全 文 ：食 品 科 技
FOOD SCIENCE AND TECHNOLOGY提取物与应用
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2015年 第40卷 第11期
箬叶(Indocalames leaves)是禾本科竹亚科箬竹
属植物叶的总称。我国箬叶资源丰富，在安徽、
浙江等各地均有分布。箬叶四季可采，晒干或鲜
收稿日期：2015-06-16
基金项目：湖北省自然科学基金项目(2013C111)。
作者简介：乐薇(1979—)，女，硕士，副教授，研究方向为生物分析。
用箬叶同时具有食用和药用功效[1]。箬叶具有防
腐、杀菌、抗癌、抗炎症、抗溃疡、抗肿瘤等作
用，可广泛应用于食品、医药及日化用品等[2-5]。
乐 薇，张思思
(武汉工商学院环境与生物工程学院，武汉 430065)
摘要：考察了超声波法提取的箬叶总黄酮的体外抗氧化活性，研究了箬叶总黄酮对ABTs、
DPPH自由基、羟基自由基、亚硝基自由基、超氧阴离子自由基的清除能力，并以常用的抗氧
化剂Vc和芦丁作为对照品进行比较。实验表明，对于ABTs、DPPH自由基，箬叶总黄酮的清除
率明显高于Vc和芦丁，其IC50为Vc和芦丁的1/2~1/7；对于羟基、亚硝基自由基，在浓度相对较
低时，箬叶总黄酮的清除自由基能力与Vc和芦丁相当，当浓度增加80 μg/mL，箬叶总黄酮的
清除自由基能力明显强于Vc和芦丁；但对超氧阴离子自由基，箬叶黄酮提取物清除率低于Vc对
照品。箬叶总黄酮提取物大多表现出强于Vc和芦丁的体外抗氧化活性，作为天然抗氧化剂具有
较好的应用前景。
关键词：箬叶；总黄酮；超声波提取；体外抗氧化活性
中图分类号：TS 219 文献标志码：A 文章编号：1005-9989(2015)11-0204-05
Antioxidant activities in vitro of total flavonoids from Indocalamus leaves
YUE Wei, ZHANG Si-si
(Wuhan Technoligy and Business University, Wuhan 430065)
Abstract: The antioxidant activities in vitro of flavonoids from Indocalamus leaves by ultrasonic extrac-
tion was studied. The scavenging capacity of flavonoids from Indocalamus leaves on ABTs radical, DPPH
radical, superoxide anion radicals, hydroxyl radicals, free radicals were investigated by comparing with Vc
and lutin. The results showed that, for ABTs, DPPH radical scavenging, the flavonoids from Indocalamus
leaves was significantly higher than Vc and rutin and it is 1/2~1/7 times of IC50 in Vc and rutin. For hydroxy,
nitroso radicals, at the low concentrations, the ability of scavenging radical from Indocalamus leaves flavo-
noids is about the same as Vc and rutin, when concentrations was 80 µg/mL, free radical scavenging ca-
pacity of Indocalamus leaves flavonoids were more great. But for superoxide anion radical, the scavenging
capacity of Indocalamus leaves flavonoids extract clearance below the Vc reference substance. Most of
Indocalamus leaves flavonoids extract exhibit stronger antioxidant activity in vitro than Vc and rutin, so as
a natural antioxidant that it has great prospect.
Key words: Indocalamus Leaves; total flavonoid; ultrasonic extraction; antioxidant activity in vitro
箬叶总黄酮体外抗氧化活性的研究
DOI:10.13684/j.cnki.spkj.2015.11.040
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《本草纲目》也曾记载箬叶具有清热、补血、解
毒、消肿等多种功效，可以治疗小便不利、吐
血、下血等疾病[2]。总黄酮是箬叶中的重要活性成
分，已有研究者对箬叶黄酮类化合物的提取与测
定等进行了研究[6-12]。研究表明，总黄酮具有明显
的抗氧化活性[13-17]，但对箬叶黄酮类化合物的体
外抗氧化活性的研究还未完全涉及到。为了深入
研究箬叶药理活性的物质基础，提高箬叶的附加
值，本文研究了箬叶总黄酮清除ABTs、DPPH自
由基、羟基等自由基的能力，为箬叶的进一步开
发利用提供参考。
1 实验材料与仪器
1.1 材料与试剂
新鲜箬叶：采摘自湖北恩施武陵山区。
芦丁标准品：中国药品生物制品鉴定所；
Vc标准品、硝酸铝(AR)：天津市科密欧有限公
司；亚硝酸钠：洛阳市化学试剂厂；氢氧化钠、
ABTs[2,2-联氮-双(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)]
(西亚试剂)、过硫酸钾、水杨酸：天津市凯通化学
试剂有限公司；DPPH(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼
自由基)(西亚试剂)、硫酸亚铁：天津市北方天医
化学试剂厂；30%的H2O2溶液：国药集团化学试
剂有限公司；对氨基苯磺酸：济宁汇德化工有限
公司；盐酸萘乙二胺：上海利域生物科技有限公
司；邻苯三酚：济宁宏明化学试剂有限公司；三
羟甲基氨基甲烷：天津市光复精细化工研究所；
以上试剂均为分析纯。
1.2 仪器
KQ-100E型超声波清洗器：昆山市超声波仪
器有限公司；TD25-WS台式多管自动平衡离心
机：湘麓离心机仪器有限公司；752型紫外可见
分光光度计：上海光谱仪器有限公司；SHB-Ⅲ循
环水式多用真空泵：郑州长城科工贸有限公司；
RE-52系列旋转蒸发器：上海亚荣生化仪器厂。
2 实验方法
2.1 箬叶总黄酮的提取
新鲜箬叶洗净后干燥，粉碎，过18目筛，-18
℃下储存备用。准确称取2.5 g的箬叶粉末，采用
超声波法提取，提取溶剂为85%的乙醇，料液比
为1:40(g/mL)，提取时间为1 h，提取过程中监测在
40 ℃以下。提取液减压过滤，浓缩至1/2体积后，
在3000 r/min的转速下离心10 min，移取上清液即
可得到箬叶总黄酮提取原液。经含量测定后，用
30%乙醇稀释成20、40、60、80、100 μg/mL的箬
叶总黄酮提取液。
2.2 箬叶总黄酮含量的测定
准确称取15.00 mg芦丁标准品，用30%乙醇
充分溶解后移入100 mL容量瓶中然后定容至刻
度，配制0.15 mg/mL的芦丁标准品溶液。分别移
取上述芦丁标准品溶液0、0.5、1.0、2.0、3.0、
4.0 mL置于10 mL刻度比色管中，各加30%乙醇至
5 mL，加入0.3 mL 5%亚硝酸钠溶液充分摇匀后静
置6 min，再加0.3 mL的10%硝酸铝溶液充分摇匀，
静置6 min，加入4 mL的4%氢氧化钠溶液，用30%
乙醇定容至10 mL充分摇匀，静置12 min，以试剂
空白为参比，于510 nm波长下测定各溶液的吸光
度值，以芦丁浓度为横坐标，吸光度为纵坐标绘
制标准曲线，得回归方程为A=0.0105C+0.0017，
R2=0.9999。
移取1 mL箬叶黄酮提取原液，按照制作芦丁
标准曲线的步骤操作，计算黄酮含量。
2.3 箬叶总黄酮体外抗氧化活性研究方法[18-20]
2.3.1 黄酮清除ABTs·自由基的活力测定 实验
原理：ABTs是一类化学性自由基引发剂，被氧化
后生成一种稳定的蓝绿色阳离子ABTs·自由基。
ABTs·与抗氧化剂反应时生成无色的ABTs。据
此原理检测，在734 nm波长处最大吸收峰的吸光
度值A的变化来评价抗氧化活性即测定黄酮清除
ABTs·自由基的能力。
实验步骤：分别加入不同浓度(0、20、40、
60、80、100 μg/mL)的箬叶总黄酮提取液0.1 mL，
再加入5 mL的ABTs工作溶液充分混合均匀，室温
下避光反应10 min，然后在734 nm处测定吸光度
At。以ABTs工作液作空白吸光度为Ar，箬叶总黄
酮提取液0.1 mL、无水乙醇5 mL混合均匀后作参
比吸光度为A0。该实验操作的同时，以常用的抗
氧化剂Vc和芦丁(0、24、48、72、96、120 μg/
mL)对照品代替样品提取液发生相同反应来进行比
较。按公式(1)计算ABTs自由基清除率。将实验重
复3次，求得清除率的平均值。
………………(1)
2.3.2 黄酮清除DPPH·自由基的活力测定 实验
原理：DPPH·是一类稳定的有机自由基，能与
有供氢能力的化合物发生反应，生成溶液呈深紫
色，517 nm为最大吸收峰。当抗氧化剂存在时，
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该抗氧化剂与DPPH·反应而使其吸光度值逐渐减
小甚至消失。此变化与抗氧化剂的抗氧化能力及
其数量呈线性关系。则样品提取液的体外抗氧化
活性可通过清除DPPH·的量来衡量。若清除率越
大，则表明该样品提取液中抗氧化剂的清除能力
越强。
实验方法：分别取不同浓度(0、20、40、
60、80、100 μg/mL)的箬叶总黄酮提取液1.0 mL，
置于10 mL小试管中，再加入DPPH溶液3.0 mL摇
匀，室温下避光反应30 min，然后在517 nm波长处
测定吸光值As。同时以无水乙醇为空白Ac，蒸馏
水1.0 mL、DPPH溶液3 mL混合均匀后为参比A0。
该实验操作的同时，以常用的抗氧化剂Vc和芦丁
(0、20、40、60、80、100 μg/mL)对照品代替样
品提取液发生相同反应来进行比较。按式(2)计算
DPPH自由基清除率。将实验重复3次，求得清除
率的平均值。
………………(2)
2.3.3 黄酮清除羟基自由基的活力测定 实验原
理：H2O2和Fe
2+混合立即发生Fenton反应，生成极
不稳定的·OH自由基，在反应体系中加入水杨酸
与·OH 反应生成有色物质，在510 nm处存在最大
吸收峰。若在反应体系中加入清除自由基的物质
与水杨酸竞争，有色产物生成量减少，从而使吸
光度A明显减小。则样品提取液的体外抗氧化活性
可通过有色产物生成量减少的量来衡量。若其生
成量越少，则表明该样品提取液中抗氧化剂的清
除能力越强。
实验方法：向试管中依次加入1.8 mmol/L
FeSO4溶液2 mL，不同浓度(0、20、40、60、80、
100 μg/mL)的箬叶总黄酮提取液2 mL，0.3% H2O2
溶液2 mL摇至混匀，室温下静置避光反应10 min，
再加入1.5 mL的水杨酸-乙醇溶液，充分摇匀，静
置避光30 min，在510 nm处测得不同浓度的箬叶
总黄酮提取液的吸光度A样，用水代替水杨酸-乙
醇时测得某浓度下的箬叶总黄酮提取液的吸光
度A 参比，用水代替抗氧化剂时测得对应浓度的实
验样品空白对照吸光度A空白。按式(3)计算羟基自
由基清除率。以Vc和芦丁为对照品。将实验重复3
次，求得清除率的平均值。
………………(3)
2.3.4 黄酮清除亚硝基自由基的活力测定 配制
浓度为10 μg/mL的亚硝酸钠溶液、质量分数为
0.4%的对氨基苯磺酸溶液、质量分数为0.2%的
盐酸萘乙二胺溶液、不同浓度(0、20、40、60、
80、100 μg/mL)的箬叶总黄酮提取液、Vc溶液和
芦丁溶液(0、20、40、60、80、100 μg/mL)。实
验时分别吸取上述不同浓度的黄酮溶液(Vc溶液和
芦丁溶液)2 mL，加入10 μg/mL的亚硝酸钠标准液
溶液2 mL，在37 ℃水浴中反应20 min后，再加入
质量分数为0.4%对氨基苯磺酸溶液2 mL，摇匀，
静置5 min后，加入l mL质量分数为0.2%盐酸萘乙
二胺溶液充分混合均匀，再静置15 min后，于540
nm处测得其吸光度A。清除率按式(4)计算。将实
验重复3次，求得清除率的平均值。
…………………(4)
2.3.5 黄酮对超氧阴离子自由基的清除能力测定
实验原理：邻苯三酚(PR)自氧化法：邻苯三
酚在碱性条件下可迅速自氧化，产生超氧阴离
子，同时超氧阴离子的存在加速邻苯三酚自氧化
的速率。在此过程中还伴随有色中间产物生成，
在325 nm处有强烈的紫外吸收峰。通过自氧化反
应速率的大小评价抗氧化剂清除自由基能力。
实验步骤：准确移取4.5mL Tris-HCl(pH=8.0)
置于10 mL离心管中，置于25 ℃水浴中预热20
min，分别加入不同浓度(0、20、40、60、80、
100 μg/mL)的箬叶总黄酮提取液0.2 mL后，再加
入邻苯三酚0.3 mL，充分混匀，置于25 ℃水中水
浴4 min后，并加入10 mol/L盐酸2滴以终止反应，
在320 nm处测定所取样品吸光度A样。用甲醇代
替样品，测得吸光度A空白。并按公式(5)计算清除
率。以Vc和芦丁为对照品。将实验重复3 次，求
得清除率的平均值。
………………(5)
3 结果与讨论
3.1 黄酮清除ABTs·自由基的活力测定
箬叶总黄酮提取液、Vc溶液、芦丁溶液对
ABTs·自由基的清除率结果见图1，并对图中各
曲线进行拟合，由此计算出清除率达50%时各样
品的浓度(IC50)，结果见表1。
由表1可知随着样品溶液的浓度增加，箬叶总
黄酮、Vc及芦丁对ABTs·自由基的清除率都明显
提高，且箬叶总黄酮提取液清除ABTs·自由基的
能力明显强于Vc和芦丁溶液。当箬叶黄酮浓度达
到80 μg/mL时，其清除ABTs·自由基的能力逐渐
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趋于平衡状态接近100%，而在同等浓度下Vc和芦
丁溶液对ABTs·自由基的清除率仅为60%和37%
左右。由表2中各实验样品的IC50可知，箬叶总黄
酮的清除ABTs·自由基的能力最强，其IC50是Vc的
1/3，芦丁的1/6左右。
3.2 黄酮清除DPPH·自由基的活力测定
箬叶总黄酮提取液、Vc溶液、芦丁溶液对
DPPH·自由基的清除率结果见图2，并对图中各
曲线进行拟合，由此计算出IC50，结果见表2。
溶液。箬叶总黄酮浓度为20 μg/mL时，提取液对
DPPH·自由基的能力仍能达到50%左右。在同浓
度的样品溶液中，Vc和芦丁溶液清除DPPH·自由
基的能力都比较弱。由表2可知，芦丁的IC50值最
大达到170 μg/mL，VC的IC50值为139.69 μg/mL，
箬叶总黄酮提取液的IC50值最小为20.54 μg/mL，
得出箬叶总黄酮的清除DPPH·自由基的能力最
强，且是Vc和芦丁的6倍左右。
3.3 黄酮清除羟基自由基的活力测定
箬叶总黄酮提取液、Vc溶液、芦丁溶液对羟
基自由基的清除率结果见图3，并对图中各曲线进
行拟合，由此计算出各样品的IC50，如表3所示。
表3 各实验样品的拟合方程与IC50
样品种类 拟合方程 R2 IC50/(µg/mL)
箬叶总黄酮 y=-0.0115x
2+0.1575x+
0.3583 0.9399 17.28
VC y=0.1411Ln(x)-0.0184 0.9524 39.41
芦丁 y=0.1379x0.3149 0.9967 59.77
图1 清除ABTs·自由基的活力测定
图2 清除DPPH·自由基的活力测定
图3 清除羟基自由基的活力测定
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表1 各实验样品的拟合方程与IC50
样品种类 拟合方程 R2 IC50
/(µg/mL)
箬叶总黄酮 y=-9×10
-5x2+0.0172x+
0.1801 0.9998 20.88
VC y=0.0048x+0.2154 0.9988 59.29
芦丁 y=0.0024x+0.1828 0.9981 132.17
表2 各实验样品的拟合方程与IC50
样品种类 拟合方程 R2 IC50/(µg/mL)
箬叶总黄酮 y= -1×10
-5x2+0.0045x+
0.4118 0.9992 20.54
VC y= 2×10
-5x2-0.0004x+ 0.1912 0.9943 139.69
芦丁 y= -1×10
-5x2 0.0034x+
0.0989 0.9725 170
由图3可见，随着样品溶液的浓度的增大，清
除羟基自由基的能力越强。在浓度为20~40 μg/mL
时，箬叶总黄酮提取液的清除羟基自由基的能力
与Vc和芦丁溶液相近。在40~100 μg/mL浓度下，
箬叶总黄酮提取液清除羟基自由基的能力显著提
高并明显强于Vc和芦丁溶液，能达到80%左右，
而在该浓度间的同浓度下的样品溶液中，Vc和
芦丁溶液清除羟基自由基的能力相近，在60%左
右，呈缓慢加强趋势。由表3中各实验样品的IC50
得出箬叶总黄酮的清除羟基自由基能力最强。
3.5 黄酮清除亚硝基自由基的活力测定
箬叶总黄酮提取液、Vc溶液、芦丁溶液对亚
硝基自由基的清除率结果见图4，并对图中各曲线
进行拟合，由此计算出各样品的IC50见表4。
由图4可知，在浓度为50~80 μg/mL时，箬
叶总黄酮提取液的清除亚硝基自由基的能力与Vc
和芦丁溶液相近。箬叶总黄酮提取液清除亚硝基
由图2可知，随着样品溶液的浓度增加，清除
DPPH·自由基的能力逐渐加强。箬叶总黄酮提取
液的清除DPPH·自由基的能力明显强于Vc和芦丁
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20~100 μg/mL间，Vc溶液的清除超氧阴离子自由
基的能力高于箬叶总黄酮提取液和芦丁溶液。在
20 μg/mL样品浓度下，箬叶总黄酮提取液和Vc溶
液的清除超氧阴离子自由基能力明显高于芦丁溶
液，达到50%左右。由表5可知，芦丁的IC50值最
大达到86.78 μg/mL，Vc的IC50值为16.07 μg/mL，
箬叶总黄酮提取液的IC50值最小为39.29 μg/mL。
4 结论
体外抗氧化研究表明，箬叶总黄酮普遍具有
较好的抗氧化活性，对于DPPH自由基、ABTs自
由基、羟基自由基的清除能力明显强于Vc和芦丁
对照品，其IC50值分别为20.88、20.54、17.28 μg/
mL，具有很好的药用价值，研发前景广大。但是
对于亚硝基和超氧阴离子自由基的清除能力，箬
叶总黄酮与Vc能力相当或弱于Vc，建议在食品和
药品方面的研发，可以选择总黄酮与其他抗氧化
剂配合研究，制作多功能药理作用的药品。
参考文献：
[1] 中国科学院中国植物志编辑委员会编.中国植物志第九
卷第一分册[M].北京:科学技术出版社,1996:676-691
[2] 李时珍.本草纲目(校点本)上册[M].北京:人民卫生出版
社,1982:1000
[3] 喻谨.箬竹属竹叶化学成分研究[D].北京:中国林业科学研
究院,2014
[4] 周双林,祝宗波,徐龑,等.箬竹叶黄酮醇提工艺条件优选
[J].中国药师,2011,14(7):944-946
[5] 靳祎,王恩军,宋洁,等.箬叶多糖对宫颈癌的抑制及免疫
功能的影响[J].中国计划生育学杂志,2012,20(3):164-167
[6] 黄龙翔,戴果先,胡长玉.箬叶提取物的制备及抗氧化活性
研究[J].中国农学通报,2009,25(3):45-48
[7] 王惠.七种竹叶提取物抗氧化活性及提取工艺优化研究
[D].北京:中国林业科学研究院,2012
[8] 苏春花.箬竹林结构特征及竹叶生物活性成分研究[D].南
京:南京林业大学,2011
[9] 崔健.箬竹属植物黄酮类物质与挥发性成分的研究[D].北
京:中国林业科学研究院,2011
[10] 李水芳,文瑞芝,李忠海.箬竹叶总黄酮含量的测定[J].中
南林学院学报,2006,26(4):128-131
[11] 黄龙翔,戴果先,胡长玉.箬叶提取物的制备及抗氧化活
性研究[J].北京:中国农学通报,2009,25(03):45-48
[12] 李水芳,喻勋林,李姣娟,等. 箬叶总黄酮提取方法的研
究[J].安徽农业科学,2007,35(20):6032-6033,6035,31(3):
193-197
[13] 许瑞波,赵跃强,鲁升丽,等.山楂叶黄酮的超声提取、精
制及抗氧化性研究[J].食品研究与开发,2007,28(4):20-24
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图4 清除亚硝基自由基的活力测定
图5 超氧测定阴离子自由基的清除能力测定
自由基的能力一直随着样品浓度的增加而显著提
高，当浓度为100 μg/mL时明显强于Vc和芦丁溶
液，达到60%左右。在浓度为20~100 μg/mL间，
芦丁溶液清除亚硝基自由基的能力呈缓慢加强趋
势，而箬叶总黄酮提取液和Vc溶液的清除亚硝基
自由基的能力提高明显，直到浓度为45 μg/mL时
强于芦丁溶液。由表4可知，芦丁的IC50值最大，
箬叶总黄酮提取液的IC50值最小。
3.5 黄酮对超氧阴离子自由基的清除能力
箬叶总黄酮提取液、Vc溶液、芦丁溶液对羟
基自由基的清除率结果见图5，并对图中各曲线进
行拟合，由此计算出各样品的IC50，结果见表5。
表5 各实验样品的拟合方程与IC50
样品种类 拟合方程 R2 IC50(µg/mL)
箬叶总黄酮 y=-6×10-6x2+0.003x+0.3878 0.9964 39.29
VC y=-9×10
-6x2+0.0036x+0.4525 0.9961 16.07
芦丁 y=-4×10-5x2+0.0094x-0.0145 0.9543 86.78
由图5可知，样品溶液的浓度越高，清除超
氧阴离子自由基的能力越强。样品溶液浓度在
表4 各实验样品的拟合方程与IC50
样品种类 拟合方程 R2 IC50
/(µg/mL)
箬叶总黄酮 y=0.1718e0.0122x 0.9877 87.56
VC
y= -5×10-5x2+ 0.0104x-
0.0843 0.9898 104
芦丁 y= 0.0013x+0.2107 0.9991 222.54
食 品 科 技
FOOD SCIENCE AND TECHNOLOGY 提取物与应用
· 209 ·
2015年 第40卷 第11期
[14] 王晓波,何晓燕,王梅,等.火龙果皮总黄酮提取与体外抗
氧化性作用的研究[J].食品科学,2011,32(11):156-161
[15] 李南薇,刘民海,黄凯.南瓜苗总黄酮的提取及清除自由
基能力研究[J].食品科学,2011,32(8):58-61
[16] 李加兴,陈选,邓佳琴,等.黄秋葵黄酮的提取工艺和体外
抗氧化活性研究[J]. 食品科学,2014,35(10):121-126
[17] Charles S Buer, Nijat Imin, Michael A. Djordjevic.
Flavonoids:New Roles for Old Molecules[J]. Journal of
Integrative Plant Biology,2010,52 (1):98-111
[18] He Li, Dongdong Cao, Jianyong Yi, et al. Identification of the
flavonoids in mungbean(Phaseolus radiatus L.)soup and their
antioxidant activities[J]. Food Chemistry,2012,135(4):12-28
[19] Elena I Korotkova , Olesya A Voronova , Elena
V Dorozhko. S tudy o f ant iox idant proper t ies o f
flavonoids by voltammetry[J]. Journal of Solid State
Electrochemistry,2012,16(7): 08-20
[20] 李彩霞,李复兴,李鹏,等.国槐叶黄酮的抗氧化活性研究
[J].天然产物研究与开发,2013,25(5): 676 -680
收稿日期：2015-05-07 *通讯作者
作者简介：张雪焕(1989—)，女，山东人，硕士研究生，研究方向为天然产物提取。
张雪焕，张凤清*，解耸林
(长春工业大学化学与生命科学学院，长春 130012)
摘要：研究人参与麦冬混合水提时鲁斯可皂苷元的提取率，确立最佳提取条件。以麦冬中鲁斯
可皂苷元的提取率为考察指标，采用正交实验设计，考察水与药材的倍量、提取时间和提取
次数对提取效果的影响。结果：人参麦冬药材过10目筛，加10倍量水，煎煮提取2次，每次1.5
h。此优选条件可充分提取鲁斯可皂苷元，为中试生产及保健食品技术审评提供实验依据。
关键词：人参；麦冬；鲁斯可皂苷元；正交试验
中图分类号：TS 201.4 文献标志码：A 文章编号：1005-9989(2015)11-0209-04
The influence of mixed extraction condition from the ginseng radix and
ophiopogon japonicus on the content of ruscogenin
ZHANG Xue-huan, ZHANG Feng-qing*, XIE Song-lin
(College of Chemistry and Life Science, Changchun University of Technology,
Changchun 130012)
Abstract: This paper studies involved in extraction yield of ruscogenin when mixed with water extraction
from the ginseng radix and ophiopogon japonicus, to establish the best extraction conditions. Based on
the orthogonaltest, the extraction yield of ruscogenin as examining index to evaluate extracting conditions
such as the water volume, extractiong time and extracting times. Results: The admixture, which was to
smash ginseng radix and ophiopogon japonicus to 10 mesh with ten times amount of water, was extracted
人参麦冬混合提取对鲁斯可皂苷元
含量的影响
DOI:10.13684/j.cnki.spkj.2015.11.041