全 文 ：收稿日期：２０１１－０９－３０
小叶丁香的组织培养
冷强１，张竹２
（１．海林市园林管理站，黑龙江 海林 １５７１００；２．大庆医学高等专科学校）
摘　要：以小叶丁香的茎段和叶片为外植体进行植物组织培养。分别以０．１％的升汞和６５％ 的次氯酸
钠对外植体进行灭菌，将灭菌的小叶丁香叶片接于不同的培养基中进行脱分化培养；将灭菌的小叶丁香
茎段接于不同培养基中，观察腋芽的促生情况；将促生出的小叶丁香的腋芽进行生根培养。结果表明：
在０．１％的升汞中，小叶丁香的茎段和叶片最佳灭菌时间均为３０ｓ；在６５％的次氯酸钠中小叶丁香的茎
段和叶片最佳灭菌时间分别为２ｍｉｎ和１ｍｉｎ；最佳脱分化培养基为：ＭＳ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ；最
佳腋芽促生的培养基为：ＭＳ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ；最佳生根最适培养基为：ＭＳ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ。
关键词：小叶丁香；组织培养
Ｔｉｓｓｕｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｏｆ　Ｓｙｔｉｎｇａ　ｍｉｃｒｏｐｈｙｌａ
Ｌｅｎｇ　Ｑｉａｎｇ１，Ｚｈａｎｇ　Ｚｈｕ２
（１．Ｈａｉｌｉｎ　Ｃｉｔｙ　Ｌａｎｄｓｃａｐｅ　Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ　ｃｅｎｔｅｒ，Ｈａｉｌｉｎ，Ｈｅｉｌｏｎｇｊｉａｎｇ　１５７１００；２．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｄａｑｉｎｇ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｃｏｌｅｇｅ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｏｏｋ　ｔｈｅ　ｓｔｅｍ　ａｎｄ　ｌｅａｆ　ｏｆ　Ｓｙｔｉｎｇａ　ｍｉｃｒｏｐｈｙｌａａｓ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｆｏｒ　ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ．Ｔｈｅ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｗｅｒｅ
ｓｔｅｒｉｌｉｚｅｄ　ｗｉｔｈ　０．１％ Ｍｅｒｃｕｒｉｃ　ｃｈｌｏｒｉｄｅ　ａｎｄ　６５％ｓｏｄｉｕｍ　ｈｙｐｏｃｈｌｏｒｉｔｅ　ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｔｈｅｎ　ｔｈｅ　ｓｔｅｒｉｌｉｚｅｄ　ｅｘ－
ｐｌａｎｔｓ　ｗｅｒｅ　ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ　ｔｏ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉａ　ｆｏｒ　ｄｅｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｔｏ　ｏｂｓｅｒｖｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｎ　ｐｒｏｍｏ－
ｔｉｎｇ　ａｘｉｌａｒｙ　ｂｕｄ　ｇｒｏｗｔｈ．Ｔｈｅｎ　ｒｏｏｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｃａｒｒｉｅｄ　ｏｕｔ　ｏｎ　ｔｈｅ　ａｘｉｌａｒｙ　ｂｕｄｓ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ
ｓｈｏｗｅｄ　ａｓ　ｂｅｌｏｗ：ｉｎ　０．１％ Ｍｅｒｃｕｒｉｃ　ｃｈｌｏｒｉｄｅ　ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｔｉｍｅ　ｆｏｒ　ｓｔｅｒｉｌｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓｔｅｍ　ａｎｄ　ｌｅａｆ　ｗｅｒｅ　ｂｏｔｈ
３０ｓ；Ｂｕｔ　ｉｎ　６５％ｓｏｄｉｕｍ　ｈｙｐｏｃｈｌｏｒｉｔｅ　ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｔｉｍｅ　ｆｏｒ　ｓｔｅｒｉｌｉｚａｔｉｏｎ　ｗｅｒｅ　２ｍｉｎ　ａｎｄ　１ｍｉｎ　ｓｅｐａｒａｔｅｌｙ．Ｔｈｅ
ｂｅｓｔ　ｍｅｄｉａ　ｆｏｒ　ｄｅｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｉｓ　ＭＳ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ．Ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｍｅｄｉａ　ｔｏ　ｐｒｏｍｏｔｅ　ｔｈｅ
ｇｒｏｗｔｈ　ｏｆ　ａｘｉｌａｒｙ　ｂｕｄ　ｉｓ　ＭＳ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ．Ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｍｅｄｉａ　ｆｏｒ　ｒｏｏｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｉｓ　ＭＳ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｓｙｔｉｎｇａ　ｍｉｃｒｏｐｈｙｌａ；Ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ
　　丁香常用的繁殖方法有播种、嫁接和扦插等，但由
于播种繁殖发芽率低，嫁接繁殖成活率较低，扦插繁殖
的繁殖系数小、周期长，均难以满足市场对种苗的需
求。本文旨在探讨通过植物组织培养方法获得小叶丁
香的种苗以供园林绿化使用，也为同种植物的组织培
养提供一定的理论和实践依据。
１　材料与方法
１．１　试验材料
取小叶丁香的茎段、叶片为外植体进行组织培养，
小叶丁香母株取于牡丹江师范学院植物园。
１．２　试验方法
１．２．１　外植体的灭菌
取小叶丁香的茎和叶片流水冲洗１ｈ，在０．１％升
汞中灭菌３０ｓ、１ｍｉｎ、２ｍｉｎ，或在６５％次氯酸钠中灭菌
１ｍｉｎ、２ｍｉｎ、３ｍｉｎ，灭菌后将小叶丁香的茎（带腋芽部
分）剪成１～２ｃｍ的段状插入不同的培养基中，将叶片
剪成（１×１）ｃｍ２ 大小，平放于不同的脱分化 ＭＳ培养
基中培养。
１．２．２　外植体的脱分化培养
小叶丁香的叶片消毒后，用无菌水冲洗５～６次，
无菌吸水纸吸干表面水分，切成（１×１）ｃｍ２，分别接入
以下培养基中，每种培养基接外植体５０个。
Ａ：ＭＳ＋６－ＢＡ４ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ
Ｂ：ＭＳ＋６－ＢＡ３ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ
Ｃ：ＭＳ＋６－ＢＡ２．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ
Ｄ：ＭＳ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ
Ｅ：ＭＳ＋６－ＢＡ１．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ
Ｆ：ＭＳ＋６－ＢＡ１ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ
Ｇ：ＭＳ＋６－ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ
１．２．３　小叶丁香腋芽的促生
取小叶丁香的茎段在６５％的次氯酸钠中浸泡
２ｍｉｎ灭菌之后，用无菌水冲洗５～６次，然后用无菌吸
水纸吸干表面水分，切成１～２ｃｍ的茎段然后分别接入
含有不同浓度６－ＢＡ的 ＭＳ培养基中（具体浓度见表
２３
第１期（总第１１６期） 中 国 林 副 特 产 Ｎｏ．１（ＧＳＮＯ．１１６）
２０１２年２月 Ｆｏｒｅｓｔ　Ｂｙ－Ｐｒｏｄｕｃｔ　ａｎｄ　Ｓｐｅｃｉａｌｉｔｙ　ｉｎ　Ｃｈｉｎａ　 Ｆｅｂ．２０１２
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DOI:10.13268/j.cnki.fbsic.2012.01.025
４），并定时观察。
１．２．４　生根培养
在无菌实验台上将上一步小叶丁香茎段所促生出
的腋芽切下，分别接入含有不同浓度ＮＡＡ的 ＭＳ培养
基中进行生根培养（具体浓度见表５），并定时观察。
１．２．５　培养条件
光培养２５℃﹑６０００ｌｘ、１４ｈ光照／１０ｈ黑暗。
２　结果与分析
２．１　不同消毒液及不同消毒时间对小叶丁香外植体
的影响
为筛选出最佳的灭菌方法，我们采用不同灭菌剂
及不同灭菌时间对小叶丁香外植体进行灭菌。试验结
果表明：茎和叶片在０．１％的升汞中灭菌３０ｓ时其生长
情况最佳，长菌率为０，灭菌１ｍｉｎ和２ｍｉｎ时，虽然长菌
率也为０，但是会引起外植体的死亡；茎在６５％的次氯
酸钠中灭菌２ｍｉｎ时，外植体的灭菌效果最好，叶片在
次氯酸钠中的最佳灭菌时间为１ｍｉｎ。因为升汞对外
植体的毒害情况比次氯酸钠更严重（见表１、表２），因
此茎段的最佳灭菌条件为次氯酸钠灭菌２ｍｉｎ，叶片最
佳灭菌条件为次氯酸钠灭菌１ｍｉｎ。
表１　以０．１％升汞为消毒液对小叶丁香
外植体最佳消毒时间的筛选
灭菌时间
茎段总数
／个
茎段生长情况
叶片总数
／个
叶片生长状况
３０ｓ ５０ 未长菌 ５０ 未长菌
１ｍｉｎ　 ５０ 未长菌但５４％死亡 ５０ 未长菌但６０％死亡
２ｍｉｎ　 ５０ 未长菌但全部死亡 ５０ 未长菌但全部死亡
表２　以６５％的次氯酸钠为消毒液对小叶丁香
外植体最佳消毒时间的筛选
消毒时间
茎段总数
／个
茎段生长情况
叶片总数
／个
叶片生长状况
１ｍｉｎ　 ５０ 全部长菌 ５０ 未长菌，生长良好
２ｍｉｎ　 ５０ 未长菌，生长良好 ５０ 未长菌但３４％死亡
３ｍｉｎ　 ５０ 未长菌但２０％死亡 ５０ 全部死亡
２．２　最佳脱分化培养基的筛选
取小叶丁香的叶片在６５％次氯酸钠中灭菌１ｍｉｎ，
无菌水冲洗５～６次，然后用无菌吸水纸吸干表面水
分，切成（１×１）ｃｍ２ 大小，分别接入不同的脱分化培养
基中培养，每种培养基接种３０片。试验结果表明：随
着６－ＢＡ的浓度递减，脱分化率有先增加后减少的趋
势，其中Ａ、Ｆ、Ｇ号培养基中，外植体均没有脱分化，说
明６－ＢＡ浓度过高或过低都会影响外植体的脱分化；在
Ｄ号培养基中 （ＭＳ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ）外植
体的脱分化率最高为１３．３％。总体来看外植体的脱
分化率较低，而且出现了褐化现象。褐化现象受很多
因素的影响，例如：外植体的基因型、生理状态、大小、
种类，光照等等［１－２］。由表３可见，不同的激素浓度对
外植体褐化的影响程度不同，其中Ａ、Ｆ、Ｇ号培养基上
外植体褐化最严重，全部外植体均发生褐化。
表３　培养基对小叶丁香叶片脱分化的影响
培养基
类型
叶片总数
／个
脱分化数
／个
未脱分化数
／个
生长情况
脱分化率
／％
Ａ　 ３０　 ０　 ３０ 全部褐化 ０
Ｂ　 ３０　 １　 ２９ 部分褐化 ３．３
Ｃ　 ３０　 ３　 ２７ 部分褐化 １０
Ｄ　 ３０　 ４　 ２６ 部分褐化 １３．３
Ｅ　 ３０　 ２　 ２８ 部分褐化 ６．６
Ｆ　 ３０　 ０　 ３０ 全部褐化 ０
Ｇ　 ３０　 ０　 ３０ 全部褐化 ０
２．３　小叶丁香茎段最佳腋芽促生培养基的筛选
取小叶丁香的茎在６５％的次氯酸钠中浸泡２ｍｉｎ
灭菌后，用无菌水冲洗５～６次，然后用无菌吸水纸吸
干表面水分，切成带腋芽的约１～２ｃｍ长的茎段，分别
接入以下培养基中培养，试验结果表明：随着６－ＢＡ浓
度的增加，不仅促生的腋芽数有所增加而且促生腋芽
的时间有所缩短，说明６－ＢＡ有诱导促生腋芽的良好作
用，但这一浓度高于２ｍｇ／Ｌ时出现下降趋势，确定以
茎段促生腋芽的最适培养基为 ＭＳ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ。
表４　不同培养基对茎段生腋芽的影响
培养
基号
６－ＢＡ浓度／
（ｍｇ·Ｌ－１）
生芽时间
／ｄ
接种株数
／株
生芽株数
／株
生芽率
／％
１　 ０．５　 ２２　 ３０　 ６　 ２０．０
２　 １．０　 ２０　 ３０　 ７　 ２３．３
３　 １．５　 １８　 ３０　 ９　 ３０．０
４　 ２．０　 １５　 ３０　 １５　 ５０．０
５　 ２．５　 １６　 ３０　 １０　 ３３．３
２．４　最适生根培养基的筛选
在超净工作台上将由小叶丁香茎段促生得到腋芽
切下，接入含有不同浓度ＮＡＡ的 ＭＳ培养基中进行生
根培养，并定时观察。试验结果如下：随着 ＮＡＡ浓度
的增加，腋芽生根率增加而且发根时间缩短，说明
ＮＡＡ的确有诱导生根的良好作用，当 ＮＡＡ浓度高于
０．５ｍｇ／Ｌ时，生根率呈现下降趋势。试验确定腋芽生
根最适培养基为 ＭＳ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ。
表５　不同浓度ＮＡＡ的 ＭＳ培养基对腋芽生根的影响
培养
基号
ＮＡＡ浓度
／（ｍｇ·Ｌ－１）
发根时间
／ｄ
接种株数
／株
生根株数
／株
生根率
／％
１　 ０．１　 １３　 ３０　 １０　 ３３．３
２　 ０．３　 １２　 ３０　 １１　 ３６．７
３　 ０．５　 １０　 ３０　 １８　 ６０．０
４　 １．０　 １５　 ３０　 １４　 ４６．７
５　 １．５　 １５　 ３０　 ７　 ２３．３
３　结论
３．１　试验结果表明：茎段在０．１％的升汞中浸泡３０ｓ后
生长情况最佳，长菌率为０％如果时间太长会发生组织
的损伤从而引起褐化，而在６５％的次氯酸钠中浸泡
２ｍｉｎ其灭菌最彻底；叶片在０．１％的升汞中浸泡３０ｓ后
生长情况最佳，在６５％的次氯酸钠中浸泡１ｍｉｎ生长情
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２０１２年 冷强等：小叶丁香的组织培养 第１期
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新型五色草选育及应用技术研究初报
贾兰虹，张雪岩
（黑龙江省农科院园艺分院，哈尔滨 １５００６９）
摘　要：新型五色草花坛从景天科植物中选出，在自然低温条件下和干旱季节中试验，比老五色草抗寒
抗旱，更具有应用价值。用于花坛造型显现出红、绿、黄、粉和紫粉五种色颜动态变化，不同于老五色草
的静态拼色，而且，整体越冬完好。母株冬储和繁殖均在露地进行，改变了老五色草在加温温室内越冬
和需要在保护地繁殖的传统方式，花坛模纹时间提前１个月，观赏期延长６０ｄ，一年建植多年享用。新
型五色草可取代现行的老五色草，在寒冷地区广泛应用。
关键词：新型五色草；越冬；抗旱；变色；多年享用
Ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ　Ｓｔｕｄｙ　ｏｎ　Ｌａｔｅｓｔ　Ｔｙｐｅ　ｏｆ　Ｆｉｖｅ　Ｃｏｌｏｒｓ　Ｇｒａｓｓ　Ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ
Ｊｉａ　Ｌａｎｈｏｎｇ，Ｚｈａｎｇ　Ｘｕｅｙａｎ
（Ｈｏｒｔｉｃａｌｔｕｒａｌ　Ｓｕｂ－Ａｃａｄｅｍｙ，Ｈｅｉｌｏｎｇｊｉａｎｇ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｈａｒｂｉｎ　１５００６９）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅ　ｌａｔｅｓｔ　ｔｙｐｅ　ｏｆ　ｆｉｖｅ　ｃｏｌｏｒｓ　ｇｒａｓｓ　ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ　ｗａｓ　ｓｅｌｅｃｔｅｄ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｖａｒｉｅｔｉｅｓ　ｏｆ　Ｃｒａｓｓｕｌａｃｅａｅ．
Ｔｈｅ　ｄｒｏｕｇｈｔ　ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ　ｏｆ　ｌａｔｅｓｔ　ｔｙｐｅ　ｏｆ　ｆｉｖｅ　ｃｏｌｏｒｓ　ｇｒａｓｓ　ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ　ｉｓ　ｂｅｔｔｅｒ　ｔｈａｎ　ｔｈｅ　ｆｉｖｅ　ｃｏｌｏｒｓ　ｇｒａｓｓ
ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｌｏｗ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ　ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｄｒｙ　ｓｅａｓｏｎ．Ｔｈｅｒｅ　ａｒｅ　ｂｅｔｔｅｒ　ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ　ｖａｌｕｅ．Ｉｔ　ｉｓ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｓｔａｔｉｃ　ｃｏｌｏｒ　ｍａｔｃｈｉｎｇ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｆｉｖｅ　ｃｏｌｏｒｓ　ｇｒａｓｓ　ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ．Ｉｔ　ｃｏｕｌｄ　ｂｅ　ｓｈｏｗｅｄ　ｄｙｎａｍｉｃ
ｃｈａｎｇｅｓ　ｏｆ　ｆｉｖｅ　ｃｏｌｏｒｓ　ｇｒａｓｓ　ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ　ｗｈｉｃｈ　ａｒｅ　ｒｅｄ，ｇｒｅｅｎ，ｙｅｌｏｗ，ｐｉｎｋ　ａｎｄ　ｐｕｒｐｌｅ－ｐｉｎｋ．Ｉｔ　ｃｏｕｌｄ　ｂｅ　ｏ－
ｖｅｒ　ｗｉｎｔｅｒ　ｃｏｍｅｐｌｅｔｅｌｙ．Ｓｔｏｃｋ　ｐｌａｎｔｓ　ａｒｅ　ｓｔｏｒｅｄ　ｉｎ　ｗｉｎｔｅｒ　ａｎｄ　ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ　ｉｎ　ｏｐｅｎ　ｆｉｅｌｄ．Ｉｔ　ｃｈａｎｇｅｓ　ｔｈｅ　ｔｒａ－
ｄｉｔｉｏｎａｌ　ｗａｙ　ｗｈｉｃｈ　ｎｅｅｄ　ｈｅａｔ　ｔｏ　ｂｅ　ｏｖｅｒ　ｗｉｎｔｅｒ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｇｒｅｅｎｈｏｕｓｅ　ａｎｄ　ｃｕｌｔｉｖａｔｅ　ｉｎ　ｐｒｏｔｅｃｔｅｄ　ｆｉｅｌｄ．Ｔｈｅ　ｍｏ－
ｓａｉｃ　ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ　ｃｏｕｌｄ　ｐｌａｎｔ　ｏｎｅ　ｍｏｎｔｈ　ａｈｅａｄ　ｏｆ　ｔｉｍｅ　ｃｏｍｐａｒｅｄ　ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ｆｉｖｅ　ｃｏｌｏｒｓ　ｇｒａｓｓ　ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ．Ｔｈｅ
ｏｒｎａｍｅｎｔａｌ　ｐｅｒｉｏｄ　ｃｏｕｌｄ　ｂｅ　ｅｘｔｅｎｄｅｄ　６０ｄａｙｓ．Ｔｈｅ　ｌａｔｅｓｔ　ｔｙｐｅ　ｆｉｖｅ　ｃｏｌｏｒｓ　ｇｒａｓｓ　ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ　ｃｏｕｌｄ　ｒｅｐｌａｃｅ
ｔｈｅ　ｆｉｖｅ　ｃｏｌｏｒｓ　ｇｒａｓｓ　ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ　ａｎｄ　ａｐｐｌｙ　ｉｎ　ｃｏｌｄ　ａｒｅａ　ｗｉｄｅｌｙ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｔｈｅ　ｌａｔｅｓｔ　ｔｙｐｅ　ｏｆ　ｆｉｖｅ　ｃｏｌｏｒｓ　ｇｒａｓｓ　ｆｌｏｗｅｒｐｌｏｔ；Ｏｖｅｒ－ｗｉｎｔｅｒ；Ｄｒｏｕｇｈｔ　ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ；Ｄｉｓｃｏｌｏｒａ－
ｔｉｏｎ；Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ　ｆｏｒ　ｙｅａｒｓ
　　五色草花坛多样的造型和艺术雕塑作为特色园艺 在园林绿化中有着极高的地位，常作为大型庆典、
櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐櫐
世博
况最佳；由于升汞对外植体的毒害比次氯酸钠更严重，
所以我们在对外植体灭菌时一般使用次氯酸钠；
３．２　小叶丁香叶片脱分化最佳培养基为 ＭＳ＋
ＮＡＡ２ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ；
３．３　小叶丁香茎段生腋芽最佳培养基为 ＭＳ＋６－
ＢＡ２ｍｇ／Ｌ；
３．４　小叶丁香腋芽生根最佳培养基为 ＭＳ＋ＮＡＡ　０．５
ｍｇ／Ｌ。
图１　小叶丁香叶片愈伤组织的发生情况图
图２　小叶丁香腋芽的生根情况
参 考 文 献
［１］　曾镭，刘燕．植物组织培养中褐化问题的研究进展［Ｊ］．
安徽农学通报，２００７，１３（１４）：４９－５０．
［２］　王栋，买合木提·克衣木，玉永雄，等．植物组织培养
中的褐化现象及其防止措施［Ｊ］．黑龙江农业科学，
２００８（１）：７－１０．
４３
第１期（总第１１６期） 中 国 林 副 特 产 Ｎｏ．１（ＧＳＮＯ．１１６）
２０１２年２月 Ｆｏｒｅｓｔ　Ｂｙ－Ｐｒｏｄｕｃｔ　ａｎｄ　Ｓｐｅｃｉａｌｉｔｙ　ｉｎ　Ｃｈｉｎａ　 Ｆｅｂ．２０１２
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