全 文 ：《现代农业科技》2009年第 2期
基本培养基 激素组合 平均芽数∥个
MS 1.0mg/L BA+0.05mg/L NAA 5.9
1.0mg/L BA+0.2mg/L NAA 7.2
1.0mg/L BA+0.5mg/L NAA 6.3
1.0mg/L BA+0.2mg/L IAA 4.7
1.0mg/L BA+0.2mg/L IBA 5.8
3.0mg/L BA+0.05mg/L NAA 9.7
3.0mg/L BA+0.2mg/L NAA 13.8
3.0mg/L BA+0.5mg/L NAA 10.4
3.0mg/L BA+0.2mg/L IAA 8.5
3.0mg/L BA+0.2mg/L IBA 10.1
5.0mg/L BA+0.05mg/L NAA 7.3
5.0mg/L BA+0.2mg/L NAA 9.4
5.0mg/L BA+0.5mg/L NAA 8.6
5.0mg/L BA+0.2mg/L IAA 6.5
5.0mg/L BA+0.2mg/L IBA 7.8
表 2 不同激素组合对扶郎花分化培养的影响
扶郎花（Gerber jamesonii Bolus.）又称非洲菊、灯盏花，为
菊科灯草属多年生宿根草本花卉。其植株风韵秀美，花色硕
大，艳丽，花期长，适宜盆栽观赏，越来越受到人们的青睐。
扶郎花常规的繁殖方法有播种繁殖和分株繁殖。而种子寿
命短，发芽率低，后代变异大，难以保持原有品种的优良性
状；分株繁殖获得的苗数量有限，增殖率低，速度慢。利用组
织培养技术，可大量快速生产出质量高、性状一致的扶郎花
苗，是目前育苗的主要方式。
1 材料与方法
1.1 材料
采用直径为 0.5~1.0cm 扶郎花的幼小花蕾作外植体。
1.2 方法
1.2.1 无菌材料灭菌。自长势健壮的盆栽扶郎花上剪取直径
0.5～1.0cm 的带蕾花托，先在自来水下冲洗，再用洗衣粉浸
泡 3min，并用自来水反复冲洗。然后在无菌条件下，于超净
工作台上进行消毒操作：先用 75 %酒精浸泡 30s，无菌水冲
洗 3 次，再用 0.1% HgCl2溶液（加土温 2~3 滴）浸 5~10min，
无菌水冲 6~8 次，无菌纸吸干水分，剥去苞片花瓣，留下花
托并切成几小块，接种于诱导培养基 MS+5.0mg/L 6-BA＋0.2
mg/L NAA。
1.2.2 不同基本培养基对扶郎花增殖的影响试验。植物组
织培养的基本培养基能给植物提供基本营养成分，对植物
生长发育影响较大。试验以配方较全面的 4种常用基本培养
基即 MS、B5、N6、H 为试验因子，并添加 2.0mg/L 6-BA＋0.2
mg/L NAA，进行不同培养基对扶郎花增殖影响的试验筛
选。每个处理重复 50瓶，每瓶 1苗。30d 后观察生长情况。
1.2.3 不同激素组合对扶郎花芽分化的影响比较试验。植
物激素中生长素和细胞分裂素对植物分化作用明显。在确
定基本培养基后，进行生长素和细胞分裂素的种类和浓度配
比试验。试验分 15 组处理，每组处理重复 30 瓶，每瓶 3 苗。
30d 为 1代。培养结束时记录各标记培养基中生长的芽数。
1.2.4 不同激素组合对扶郎花的壮苗生根影响比较试验。
针对植物生长素和细胞分裂素对植物生长健壮和生根的作
用进行对比试验。试验使用苗高 2~3cm 的丛生苗分切成单
株进行壮苗生根培养。试验分 5组处理，1 组对照。每组处理
重复 30瓶，每瓶 3 苗。20d 后观察记录各配比培养的小苗生
根率、根长及生长情况。
1.3 培养条件
培养温度：20~25℃，光照强度 1 500~2 000Lx，光照时数
12h/d，采用固态静止方式培养。以上所选用的培养基配方
中，蔗糖浓度为 3%，琼脂浓度为 0.7%~0.8%，pH值为 5.4~5.8。
2 结果与分析
2.1 无菌体系的形成
经过 10d的培养，未污染的扶郎花托切口处可看见膨大
微绿的小突起，即愈伤组织。35d 后，愈伤组织逐渐开始少量
分化出新的小苗，60d 后萌发的新芽为试验无菌外植体材料
来源。
2.2 不同培养基对扶郎花增殖的影响
从表 1 可以看出，扶郎花的增殖率 MS>N6>B5 >H，这
和培养基中无机盐种类、数量和浓度有关。MS培养基中含有
高无机盐成分，种类丰富，浓度高。B5 和 N6 也是高无机盐
成分，但是其中硝酸盐含量较高，增殖情况没有 MS 培养基
好。而 H 培养基属于中等无机盐含量的培养基，因而增殖率
明显下降。因此，采用 MS培养基较适宜扶郎花的增殖培养。
2.3 不同激素组合对扶郎花分化培养的影响
从表 2可以看出，经过 30d 的生长，不同激素组合对扶
郎花的增殖均可产生一定效果。当 BA浓度由 1.0mg/L 提高
（下转第 17页）
盆栽扶郎花的组织培养和快速繁殖研究
吴华芬
（浙江省丽水市农业科学研究所，浙江丽水 323000）
摘要 以扶郎花花蕾为外植体，进行植物组织培养研究。结果表明：在扶郎花增殖培养中，配方为 MS+3.0mg/L BA+0.2mg/L NAA 对
扶郎花快速繁殖效果最好，而生根培养则以 1/2MS+0.3mg/L NAA 为佳。
关键词 盆栽扶郎花；组织培养；培养基；增殖；生根
中图分类号 S682.1+1 文献标识码 A 文章编号 1007-5739（2009）02-0014-01
作者简介 吴华芬（1976-），女，浙江丽水人，农艺师，主要从事园艺、植
物组织培养方面研究。
收稿日期 2008-12-05
生长状况
芽丛数量 平均增殖率∥%
多 9.7
一般 5.6
一般 6.1
极少 3.9
激素组合
2.0mg/L 6-BA＋0.2mg/L NAA
基本
培养基
MS
B5
N6
H
表 1 不同培养基对扶郎花增殖的影响
园艺博览
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《现代农业科技》2009年第 2期
（上接第 14页）
到 3.0mg/L 时，芽分化数量明显增加，当 BA 浓度增大到 5.0
mg/L时，芽分化数量又开始下降。增殖效果上，生长素NAA>
IBA>IAA，而 NAA 浓度 0.2mg/L 效果优于 0.5mg/L，NAA浓
度为 0.05mg/L 效果较差。因此，培养基为 MS+3.0mg/L BA+
0.2mg/L NAA 时，对扶郎花增殖效果最好。
2.4 不同激素组合对扶郎花的壮苗生根影响
由表 3 可以看出，经过 20d 的生长，不同生长素对扶郎
花的壮苗和生根有一定效果，其中 IAA促进苗生根的作用弱，
IBA 促进苗生根的作用一般，NAA 促进苗生根的作用强，
且能明显促进小苗粗壮。因而，扶郎花的壮苗生根配方以
1/2MS+0.3mg/L NAA 为宜。
3 移栽
当扶郎花无菌瓶苗有 3~5 条根，且根长达 2cm 以上时，
可在常温条件下，放入培养温室中进行炼苗 3d，然后打开培
养瓶盖再炼苗 2d，即可出瓶。出瓶时，洗净扶郎花根部培养
基，并将其移栽于珍珠岩 ∶跖石＝1∶1 的基质中 ，保持80%~
90%的空气湿度，适当遮荫。约 2 周后即可成活，成活率在
95%以上。培养 40~50d 即可上盆。盆栽扶郎花适宜疏松肥沃
的酸性砂质壤土，泥炭、砻糠灰、园土也是其盆栽理想基质。
盆栽时注意浅植，以利生长，否则易腐烂。
4 参考文献
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2000.
生根培养基 根数∥条 根长∥cm 苗生长状况
1/2MS+0.1mg/L NAA 3.7 2.7 苗生长粗壮一般
1/2MS+0.3mg/L NAA 5.6 2.5 苗生长最粗壮
1/2MS+1.0mg/L NAA 3.8 2.8 苗生长较粗壮
1/2MS+0.3mg/L IAA 2.9 2.2 苗生长较弱小
1/2MS+0.3mg/L IBA 3.1 2.9 苗生长粗壮一般
1/2MS 0.7 1.2 苗生长最弱小
表 3 不同激素组合对扶郎花的壮苗生根影响
（上接第15 页）
地上部分缺素形态表现：①症状首先出现在老叶上，可
能是缺氮、磷、钾、镁。全株较均匀出现，老叶薄、软，颜色黄
绿，植株缺氮；老叶变黄后转为褐色，在其上布满黑色的斑
块，且整株的叶鞘上部都出现黄褐色斑块，老叶为黑色，植株
缺磷；如果老叶的叶尖、叶缘变褐焦皱缩，似灼烧状，整片叶
黄化后转变为褐色，叶面布满黑色的斑块，植株缺钾；后期
老叶发黄后变为红棕色，并在其上布满黑色的斑块，植株缺
镁。②症状分布在幼嫩组织（嫩叶）上，可能是缺铁、钙。如果
嫩叶开始时呈黄绿色，严重时白色，最后变为微红色，且出
现点状的酱油色枯斑，植株缺铁；新叶狭长且出现网格状的
失绿症，植株缺钙。
培养过程中，曾有培养液出现富营养化，培养液里出现
青丝。其先后顺序为：完全液、缺钾、缺镁、缺钙、缺铁。缺氮
和缺磷不发生这种情况。缺铁、缺镁、缺钙、缺钾都有虫子咬
伤的痕迹，说明其抗虫能力较差。缺磷培养液消耗得较快，
缺磷的植株长得也较快，有疯长的趋势。
由于植物体对营养元素吸收、转化利用是一项很复杂的
生理生化过程。各元素之间，既有相互促进，也有相互拮抗作
用。当缺乏某种元素而又不表现该元素特有的缺素症，或与
另一元素有共同特征时，只凭形态目测，并不是很准确。因此，
只可作为依据，应结合取样化验，才能正确诊断。
4 参考文献
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国南方果树，1998，27（3）：29-30.
比CK1 高 7.71%，比 CK2 高 16.11%；M52 平均产量比 CK1
高6.75%，比 CK2高 15.78%。
3 小结与讨论
综合 2 年的生产试验可知，花魔芋组培种芋出苗期早，
出苗整齐，倒苗期推迟，生长天数延长；生长势较强，植株
高，叶幅展开大，柄径粗；抗病性较强；膨大系数大，产量高。
因此，魔芋组培种芋有较高的生产种植性能。
由于组培种芋是由组培苗培育而成，而组培苗经过灭
菌脱毒处理，增殖系数高，属于无性生殖范畴 [6]。另外，魔芋
种植是在传统的庭院式栽培基础上发展起来的，并没有经过
严格选择、优化、分离和纯化，因而到目前为止，还没有真正
意义上的栽培品种，而只有原始种，是一种天然的混杂群体，
具有多种形态变异，目前主栽的花魔芋、白魔芋种内均出现
了丰富的变异 [7]。因此，选取性状优良、数量较少的种质母本
做外植体，再结合组织培养快繁技术，增殖培养出大量抗病
能力强、生长性状优、产量高的组培种芋，甚至新的品系或
品种是魔芋生产今后发展的方向。
4 参考文献
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农业大学学报，1999，21（3）：215-219.
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大学学报，1999，8（1）：76-80.
[4] 费甫华，李松，张化平，等.魔芋抗病丰产栽培综合配套关键技术研
究及应用[Z].国家科技成果，2003.
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品种 年份
种芋均重
g
播种量
kg/hm2
产量
kg/hm2 膨大系数
M52 2006 60.7 5 008.5 32 220.0 6.43
2007 166.8 6 262.5 31 522.5 5.03
CK1 2006 62.5 5 157.0 31 290.0 6.07
2007 164.8 6 225.0 28 423.5 4.57
CK2 2006 61.7 5 091.0 28 680.0 5.63
2007 167.2 6 219.0 26 374.5 4.24
注：膨大系数为产量与播种量的比值，反应投入产出比。
表 3 经济性状
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园艺博览
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