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假叶树的组织培养



全 文 :文章编号:1001-7380(2000)05-0032-03
假叶树的组织培养
仲 磊 ,李玉巧 ,蒋泽平 ,倪竞德
(江苏省林业科学研究院 ,江苏 南京 211153)
摘要:在假叶树组织培养过程中 , 各种激素的质量浓度(mg/ L):在愈伤组织阶段 , 细胞分裂素 ZT 以
1.0 、生长素 NAA以 0.3 为宜;分化阶段 , 细胞分裂素 BA 以 1.0 或 ZT 以 0.5 、生长素 NAA 以 0.1 为
宜;生根阶段以 0.3%活性炭 ,不加任何激素生根效果最好。
关键词:假叶树;组织培养;愈伤组织;分化
中图分类号:S722.3  文献标识码:A
Tissue culture of Ruscus aculeatus L.
ZHONG Lei ,LI Yu-qiao , JIANG Ze-ping ,NI Jing-de
(Jiangsu Academy of Forestry , Nanjing 211153 , China)
Abstract:Experiments were performed sucessfully in the tissue culture of Ruscus aculeatus L.Callus from the
explant were induced best in MS medium containing 1.0 mg/ L ZT and 0.3 mg/L NAA.Callus abore-mentioned
could further differentiate into shoots in MS medium supplemented suitably with 1.0 mg/ L BA , 0.5 mg/L ZT
and 0.1 mg/ L NAA.The rooting process of cultures occured best under the condition of 1/2MS with 0.3% ac-
tive carbon , additive to no growth hormones.
Key words:Ruscus aculeatus L.;Tissue culture;Callus;Differentiation
  假叶树(Ruscus aculeatus L.)原产南欧和
北非 , 是百合科假叶树属的一种常绿小灌
木[ 1] ,因其地上茎形状别致 ,颜色墨绿 ,高雅
悦目 ,且保存时间长 ,是插花配叶 、餐盘拼图
及盆栽观赏的优良材料 ,深受人们的喜爱。
假叶树属约 5种 ,江苏目前只引栽了假叶树
1种 ,通常采用分株繁殖 ,增殖速度很慢 ,故
尽管市场需求良好 ,但栽培数量仍然有限 ,且
多为盆栽观赏。
组织培养是提高繁殖系数的有效手段之
一 ,但针对假叶树的组织培养尚未见报道 ,因
此 ,开展假叶树的组织培养研究 ,无论在理论
上 ,还是在生产实践中 ,都有着重要的意义。
1 材料与方法
1.1 供试材料
由江苏省林业科学研究院提供假叶树 2
年生苗 ,取其新抽出的嫩绿色叶状枝。
1.2 培养基
第 27卷第 5 期 江 苏 林 业 科 技 Vol.27 No.5
2000年 10 月 Journal of Jiangsu Forestry Science &Technology Oct.2000
收稿日期:2000-06-25
基金项目:江苏省林业科学研究院青年基金
作者简介:仲磊(1976- ),女 ,江苏赣榆人 ,中专毕业 ,主要从事林木花卉组织培养研究工作。
1.2.1 诱导愈伤组织培养基:
(1)MS+BA 1.0 mg/L+IAA 0.3 mg/L;
(2)MS+BA 2.0 mg/L+IAA 0.3 mg/L;
(3)MS+ZT 1.0 mg/L+IAA 0.3 mg/L;
(4)MS+ZT 1.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L;
1.2.2 分化培养基
(5)MS+ZT 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;
(6)MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;
(7)MS+BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;
(8)MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L;
(9)MS+ZT 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L;
(10)MS+KT 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;
1.2.3 生根培养基
(11)1/2MS+C(活性炭)0.3%。
在上述各种培养基中均加蔗糖 3%,琼
脂0.7%,pH 调至 5.8 ~ 6.0。
1.3 培养方法[ 2 ,3]
切取地上茎的叶状枝 ,在无菌条件下 ,先
用70%乙醇消毒 20 s ,经杀菌后 ,用无菌水冲
洗4 ~ 5 次 ,再用消毒滤纸吸干表面水后 ,将
叶片剪成 0.4 ~ 0.6 cm2 的小块 ,接种到新鲜
的诱导愈伤组织的培养基上 ,置于室内培养
室培养 。室温(25±3)℃,每天光照 10 h 左
右 ,待长出黄豆大小的愈伤组织时 ,转至分化
培养基上培养 ,当长成完整的小植株时生根
即可移栽 。
2 结果与分析
2.1 杀菌条件
能否得到供试植物的无菌材料 ,是进行
组织培养的基本前提 ,也是能否成功的第一
步。杀菌条件(杀菌剂 、杀菌时间)选择试验
及结果列于表 1。
表 1 不同药品与时间对杀菌效果的影响
时间/min 升 汞(0.1%)
漂白粉
(10%)
次氯酸钙
(10%)
5 +++ - +
10 材料失去活性 + +
15 材料失去活性 ++ ++
  在杀菌效果中:“ -”表示没有任何效果;“ +”表示杀菌
效果不明显;“ ++”表示效果较明显;“ +++”表示效果最
明显,去除细菌。
  表 1表明 ,在升汞中杀菌 5 min效果最
好。另外 ,由于假叶树的叶状茎是革质的 ,如
扩繁初期无菌材料受细菌污染 ,仍然可以用
此方法杀菌。
2.2 愈伤组织诱导最适培养基选择
无菌材料在合适的培养基上 ,尽快形成
愈伤组织是获组织培养苗的关键步骤 ,因此 ,
通过筛选并得到最佳培养基是十分重要的研
究内容。试验结果见表 2。
由表 2可以看出 ,(1),(2),(3),(4)四种
培养基 ,对形成愈伤组织的时间和量的多少
无明显影响 ,但分化出绿色芽点的时间(4)号
培养基比(1),(2),(3)号分别提前约为 20 ,15
和 10 d ,因此 ,在诱导愈伤组织的培养基中添
加不同的细胞分裂素 、生长素及其配比关系
对加快芽的发育有着明显的影响。
表 2 不同转入天数添加不同激素对诱导愈伤组织和分化芽的影响
转入天数
培养基诱导情况
(1)MS+BA 1.0 mg/ L+
IAA 0.3 mg/ L (2)MS+BA 2.0 mg/ L+IAA 0.3mg/L (3)MS+ZT 1.0 mg/ L+IAA 0.3 mg/ L (4)MS+ZT 1.0 mg/ L+NAA 0.3mg/L
10~ 60 变化不明显 变化不明显 乳白色松散鱼籽状分化物* 乳白色松散鱼籽状分化物
60~ 80 乳白色鱼籽状分化物 乳白色鱼籽分化物 愈伤组织呈淡黄色 愈伤组织呈黑绿色
80~ 100 愈伤组织呈淡黄色 愈伤组织开始转绿 愈伤组织开始转绿 见黑绿色芽点
100~ 110 愈伤组织转绿 ,松散 愈伤组织转绿 出现绿色芽点 小芽及芽点增多
110~ 150 开始出现芽点 出现绿色芽点 小芽开始抽叶 , 芽点没有增多 抽出幼叶 ,长成植株
  *:刚转入时 ,愈伤组织呈淡黄色球状。
33第 5 期 仲 磊等:假叶树的组织培养
2.3 芽分化最适培养基的选择
愈伤组织在合适的培养基上分化或成
苗 ,是获得健壮组织培养苗的重要条件。通
过反复筛选(见表 3),尽管(5)~ (10)号 6种
在分化培养基上 120 d 左右均可形成小植
株 ,但从苗的数量和质量看 ,(6)、(9)号培养
基较为适宜 ,这说明在分化培养基中加入细
胞分裂素 BA或 ZT 适宜质量浓度比 KT 诱芽
效果好 ,添加细胞生长素 NAA 质量浓度以
0.1 mg/L 为宜 。
表3 不同激素和含量对芽形成和小植株生长的影

项 目 培 养 基(5)* (6) (7) (8) (9) (10)
愈块直径/ cm 1.8 2.3 1.8 1.6 2.1 1.5
芽数 5.0 8.0 5.0 2.0 7.0 3.0
苗高/ cm 2.0 2.5 1.8 1.6 2.5 2.2
长势 较壮 壮 较弱 较弱 壮 壮
  *:培养基序号。
2.4 生根及移栽
健壮的植株能否生根是移栽成活的关键 ,
将长至 2 cm 以上的小植株切下放入1/2 MS ,
加0.3%活性炭的培养基上生根 ,15 d后长出
2 ~ 3条不定根 ,简便易行 ,又节省成本 ,将生
过根的苗选净移栽 ,成活率达90%以上。
3 结语
将用于组织培养的假叶树无菌材料以
0.1%升汞液杀菌5 min ,在 ZT 1.0mg/L 、NAA
0.3 mg/L构成的培养基上诱导愈伤组织 ,在
BA 1.0 mg/L 或 ZT 0.5 mg/L ,NAA 0.1 mg/L
构成的培养基上芽分化 ,在1/2MS+0.3%活
性炭构成的生根培养基上进行诱导生根 ,最
终可获得假叶树小苗 。因此 ,认为利用该方
法来解决假叶树的快速繁殖问题是可行的。
参考文献:
[ 1]  江苏省植物研究所.江苏植物志:上册[ M] .南京:江
苏人民出版社 , 1977.356.
[ 2]  江苏省植物组织培养研究协会.经济植物组织培养
[M] .南京:江苏科学技术出版社 , 1988.34.
[ 3]  李玉巧.朱鹿鸣.花叶芋的叶片培养[ J] .江苏林业
科技 , 1989 , 16(4):18-19.
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