浸提液用量的增加,得率反而下降。综合考虑提
取效果和浸提溶剂用量,以料液比 1∶50 最为合适。
214 浸提液 pH 对费菜总黄酮得率的影响 在乙
醇浓度 90%,料液比 1∶50,超声提取 50min,40℃水浴
浸提 1h的条件下,分别研究乙醇浸提液的 pH6、7、8、
9、10 对费菜总黄酮得率的影响。实验结果见图 6。
图 6 pH对总黄酮得率的影响
由图 6 可见,随着乙醇浸提液 pH 的增加,总黄
酮得率有所增加,在 pH为 9 时,得率最高,pH大于 9
时,得率迅速下降。这可能是由于碱性过强破坏了
黄酮母核,导致含量下降[12]。所以确定 pH9 最为
合适。
215 浸提温度对费菜总黄酮得率的影响 在乙醇
浓度 90%,乙醇浸提液 pH 为 9,料液比 1 ∶50,超声
50min,浸提 1h 的条件下,分别研究水浴浸提温度
40、50、60、70、80℃对费菜总黄酮得率的影响。实验
结果见图 7。
图 7 浸提温度对总黄酮得率的影响
由图 7 可见,随着浸提温度的升高,总黄酮得率
不断升高,当浸提温度高于 60℃时,得率升高不大,
所以取 60℃作为最佳浸提温度。
216 浸提时间对费菜总黄酮得率的影响 在乙醇
浓度 90%,乙醇浸提液 pH9,料液比 1 ∶ 50,超声
50min,水浴浸提温度 60℃的条件下,分别研究浸提
时间 1、2、3、4、5、6h 对费菜总黄酮得率的影响。实
验结果见图 8。
图 8 浸提时间总黄酮得率的影响
由图 8 可见,随着浸提时间的延长,总黄酮得率
不断升高,浸提时间高于 4h 时,得率变化不大,所以
最佳浸提时间以 4h为宜。
22 正交实验
221 正交实验结果 以乙醇浓度 90%,超声时间
50min,并以单因素实验结果为依据,设计料液比、乙
醇浸提液 pH、浸提温度、浸提时间为因素,安排四因
素三水平的正交实验,实验结果见表 2。
表 2 L9 ( 3
4 ) 正交实验结果
实验号 A B C D 得率( % )
1 1 1 1 1 4862
2 1 2 2 2 5123
3 1 3 3 3 526
4 2 1 2 3 5487
5 2 2 3 1 5421
6 2 3 1 2 5128
7 3 1 3 2 5351
8 3 2 1 3 5324
9 3 3 2 1 5052
k1 5082 5233 5105 5112
k2 5345 5289 5221 5201
k3 5242 5147 5344 5357
R 0263 0142 0239 0245
优水平 A2 B2 C3 D3
从表 2 中可见,各因素对实验指标的影响主次
顺序为: 料液比 > 浸提时间 > 浸提温度 > 浸提液
pH。四种因素的最佳组合为 A2B2C3D3,即料液比
1∶50,乙醇浸提液 pH9,浸提温度 60℃,浸提时间 6h。
通过正交实验结果,确定的最佳提取工艺为: 超
声时间 50min,乙醇浓度 90%,料液比 1∶50,乙醇浸提
液 pH9,浸提温度 60℃,浸提时间 6h。在此最佳工艺
条件下,实验重复三次,测定的平均总黄酮得率
为 5822%。
3 结论
实验采用干燥费菜叶粉为原料,以乙醇为提取
溶剂,采用超声波辅助提取,在单因素实验基础上,
用 L9 ( 3
4 ) 正交实验对费菜叶总黄酮提取的工艺参数
进行优化。结果表明较适宜的操作条件为: 超声时
间 50min,乙醇浓度 90%,料液比 1 ∶50,乙醇浸提液
( 下转第 257 页)
257
表 3 不同纳滤膜对纳滤效果的影响
截留相对分子量
( Da)
透水通量
( kg /h) 浓缩倍数
洋蓟素浓度( mg /L) 电导率( μs /cm)
提取液 浓缩液 提取液 浓缩液
NF1( 150) 532 264 2347 60726 343 252
NF2( 300) 940 372 2546 89042 320 138
NF3( 500) 925 364 2381 78683 320 112
NF4( 800) 1053 380 2517 74203 357 118
真空热浓缩 - 245 2368 47352 326 135
倍数并没有出现明显的增大。但是对洋蓟素产品的
截留率大大减小,产品的流失明显增多。因此,综合
考虑,选用 300Da分子量的膜可以满足生产的需要;
另一方面,在浓缩液的除盐方面,纳滤过程效果显
著。相比于传统的真空热浓缩,浓缩液的电导率数
值均大幅减少,提示纳滤后浓缩液中的盐类物质含
量大幅下降。
3 讨论
朝鲜蓟是目前国内开发较多的一个产品,但大
部分的研究集中在其作为初级的食品加工品上,将
朝鲜蓟花蕾加工成罐头、果脯等出口。将茎叶进行
深度开发,提取其中的洋蓟素、绿原酸等有效成分有
一定的技术难度。其一,因为其有效成分的含量、产
品灰分等指标在原材料来源上差异比较大,保持各
批次产品的质控有难度; 其二,产品所含的洋蓟素、
绿原酸等多酚类物质的结构不太稳定,在特定环境
下( 偏碱) 受热容易分解。采用现有的简单水沉、热
浓缩工艺操作,在产品品质上无法满足当前主流市
场的要求:洋蓟素≥5%,绿原酸≥15%,灰分 < 1%。
膜分离技术是近年来发展起来的一种高新技
术,在制药、海水淡化、环保、现代农业等行业均有应
用。目前,膜分离技术在美国、日本等发达国家被称
为第三次工业革命,已形成了相当大的产业规模。
膜分离具有操作温度低,耗能少; 适用面广,兼具分
离、浓缩等多项功能的特点,也广泛应用在当前的天
然产物分离提取研究中[5-7]。我们采用膜技术结合
层析的方法,有效地从朝鲜蓟叶中提取分离洋蓟素。
每批次的朝鲜蓟叶提取物产品,能确保其洋蓟素的
含量高( ≥5% ) ,灰分含量控制在 05%以下,产品水
溶性佳。并且膜分离技术的工艺相比起现有的传统
提取分离工艺方法,具有耗能小、效率高、绿色环保
的优点,适于产业化的规模应用。
参考文献
[1]宋曙辉,赵霖 朝鲜蓟的研究进展[J]长江蔬菜,2008
( 8b) : 5-8
[2]邵敏,张俊,程绍南 大孔吸附树脂对朝鲜蓟茎叶多酚类
化合物吸附性能的研究[J]食品科技,2007( 7) : 151-153
[3]霍超,宋曙辉,徐桂花 正交法微波提取朝鲜蓟总多酚的
工艺优化[J]江西农业学报,2009,21( 2) : 86-88
[4]杨海英,杜刚,杨阳,等 高效液相色谱法测定洋蓟叶中洋
蓟素含量[J]时珍国医国药,2009,20( 3) : 573-576
[5]姜忠义,吴洪 膜技术在中药有效部位和有效成分提取分
离中的应用[J]离子交换与吸附,2002,18( 2) : 185-192
[6]孙福东,王淑玲,王英姿 膜分离技术在中药提取与制剂
研究中的应用[J]齐鲁药事,2008( 4) : 226-228
[7]马利华,秦卫东,陈学红,等 膜技术分离纯化牛蒡多糖的
研究[J]食品工业科技,2009,30( 1) :
檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾檾
231-232
( 上接第 254 页)
pH9,浸提温度 60℃,浸提时间 6h,在该提取条件下,
费菜总黄酮的得率为 5822%。结合单因素实验结
果,在生产上浸提时间可以缩短为 4h,并不影响总黄
酮得率。
本实验仅对费菜叶中的总黄酮进行了粗提,接
下来要进行纯化,并对其功能性作进一步的研究。
参考文献
[1]王玮,王琳 黄酮类化合物的研究进展[J]沈阳医学院学
报,2002,4( 2) : 115-119
[2]李巧玲 黄酮类化合物提取分离工艺的研究进展[J]山西
食品工业,2003( 4) : 6-7
[3]姚渭溪 银杏中活性成分的提取工艺测定及其进展[J]中
草药,1995,26( 3) : 157
[4]杨新河,吕帮玉,毛清黎 槐花中芦丁的碱提酸沉法研究
[J]食品工业科技,2007( 4) : 183-185
[5]姚新生 天然药物化学[M]第二版 人民卫生出版社,
1988: 202
[6]张玉祥,邱蔚芬 CO2 超临界萃取银杏叶有效成分的工艺
研究[J]中国中医药科技,2006,13( 4) : 255-256
[7]贾韶千,吴彩娥,李艳霞 枸杞中黄酮类化合物的超声波
强化提取[J]农业机械学报,2009,40( 5) : 130-133
[8]董华强,宁正祥,崔志新,等 微波辅助提取多穗柯嫩叶黄
酮工艺研究[J]农业工程学报,2007,23( 2) : 213-217
[9]XIAO Weihua,HAN Lujia,SHI Bo Microwave - assisted
extraction of flavonoids from Radix Astragali[J] Separation and
Purification Technology,2008,62: 614-618
[10]苏东林,单杨,李高阳 酶法辅助提取柑桔皮总黄酮的工
艺优化研究[J]农业工程学报,2008,24( 4) : 240-245
[11]Malene S,Jan H C,John NPressurised liquid extraction of
flavonoids in onions[J] Method Development and Validation
Talanta,2009,80: 269-278
[12]陈华珍,陈建伟 费菜不同器官中总黄酮的含量比较及
其薄层鉴别[J]中医药学刊,2003,21( 11) : 1867
[13]林维宣,孙学谦,俗绍芳 紫外分光光度法测定山碴中总
黄酮的研究[J]大连轻工业学院学报,1993,12( 2) : 42-50
[14]杨喜花,陈敏,朱蕾,等 超声循环提取沙棘叶中总黄酮
的研究[J]农业机械学报,2006,37( 3) : 166-168
[15]李忠红,胡浩彬,廖学威,等 气相色谱-质谱法分析景天
三七挥发性成分[J]医药导报,2007,26( 10) : 1228-1229