全 文 ：文章编号：!#!$%%& ’())& *)+$)((#$)&
摘 要：以虎耳兰幼嫩叶片为外植体，接种于添加不同激素浓度配比的培养基上，筛选出适宜的不定芽诱导培养基、不定芽
增殖培养基和不定根诱导培养基。不定芽诱导培养基为 ! #$ %&’() * +,·- %. #/’’*) . +,·- %.；不定芽增殖培养基为
! #$ %&’() * +,·- %. #/’’*) . +,·- %. #*) (0 活性炭 1’23；不定根诱导培养基为 . 4 (! #/’’*) ( +,·- %. #
*) (0 ’2。试管苗先移入基质（5 4 6 泥炭 #( 4 6珍珠岩 #. 4 6 蛭石）中炼苗一周后，再移栽入基质（. 4 7泥炭 #( 4 7沙壤土）
中，成活率可达到 .** 0 。
关键词：虎耳兰；组织培养；叶片；不定芽
中图分类号：$8() (9 文献标识码：’
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球根花卉是人们广泛喜爱的花卉。随着人民生活水平的提高，要求花卉业能不断更新品种，生产大量
优质种苗。传统的球根花卉繁殖方法采用无性繁殖，繁殖系数低，且经过长期多代繁殖之后，病害积累等
原因会使种性下降，出现退化现象 V ! W。组织培养由于具有繁殖系数高、快速、可得到无病毒株等优点，在花
卉苗木生产上多被采用。据统计，用组织培养技术进行繁殖的花卉达到 !X(种以上 V ( W，几乎涉及了所有重
要的花卉品种，在一些球根花卉的繁殖上，应用尤为广泛，如百合、唐菖蒲、鸢尾等。
虎耳兰（+21-2&3456 278%97:6 ?9-YK）是石蒜科网球花属鳞茎植物，又名白花虎耳兰，白花网球花，白花
画刷花，原产非洲南部 V + W。虎耳兰既可观花又可观叶，上海地区初冬开花，花期可长达 (个月，其花、叶娇
嫩，秀丽大方，植株周年常绿，非常适于室内盆栽观赏。常用分株或播种繁殖 V & W，但上海地区不能产生种
子，繁殖非常慢。本文结果为虎耳兰的快速繁殖提供了一条新的可能途径。
! 材料与方法
! ! 材料
收稿日期：())+$!($(
作者简介：杨银萍（!%X($），女，山东临沂人，硕士；史益敏为本文通讯作者 K
虎耳兰的组织培养
杨银萍，史益敏，陶懿伟
（上海交通大学 农业与生物学院，上海 ()!!)!）
上海交通大学学报 ’ 农业科学版 *
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第 (( 卷 第 +期
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!! 上海交通大学学报 # 农业科学版 $ 第 ! ! 卷
供试材料为上海交通大学农业与生物学院实验实习场盆栽虎耳兰。
! # 外植体分化
选择生长旺盛的盆栽虎耳兰植株中春季萌发的幼嫩叶片，用自来水冲洗干净，然后在超净台上
用 %&’酒精润洗 ()*，用无菌水冲洗 ! 次，再于饱和漂白粉溶液中振荡洗涤 !) +,-，最后用无菌水冲
洗 ( . / 次后用无菌滤纸吸干，将叶片切成 )0 & 1+! 的外植体块，接种于 23 4 )0 5&’琼脂 4 (’蔗糖
4不同 5 6 78 和 988 浓度配比的诱导培养基中。每处理接种 /) 块，重复 ( 次。5 6 78 和 988 组合
如下：
: 6 ;：5 6 78)0 &+< = >（单位下同）4 988)0 !； : 6 !：5 6 78)0 & 4 988;0 )； : 6 (：5 6 78)0 & 4
988!0 )；: 6 /：5 6 78;0 ) 4 988;0 )；: 6 &：5 6 78!0 ) 4 988;0 )；: 6 5：5 6 78(0 ) 4 988;0 )；: 6 %：5 6
78!0 ) 4 988)0 ;；: 6 ：5 6 78(0 ) 4 988)0 ;。
! $ 壮苗增殖
将带有不定芽的外植体块切割成小块，接种到 23 4 )0 5&’琼脂 4 (’蔗糖 4不同 5 6 78 和 988
浓度配比 4不同浓度 8?的培养基上，每种培养基接种 !) 块，重复 ( 次。5 6 78和 988比例及 8?浓度
组合如下：2 6 ;：5 6 78!0 ) 4 988)0 ;；2 6 !：5 6 78!0 ) 4 988)0 ; 4 )0 !’ 8?；2 6 (：5 6 78)0 & 4
988!0 )。
培养 ! @，统计不定芽的增殖倍数（增殖倍数 A总芽数 =接种芽数），观察不定芽生长情况。
! % 生根
在无菌条件下，取以 2 6 ! 培养基获得的长势基本一致的 !0 & 1+ 以上的无根试管苗，接种在 ; =
!23 4 )0 5&’琼脂 4 ;0 &’蔗糖 4不同浓度的 988或 :78 4不同浓度 8?的培养基中，每种培养基接种 55
株，重复 (次。培养 !) @后统计各培养基中试管苗的生根率，/) @后测定根的生长指标（根数、根长、根冠
比）。988或 :78浓度及 8?浓度组合如下：3 6 ;：988)0 !；3 6 !：988)0 ! 4 )0 !’ 8?；3 6 (：:78)0 !；3 6
/：:78)0 ! 4 )0 !’ 8?。
! & 移栽
苗长出旺盛的根后，在室温下开瓶炼苗 !@，直接移栽入 ; = (泥炭 4 ! = (沙壤土的花盆中；或在室温下
炼苗 !@后，先移入 B（泥炭）：B（珍珠岩）：B（蛭石）A /：!：;的基质中，浇施 )0 ; ’ CD!EF/溶液（加几滴
D9F(），一周后再移入 ; = (泥炭 4 ! = (沙壤土的花盆中。
以上培养基 GD值调至 &0 左右；培养温度 !& H ! I，光照强度 ;&)) . !))) JK，每日光照 ;! L。
! 结果与分析
# ! 不定芽的诱导
将外植体块分别接种到 : 6 ;、: 6 !、: 6 (、: 6 /、: 6 &、: 6 5、: 6 %、: 6 培养基上，约 ;& @后外植
体均有明显增厚膨大。继续培养 % @后，外植体切口处出现少量愈伤组织，再继续培养 % @，在 : 6 %、: 6
培养基上的外植体上形成了不定芽；在 : 6 ;、: 6 !、: 6 (、: 6 /、: 6 &、: 6 5 培养基上出现的少量愈伤组织
继续长大，在外植体四周形成明显增大的愈伤组织块，再继续培养 () @，: 6 ;、: 6 !、: 6 ( 培养基上的愈
伤组织块分化出少量的不定芽，而 : 6 /、: 6 &、: 6 5 培养基上的愈伤组织块继续长大，若再继续培养多
逐渐褐化，极少能分化出不定芽，有些还出现了不定根的分化。统计以上培养基外植体的不定芽诱导率
M不定芽诱导率 A出芽的外植体数 =（接种的外植体数 6污染的外植体数）N，并观察不定芽的诱导情
况。结果见表 ;。
!!第 # 期
表 ! 不同激素水平与不定芽的诱导
#$%& ! ’((&)*+ ,( -,./,0& ,0 +-,,* 1023)*1,0
注：! 出芽极少，长势差； 出芽较少，长势一般； 出芽稍多，长势稍好； 出芽多，长势较好，但有白化苗； 出芽多，
生长旺盛，无白化苗（下表均同）。 #$%&’ ! (&)*% *+$$%* ),- .)- /0$1%+2 (&** *+$$%* ),- 3$44$, /0$1%+2 ) 5&1 *+$$%* ),- /$$-
/0$1%+2 4$0& *+$$%* .6% $336007,/ ).,$04)( 2 4$*% *+$$%* ),- .&*% /0$1%+ 8 %+& *)4& )* .&($19 :
由表 $可知，不同 % & ’(和 )((组合对不定芽诱导率差异显著。培养基 * & +和 * & ,显著增加了不
定芽的诱导率，不定芽诱导率达到 $--.和 /.，但前者不定芽的生长势比后者差。分析结果认为，培养基
* & ,即 % & ’(和 )((浓度分别为 !0 -和 -0 $时最有利于虎耳兰不定芽的诱导。
! ! 不定芽增殖培养基的筛选
由表 !可知，1 & $和 1 & !培养基显著增加了不定芽增殖倍数，其中 1 & !培养基中不定芽发育良
好，呈深绿色，生长健壮、旺盛，经几次继代后，可形成大量不定芽；1 & $培养基中的不定芽长势较 1 & !
为差，黄绿色，生长较慢；1 & #培养基显著降低了不定芽增殖倍数，同时愈伤组织易分化根。再继续培养
一段时间，上述情况基本稳定。
表 4 不同培养基与不定芽的增殖
#$%& 4 ’((&)*+ ,( 21((&.&0* +3$+*.#*&+ ,0 $32+ /3%*15%1)#*1,0
! # 生根培养基的筛选
无根试管苗接入生根培养基，一周后 2 & !、2 & 3培养基中的植株分化出不定根；两周后 2 & $、2 & #
培养基中的植株也分化出少量不定根。
表 6 不同培养基与不定根的诱导
#$%& 6 ’((&)*+ ,( 21((&.&0* +3$+*.#*&+ ,0 .,,* 1023)*1,0
从表 #可知，2 & !培养基显著增加了不定根诱导率以及根数、根长和根冠比，生根效果最佳。
! $ 生根苗移栽
试管苗长出大量旺盛的根，苗高在 / 45以上，即可进行炼苗移栽。实验中发现，室温下开瓶炼苗 ! 6
后，若直接移入 $ 7 #泥炭 8 ! 7 #沙壤土的基质中，一周后统计试管苗移栽成活率仅为 ,3.；若先移入 9
（泥炭）: 9（珍珠岩）: 9（蛭石）; 3: !: $的基质中，浇施 -0 $. <=!>?3溶液（加几滴 =)?#），一周后再移入
$ 7 # 泥炭 8 ! 7 # 沙壤土的花盆中，一周后统计试管苗移栽成活率可达到 $--.。这与 @ ABCD 和 E 9BF
2GB6DFH/ I报道的炼苗移栽方式相类似。
培养基
1D6JB * & $ * & ! * & # * & 3 * & / * & % * & , * & +
不定芽诱导率 7 .
(6KDFGJGJLMN NOLLG JFJGJBGD6 PDQ4DFGBRD ,- 4 33 6 $$0 + O !!0 / R !+ S #$ D / C $--B
不定芽生长情况
TQLUGO NGBGD LS NOLLGN 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8
杨银萍，等V虎耳兰的组织培养
培养基
1D6JB
接种芽数
@LGBW LS JFJGJBGJFR NOLLGN 7 )L0
总芽数
@LGBW LS SJFBW NOLLGN 7 )L0
增殖倍数
1MWGJPWD
不定芽长势
TQLUGO NGBGD LS NOLLGN
1 & $ $+ %+ #0 +B 8 8 8
1 & ! !3 3 #0 B 8 8 8 8
1 & # !- #% $0 +C 8
培养基
1D6JB
不定根诱导率 7 .
ALLG JF6M4JFR PDQ4DFGBRD
根平均数
(KDQBRD LS QLLGBRD
根平均长度
(KDQBRD LS QLLG WDFRGO 7 45
根冠化 X根重：苗重 Y
ABGJL LS QLLG UDJROG GL
NOLLG UDJROG
2 & $ 3$4 #0 ##C !0 %!4 -0 !-C4
2 & ! $--B 30 +B %0 ,!B -0 #,B
2 & # $$6 !0 334 $0 #6 -0 $#4
2 & 3 +30 +C #0 ##C /0 $C -0 !/C
!# 上海交通大学学报 $ 农业科学版 % 第 ! ! 卷
图版 虎耳兰叶片培养再生体系
&’()* +*,*-*.()/0- 1.02 ’*(3*4 01 56 !#$%&’6
76 叶片启动培养 8-/)/()/-, 01 ’*(3*4 ! 9 6 芽诱导 :;00)4 /-<=>/-, ?6 芽增殖 :;00)4 2=’)/@’/>()/0-
A6 生根 +00)/-, B6 再生植株移栽 C02*-4)/>()/-, .*,*-*.()/0- @’(-)’*)4
结论与讨论
在培养时，虎耳兰的幼嫩叶片细胞具有旺盛的分生能力，不需形成较大的愈伤组织块，在较小的愈伤
组织块上就可形成不定芽，而后生的不定芽可从不定芽的基部不断发生，形成不定芽丛。这与很多其它球
根花卉的组培情况相似 D B E F G。
研究表明，HI在球根花卉组织培养中有一定作用。:)*/-/)J等 D K G在水仙鳞片基部产生子球的继代培养
中，加 HI的再生子球要比不加 HI的高一至几倍。据金波等 D 7# G实验，将唐菖蒲芽丛转入含 #6 !L E 76 #L
HI的培养基中，对幼苗的生长有明显促进作用，表现为成活率提高，生长速度加快，且幼苗茁壮、颜色浓
绿。本实验证实，适宜浓度的 HI促进虎耳兰的壮苗增殖，同时促进试管苗的生根。
虎耳兰试管苗较易移栽成活，两种炼苗方式移栽成活率差异较大，后者移栽成活率可达到 7##L，前
者只有 M?L，这可能是由于磷酸盐有利于球茎的生长膨大 D 77 G，且虎耳兰喜酸性土壤，加几滴 5NO，能够提
高试管苗的适应能力，待其生长更加旺盛健壮时再移栽，成活率自然较高。
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