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毛尖紫萼藓配子体再生体系的建立



全 文 :·生物技术· 北方园艺2012(16):92~94
第一作者简介:沙伟(1963-),女,博士,教授,博士生导师,现从事植
物学和植物遗传学的教学与科研工作。E-mail:shw1129@163.net.
基金项目:国家自然科学基金资助项目(31070180)。
收稿日期:2012-05-23
毛尖紫萼藓配子体再生体系的建立
沙   伟,崔   巍,张 梅 娟
(齐齐哈尔大学 生命科学与农林学院,黑龙江 齐齐哈尔161006)
  摘 要:以消毒试验后所得的毛尖紫萼藓原丝体为材料,通过培养,成功的建立了毛尖紫萼
藓配子体再生体系。结果表明:MS培养基、低pH能促进毛尖紫萼藓原丝体褐化;葡萄糖能诱导
出弱小的配子体;激素对毛尖紫萼藓配子体诱导效果不理想;NH4NO3浓度为2.5g/L的Prat培
养基,适合于毛尖紫萼藓原丝体分化成配子体;将褐化到一定程度的原丝体接种到Prat培养基
后,20d可以生长出较理想的配子体。
关键词:毛尖紫萼藓;组织培养;配子体
中图分类号:S 603.6 文献标识码:A 文章编号:1001-0009(2012)16-0092-03
  毛尖紫萼藓(Grimmia pilifera P.Beauv.Prodr.)为
紫萼藓科(Grimmiaceae)紫萼藓属(Grimmia)藓类植物,
植物体粗壮,稀疏成片丛生,高3~4cm。茎倾立,挺硬,
衡疏叉状分枝,中轴细胞不分化的小型旱生藓类。在我
国南北各省区均有分布,呈现出东亚与北美的间断分
布[1]。毛尖紫萼藓有着特殊的抗旱机制[2],但对于其抗
旱机制相关的研究并不深入。得到新生的配子体是组
织培养的重要步骤,也是最终目的。通过组织培养可以
去除野外采集材料的杂质,得到纯种的、均一的材料,为
毛尖紫萼藓生理、分子生物学等更深入的研究打下基
础,从而确定植物体中的特殊成分,分析其效用,进一步
开发毛尖紫萼藓的实际应用价值,开发出造福人类的商
业成品。
1 材料与方法
1.1 试验材料
毛尖紫萼藓采自黑龙江省五大连池市石龙地区。
1.2 试验方法
1.2.1 试材的消毒 将植物体清洗干净,充分复水,预
   
培养15d,解剖镜下取茎尖部约5mm。流水冲洗5h,在
浓度为0.025%的升汞溶液旋流振荡消毒105s,无菌水
振荡冲洗5~8次。接种在Beneck培养基中,得到毛尖
紫萼藓原丝体。
1.2.2 原丝体培养条件 以改良后的Prat培养基
(NH4NO3浓度从原来的2.5g/L改为0.5g/L)为基础
培养基,不添加糖类,琼脂为9g/L,pH 5.5,培养温度
23℃,光照强度3 000lx,光照周期12h/12h。
1.2.3 MS培养基对配子体诱导进行培养 将毛尖紫萼
藓原丝体继代到MS培养基中,pH 6.0,培养30~50d后,
继代到pH 5.5的改良的Prat培养基中,30d后观察试验
结果。
1.2.4 pH为4.5~5.0的改良的Prat培养基对配子体
诱导进行培养 将毛尖紫萼藓原丝体继代到pH为
4.5~5.0的Prat培养基中,培养20d左右,继代到pH
为5.5的改良的Prat培养基中,30d后观察试验结果。
1.2.5 pH为6.0的MS+葡萄糖培养基对配子体诱导
进行培养 将毛尖紫萼藓原丝体继代到pH为6.0的
MS+葡萄糖(30g/L)培养基中,30d后观察试验结果。
1.2.6 不同激素配比对毛尖紫萼藓配子体诱导 将毛
尖紫萼藓原丝体继代到不同激素配比的Prat培养基上,
30d后观察试验结果,不同激素配比及培养基见表1


Abstract:Taking the capsuled of Enstoma grandiflorun with pink flower as the material,the key technologies of
production tissue culture seedling of Enstoma grandiflorun were studied.The mediums of leaves induction,single bubs
enrichment culture and rooting were elected and the other methods of production were summarized.The results showed
that the best medium of leaves induction was MS+6-BA 0.4mg/L+IBA 0.1mg/L and the normal bubs every leaf was
5in it.The best medium of single bubs enrichment was MS+6-BA 0.2mg/L+IBA 0.05mg/L and the normal bubs
every single bubs was 5in it.The best medium of rooting was 1/2MS+IBA 1.0mg/L and rooting rate was 95%in it.
Key words:Enstoma grandiflorun;tissue culture seedling;key technology
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北方园艺2012(16):92~94 ·生物技术·
  表1 不同激素配比对毛尖紫萼藓
配子体诱导
  Table 1 Hormones of diferent combinations on
gametophytes induction of Grimmia pilifera  mg/L
序号 1  2  3  4  5  6  7  8  9
2,4-D  0.5  0.5  0.5  1.0  1.0  1.0  2.0  2.0  2.0
6-BA  0.5  1.0  2.0  0.5  1.0  2.0  0.5  1.0  2.0
2 结果与分析
2.1 MS培养基对配子体再生的诱导
将毛尖紫萼藓原丝体继代到 MS培养基中,pH为
6.0,培养30~50d后,原丝体出现褐化现象;继代到pH
为5.5的Prat培养基中,20d左右可生长出新的配子
体。配子体长势较好,新配子体植株高约为5~10mm。
生长量较理想。
2.2 低pH值的Prat培养基对配子体再生诱导
将毛尖紫萼藓原丝体继代到pH为4.5~5.0的
Prat培养基中,培养30d左右,原丝体出现褐化现象,原
丝体团底部有部分类似于假根的黑色丝状体产生,将已
经褐化的原丝体继代到pH为5.5的Prat培养基中。
20d左右可生长出新的配子体。配子体长势较好,新配
子体植株高约为5~10mm。生长量较理想。
2.3 添加葡萄糖的MS培养基对配子体再生诱导
将毛尖紫萼藓原丝体继代到pH为6.0的 MS+葡
萄糖(30g/L)培养基中。经30~50d原丝体可生长出
新的配子体,但配子体非常弱小,配子体生长量也很小,
新配子体植株高不超过5mm。葡萄糖对毛尖紫萼藓配
子体生成有一定的诱导作用,但结果并不理想。
2.4 铵盐浓度对配子体再生的影响
改良后的Prat培养基(NH4NO3浓度从原来的
2.5g/L改为0.5g/L)适合于毛尖紫萼藓原丝体生长,
但不利于原丝体再次分化出配子体。接种在Prat培养
基上的原丝体,能够生长出情况良好的配子体。当Prat
培养基中NH4NO3浓度为2.5g/L时,适合于毛尖紫萼
藓原丝体分化成配子体,见图1。
图1 毛尖紫萼藓配子体
Fig.1 Gametophytes photos of Grimmia pilifera
2.5 激素配比对配子体的诱导
不同浓度的激素配比对毛尖紫萼藓配子体诱导效果
不佳,5号培养基(2,4-D 1.0mg/L+6-BA 1.0mg/L+
Prat培养基)对毛尖紫萼藓配子体起到了一定的诱导作
用,但所诱导出的芽体生长状态差,茎叶体分化不十分
明显。6号培养基(2,4-D 1mg/L+6-BA 2mg/L+Prat
培养基)能够诱导出新生配子体,但配子体生长状态极
差,配子体极其弱小,生长不明显(图2)。其它培养基均
未能诱导出配子体。添加植物激素的培养基不能诱导
出较理想的毛尖紫萼藓新生配子体。
图2 激素对配子体诱导的影响
Fig.2 Hormones efects on the gametophytes inducing
3 结论与讨论
苔藓植物在无生长调节物质作用下,无论是孢子
体、配子体,或是其它组织都可通过相似的发育途径再
生,由绿丝体和轴丝体产生芽体,再发育成配子体[3]。
培养生长状态较好的原丝体是构建毛尖紫萼藓配子体
体系的基础,弱小的原丝体不利于长出新的配子体。将
生长旺盛的毛尖紫萼藓原丝体接种在Prat培养基上,原
丝体不能长出新的配子体,而通过培养条件使生长旺盛
的原丝体达到一定的褐化程度,原丝体出现黄色,原丝
体团底部出现部分黑色的假根,此时,将原丝体继代到
pH为5.5的Prat培养基,20d左右就可以长出新的配
子体。
苔藓植物没有真正的根,学者们把苔藓植物中一种
类似于根的丝状结构称为假根,假根对苔藓植物起固定
和吸收营养的作用。对于苔藓植物假根,不同学者提出
了不同的学说,周云龙等[4]都认为假根是由单列细胞构
成,有分枝或无;而刘世彪等[5]则认为假根中的褐化细
胞可能是由苔藓植物生长过程中分泌代谢产物导致原
丝体细胞退化而形成的;魏华等[6]指出,褐化的原丝体
是伴随着配子体的生长而逐渐形成的。通过培养基条
件,诱导出毛尖紫萼藓的假根有利于细胞组织吸收培养
基中的养分,使原丝体团进一步分化。
当Prat培养基中NH4NO3浓度为2.5g/L时,能诱
导出生长状态良好的配子体,但Prat培养基中NH4NO3
浓度改为0.5g/L时,不能诱导出新生配子体。由此可
见,铵盐是毛尖紫萼藓配子体再生必不可少的一个因
素,相对较低浓度的NH4NO3能促进原丝体的发育,但
却不能供给配子体再生足够的氮源。多数配子体发育
都是以原丝体为基础的。Hohe等[7]在研究中指出,苔
藓植物的培养和其它种子植物培养存在很大不同,苔藓
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·生物技术· 北方园艺2012(16):92~94
植物自身可以分解片状物或者自身分解植物激素改变
培养基的特性从而阻止原丝体的分化,使细胞保持在原
丝体阶段。于淑玲[8]对北方美姿藓(Timmia bavarica)
原丝体发育特征进行研究时指出,在北方美姿藓原丝体
的发育过程中,绿丝体和轴丝体的细胞端壁有褐化现
象;在次生块状原丝体和块状原丝体上有配子体原始细
胞形成,但在培养过程中,轴丝体上不形成配子体原始
细胞。
李晓毓等[9]对尖叶匍类目藓的组织培养进行研究
时,发现植物激素6-BA和2,4-D对尖叶匍灯藓的生长
并无明显的促进作用,浓度的不同对其也无明显影响,
并指出苔藓植物自身合成的内源激素已经足够自身细
胞生长,分化的需要。浓度过高的激素对植物细胞的生
长有抑制作用。刘丽等[10]研究了萘乙酸(NAA)对葫芦
藓(Funaria hygrometrica)孢子萌发及原丝线体生长的
影响并做出相关报道,指出葫芦藓孢子萌发主要靠自身
储藏的相关物质起一定作用,NAA对葫芦藓孢子萌发
无影响,NAA在促进葫芦藓在分枝的宽度和分枝数目
上能促进原丝体生长,但并不诱导原丝体分化成假根。
高永超等[11]对地钱的愈伤组织诱导及分化进行了研究,
并指出地钱对不同生长物质反应差别不明显,生长调节
物质在地钱愈伤组织的诱导过程中并不是必需的成分,
无生长调节物质条件下仍可以诱导出愈伤组织。苔藓
植物在无生长调节物质的培养基上能形成愈伤组织可
能与其自身能够合成激素类物质有关。这与该研究结
论相近,毛尖紫萼藓对激素并不敏感。除NAA能导致
毛尖紫萼藓原丝体死亡外,对于其余种类的生长调节物
质对毛尖紫萼藓生长的影响差别不大。
配子体的生长需要以消毒试验后的原丝体为基础,
如前期的原丝体生长不良,原丝体褐化后,新生配子体
生长较矮小瘦弱。要成功地诱导出毛尖紫萼藓配子体,
首先,原丝体要褐化到一定程度,使原丝体的生长受到
一定的限制;其次,要保证毛尖紫萼藓原丝体团下方出
现一定量的假根,从而才能促使新配子体的生成。此时
配子体生长占优势,而原丝体失去竞争优势,不再大批
量返绿生长,在此基础生长出的新配子体生长情况良
好。配子体生长到一定程度,原丝体生长受到抑制,毛
尖紫萼藓原丝体与配子体之间的生长有互相抑制的关
系。如不削弱毛尖紫萼藓原丝体生长优势,很难建立全
新的配子体再生体系。毛尖紫萼藓组织培养过程中的
原丝体与配子体的作用关系还有待进一步研究。
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Establishment of Gametophytes Regeneration About Grimmia pilifera
SHA Wei,CUI Wei,ZHANG Mei-juan
(Colege of Life Sciences and Engineering,Qiqihar University,Qiqihar,Heilongjiang 161006)
Abstract:Taking disinfected protonemata of Grimmia pilifera as material,gametophytes of Grimmia pilifera can be
induced successfuly through the cultivation.The results indicated that the MS culture medium,low pH could promote
protonemata browning;glucose could induce poor gametophytes;hormone could’t induced ideal gametophytes of Grimmia
pilifera;Prat culture medium with 2.5g/L concentration of NH4NO3was suitable for protonemata of Grimmia pilifera
induced into gametophytes.Inoculated some degree of browning protonemata into Prat culture medium,ideal
gametophytes could be grown after 20days.
Key words:Grimmia pilifera;tissue culture;gametophytes
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