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山苦菜无性系建立的研究



全 文 :第42卷 第2期 河南大学学报(自然科学版) Vol.42 No.2
2012年3月 Journal of Henan University(Natural Science) Mar.2012
山苦菜无性系建立的研究
张 卓,王 艳,李 慧,王晓旭,姜长阳*
(辽宁师范大学 生命科学学院,辽宁 大连116081)
 收稿日期:2011-09-02
 基金项目:辽宁省高等教育教学改革资助项目(20090304);辽宁师范大学教学改革资助项目(LSJG:20090108)
 作者简介:张卓(1987-),女,辽宁沈阳人,在读硕士研究生.从事植物技术研究.
 *通讯作者,E-mail:changyangjiang@126.com
摘 要:以山苦菜无芽嫩茎为外植体诱导愈伤组织,经过继代培养后,以生长状态良好的愈伤组织进行分化培养,
继续进行分化苗的生根培养,建立起山苦菜的无性系.结果表明:MS+BA(1.0mg/L)+ NAA(0.1mg/L)+蔗糖
(30g/L)是愈伤组织诱导和继代培养的最佳培养基;愈伤组织分化的最佳培养基为1/2MS+蔗糖(15g/L);诱导
不定芽生根的最佳培养基是1/4MS+IAA(0.2mg/L)+蔗糖(20g/L);山苦菜试管苗移栽的最佳基质为1/2园土
+1/2河沙.
关键词:山苦菜;组织培养;无性系
中图分类号:Q943.1   文献标志码:A 文章编号:1003-4978(2012)02-0187-05
Study on the Clone Construction of Ixeris chinensis
ZHANG Zhuo,WANG Yan,LI Hui,WANG Xiao-xu,JIANG Chang-yang*
(College of Life Science,Liaoning Normal University,Liaoning Dalian 116081,China)
Abstract:Tender stems without buds of Ixeris chinensis were used as explants to induce calus,the calus of best
growth were cultivated for differentiation.With further rooting cluture of differentiated seedlings,the clone of
Ixeris chinensis was established.The results indicated that MS+BA(1.0mg/L)+ NAA(0.1mg/L)+sucrose(30
g/L)was the perfect medium for calus inducing and calus multiplication;the best medium for calus differentiation
was 1/2MS+sucrose(15g/L);the ideal medium for rooting of adventitious buds was 1/4MS+IAA(0.2mg/L)
+sucrose(20g/L);the best substrate for transplanting was 1/2clays from garden+1/2sands.
Key words:Ixeris chinensis;culture of tissue;clone
0 引言
山苦菜(Ixeris chinensis),又名苦碟子、盘尔草、秋苦荬菜、鸭子食等[1-2],属菊科苦荬菜属多年生草本
植物.植株含白色乳汁,其味微苦带甘,其成分主要有生物碱、三萜、甾醇、倍半萜、黄酮、香豆素等[3],具有清
热解毒、消炎退肿、改善循环系统等功能,可用于治疗无名肿疼、阑尾炎、肝炎等各种炎症以及肺热咳嗽、肺结
核等疾病[4].山苦菜新鲜茎叶十分爽口,适口性好,不仅是人们极为喜食的野菜,也是家禽和家畜喜食的青饲
料.但人们长期大量的采集及对山苦菜生态环境的破坏,使得野生资源的分布区域和数量都急剧减少且品质
下降.野生山苦菜以根茎繁殖为主,长期的采收不仅难以形成种子,且实生苗童龄期较长,繁殖速度较慢,野
生资源已不能满足人们的需要,人工栽培速度亦较慢,故寻求山苦菜快速繁殖的方法显得尤为重要.此前已
多有关于苦荬菜属植物的研究报道[5-10],但多集中于其食用及药用价值方面,未见其无性系建立的报道.本
研究采用组织培养的方法,进行了山苦菜无性系建立的研究,进而实现山苦菜的快速繁殖并应用于工厂化生
产来满足人们对种苗的需要.
DOI:10.15991/j.cnki.411100.2012.02.013
188  河南大学学报(自然科学版),2012年,第42卷第2期
1 材料与方法
1.1 材料与灭菌
将采自大连郊区山坡的山苦菜嫩茎,放入500mL磨口广口瓶中,先用自来水洗涤4次,每次持续约
1min;接着用0.05%安利洗涤剂洗涤5~10min[11],再用无菌水洗涤至无泡沫时转移至超净工作台上.
75%酒精灭菌10~15s后,迅速用无菌水冲洗3~5次;再用0.05%的HgCl2 溶液浸泡13min[12],之后用无
菌水冲洗4~5次,即获得无菌材料,最后将无芽茎段(以下简称茎段)切成0.6~1cm长的小段备用.
1.2 培养条件
以1/4MS、1/2MS、MS、N6、B5 和 White为基本培养基,附加不同种类及浓度的生长素和细胞分裂素.
培养基中蔗糖含量为30g/L,琼脂含量为4.5g/L,pH 5.8~6.0,每日持续光照时间12h[13],光强2 000~
3 000lx,培养温度20~25℃[14],于温室大棚中进行炼苗和移栽.
2 结果分析
2.1 不同种类及浓度植物生长调节剂对山苦菜愈伤组织诱导的影响
将灭菌后的材料接种在附加不同植物生长调节剂配比的 MS培养基上,茎段两端切口部位接触培养基,
分别放置于恒温光照、恒温无光和变温变光条件下进行愈伤组织诱导培养.培养10d左右切口处出现明显
膨大,已形成可见愈伤组织.培养30d左右进行比较,3种培养条件下,在添加NAA浓度为0.1mg/L,BA
浓度为1.0mg/L的培养基上愈伤组织诱导效果都为最好,但恒温光照条件下的诱导效果及愈伤组织的长
势明显好于其他条件,对其进行统计,结果见表1.可以看出,各种植物生长调节剂组合均能诱导出愈伤组
织,随着BA浓度的增加,愈伤组织的诱导率也呈上升趋势,但当其浓度达到1.0mg/L时诱导率达到最高,
之后呈下降趋势;浓度为1.0mg/L的BA与 NAA配合使用时的诱导效果好于其他激素组合,且当 NAA
浓度为0.1mg/L时诱导率最高为100%,所诱导的愈伤组织生长速度快,呈嫩绿色、质地疏松、大小不等的
颗粒状,此种愈伤组织为具有分化能力的愈伤组织(见图1)[15].上述结果表明,MS+BA(1.0mg/L)+
NAA(0.1mg/L)+蔗糖(30g/L)是山苦菜茎段愈伤组织诱导的最佳培养基.
表1 不同植物生长调节剂配比对山苦菜愈伤组织诱导的影响
Tab.1 Effects of plant growth regulators with different combinations on calus induction of Ixeris chinensis
序号
BA/
(mg·L-1)
NAA/
(mg·L-1)
2,4-D/
(mg·L-1)
接种数/个 诱导率/% 愈伤组织特征 长 势
1  0.4  0  0.5  40  70.0 浅黄色、疏松、颗粒状 ++
2  0.4  0  1.0  40  55.0 浅黄色、紧密、颗粒状 +
3  0.4  0  1.5  40  50.0 浅褐色、紧密、颗粒状 +
4  0.4  0.5  0  40  90.0 浅黄色、疏松、颗粒状 ++
5  0.4  1.0  0  40  87.5 浅黄色、紧密、颗粒状 +
6  0.4  1.5  0  40  80.0 浅褐色、紧密、颗粒状 +
7  1.0  0.1  0  40  100 嫩绿色、疏松、颗粒状 +++
8  1.0  0.2  0  40  100 黄绿色、紧密、颗粒状 ++
9  1.0  0.3  0  40  92.5 黄褐色、紧密、颗粒状 +
10  1.0  0.5  0  40  90.0 黄褐色、紧密、颗粒状 +
11  1.5  0.5  0  40  60.0 黄褐色、紧密、颗粒状 +
12  1.5  1.0  0  40  55.0 黄褐色、紧密、颗粒状 +
  注:+++为长势好;++为长势较好;+为长势一般;-为不生长.下同.
2.2 山苦菜愈伤组织的继代培养
将以上诱导培养的愈伤组织接种到相同的培养基上,于恒温光照条件下进行愈伤组织的继代培养,培养
10d内愈伤组织变化不明显,之后随着培养时间的增加愈伤组织的增殖速度显著加快,培养30d后愈伤组
织的平均增值率为25倍.连续培养5代后仍保持原有的状态,为嫩绿色、疏松颗粒状、具分化能力的愈伤组
张 卓,等:山苦菜无性系建立的研究 189 
织,增殖速度也基本保持一致.以上说明,MS+BA(1.0mg/L)+ NAA(0.1mg/L)+蔗糖(30g/L)是山苦
菜茎段愈伤组织继代培养的最佳培养基.
2.3 不同培养基对山苦菜愈伤组织分化的影响
将经过30d继代培养的愈伤组织分成0.3~0.6cm的块状后,接种到表2中所示的以1/2MS为基本
培养基并添加不同浓度生长素和蔗糖的各种培养基上,置于恒温光照条件下进行愈伤组织的分化培养.接种
后15d,可见愈伤组织表面分化出不定芽.随着培养时间的延长,不定芽逐渐生长,培养至48d进行观察统
计,结果如表2所示.结果显示,在添加NAA的培养基上愈伤组织几乎不分化,在不添加任何生长素或只添
加IAA的培养基上愈伤组织的分化率都达到了100%.从分化不定芽数、不定芽高度及长势方面分析,3号
培养基上愈伤组织分化情况较好,平均每块愈伤组织分化出5.6个不定芽,平均苗长达到1.2cm,且不定芽
生长旺盛(见图2).由此可见,1/2MS+蔗糖(15g/L)是山苦菜愈伤组织分化的最佳培养基.
表2 不同培养基对山苦菜愈伤组织分化的影响
Tab.2 Effects of different mediums on calus differentiation of Ixeris chinensis
序号
IAA/
(mg·L-1)
NAA/
(mg·L-1)
蔗糖浓度/
(g·L-1)
接种数/块 分化率/%
平均每块
不定芽数/个
不定芽平均
高度/cm
长 势
1  0  0  5  60  100  4.8  1.0 ++
2  0  0  10  60  100  3.0  0.7 ++
3  0  0  15  60  100  5.6  1.2 +++
4  0  0.1  5  60  0  0.0  0 _
5  0  0.1  10  60  0  0.0  0 _
6  0  0.1  15  60  12.5  1.0  0.3 +
7  0.1  0  5  60  100  2.8  0.3 ++
8  0.1  0  10  60  100  1.9  0.4 ++
9  0.1  0  15  60  100  1.3  0.6 ++
图1 7号培养基中培养30d的山苦菜愈伤组织
Fig.1 Calus of Ixeris chinensis in medium 7
after 30day'culture
图2 3号培养基中培养48d后愈伤组织的分化
Fig.2 Calus differentiation in medium 3after
48day'culture
2.4 不同基本培养基对山苦菜不定芽生根的影响
将由愈伤组织分化来的不定芽从基部剪下,保证其上至少有两个生长点,接种到各生根培养基中(见表
3),其中添加的生长素为IAA(0.2mg/L),蔗糖含量均为20g/L.不同基本培养基对山苦菜不定芽生根的
影响实验重复2次,每种培养基接种80个材料.接种后4d部分培养基上的不定芽开始生根,培养至28d进
行观察统计,结果见表3.由表可见,在恒温和变温条件下,以 MS类为基本培养基生根效果较好,最好的是
190  河南大学学报(自然科学版),2012年,第42卷第2期
1/4MS,在恒温条件下,生根率达到100%,根的平均长度为8.3cm,且苗的长势好,平均每株具2~3个叶
片的不定芽可生长为具有11个叶片的试管苗.以上结果说明,1/4MS+IAA(0.2mg/L)+蔗糖(20g/L)是
山苦菜不定芽生根的最佳培养基.
表3 不同基本培养基对山苦菜不定芽生根的影响
Tab.3 Effects of different basic mediums on rooting of adventitious buds of Ixeris chinensis
培养条件 基本培养基 接种数/个 生根率/%
平均每株
生根数/个
平均根长/㎝ 苗长势
  1/4MS  80  100  8.5  8.3 +++
恒 1/2MS  80  100  7.5  6.1 ++
  MS  80  100  7.2  5.8 ++
  N6 80  100  3.9  2.4 +
温 B5 80  100  5.3  3.7 +
  White  80  25  3.0  4.2 +
  1/4MS  80  100  6.4  6.2 +++
变 1/2MS  80  100  5.3  5.3 ++
  MS  80  100  5.0  4.6 ++
  N6 80  100  2.6  1.1 +
温 B5 80  95  4.8  2.3 +
  White  80  22.5  1.2  2.7 +
图3 以1/2园土+1/2河沙为基质移栽60d
成活的山苦菜试管苗
Fig.3 Transplant survival of Ixeris chinensis
p lantlets with 1/2clays from garden+1/2sands
after 60days
2.5 炼苗、移栽与定植
选取生长旺盛、根系发达的试管苗,将其敞口置于温室中炼苗
3d后,取出试管苗并用清水冲洗净根部的培养基,分别移栽到装
有炉灰渣、蛭石、黄土和1/2园土+1/2河沙4种基质的温室花盆
中.移栽后保持湿度在85%以上,温度为20~30℃.移栽试验重
复了2次,每种基质移栽200株试管苗.移栽后10d左右开始生
长,且生长速度随时间加快,移栽后30d观察统计证明:在以1/2
园土+1/2河沙为移栽基质的花盆中试管苗的成活率达到96.5%,
根系十分发达,植株长势较旺盛.移栽后60d,成活的试管苗生长
非常旺盛(见图3).故山苦菜移栽的最佳基质为1/2园土+1/2河
沙.把在温室内花盆中移栽成活的试管苗定植到大连郊区的山坡
上,定植成活率为99%,且保持了野生山苦菜的所有植物学性状.
3 讨论
本研究以山苦菜茎段为外植体,通过诱导愈伤组织继而分化
的途径成功地建立了山苦菜的无性系.在分化苗生根培养过程中,各基本培养基中 MS类培养基的生根效果
较好,这与邱奉同和高春雨等人对苦菜的报道一致[16-17],其原因为 MS培养基中大量元素含量高、微量元素
齐全,各种元素的比例比较合理,因此适合山苦菜的生根培养.考虑到投入生产后成本较高,本研究在此基础
上还对不同浓度 MS进行了比较,发现以较低浓度的 MS(1/4MS)为基本培养基就能获得最佳的生根效果,
一定程度上为应用于工业化生产节省了成本.
由山苦菜嫩茎诱导得到的愈伤组织呈嫩绿色、疏松的颗粒状,且经数次继代后仍保持25倍的增殖速度,
可操作性强,分化率高达100%,试管苗移栽后成活率为96.5%,生长状态良好且速度较快,成功地克服了野
生山苦菜不易获得种子、种苗童龄期较长、繁殖速度较慢等问题,从而为山苦菜的快速繁殖提供了有效途径,
为山苦菜药用化学成分研究奠定了夯实的物质基础.将此山苦菜快速繁殖技术应用于工厂化生产不仅能够
解决野生资源匮乏和人工栽培繁殖速度慢等问题,更好地满足人们大量的食用及药用需求,也能使山苦菜种
张 卓,等:山苦菜无性系建立的研究 191 
质得到较好的保存并为山苦菜转基因方面的研究提供理想材料.
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责任编辑:康燕丽