全 文 ：收稿日期:2012-10-29 接受日期:2012-12-21
基金项目:国家自然科学基金项目(61172149)
* 通讯作者 Tel:86-21-54341011;E-mail:wzhang@ bio． ecnu． edu． cn
天然产物研究与开发 Nat Prod Ｒes Dev 2013，25:1489-1493，1567
文章编号:1001-6880(2013)11-1489-06
藏红花花瓣体外抗氧化活性部位的筛选与研究
黄一泓，刘雅莉，武文斌，张 雯*
华东师范大学生命科学学院，上海 200062
摘 要:采用有机溶剂萃取法分离藏红花花瓣乙醇提取物，分别得到石油醚相、氯仿相、乙酸乙酯相、正丁醇相
和水相 5 个不同极性部位，以总抗氧化能力(T-AOC)及对羟自由基(·OH)、超氧阴离子自由基(O-·2 )和 2，2-二
(4-叔辛基苯基)-1-苦肼基自由基(DPPH·)的清除能力为评价指标初步筛选其活性部位，并对活性最强部位进
行了脂质抗氧化研究。结果显示，藏红花花瓣提取物不同极性部位均能明显清除上述自由基，其中乙酸乙酯相
的清除能力最强。在进一步的脂质抗氧化研究中，10 mg /mL 乙酸乙酯相对红细胞自氧化及 H2O2 诱导的过氧
化溶血的抑制率分别达到 40． 36%和 68． 82%;对小鼠肝脏自氧化及 H2O2 诱导的过氧化所产生的 MDA的抑制
率分别为 39． 81%和 47． 53%。实验结果表明:藏红花花瓣不同极性部位提取物均有不同程度的抗氧化活性，其
中以乙酸乙酯相的抗氧化能力最强。
关键词:藏红花花瓣;自由基;乙酸乙酯提取物;脂质过氧化
中图分类号:Q946． 889 文献标识码:A
Bioactivity-guided Fractionation of Petals of Crocus
Sativusand Their Antioxidant Activity Investigation
HUANG Yi-hong，LIU Ya-li，WU Wen-bin，ZHANG Wen*
School of life science，East China Normal University，Shanghai 200062，China
Abstract:In this study，various fractions isolated from the petals of Crocus sativus were assessed for their antioxidant ac-
tivities． Five extracts were obtained by using different polarity solvents，including petroleum ether，chloroform，ethyl ace-
tate and n-butanol． The antioxidant activities of the five fractions were evaluated by the scavenging power of three free
radicals，namely DPPH·，·OH，O-·2 and T-AOC． The results indicated that the five fractions had strong scavenging ca-
pacity on DPPH·，·OH and O-·2 ，especially the ethyl acetate fraction (EA)． Hence，effect of EA on anti-lipid peroxi-
dation was investigated． In addition，the protective effects on hemolysis of erythrocytes and lipid peroxidation of mice ho-
mogenate were measured by in vitro system． The inhibition of EA on hemolysis and lipid peroxidation were 40． 36% and
39． 81%;the inhibition of EA on hemolysis and lipid peroxidation induced by H2O2 were 68． 82% and 47． 53% when
EA concentration was 10 mg /mL． According to data obtained from these antioxidant tests，the ethyl acetate fraction dem-
onstrated the strongest antioxidant capacity．
Key words:saffron petals;free radicals;ethyl acetate extract;lipid peroxidation
藏红花(Saffron，Crocus sativus L．) ，又名番红
花、西红花、洎夫蓝、撒法即，为鸢尾科番红花属多年
生草本植物，据《中华人名共和国药典》记载，其药
用部位为干燥的花柱，藏红花作为传统中药其功效
为:活血化瘀，凉血解毒，解郁安神。用于经闭癥瘕，
产后瘀阻，温毒发斑，忧郁痞闷，惊悸发狂等［1］。除
药用外，它可用作食品添加剂、食用色素和高级香
料。近年对藏红花的药理研究表明，其花柱中的主
要有效成分—藏红花苷对于癌症、冠心病、动脉粥样
硬化、高血脂症等多种疾病具有较好的防治作
用［2］。其花柱因产量极低同时具有神奇的药效而
被世人封以“植物黄金”的称号，同时，大量的非药
用部位—花瓣在藏红花的制药工业中成为副产品，
造成极大的资源浪费。已有学者从藏红花花瓣的甲
醇提取物中分离得到 35 个单体化合物，主要为萜类
和黄酮醇类［3］。有研究显示:藏红花花瓣提取物对
抑郁症有一定的疗效［4］，并对 DPPH自由基、白血病
细胞、白色念珠菌有一定的抑制作用［5］。此外从花
瓣中分离到的黄酮醇类单体对酪氨酸酶有较好的抑
制作用［6］。上述研究表明藏红花花瓣具有活性成
分及功能，具备进一步利用的基础。
为此，本研究以废弃的藏红花花瓣为材料，利用
体外抗氧化活性体系筛选出其活性部位，并从清除
自由基和抗脂质过氧化两方面对其展开研究，旨在
填补研究空白，延长产业链，为藏红花的深度利用提
供理论依据。
1 材料与方法
1． 1 材料与仪器
1． 1． 1 药品与动物
总抗氧化能力(T-AOC)测试盒，购自南京建成
生物工程研究所;2，2-二(4-叔辛基苯基)-1-苦肼基
自由基(DPPH·) ，购自 Sigma 公司;硫酸亚铁(Fe-
SO4·7H2O)、水杨酸、30% H2O2、盐酸、邻苯三酚、
石油醚、氯仿、乙酸乙酯、正丁醇、甲醇、无水乙醇、硫
代巴比妥酸、磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、三氯乙酸等
试剂均为国产分析纯。ICＲ 雄性小鼠，体重 18 ～ 20
g，购自上海西普尔-必凯实验动物有限公司。
1． 1． 2 主要仪器
粉碎机(上海鼎广机械设备有限公司) ;ＲE-
2000 型旋转蒸发仪(上海亚荣生化仪器厂) ;DHG-
9246A型电热恒温鼓风干燥箱(上海精宏实验设备
有限公司) ;7200 型可见分光光度计(上海市第三分
析仪器厂) ;HHS型电热恒温水浴锅(上海博迅实业
有限公司医疗设备厂) ;梅特勒-托利多 B-L 系列电
子天平(梅特勒-托利多仪器有限公司) ;TL-16Ｒ 台
式高速冷冻离心机(上海市离心机机械研究所)。
1． 2 实验方法
1． 2． 1 原料预处理
藏红花花瓣，由浙江寿仙谷药业提供，由华东师
范大学生命科学学院李宏庆副教授鉴定。置烘箱
50 ℃烘干至恒重，粉碎过 60 目筛，密封袋避光保存
备用。
1． 2． 2 藏红花花瓣不同极性部位的制备
准确称取 100 g藏红花花瓣干粉末，于 10 倍体
积 70%的乙醇 60 ℃下回流提取 3 次，过滤，合并滤
液，45 ℃减压浓缩，真空冷冻干燥，得到藏红花花瓣
提取物 45． 97 g。称取 10 g 藏红花花瓣提取物，溶
入蒸馏水中，混匀，转入分液漏斗中，加入相同体积
的石油醚，振摇 10 min ，放气，静置 8 h后，放出下层
水溶液，收集石油醚部分;下层水溶液用同法继续萃
至上层液体无色为止，合并石油醚萃取液，减压浓
缩，浓缩液真空冷冻干燥即得到 0． 752 g 藏红花花
瓣提取物的石油醚相(PE)。石油醚萃取后的剩余
水溶液按上述方法依次用氯仿、乙酸乙酯、正丁醇萃
取，分别得到 0． 985 g氯仿相(T)、1． 005 g乙酸乙酯
相(EA)、1． 254 g 正丁醇相(B)。正丁醇萃取后的
剩余水溶液直接在 60 ℃下减压浓缩，真空冷冻干燥
得到 4． 676 g藏红花花瓣提取物的水相(W)部分。
1． 2． 3 藏红花花瓣体外抗氧化活性部位的筛选
用含 1% DMSO 的无水乙醇将藏红花花瓣 5 个
不同极性部位的提取物分别配成 0． 1、0． 5、1、5 mg /
mL的溶液作为供试液备用。
1． 2． 3． 1 DPPH·清除能力测定
按照文献［7］方法略作改动，在 1． 9 mL，0． 065
mmol /L的 DPPH 自由基乙醇溶液中分别加入 0. 1
mL供试液。室温放置 30 min，于 517 nm 下测定吸
光度，每个反应做 3 个平行，取平均值。以 1% DM-
SO的无水乙醇代替样品作为空白对照，吸光度为
A0;以无水乙醇代替 DPPH 自由基溶液作为样底管
吸光度为 A2。DPPH自由基清除能力测定计算公式
如下:
清除率(%)=［1-(A1-A2)/A0］ × 100%
1． 2． 3． 2 羟基自由基清除能力测定
按照 Smirnoff 的方法［8］略作改动，在试管中依
次加入 6mmol /L 的硫酸亚铁 1 mL，6 mmol /L 的水
杨酸-乙醇溶液 1 mL，分别加入 1 mL 供试液，混匀
后后加入 0． 1%的 H2O2 溶液 1 mL，以蒸馏水补足
至总体积 5 mL。其中对照管以 1 mL 含 1% DMSO
的无水乙醇代替样液，样底管以乙醇代替水杨酸溶
液，摇匀后 37 ℃水浴 0． 5 h，离心，510 nm处测定吸
光值。清除率计算公式如下:
清除率(%)=［1-(A1-A2)/A0］ × 100%
式中，A1 为供试液的吸光度平均值;A2 为样底
管吸光度平均值;A0 为对照管吸光度平均值。
1． 2． 3． 3 超氧阴离子清除能力测定［9］
取 0． 05 mol /L 的 PBS 缓冲溶液(pH = 8． 0)
2. 25 mL，分别加入 0． 5 mL 供试液和 25 mmol /L 的
邻苯三酚溶液 0． 2 mL，混匀后于 25 ℃水浴中反应 5
min，加入 0． 5 mL 80 mmol /L 的 HCI 终止反应，于
420 nm 处测定吸光度 A1，空白对照以同体积的 1%
DMSO的无水乙醇代替样品;为排除供试液颜色干
扰，样底管用同体积的无水乙醇代替邻苯三酚溶液。
清除率(%)=［1-(A1-A2)/A0］× 100%
0941 天然产物研究与开发 Vol. 25
式中:A1 为供试液的吸光度平均值;A2 为样底
管的吸光度平均值;A0 为空白对照管的吸光度平均
值。
1． 2． 3． 4 总抗氧化能力(T-AOC)测定
不同极性部位总抗氧化能力的测定使用总抗氧
化能力(T-AOC)测试盒进行，方法按照说明书操作。
1． 2． 4 藏红花花瓣活性部位对脂质过氧化的抑制
作用
取上述试验中对自由基清除效果最强的部位为
研究对象，配置成 0． 1、0． 25、0． 5、1、5、10 mg /mL 的
溶液作为供试液备用。
1． 2． 4． 1 藏红花花瓣提取物活性部位对红细胞自
发性氧化溶血的抑制作用［10］
小鼠眼眶取血，制成抗凝血，4 ℃，4000 rpm 离
心 5 min ，去除上层溶液，红细胞用预冷的生理盐水
洗涤 3 次制成 0． 5%的红细胞悬液备用。
取 0． 5%红细胞悬液 1． 5 mL，分别加入 0． 1 mL
试样，空白对照为等体积蒸馏水，混匀，于 37 ℃温育
24 h后用生理盐水稀释 4 倍，4000 rpm离心 10 min，
取上清液于 540 nm处测定 OD值。
对红细胞自氧化溶血的抑制率(%)= (1-A /
A0)× 100%
式中:A为试样的平均吸光度值，A0 为空白对
照的平均吸光度值。
1． 2． 4． 2 藏红花花瓣提取物活性部位对 H2O2 诱
导的红细胞氧化溶血的抑制作用
取 1． 2． 4． 1 制备的 0． 5%红细胞悬液 1 mL，分
别加入 0． 1 mL 试样(空白对照为等体积蒸馏水代
替) ，加入 0． 5 mL 的 50 mmol /L H2O2 启动反应，混
匀，37 ℃温育 1 h后生理盐水稀释 4 倍，4000 r /min
离心 10 min，取上清液于 415 nm处测定 OD值。
对 H2O2 诱导的红细胞氧化溶血的抑制率(%)
=(1-A /A0)× 100%
式中:A为试样的平均吸光度值，A0 为空白对
照的平均吸光度值。
1． 2． 4． 3 藏红花花瓣提取物活性部位对肝脏自发
性脂质过氧化的抑制作用［11］
小鼠颈椎脱臼致死，迅速取出肝脏，用冰冷的生
理盐水洗净，加入 10 倍体积冰冷的生理盐水，冰浴
匀浆，得到 10%的肝脏匀浆液备用。取 1 mL 肝匀
浆液于玻璃试管中，分别加入 0． 5 mL不同浓度的供
试样，空白对照加入等体积蒸馏水，混匀 37 ℃温浴
1 h，加入 1 mL的 20%三氯乙酸(TCA)溶液，混匀后
再加入 0． 7%的硫代巴比妥酸溶液 1． 5 mL，沸水浴
保持 15 min ，4000 rpm 离心 10 min，取上清液于波
长 532 nm处测定 OD值。
对肝脏自发性脂质过氧化的抑制率(%)=(1-
A /A0)× 100%
式中:A为试样的平均吸光度值，A0 为空白对
照的平均吸光度值。
1． 2． 4． 4 藏红花花瓣提取物活性部位对 H2O2 诱
导的肝脏脂质过氧化的保护作用
取 1． 2． 4． 3 制备的肝脏匀液 1 mL，分别加入
0. 5 mL不同浓度的供试样，空白对照加入等体积蒸
馏水，混匀 37 ℃温浴 15 min，各试管中加入 0． 1 mL
100 mmol /L H2O2，混匀 37 ℃温浴 0． 5 h，再分别加
入 1 mL 20%的三氯乙酸终止反应，然后加入 1 mL
0． 7%的硫代巴比妥酸溶液，混匀后于沸水中显色
15 min，4000 rpm离心 10 min，去除蛋白质沉淀取上
清液于波长 532 nm处测定 OD值。
对 H2O2 诱导的肝脏脂质过氧化的抑制率(%)
=(1-A /A0)× 100%
式中:A为试样的平均吸光度值，A0 为空白对
照的平均吸光度值。
2 实验结果
2． 1 藏红花花瓣提取物体外抗氧化活性部位的筛
选
2． 1． 1 藏红花花瓣不同极性部位对 DPPH·的清
除作用
图 1 藏红花花瓣提取物 5 个不同极性部位对 DPPH·的清
除作用
Fig. 1 Scavenging effects of five fractions with different polari-
ties on DPPH·
由图可知藏红花花瓣提取物的 5 个极性部位对
DPPH·均有一定的清除作用，除乙酸乙酯相外，其
他部位的清除作用没有表现出明显的浓度效应。5
mg /mL时各极性部位对 DPPH·的清除率分别为:
石油醚相 24． 54%，氯仿相 22． 97%，乙酸乙酯相
34. 95%，正丁醇相 25． 54%，水相 12． 29%。
1941Vol. 25 黄一泓等:藏红花花瓣体外抗氧化活性部位的筛选与研究
图 2 藏红花花瓣提取物 5 个不同极性部位对 O-·2 的清除
作用
Fig. 2 Scavenging effects of five fractions with different polari-
ties on O-·2
2． 1． 2 藏红花花瓣不同极性部位对超氧阴离子的
清除作用
各部位在 1 mg /mL 时对 O-·2 的清除作用有不
同程度的增强，5 mg /mL 时各部位对 O-·2 的清除率
分别达到:石油醚相 19． 88%，氯仿相 20． 49%，乙酸
乙酯相 75． 57%，正丁醇相 41． 81%，水相 41． 90%。
2． 1． 3 藏红花花瓣不同极性部位对羟自由基的抑
制作用
图 3 藏红花花瓣提取物 5 个不同极性部位对·OH的清除
作用
Fig. 3 Scavenging effects of five fractions with different polari-
ties on ·OH
在所测定的浓度范围内，氯仿相和乙酸乙酯相
对·OH的清除作用较其他 3 个部位强，各部位在 5
mg /mL时·OH 的清除分别为:石油醚相 28． 50%，
氯仿相 47． 44%，乙酸乙酯相 52． 48%，正丁醇相
15. 83%，水相 34． 70%。
2． 1． 4 藏红花花瓣不同极性部位总抗氧化能力(T-
AOC)的测定
在低浓度时各部位的总抗氧化能力均较弱，当
浓度升高到 5 mg /mL时，各极性部位总抗氧化能力
均明显增强，总抗氧化能力值(单位 /毫升提取物)
分别为 5． 51、3． 15、21． 49、8． 87、18． 92 个单位。
上述四个实验结果表明，藏红花花瓣提取物的
5 个不同极性部位对自由基都有一定的清除作用，
均表现出抗氧化活性，且在一定浓度范围内与浓度
图 4 藏红花花瓣提取物 5 个不同极性部位总抗氧化能
力(T-AOC)的测定
Fig. 4 Total antioxidant capacity of five fractions with differ-
ent polarities
呈现正相关效应;其抗氧化效果因反应体系的不同
而不同，且不同极性部位抗氧化活性稍有差异。综
合 4 中抗氧化体系评价藏红花提取物的 5 种不同极
性溶剂提取物，其中以乙酸乙酯相的抗氧化作用最
强，因此选择乙酸乙酯相作为进一步的研究对象。
2． 2 藏红花花瓣提取物乙酸乙酯相对脂质过氧化
的抑制作用
2． 2． 1 乙酸乙酯相对红细胞自氧化溶血的抑制作
用
图 5 藏红花花瓣提取物乙酸乙酯相对红细胞自氧化溶血
的抑制作用
Fig. 5 Inhibition effects of EA on hemolysis of mice erythro-
cytes
由图 5 可知，EA对红细胞自氧化溶血的抑制作
用在 5 mg /ml 时达到 40． 36%，抑制作用随着浓度
的增大而加强，IC50为 8． 82 mg /mL，说明乙酸乙酯相
能有效的减少红细胞温育过程中形成的脂质过氧化
物含量，对红细胞有一定的保护作用。
图 6 藏红花花瓣提取物乙酸乙酯相对 H2O2 诱导的红细胞
氧化溶血的抑制作用
Fig. 6 Inhibition effects of EA on hemolysis of mice erythrocytes
induced by H2O2
2941 天然产物研究与开发 Vol. 25
2． 2． 2 乙酸乙酯相对 H2O2 诱导的红细胞氧化溶
血的抑制作用
H2O2 与红细胞产生氧化反应，破坏细胞膜，引
起细胞损伤。图 6 中实验结果表明，EA 对 H2O2 诱
导的红细胞氧化溶血的抑制作用呈现浓度依赖效
应，且在 5 mg /mL 时抑制率达到 58． 91%，IC50为
4. 29 mg /mL，由此可见 EA 在细胞水平上也能够有
效抑制氧化损伤。
2． 2． 3 乙酸乙酯相对小鼠肝脏自发性脂质过氧化
的保护作用
图 7 藏红花花瓣提取物乙酸乙酯相对肝脏自发行性脂质
过氧化的保护作用
Fig. 7 Protective effects of EA on lipid peroxidation of mice liv-
er homogeate
EA对肝脏自氧化溶血的保护作用见图 7，在所
测定的浓度范围内，随着浓度升高对肝脏自发行性
脂质过氧化的保护作用加强，并呈现出良好的浓度
正相关趋势，在 10 mg /mL时对 MDA生成的抑制率
达到 39． 81%。
2． 2． 4 乙酸乙酯相对 H2O2 诱导的肝脏脂质过氧
化的保护作用
图 8 藏红花花瓣提取物乙酸乙酯相对 H2O2 诱导的肝
脏脂质过氧化的保护作用
Fig. 8 Protective effects of EA on lipid peroxidation of mice
liver homogenate induced by H2O2
H2O2 刺激肝脏产生过氧化物 MDA，其产量的
多少可以代表组织损害的程度。由图 8 实验结果可
知，在低浓度(0． 1 mg /mL ～ 1 mg /mL)范围内 EA
对 MDA生成的抑制作用缓慢的增强，但在高浓度
(1 mg /mL ～ 10 mg /mL)范围内，EA 对 MDA 生成
的抑制作用随着浓度的升高而迅速加强，在 10 mg /
mL时对 MDA生成的抑制率达到 47． 53%，说明 EA
能够有效地保护 H2O2 诱导的肝脏脂质过氧化。
3 讨论
本文着重于藏红花花被的药效研究，以体外抗
氧化系统来锁定其活性部位评价其活性。自由基清
除法是传统的抗氧化能力测定方法之一，因实验方
法简单快速，实验结果直观准确而广泛应用于评价
与测定抗氧化物质的活性。又因没有一种抗氧化体
系可以全面评价比较供试品的抗氧化活性，故选取
DPPH·、羟基自由基、超氧阴离子、总抗氧化能力等
四个指标来综合评价藏红花花瓣不同极性部位的抗
氧化活性。由实验结果可知，藏红花花瓣提取物的 5
个不同极性部位均有较好的清除自由基的能力，均表
现出抗氧化活性，其中以乙酸乙酯部位作用最明显。
目前已有研究证明，自由基增加所引起的肝脏
脂质过氧化是许多肝脏疾病的病因，如酒精性肝炎、
血色病、内毒素性肝损害、急、慢性肝炎和肝硬化、肝
脏肿瘤等［12］，因此研究出天然的抗脂质过氧化剂具
有重要意义。本实验结果显示，藏红花提取物乙酸
乙酯相对红细胞氧化溶血及肝脏脂质过氧化均有较
好的保护作用，联系其对自由基的清除作用，可推断
其保护机理可能是与 H2O2 作用，阻止氧化反应的
进行，从而减少过氧化产物的生成。希腊学者 Aika-
teriniTermentzi［13］对藏红花花瓣的醇提取物进行 LC-
MS分析发现，其活性成分主要为黄酮醇类以及少量
生物碱。目前本实验中乙酸乙酯相的成分与作用机
理尚不明确，有待进一步研究。
参考文献
1 Chinese Pharmacopoeia Commission(国家药典委员会)．
Pharmacopoeia of the People’s Ｒepublic of China(中华人
民共和国药典)． Beijing:China Medical Science Press，
2010． VolI，86．
2 Mohammad SM． Saffron chemicals and medicine usage． J
Med Plants Ｒes，2010，4:427-430．
3 Li CY，Lee EJ，Wu TS． Antityrosinaseprinciples and constituents
of the petals of Crocus sativus． J NatProd，2004，67:437-440．
4 BastiAA，Moshiri E，Noorbala AA，et al． Comparison of petal
of Crocus sativus L． and fluoxetine in the treatment of de-
pressed outpatients:A pilot double-blind randomized trial．
Neuro-PsychopharmacolBiol Psychiatry，2007，31:439-442．
(下转第 1567 页)
3941Vol. 25 黄一泓等:藏红花花瓣体外抗氧化活性部位的筛选与研究
时间短，可实现对食用菌单糖和海藻糖快速、高效地
分离检测。
参考文献
1 Li YL(李艳莉) ，Li Q(李倩) ，Huo GC(霍贵成)． Study on
probiotic function of fructooligosaccharides and falacto-oligo-
saccharides on intestinal microflora． Food Ind(食品工业) ，
2012，8:73-76．
2 Beluhan S，Ｒanogajec A． Chemical composition and non-vol-
atile components of Croatian wild edible mushrooms． Food
Chem，2011，124:1076-1082．
3 Parrou JL，Jules M，Beltran G，et al． Acid trehalase in yeasts
and filamentous fungi:localization，regulation and physiologi-
cal function． FEMS Yeast Ｒes，2005，5:503-511．
4 Ding YS(丁永胜) ，Mou SF(牟世芬)． Application of high
performance anion exchange chromatography with pulsed
electrochemical detection． Chin J Anal Chem(分析化学) ，
2005，33:557-561．
5 Liu YF(刘艳芳) ，Xue JJ(薛俊杰) ，Tang QJ(唐庆九) ，et
al． Determination of trehalose in Cordyceps militaris fruiting
body． Mycosystema(菌物学报) ，2011，30:472-476．
6 Yang ＲZ(杨仁智) ，Zhang JS(张劲松) ，Tang QJ(唐庆
久) ，et al． High performance anion exchange chromatography
method to determine the monosaccharide composition of poly-
saccharides． Edible Fungi China(中国食用菌) ，2005，5:42-
44．
7 Pan YY(潘媛媛) ，Liang LN(梁立娜) ，Cai YQ(蔡亚岐) ，
et al． Analysis of sugars in beer and wort using high perform-
ance anion-exchange chromatography coupled with pulsed
amperometric detection． Chin J Chromatogr(色谱) ，2008，
26:626-630．
8 Tang KT(唐坤甜) ，Liang LN(梁立娜) ，Cai YQ(蔡亚岐) ，
et al． Determination of sugars and sugar alcohols in tobacco
feed liquids by high performance anion exchange and pulsed
amperometric detection． Chin J Anal Chem(分析化学) ，
2007，35:1274-1278．
9 Borromei C，Careri M，Cavazza A，et al． Evaluation of fructoo-
ligosaccharides and inulins as potentially health benefiting
food ingredients by HPAEC-PED and MALDI-TOF MS． Int J
Anal Chem，2009，2009:1-10．
10 Wang L(王荔) ，Chen QZ(陈巧珍) ，Song GX(宋国新) ，et
al． Determination of water-soluble glucose，fructose and su-
crose in flue-Cured tobacco by high performance anion ex-
change chromatography coupled with pulsed amperometric
detection． Chin J Chromatogr(色谱) ，2006，24:
櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵
201-204．
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5 Zheng CJ，Li L，Ma WH，et al． Chemical constituents and
bioactivities of the liposoluble fraction from different medici-
nal parts of Crocus sativus． PharmBiol，2011，49:756-763．
6 Kubo I，IkuyoKH． Flavonols from saffron flower:tyrosinasein-
hibitory activity and inhibition mechanism． Food Chem，
1999，47:4121-4125．
7 Li CY(李春阳) ，Xu SY(许时婴) ，Wang Z(王璋) ，et al．
Measuring the antiradical efficiency of proanthocyanidin from
grape seed by the DPPH· assay． J Food SciBiotechnol(食
品与生物技术学报) ，2006，25:102-106．
8 Smironff N，Cumbes Q． Hydroxyl radical scavenging activity
of compatible solutes． Phytochemistry，1989，28:1051-1560．
9 Yan C(严成) ，Yan F(严复)． Study on extraction of Lyci-
umbarbarumpolysaccharides by different methods and their
antioxidant effects in vitro． Food Chem(食品科学) ，2008，
29:183-187．
10 Lou C(娄翠) ，Tang SQ(汤顺清)． Anti-lipid peroxidation of
fucoidan from Laminaria japonica． China Brewing(中国酿
造) ，2011，8:25-28．
11 Cao QH(曹群华) ，Qu WJ(瞿伟菁) ，Huang XQ(黄晓青)．
Antioxidant and anti-lipid peroxidation of flavonoid from Sea-
buckthorn seed and pomace． Chin Tradit Patent Med(中成
药) ，2003，25:670-673．
12 Zhu HM(朱惠明)． Lipid peroxidation and liver disease．
Chin J Clin Hepatol(临床肝胆病杂志) ，1985，12:207-
209．
13 Termentzi A，Kokkalou E． LC-DAD-MS(ESI +)analysis and
antioxidant capacity of Crocus sativus petal extracts． Planta
Med，2008，74:573-581．
7651Vol. 25 刘海燕等:食用菌单糖和海藻糖的提取及高效阴离子色谱-脉冲安培检测法分析