全 文 ：生 物 工 程 Vol . 33 , No . 05 , 2012
2012年第5期
甜叶菊（Stevia rebaudiana Bertoni）简称甜菊、甜
草、甜茶、蜜菊等，为菊科甜叶菊属多年生草本植物，
原产南美巴拉圭一带，中国于1976年引种成功[1]。甜
叶菊富含糖苷类物质，其糖苷具有高甜度（为蔗糖
250～450倍）、低热量（仅为蔗糖的1/300）的特点，在
体内不参与代谢、不蓄积、无毒性，被誉为是继甘蔗、
甜菜之后的世界第三大糖源。甜叶菊具有一定的药
理作用，对糖尿病、心脏病和高血压等有较好的疗
效，现已广泛应用于保键饮料、低热量食品和医药行
业中[2]。目前，甜叶菊在国内外的研究仍然处于起步
阶段，如栽培、离体快繁、糖苷鉴定及优良单株筛选、
品种选育等方面[2-8]，而日新月异的分子技术在甜叶
菊上的研究，如优异基因的分子标记、种质资源指纹
图谱构建却鲜有报道，这给从事甜叶菊研究的各类
人员，特别是期望品种得到保护的育种家提出新的
课题。因此，在分子水平上开展这方面的研究已成为
当前的首要任务。鉴于随机扩增多态性DNA标记
（RAPD）技术具有操作简便、快速、省时省力等优点，
一经问世便在诸多植物的品种鉴定、种属特异性研
究、易混淆品种鉴别等方面发挥重要作用。本文拟首
先对影响甜叶菊RAPD技术体系的7个主要因素进行
优化，建立稳定的RAPD反应系统，既为品种的指纹
胡能兵1，何克勤1，张子学1，林 平1，隋益虎1，崔广荣1，2，*
（1.安徽科技学院植物科学学院，安徽凤阳 233100；
2.安徽省甜叶菊工程技术研究中心，安徽蚌埠 233000）
摘 要：以甜叶菊为试材，对影响其随机扩增多态性DNA标记反应体系的7个因子进行优化，同时对来自国内外的12
个品种进行亲缘关系分析。 结果表明，20μL的优化体系包括：双蒸水13.6μL，10×Buffer（含15mmol/L MgCl2）溶液3μL，
2.5mmol/L的dNTPS 1.2μL，10μmol/L的引物1μL，20ng的模板DNA 1μL，1U Taq聚合酶 ； 热循环程序为 ：94℃预变性
4min，94℃变性30s，35℃退火30s，72℃延伸1min，40个循环，最后72℃延伸7min。 聚类图结果表明，品种间的遗传距离
变异范围为0.12～0.88，在遗传距离为0.37时，8个引物可将12个品种分为四大类，来自日本的2个品种与国内品种关系
较远。
关键词：甜叶菊，随机扩增多态性DNA，优化，亲缘关系
Study on optimization of random amplified polymorphic DNA reaction
system and genetic relationship in Stevia rebaudiana Bertoni
HU Neng-bing1，HE Ke-qin1，ZHANG Zi-xue1，LIN Ping1，SUI Yi-hu1，CUI Guang-rong1，2，*
（1.College of Plant Science，Anhui Science and Technology University，Fengyang 233100，China；
2.Anhui Province Research and Technology Center of Stevia rebaudiana Bertoni，Bengbu 233000，China）
Abstract：Optimization of 7 factors of random amplified polymorphic DNA（RAPD） reaction system and relationship
analysis of 12 kinds of cultivars in Stevia rebaudiana Bertoni were studied. The results indicated that，optimization
system of 20μL included：13.6μL of ddH2O，3μL of 10×Buffer with 15mmol/L MgCl2，1.2μL of 2.5mmol/L dNTPS，
1μL of 10μmol/L Primer，1μL of 20ng DNA and 1unit of Taq polymerase；thermal cycle program was：1 cycle of
denaturing for 4min at 94℃，40 cycles of denaturing for 30s at 94℃，annealing for 30s at 35℃，primer extension
for 1 min at 72℃ ，and the last cycle of extension for 7min at 72℃ .The result of clustering showed that the
genetic distance among 12 cultivars ranged from 0.12 to 0.88，and could be classified into four groups when
the genetic distance was 0.37，while two cultivars from Japan was far away from Chinese cultivars.
Key words：Stevia rebaudiana Bertoni；random amplified polymorphic DNA；optimization；genetic realtionship
中图分类号：TS201.1 文献标识码：A 文 章 编 号：1002-0306（2012）05-0159-05
收稿日期：2011－03－16 * 通讯联系人
作者简介：胡能兵（1980-），男，在职博士，讲师，主要从事园艺植物
组织培养及育种工作。
基金项目：安徽省教育厅省级重点自然科学基金项目（KJ2010A073）；
蚌埠市科技计划项目（科字051）。
甜叶菊随机扩增多态性DNA技术优化
及亲缘关系研究
159
DOI:10.13386/j.issn1002-0306.2012.05.016
Science and Technology of Food Industry 生 物 工 程
2012年第5期
图谱构建奠定前期基础，也为其它分子技术的优化
乃至后期的应用提供参考。
1 材料与方法
1.1 实验材料
甜叶菊杂交新品种“皖甜1号”等6个亲本株 由
蚌埠永生农业科技有限公司提供；RAPD体系中使用
的Mg2+、dNTPS和Taq酶 购自北京康为世纪公司；引
物 由上海Invitrogen公司合成；用于亲缘关系分析
的品种材料 见表1。
1.2 实验方法
1.2.1 DNA提取 采用胡能兵的CTAB法[9]。取2μL
DNA于0.8%的琼脂糖凝胶板上进行电泳检测。
1.2.2 实验设计 PCR体系优化采用单因素实验，
按照下面顺序依次开展：模板DNA浓度、dNTPS和
Mg2+浓度、引物浓度、退火温度、Taq酶浓度和循环次
数等，上述因子的处理水平见表2，下一个因子的优
化是基于上一个因子在实验范围内获得理想结果的
基础上进行。
1.2.3 基本反应体系 用于RAPD反应的20μL基本
反应体系为：双蒸水12.2μL，10×Buffer（含15mmol/L
MgCl2）溶液4μL，2.5mmol/L的dNTPS 1.6μL，10μmol/L
的引物1μL，20ng的模板DNA 1μL，1U Taq聚合酶。其
中，用于优化反应的 RAPD引物分别为 AZ：
5AGGCTAGGCT3和BG：5CGCAGACAGT3。
1.2.4 PCR扩增反应 基本的热循环程序为：94℃
预变性4min，94℃变性30s，35℃退火30s，72℃延伸
1min，40个循环，最后72℃延伸7min。扩增产物用0.5×
TBE在1.5%琼脂糖凝胶板上电泳，加样量为6μL。电
泳结束后用BIORAD凝胶成像系统进行拍照。
1.2.5 引物筛选 用日本品种“守甜3号”和国内品
种“ST”对100条RAPD引物进行筛选，入选的是两品
种同时能够扩增及“守甜3号”未扩增出条带而“ST”
能扩增出条带的引物。
1.2.6 亲缘关系分析 用上述引物对12个品种同时
进行扩增，对扩增后的条带进行0、1标记，有带的记
为1，无带的记为0，形成0/1矩阵。根据Nei和Li（1979）
的方法，用DPS统计软件中的类平均法（UPGMA）计
算甜叶菊品种的亲缘关系。
2 结果与讨论
2.1 DNA提取质量结果
随机取6个亲本单株的叶片提取DNA后进行琼
脂糖检测。由图1可知，所提取的DNA带型整齐，纯度
高，无降解现象，经紫外分光光度计检测，DNA纯度
较高，其浓度达到20ng/μL。
2.2 RAPD反应体系的优化分析
2.2.1 模板DNA和dNTPS浓度的优化 以AZ、BG2个
引物对4种不同浓度的模板DNA、dNTPS进行筛选，结
果见图2、图3。在10ng的DNA浓度下，AZ引物所扩增
的条带较为模糊，呈弥散状，而AZ、BG在其余浓度下
表现条带数目一致、产量相当，故入选20ng的模板
DNA浓度；不同dNTPS浓度对RAPD条带数目、产量
影响较大。当dNTPS（2.5mmol/L）为0.4μL时，AZ引物
未能扩增出条带，当dNTPS为1.6μL时，AZ引物扩增
的条带类型减少（图3箭头所示），综合比较0.8、1.2μL
时的dNTPS在两种引物的表现，以后者更为合适。
2.2.2 Mg2+和引物浓度的优化 分别用4种Mg2+和引
物浓度对引物AZ、BG进行扩增，结果见图4、图5。随
表1 不同甜叶菊品种及来源
Table 1 Different cultivars and origins of
Stevia rebaudiana Bertoni
序号 品种名称 来源 序号 品种名称 来源
a 守甜2号 日本 g B4 中国
b B6 中国 h 加3 中国
c 普A 中国 i H2 中国
d 守甜3号 日本 j B18 中国
e B1 中国 k 成选 中国
f ST 中国 l mg 中国
表2 RAPD体系的因子及其水平
Table 2 Factors and levels of RAPD system
因子 水平（μL）
DNA（20ng/μL） 0.5 1.0 1.5 2.0
dNTPS（2.5mmol/L） 0.4 0.8 1.2 1.6
MgCl2（15mmol/L） 1.0 2.0 3.0 4.0
引物（10μmol/L） 0.25 0.5 1.0 1.5
退火温度（℃） 30 30.8 31.8 33.2 35.2 37.138.6 40.4 42.3 43.5 44.4 45
Taq酶（U） 0.25 0.5 1.0 2.0
循环量（次） 30 35 40 45
图1 利用CTAB法提取的DNA电泳图
Fig.1 DNA electrophoresis map by CTAB method
图2 不同DNA浓度对AZ引物带型的影响
Fig.2 Effect of different DNA density on RAPD band
1 2 3 4
图3 不同dNTPS浓度对AZ引物带型的影响
Fig.3 Effect of different dNTPS density on RAPD band
1 2 3 4
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着Mg2+（15mmol/L）、引物浓度（10μmol/L）添加量的增加，
条带数和产物量也随之增加，但3.0μL和4.0μL的Mg2+
之间无明显差异，低浓度的AZ引物会导致条带缺失
（图5箭头所示），当引物为1.0μL和1.5μL时，处理的产物
量相当，故选择3.0μL的Mg2+和1μL的10μmol/L引物为佳。
2.2.3 退火温度及Taq浓度的优化 12种退火温度
的优化结果见图6。在实验区间内，随着退火温度的
提高，条带数减少（图6箭头所示a），产物量降低（图6
箭头所示b）。为了进一步验证退火温度对反应体系
的稳定性，结合Taq浓度进行体系的优化，选择了35、
37℃这两种温度和4种Taq浓度进行实验，结果见图7、
图8。从退火温度方面考虑，随着温度的提高，小片段
比例增加，大片段比例减少，且体系不稳定，表现为
条带的缺少（图8箭头所示c、d），而35℃条件下体系
稳定；从Taq浓度考虑，当Taq为0.25U时，都未能扩增
出条带，当Taq为0.5U，引物AZ未能扩增出条带，引物
BG的条带模糊，说明扩增的产物量较少，综合比较
1.0U和2.0U的表现，确定前者为适合的Taq浓度。
2.2.4 循环数的优化 设计4个不同次数的循环进
行扩增，在2种引物中的表现见图9。当循环数为30
时，引物AZ未扩增出条带，而引物BZ扩增出3条带，
将循环数提高至35时，2种引物都扩增出条带，数目
与40、45次循环一致，但产物量明显减少，而40次循
环和45次循环扩增在2种引物中未见差异，故选择40
次循环。
2.2.5 引物筛选及扩增结果 由表3及图10、图11可
知，8个引物共扩增出36条带，多态性条带数为35，多
态性比例为97.2%，这主要是由于日本品种与国内育
种家所选育的品种亲缘关系较远所致。同时，由于引
物AZ未能在d品种“守甜3号”中扩增出引物（图11箭
头所示），故利用该引物可在分子水平上鉴别“守甜3
号”与其它11个品种。
2.2.6 品种亲缘关系分析 根据8个引物的扩增结
果，用DPS软件绘制出甜叶菊12个品种的亲缘关系聚
类图（图12）。由图12可知，品种内遗传距离的变异范
图4 不同Mg2+浓度对带型的影响
Fig.4 Effect of different Mg2+ density on RAPD band
AZ（1~4）、BG（5~8）
1 2 3 4 5 6 7 8
图5 不同引物浓度对带型的影响
Fig.5 Effect of different primer density on RAPD band
AZ（1~4）、BG（5~8）
1 2 3 4 5 6 7 8
图7 不同Taq浓度对带型的影响
Fig.7 Effect of different Taq density on RAPD band under
temperature of 35℃
（35℃）AZ（1~4）、BG（5~8）
1 2 3 4 5 6 7 8
图6 不同退火温度对AZ引物带型的影响
Fig.6 Effect of different annealing temperature on RAPD band
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
b
a
图8 不同Taq浓度对带型的影响（37℃）
Fig.8 Effect of different Taq density on RAPD band under
temperature of 37℃
AZ（1~4）、BG（5~8）
1 2 3 4 5 6 7 8
c
d
图9 不同循环数对RAPD带型的影响
Fig.9 Effect of different cycles on RAPD band
AZ（1~4）、BG（5~8）
1 2 3 4 5 6 7 8
表3 引物的扩增结果
Table 3 Amplification results of different primers
引物 碱基序列 多态性带数 总带数 多态性位点比例（%）
B CGGAAGAGCC 4 5 80
F TGACTGCTCC 3 3 100
U GGCATCCAAT 2 2 100
AE CCCGGTGGGT 5 5 100
AG CCGTCCCGCA 7 7 100
AL GGAGGGTCAC 4 4 100
AW AGTTCGCCAC 4 4 100
AY GCGCCACGTA 6 6 100
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图10 引物B扩增结果
Fig.10 Amplification results of primer BG
a b c d e f g h i j k l
围为0.12～0.88，国内品种与来自日本的两个品种，尤
其是与“守甜3号”的亲缘关系较远。
当遗传距离为0.37时，可将上述12个甜叶菊品种
分为四类。第一类是来自日本的品种“守甜3号”，第二
类是品种“ST”，第三类包括两个品种，分别为“守甜2
号”和“加3”，其余的8个品种则聚为第四类。从聚类分
析结果可知，来自日本的品种和中国的品种亲缘关系
较远，这也为系统育种和杂种优势利用提供基础。
3 结论
任何生物种都具有特定顺序和结构的遗传物
质——DNA，RAPD技术就是通过分析遗传物质DNA
经过PCR扩增的多态性来诊断生物体内在基因排布
与外在性状表现规律的一项技术，该技术只需要一
个长度为10bp的核苷酸为引物，其使用不必预先知
道DNA序列的信息。因此，可以在对被检对象无任何
分子生物学资料的情况下对其基因组进行分析[10]。
许多研究发现，RAPD带谱对实验程序和条件的
变化很敏感。一般影响条带的数目、大小和强度的因
素有DNA条件和含量、引物浓度、dNTPS和Mg2+浓度、
循环数、退火温度、Taq酶浓度等[10]。本实验采用单因
素实验，以上述7个因子对甜叶菊RAPD反应体系开
展优化研究，探索合适的反应体系。通过对RAPD反应
体系的7个因子的优化表明，适合甜叶菊20μL的
RAPD反应体系为：双蒸水13.6μL，10×Buffer（含15mmol/L
MgCl2）溶液3μL，2.5mmol/L的dNTPS 1.2μL，10μmol/L
的引物1μL，20ng的模板DNA 1μL，1U Taq聚合酶；热
循环程序为：94℃ 预变性4min，94℃变性30s，35℃退
火30s，72℃延伸1min，40个循环，最后72℃延伸7min。
利用该体系可以获得稳定的扩增产物。
近10年来，各种不同分子标记技术在不同植物
上的应用见诸报端，其优化方法也各不相同[12-15]。如
辣椒RAPD优化的单因素实验法（马艳青，2001）和回
归分析法（张子学等，2005），万寿菊RAPD优化的正
交设计法（沈一岚等，2006），金弹RAPD优化的单因
素实验结合均匀设计法（张宏梓等，2009），天门冬
ISSR优化的单因素实验和正交设计法（欧立军等，
2011），以单因素实验法和正交设计法居多。在上述
优化方法中，单因素实验法直观、明了，但对于各因
素在优化体系中的重要性大小及因素之间的互作无
法计算，其结果是局部最优[14]；正交设计法属于多因
素多水平实验方法，可以用较少的处理组合数研究
较多的实验因素，可估计各因素对结果的重要性大
小，其最优组合仍然属于具体实施的实验组合中；回
归分析法则通过建立方程，对入选因子进行优化分
析，比较因子之间的作用大小和互作效应的影响，获
取稳定的优化体系，该体系中因子的最优水平往往
并非实验所设计的，因此，该设计方法对统计学知识
的应用提出了更高的要求。
基于稳定的RAPD反应体系，本实验将12个甜叶
菊品种进行了亲缘关系聚类。品种间的遗传距离变
异范围为0.12～0.88，在遗传距离为0.37时，可将12个
品种分为四类，其中来自日本的甜叶菊品种与国内的
品种遗传距离较远，这种分析结果可为甜叶菊的系
统育种和优势杂交育种工作提供重要的理论依据。
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图11 引物AZ扩增结果
Fig.11 Amplification results of primer AZ
a b c d e f g h i j k l
图12 12个品种亲缘关系聚类图
Fig.12 Clustering map of relationship in 12 kinds of cultivars
守甜2号
加3
B6
普A
B1
B18
mg
B4
H2
成选
ST
守甜3号
0.00 0.18 0.35 0.53 0.71 0.88
（下转第166页）
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2.6 在4℃冷藏发酵乳中菌株的产酸能力
除了维持较高的活菌数，评价冷藏期间酸奶的
另一指标是看其是否拥有一定的细胞活力以及酸奶
的后酸化程度。因此，本研究定期监测了发酵乳在冷
藏期间的产酸活力，来反映它们的细胞活力。结果如
表4和图5所示。
图5给出了发酵乳在冷藏期间pH和酸度变化的情
况。随着保存时间的延长，发酵乳的滴定酸度缓慢上
升，1-A的滴定酸度从起始时的66.5°T上升到15d时的
136.5°T，pH稳定下降，pH从起始时的4.21下降到15d时
的3.72。1-B的滴定酸度从68°T上升到103.6°T，pH从
4.23下降到4.05。实验结果表明，发酵剂中的活体细
胞仍然维持一定的酸化活力，其中1-B的后酸化现象
明显低于1-A，说明如果采用发酵剂B来制作酸奶，其
产品在冷藏过程中后酸化可以得到一定的改善。
3 结论
发酵剂B对基质中胆固醇的脱除率大于发酵剂A
对基质中胆固醇的脱除率，其差异显著（P<0.05）。与发酵
剂A相比，发酵剂B后酸化程度低。由发酵剂B调制的发
酵乳在4℃条件下存放15d后酸度为103.6°T，乳酸菌活菌
数为2.6×107cfu/mL，高于标准的最低限制（≥106cfu/mL）。
在降胆固醇和抑制后酸化意义上，发酵剂B能够取代
发酵剂A用于低胆固醇发酵奶的生产加工中。
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表3 菌株在4℃冷藏发酵乳中的存活能力（n=2）
Table 3 Viability of strains grown in fermented milk and stored
at 4℃（n=2）
菌株代号 0d 15d 存活率（%）
1-A 8.6×108 1.6×107 80.63
1-B 7.5×108 2.6×107 83.55
表4 发酵乳在4℃冷藏期间酸度变化（n＝3）
Table 4 Changes in acid production of in fermented milk and
stored at 4℃（n＝3）
菌株代号
0d 5d 10d 15d
pH °T pH °T pH °T pH °T
1-A 4.21 66.5 3.78 121.5 3.74 133.7 3.72 136.5
1-B 4.23 68 4.13 94.3 4.07 98.6 4.05 103.6
图5 发酵乳在4℃冷藏期间滴定酸度和pH的变化
Fig.5 Changes in titration acidity and pH in fermented milk
and stored at 4℃
时间（d）
0 5 10 15
4.3
4.2
4.1
4
3.9
3.8
3.7
3.6
3.5
3.4
pH
160
140
120
100
80
60
40
20
0
酸
度
（
°T
）
pH（1-A）
pH（1-B）
酸度（1-A）
酸度（1-B）
≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥≥
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