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大叶钩藤叶子化学成分研究



全 文 :大叶钩藤叶子化学成分研究
刘林生1,方 功2,王定勇2*
(1.佛山市中医院 药剂科,广东 佛山528000;2.广东药学院 药科学院,广东 广州510006)
摘 要:目的:对茜草科钩藤属植物大叶钩藤(Uncaria macrophylla Wal.)的叶子进行化学成分研究。
方法:用甲醇提取及柱色谱等方法进行分离,薄层色谱跟踪检测,波谱法鉴定结构。结果:从该植物叶子
中共分离鉴定出6个化合物,分别是柯诺辛碱(1)、、异钩藤碱(2)、钩藤碱(3)、熊果酸(4)、表儿茶素(5)、
山奈酚(6)。结论:该实验首次报道了大叶钩藤叶子的非挥发性化学成分。
关键词:大叶钩藤;柯诺辛碱;熊果酸
中图分类号:R284.1   文献标识码:A   文章编号:1673-2197(2014)21-0010-02
收稿日期:2014-07-03
基金项目:广东省中医药局科研课题(No.20132030)
作者简介:刘林生(1982-),男,广东省佛山市中医院主管中药师,研究方向为医院药学。
通讯作者:王定勇(1967-),男,博士,广东药学院教授,硕士生导师,研究方向为天然药物活性成分。E-mail:wdingyong@
163.com。
Chemical Constituents of the Leaf of Uncaria Macrophylla Wal.
Liu Linsheng1,Fang Gong2,Wang Dingyong2*
(1.Department of Pharmacy,Fushan Hospital of TMC,Guangdong 528000,China;
2.Colege of Pharmacy,Guangdong Pharmaceutical University,Guangzhou 510006,China)
Abstract:Objective:To study the chemical constituents of leaf of Uncaria macrophyla Wal.Methods:The plant was extracted
by MeOH,then separated and repeatedly purified by methods of chromatography,TLC for tracking and detection.Their structures
were elucidated by IR,MS and NMR.Results:Six compounds were isolated from the leaf of U.macrophyla Wal.and identified as
corynoxine(1),isorhynchophyline(2),rhynchophyline(3),ursolic acid(4),epicatechin(5)and kaempferol(6).Conclusion:
The non-volatile constituents of leaf of U.macrophylla Wal was reported for the first time.
Key Words:Uncaria macrophylla Wal.;Corynoxine;Ursolic Acid
  大叶钩藤(Uncaria macrophylla Wal.)为茜草科钩藤
属植物,为常用中药。临床多用于治疗头晕目眩、惊痫抽
搐、全身麻木等心血管和神经系统疾病,现已成为治疗高血
压方剂中常用药物[1]。大叶钩藤的化学成分已有报道:杨
君等[2]对大叶钩藤钩茎进行了化学成分研究;李国成等[3]报
道了大叶钩藤根的化学成分;王冬梅等[4]对大叶钩藤叶的
挥发油进行了GC-MS分析,共检出127个色谱峰,鉴定了
其中的85种成分;笔者[5-8]曾对大叶钩藤茎的生物碱和非生
物碱的化学成分、总生物碱的提取方法等进行了研究。作
为大叶钩藤基础研究的一部分,本文对大叶钩藤叶子中非
挥发性成分进行研究,利用现代提取分离和结构鉴定方法,
从中获得6个化合物,分别为柯诺辛碱(1)、异钩藤碱(2)、
钩藤碱(3)。熊果酸(4)、表儿茶素(5)、山奈酚(6)。现报道
如下。
1 仪器与材料
X-6型显微熔点测定仪(温度未校正,北京泰克仪器有
限公司)。核磁共振用Bruker AM-500型核磁共振仪测定
(TMS为内标,瑞士Bruker公司);ESI-MS在 Agilent 6120
LC/MS上测定(美国 Agilent公司);PerkinElmer Spec-
trum-100型红外光谱仪(KBr压片,美国 PerkinElmer公
司)。层析用硅胶(青岛海洋化工厂),层析用中性氧化铝
(天津市大茂化学试剂厂)。有机溶剂均为分析纯(天津市
富宇精细化工有限公司)。大叶钩藤叶子2012年10月采自
广东省阳春市,由广东药学院中药学院曾令杰博士鉴定为
大叶钩藤(Uncaria macrophylla Wal.)的叶子。
2 提取与分离
大叶钩藤叶子2.5kg,粉碎后用甲醇回流提取3次,减
压回收甲醇得浸膏350g,然后用3%HCl溶液溶解过滤,得
不溶物(A部分)和滤液(B部分)。B部分用氨水中和至pH
9~10,然后用氯仿萃取5次,回收氯仿得氯仿萃取物
15.5g。氯仿萃取物经中性氧化铝柱层析,石油醚—丙酮梯
度洗脱,氯仿与丙酮混合溶剂重结晶,得到柯诺辛碱(1,
—01—
63mg)、异钩藤碱(2,35mg)和钩藤碱(3,20mg)。A部分经
硅胶柱层析,氯仿—甲醇梯度洗脱,甲醇重结晶,得到熊果
酸(4,85mg)、表儿茶素(5,60mg)和山奈酚(6,30mg)。
3 结构鉴定
化合物 1:白色针状晶体 (CHCl3),mp 155.0~
157.0℃。ESI-MS(m/z):383.1[M-H]-。IRνmax(KBr)
cm-1:3170,3060,3020,2930,2778,1700,1615,1243,
753。13CNMR(125MHz,CDCl3)δ:182.2(C-2),73.5
(C-3),53.8(C-5),34.8(C-6),57.2(C-7),133.9(C-8),
124.9(C-9),122.0(C-10),128.1(C-11),109.6(C-12),
140.0(C-13),25.4(C-14),39.1(C-15),111.8(C-16),
161.2(C-17),12.8(C-18),19.6(C-19),40.5(C-20),
54.6 (C-21),169.2 (C-22),52.3 (-COOCH3),61.2
(-OCH3)。1 HNMR(500MHz,CDCl3)δ:9.02(1H,s,
NH-1),2.37(1H,dd,J=11.4,2.7Hz,H-3),3.21
(1H,m,H-5b),2.42(1H,ddd,J=8.7,8.7,8.7Hz,
H-5a),2.35(1H,dd,J=9.4,2.0,H-6b),2.02(1H,
m,H-6a),7.44(1H,d,J=7.3Hz,H-9),7.02(1H,
ddd,J=7.5,7.5,0.9Hz,H-10),7.15(1H,ddd,J=
7.7,7.7,1.0Hz,H-11),6.88(1H,d,J=7.7Hz,H-
12),1.80(1H,ddd,J=12.9,2.7,2.7Hz,H-14b),
2.76(1H,dt,J=13.3,3.6Hz,H-15),7.20(1H,s,H-
17),0.85(1H,t,J=7.3Hz,H-18),1.65(1H,m,H-
19b),1.05(1H,m,H-19a),1.48(1H,brd,J=11.3
Hz,H-20),3.17(1H,dd,J=7.6,2.1Hz,H-21b),
2.15 (1H,dd,J=11.1,2.1 Hz,H-21a),3.57
(-COOCH3,s),3.49(-OCH3,s)。以上数据与文献[5]报
道的柯诺辛碱一致。
化合物2:白色粉末,mp 152.5~154.0℃。ESI-MS
(m/z):383.2[M-H]-。IRνmax(KBr)cm-1:3418,3040,
2942,2785,1703,1700,1634,1615,1240,741。
13CNMR(125MHz,CDCl3)δ:180.8(C-2),72.8(C-3),
54.6(C-5),36.4(C-6),57.2(C-7),135.2(C-8),125.0
(C-9),122.6(C-10),127.5(C-11),109.4(C-12),140.8
(C-13),29.1(C-14),37.9(C-15),112.9(C-16),159.7
(C-17),11.2(C-18),24.5(C-19),38.2(C-20),59.1(C-
21),169.2 (C-22),51.2 (-COOCH3),61.3 (-
OCH3)。1 HNMR(500MHz,CDCl3)δ:8.11(1H,s,NH-
1),7.42(1H,s,H-9),7.21(1H,s,H-17),7.02(1H,
m,H-10),7.16(1H,t,J=7.6Hz,H-11),6.88(1H,
d,J=7.6Hz,H-12),3.56(3H,s,COOCH3),3.75
(3H,s,OCH3),3.34(1H,dd,J=3.7,11.0Hz,H-
21b),3.29(1H,dd,J=1.5,8.5Hz,H-5b),2.51(1H,
dd,J=8.5Hz,17.3Hz,H-5a),2.41(1H,dd,J=1.5,
8.8Hz,H-6b),2.09(1H,dd,J=4.2,8.8Hz,H-6a),
1.78(1H,t,J=11.0Hz,H-21a),1.49(1H,d,J=11.9
Hz,H-14b),1.10(1H,d,J=11.2Hz,H-14a),0.82
(3H,t,J=7.3Hz,H-18)。以上数据与文献[5]报道的异
钩藤碱一致。
化合物3:白色针晶(CHCl3),mp 202.0~203.0℃。
ESI-MS(m/z):383.2[M-H]-。IRνmax(KBr)cm-1:3410,
3040,2940 2785,1723,1700,1630,1610,1238,745。13
CNMR(125MHz,CDCl3)δ:180.5(C-2),76.8(C-3),
55.6(C-5),35.4(C-6),56.8(C-7),135.5(C-8),124.2
(C-9),122.9(C-10),128.5(C-11),109.5(C-12),142.8
(C-13),31.1(C-14),38.9(C-15),112.8(C-16),160.7
(C-17),11.8(C-18),24.6(C-19),40.2(C-20),58.6(C-
21),169.5 (C-22),51.3 (-COOCH3),61.8 (-
OCH3)。1 HNMR(500MHz,CDCl3)δ:9.06(1H,s,NH-
1),7.28(1H,d,J=7.5Hz,H-9),7.31(1H,s,H-17),
7.15(1H,m,H-11),7.02(1H,m,H-10),6.84(1H,
d,J=7.6Hz,H-12),3.74(3H,s,OCH3),3.56(3H,
s,COOCH3),3.25(1H,dd,J=3.8,12.0Hz,H-21b),
3.22(1H,m,H-5b),2.45(1H,dd,J=7.8,2.2Hz,H-
5a),2.36(1H,dd,J=7.8,4.4Hz,H-6b),1.97(1H,
m,H-6a),1.62(1H,t,J=10.5Hz,H-21a),1.94(1H,
m,H-14b),0.95(1H,m,H-14a),0.79(3H,t,J=7.3
Hz,H-18)。以上数据与文献[5]报道的钩藤碱一致。
化合物 4:白色针状晶体 (MeOH),mp 285.6~
287.0℃。ESI-MS(m/z):455.2[M-H]-;IRνmax(KBr)
cm-1:3435,2964,2928,2871,1688,1456,1387,1032,
998,951,875,850,821,660。13 CNMR (125 MHz,
CDCl3)δ:38.3(C-1),26.9(C-2),76.8(C-3),38.7(C-
4),54.8(C-5),18.0(C-6),32.7(C-7),39.0(C-8),40.
1(C-9),36.5(C-10),22.8(C-11),124.5(C-12),138.1
(C-13),41.6(C-14),27.5(C-15),23.8(C-16),46.8(C-
17),52.3(C-18),38.5(C-19),38.4(C-20),30.2(C-
21),36.3(C-22),28.2(C-23),15.2(C-24),16.0(C-
25),16.8(C-26),23.2(C-27),178.1(C-28),16.9(C-
29),21.0(C-30)。1 HNMR (500MHz,CDCl3)δ:5.13
(1H,t,J=3.6Hz,12-H),3.75(1H,dd,J=10.4,4.6
Hz,3-H),0.68(3H,s),0.75(3H,s,Me),0.87(3H,
s,Me),0.89(3H,s,Me),1.05(3H,s,Me),0.80
(3H,d,J=6.5Hz,Me),0.92(3H,d,J=6.3Hz,Me)。
以上数据与文献[6]报道的熊果酸一致。
化合物5:淡黄色结晶(MeOH),mp 228.0~229.5℃。
ESI-MS(m/z):291.1[M+H]+。13 CNMR (125 MHz,
CD3OD)δ:158.3(C-7),157.8(C-9),150.8(C-5),146.2
(C-3’),146.1(C-4’),132.6(C-1’),119.7(C-5’),116.
2(C-6’),115.6(C-2’),100.4(C-10),96.7(C-6),96.2
(C-8),80.2(C-2),67.8(C-3),29.5(C-4)。1 HNMR(500
MHz,CD3OD)δ:2.72(1H,dd,J=16.8,3.0Hz,H-4),
2.85(1H,dd,J=16.8,4.7Hz,H-4),4.17(1H,br.s,
H-3),4.81(1H,br.s,H-2),5.90(1H,d,J=2.3Hz,
H-8),5.93(1H,d,J=2.3Hz,H-6),6.57(1H,d,J=
8.2Hz,H=5’),6.78(1H,dd,J=8.2,1.8Hz,H-6’),
6.98(1H,d,J=1.8Hz,H-2’)。以上数据与文献[9]报道
的表儿茶素一致。
化合物6:黄色针状结晶(MeOH),mp 2 7 5.0~
—11—
双黄连注射剂中黄芩苷抗原合成及抗血清制备分析探讨
叶厚春
(赣县人民医院,江西 赣州341100)
摘 要:目的:对双黄连注射剂中黄芩苷抗原的合成以及抗血清成分的制备情况进行分析探讨,为今后
药物研究工作提供可靠的参考依据。方法:将黄芪苷与牛血清白蛋白采用高碘酸钠法进行交联,鉴定方
法为紫外扫描和SDS-PAGE法;经黄芩苷与牛血清白蛋白复合物对新西兰兔进行免疫产生抗血清,采
取ELISA法进行检测。结果:经紫外扫描和SDS-PAGE法证实黄芩苷与牛血清白蛋白发生了交联,
ELISA法在新西兰兔体内检测出黄芩苷与牛血清白蛋白复合物的抗血清,抗血清效价为1∶8 000。结
论:经高碘酸钠法黄芩苷抗原合成成功,其为黄芩苷单克隆抗体的制备以及ELISA法快速检测黄芩苷
提供了可靠的依据,值得关注。
关键词:双黄连注射剂;黄芩苷抗原;药物合成;抗血清;鉴定
中图分类号:R284   文献标识码:A   文章编号:1673-2197(2014)21-0012-02
收稿日期:2014-04-01
作者简介:叶厚春(1973-),男,江西省赣州市赣县人民医院主管药师,研究方向为临床药理。
  目前在临床上中药注射剂具有不可替代的作用,在疾
病的治疗中发挥重要的价值,减轻了患者的痛苦。然而注
射剂不良反应的存在也对其发展产生了一定的阻碍作
用[1]。本次实验对双黄连注射剂中黄芩苷抗原的合成以及
抗血清成分的制备情况进行分析探讨,分别采取高碘酸钠
法合成、紫外扫描和 SDS-PAGE 法进行鉴定,并采取
ELISA法对抗血清进行检测,具体情况报道如下。
1 实验材料
1.1 仪器
AR1140/C型电子天平,TU-1900型双光束紫外可见分
光光度计,DE-1型磁力搅拌器,透析袋,高速冷冻离心机,
CM-230超纯水系统,VE-180型电泳槽,EPS300型电泳仪,
TY-80A型脱色摇床,THA-3560C高压灭菌锅,核酸蛋白分
析仪,微量移液器,BIO-TEKELX-800酶标仪,DZF-6050型
恒温干燥箱,MA110型电子天平,超声波清洗器,可调电
炉,无菌注射器,酶标板,封口膜。
1.2 实验动物与试剂
本次实验中实验动物为健康新西兰大白兔;试剂包括:
黄芩苷单体,蒸馏水,牛血清蛋白,DMF(分析纯),高碘酸
钠,乙二醇(分析纯),吡啶,二乙基氨基乙基纤维素,生理盐
水,β-巯基乙醇,Tris丙烯酰胺,甲叉双丙烯酰胺,

过硫酸铵
276.5℃。ESI-MS(m/z):285.2[M-H]-。13 CNMR (125
MHz,DMSO-d6)δppm:176.2(C-4),164.2(C-7),
161.5(C-9),160.5(C-4’),156.0(C-5),146.2(C-2),
135.9(C-3),130.3(C-2’,6’),123.0(C-1’),116.3(C-
3’,5’),103.0(C-10),98.7(C-6),93.5(C-8)。1 HNMR
(500MHz,DMSO-d6)δppm:12.45(1H,s,5-OH),
8.01(2H,d,J=8.7Hz,H-2’,6’),6.91(2H,d,J=
8.7Hz,H-3’,5’),6.42(1H,d,J=2.0Hz,H-8),6.21
(1H,J=2.0Hz,H-6)。以上数据与文献[10]报道的山奈酚
一致。
参考文献:
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(责任编辑:宋勇刚)
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