全 文 ：第２７卷第２期
２ ０ １ ２年６月
河 北 林 果 研 究
ＨＥＢＥＩ ＪＯＵＲＮＡＬ ＯＦ ＦＯＲＥＳＴＲＹ ＡＮＤ ＯＲＣＨＡＲＤ ＲＥＳＥＡＲＣＨ
Ｖｏｌ．２７Ｎｏ．２
Ｊｕｎ．２ ０ １ ２
文章编号：１００７－４９６１（２０１２）０２－０１４７ －０５
风箱树组织培养研究
马 妍１，朱建峰２，赵健如１，王进茂１
（１河北农业大学 林学院，河北 保定０７１０００；２中国林业科学研究院 林业研究所，北京１０００９１）
摘要：以风箱树（Ｃｅｐｈａｌａｎｔｈｕｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ Ｌ．）带腋芽的茎段为外植体，探讨不同植物激素（６－ＢＡ、ＩＢＡ、
ＮＡＡ）对试管苗增殖以及植株再生的影响，建立了一套风箱树离体培养技术体系。试验结果表明：启动最适
培养基为 ＭＳ０；增殖最适培养基为 ＭＳ＋６－ＢＡ １．５ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ ０．２ｍｇ／Ｌ；生根最适培养基为１／４ＭＳ０；诱导
率可达７３．３％，增殖系数可达３．５５，生根率８９．４７％，移栽成活率可达到１００％。
关键词：风箱树；组织培养；快速繁殖
中图分类号：Ｓ ７２２．３＋７ 文献标志码：Ａ
Ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｆ Ｃｅｐｈａｌａｎｔｈｕｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ Ｌ．
ＭＡ Ｙａｎ１，ＺＨＵ Ｊｉａｎ－ｆｅｎｇ２，ＺＨＡＯ Ｊｉａｎ－ｒｕ１，ＷＡＮＧ Ｊｉｎ－ｍａｏ１
（１ Ｆｏｒｅｓｔｒｙ Ｃｏｌｌｅｇｅ，Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｈｅｂｅｉ，Ｂａｏｄｉｎｇ０７１０００，Ｃｈｉｎａ；
２ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｆｏｒｅｓｔｒｙ，Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｆｏｒｅｓｔｒｙ，Ｂｅｉｊｉｎｇ１０００９１，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｓｔｅｍｓ ｗｉｔｈ ａｘｉｌａｒｉｅｓ ｂｕｄ ｏｆ Ｃｅｐｈａｌａｎｔｈｕｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ Ｌ．ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ａｓ ｅｘｐｌａｎｔｓ
ａｎｄ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｐｌａｎｔ ａｕｘｉｎｓ（６－ＢＡ，ＮＡＡ，ＩＢＡ）ｏｎ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｒｅｇｅｎｅｒａ－
ｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｅｐｈａｌａｎｔｈｕｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ Ｌ．ｗｅｒｅ ｓｔｕｄｉｅｄ．Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｓｕｉｔａｂｌｅ ｍｅ－
ｄｉｕｍ ｆｏｒ ｂｕｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｗａｓ ＭＳ０；ｔｈｅ ｏｐｔｉｍｕｍ ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｃｕｌｔｕｒｅ ｍｅｄｉｕｍ ｗａｓ ＭＳ＋６－ＢＡ
１．５ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ ０．２ｍｇ／Ｌ；ａｎｄ ｔｈｅ ｒｏｏｔｉｎｇ ｃｕｌｔｕｒｅ ｍｅｄｉｕｍ ｗａｓ １／４ＭＳ０．Ｉｎ ｔｈｉｓ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ
ｓｙｓｔｅｍ，ｔｈｅ ｒａｔｅ ｏｆ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｗａｓ ７３．３％，ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ ｏｆ ３．５５，
８９．４７％ｒｏｏｔｉｎｇ ｒａｔｅ ａｎｄ １００％ｓｕｒｖｉｖａｌ ｒａｔｅ ｏｆ ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ：Ｃｅｐｈａｌａｎｔｈｕｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ Ｌ．；ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ；ｒａｐｉｄ ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ
风箱树（Ｃｅｐｈａｌａｎｔｈｕｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ Ｌ．）隶属茜
草科风箱树属，落叶乔木或小灌木，高１～５ｍ。产
于广东、海南、广西、湖南、福建、江西、浙江、台湾；喜
生于略隐蔽的水沟旁或溪畔。国外分布于印度锡金
孟加拉国缅甸泰国老挝和越南北部［１］。在园林应用
方面，风箱树可做护堤植物；此外其根、茎、叶、花均
可药用，性味微苦、凉，具有清热利湿，散瘀消肿的功
效，临床上用于感冒发热、腮腺炎、咽喉炎、肝炎、痢
疾、尿路感染、跌打损伤等［２－３］。国内关于风箱树的
组织培养快速繁殖尚未见报道。河北农业大学林学
院于２００８年从中国林业科学研究院引进风箱树，并
栽植于苗圃中。本研究通过试验建立了风箱树的组
培快繁体系，对其快速繁殖、种质资源保存和改良以
及规模化生产具有一定的参考价值。
收稿日期：２０１２－０２－０２；修改稿收期：２０１２－０２－２８
基金项目：科技部“十一五”科技支撑计划（２００６ＢＡＤ０３Ａ０１０６）和国家林业局科技推广项目（２００６０３）资助。
作者简介：马 妍（１９８５－），女，河北唐山人，在读硕士，主要从事林业生物技术研究。
通讯作者：王进茂（１９６９－），男，河北深州人，教授，主要从事林木组织培养与生物技术等方面的教学与研究工作。
１４８ 河 北 林 果 研 究 第２７卷
１ 材料和方法
１．１ 材料
试验材料为５月份采自河北农业大学标本园内
生长健壮、无病虫害的风箱树１年生枝条。
１．２ 方法
１．２．１ 材料处理 室外采集的枝条用自来水冲洗
表面尘垢后切成３～４ｃｍ小段，并剪除叶片，留一部
分叶柄，用软毛笔蘸洗洁精溶液轻轻刷洗，再用自来
水冲洗干净。于超净工作台上用７５％的酒精表面
消毒３０ｓ，无菌水冲洗３次，２０％的８４消毒液处理
２０ｍｉｎ，无菌水冲洗４次后接种于启动培养基上。
１．２．２ 启动和增殖培养 启动培养以 ＭＳ为基本
培养基，添加不同浓度的６－ＢＡ、ＩＢＡ和ＮＡＡ组成４
种培养基，每种培养基接种５０瓶，每瓶接２个外植
体，２０ｄ后统计萌发率及生长状况；增殖培养同样
以 ＭＳ为基本培养基，添加不同浓度的６－ＢＡ、ＩＢＡ
和ＮＡＡ组成１７种培养基，每个处理接种１０瓶，每
瓶接种３个茎段，２０ｄ后统计增殖系数、芽长，观察
材料生长状况。数据用ＤＰＳ ｖ３．０１软件进行邓肯
氏新复极差显著性分析，显著水平０．０５。
１．２．３ 生根培养 切取高２～３ｃｍ的风箱树组培
苗茎段作为试材，选用 Ｌ９（３４）正交表进行试验
设计，研究不同基本培养基和不同生长素浓度组
合对风箱树试管苗生根的影响。试验因素水平
分别为：基本培养基 （ＭＳ、１／２ＭＳ、１／４ＭＳ）、ＩＢＡ
（０、０．１、０．３ｍｇ／Ｌ）和 ＮＡＡ （０、０．１、０．３ｍｇ／Ｌ）。
每个处理接种６瓶，每瓶５株苗，进行生根培养，２
次重复，１５ｄ后统计生根情况。
１．２．４ 移栽 炼苗５ｄ后洗掉培养基移入壤土、泥
炭土（１：１）的育苗钵中，放在温室内进行培养，定期
浇水，以移栽苗长出２片以上新叶为成活标准，３０ｄ
后统计成活率。
１．２．５ 培养条件 本试验以 ＭＳ、１／２ＭＳ和１／４ＭＳ
为基本培养基，均含３％蔗糖，０．６４％琼脂，ｐＨ均为
５．８。培养室温度２３℃～２７℃，光照度１ ４００～１ ６００ｌｘ，
光照周期１５ｈ／９ｈ。
２ 结果与分析
２．１ 启动培养
将风箱树带腋芽的嫩茎段经消毒后接种于启动
培养基，培养７ｄ后腋芽开始萌发，２０ｄ后萌芽长至
１～２ｃｍ长，观察发现：培养基中是否添加激素对外
植体的萌发无显著影响。但２、３、４号培养基中外植
体有愈伤组织形成，萌生出的新芽出现伸长生长减
弱及玻璃化的现象，说明外源激素对风箱树外植体
萌发虽略有促进作用，但对新生芽的伸长生长不利
（见表１）。综合考虑，启动培养基以 ＭＳ０ 为宜。
表１ 不同浓度６－ＢＡ、ＩＢＡ、ＮＡＡ对风箱树茎段启动培养的影响
Ｔａｂｌｅ １ Ｔｈｅ ｉｍｐａｃｔ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ ｏｆ ６－ＢＡ，ＩＢＡ，ＮＡＡ ｏｎ ｔｈｅ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｔｅｍｓ
培养基编号
Ｍｅｄｉｕｍ
Ｎｏ．
６－ＢＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
ＩＢＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
ＮＡＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
萌发率／％
Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
ｒａｔｅ
芽长／ｃｍ
Ｂｕｄ
ｌｅｎｇｔｈ
生长状态
Ｇｒｏｗｔｈ ｓｔａｔｅ
１ ７３．３ ２．０ 新萌生出的芽子粗壮翠绿
２ １．０ ７６．７ １．０ 茎段有愈伤出现，芽点粗壮
３ １．０ ０．２ ７０．０ １．３ 茎段有愈伤出现，新萌生出的芽子伸长
生长减弱
４ １．０ ０．２ ８０．０ １．５ 茎段有大量愈伤出现，新萌生出的芽子
有玻璃化现象出现
２．２ 增殖培养
启动培养基中培养２０ｄ后，将萌芽分别剪下，
接种于表２所示培养基中，７ｄ后开始有芽点分化，
２０ｄ后整个茎段长成一丛小芽，并伴有愈伤组织形
成。通过观察发现，外植体基部有愈伤和根的形成，
且随着６－ＢＡ浓度的增加，愈伤量逐渐增加，生根数
量逐渐减少。在不添加任何激素的 ＭＳ０ 培养基中
苗高最高，但增值系数最低，在加有激素的其他１６
种培养基中虽然高生长有所减弱，但分化系数均有
大幅度的提高。加有ＩＢＡ的培养基与加有ＮＡＡ的
培养基相比，前者的丛生芽增殖系数较大且芽长较
长；随着６－ＢＡ浓度增加，各种培养基中组培苗的增
殖系数逐渐增加，但高生长减弱并出现玻璃化及茎
尖干死的现象。由表２数据可知，６－ＢＡ的使用浓度
在１．５ｍｇ／Ｌ较为适宜，低于或超过这个浓度对风
箱树茎段的增殖和生长都不利（见图１）。数据统计
分析可知，不同培养基中外植体增殖系数和芽长存
在显著性差异，但以１３号培养基增殖效果最好，增
殖系数达３．５５，苗高５．２７ｃｍ。因此增殖培养基以
ＭＳ＋６－ＢＡ １．５ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ ０．２ｍｇ／Ｌ为宜。
第２期 马 妍等：风箱树组织培养研究 １４９
表２ ＭＳ培养基中添加不同浓度的激素组合对丛生芽诱导的影响
Ｔａｂｌｅ ２ Ｔｈｅ ｉｍｐａｃｔ ｏｆ ＭＳ ｍｅｄｉｕｍ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｅｄ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ ｏｆ
ａｕｘｉｎ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ ｏｎ ｔｈｅ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｓｈｏｏｔｓ
培养基编号
Ｍｅｄｉｕｍ
Ｎｏ．
６－ＢＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
ＩＢＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
ＮＡＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
增殖系数／倍
Ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ
ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ
芽长／ｃｍ
Ｂｕｄ
ｌｅｎｇｔｈ
生长状态
Ｇｒｏｗｔｈ ｓｔａｔｅ
１ １．５３ｊ ６．５０ａ
组培苗高生长量大，叶片大、伸展、
翠绿
２ ０．５ ０．１ ２．０３ｈ ４．９７ｄｅｆ
有气生根现象出现，组培苗翠绿、
粗壮
３ ０．２ １．８０ｉ ５．２３ｂｃｄｅｆ 组培苗翠绿、粗壮
４ ０．１ ３．１６ｂ ６．１３ａｂ 新分化出的芽子粗壮翠绿
５ ０．２ ２．６６ｅ ５．９７ａｂｃ
组培苗翠绿粗壮，有轻微玻璃化现
象出现
６ １．０ ０．１ ２．２３ｇ ５．０３ｃｄｅｆ 组培苗翠绿、粗壮
７ ０．２ ２．４２ｆｇ ６．１０ａｂｃ 组培苗翠绿、粗壮
８ ０．１ ３．０６ｂｃ ５．９３ａｂｃｄ 组培苗粗壮翠绿，有干死现象出现
９ ０．２ ３．０３ｂｃ ５．４７ｂｃｄｅｆ
组培苗粗壮翠绿，个别芽子出现玻
璃化现象
１０ １．５ ０．１ ２．７６ｄｅ ４．６７ｆ 组培苗翠绿、粗壮
１１ ０．２ ２．０３ｈ ４．９３ｅｆ 有玻璃化现象出现
１２ ０．１ ２．８９ｃｄ ５．７３ａｂｃｄｅ
新分化出的芽子粗壮翠绿，有干死
现象出现
１３ ０．２ ３．５５ａ ５．２７ｂｃｄｅｆ
新分化出的芽子粗壮翠绿，个别芽
子尖端出现干死现象
１４ ２．０ ０．１ ２．９７ｂｃ ５．４３ｂｃｄｅｆ
有玻璃化现象出现，新分化出的芽
子略显细弱
１５ ０．２ ２．４６ｆ ３．７３ｇ 玻璃化及茎尖干死现象严重
１６ ０．１ ２．３４ｆｇ ５．２０ｂｃｄｅｆ 新分化出的芽子干死现象严重
１７ ０．２ ３．６５ａ ４．８７ｅｆ
新分化出的芽子细弱，玻璃化和干
死现象严重
注：增殖系数为腋芽萌生数和基部丛生芽数之和与接种外植体数之比；同一列不同字母表示在Ｐ＜０．０５水平上与对照差异显著。
左：６－ＢＡ（０．５～１．５ｍｇ·Ｌ－１） 右：６－ＢＡ（２．０ｍｇ·Ｌ－１）
图１ 风箱树在增殖培养基中生长情况
Ｆｉｇ．１ Ｃｅｐｈａｌａｎｔｈｕｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｓ ｇｒｏｗｅｄ ｉｎ ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｃｕｌｔｕｒｅ ｍｅｄｉｕｍ
１５０ 河 北 林 果 研 究 第２７卷
２．３ 生根培养
将风箱树无根试管苗转入生根培养基中，第５
天时便可见根原基出现，一般先在激素（ＮＡＡ 或
ＩＢＡ）浓度较大的培养基中出现，同时伴有愈伤组织
形成。１５ｄ时观察生根情况并将相关数据进行统
计（见表３）。结果表明，无论在何种生根培养基中
风箱树茎段均可达到较高的生根率，但生根质量有
较大差异。在加有激素的生根培养基中，茎段基部
及所形成的根均有愈伤化现象发生，且随着激素浓
度的增加，愈伤化现象急剧加重。同时，随着激素浓
度的增加，生根率及生根条数均有较大幅度的增加，
但根长随着激素浓度的增加受到了明显的抑制（如
图２所示）。
左：１／４ＭＳ０基本培养基 右：过高的生长素浓度
图２ 风箱树在生根培养基中的生根情况
Ｆｉｇ．２ Ｔｈｅ ｒｏｏｔｉｎｇ ｒｅｓｕｌｔ ｉｎ ｒｏｏｔｉｎｇ ｍｅｄｉｕｍ
在后期移栽时也可发现，生根短粗且愈伤化的
组培苗，根易于脱落且不易成活。因此，根长及愈伤
化的状况（愈伤化状况与根长呈负相关）能体现生根
质量。对生根指标进行的直观分析，结果见表３。
表３ 不同基本培养基及激素配比对风箱树生根的影响
Ｔａｂｌｅ ３ Ｔｈｅ ｒｏｏｔｉｎｇ ｒｅｓｕｌｔ ｏｆ Ｃｅｐｈａｌａｎｔｈｕｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｓ ｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂａｓｉｃ ｍｅｄｉｕｍ
ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ ｏｆ ａｕｘｉｎ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ
编号Ｎｏ．
基本培养基
Ｍｉｎｉｍａｌ
ｍｅｄｉｕｍ
ＮＡＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
ＩＢＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
生根率／％
Ｒｏｏｔｉｎｇ ｒａｔｅ
根条数／条
Ｒｏｏｔ ｎｕｍｂｅｒ
根长／ｃｍ
Ｒｏｏｔ ｌｅｎｇｔｈ
生根状况
Ｒｏｏｔｉｎｇ ｓｔａｔｅ
１ １／４ＭＳ ０ ０ ８９．４７ ３．５３ １．３４ 无愈伤生成，根较细
２ １／４ＭＳ ０．１ ０．１ １００．００ ５．５３ ０．９６ 生成的根有明显愈伤化
现象，根较粗
３ １／４ＭＳ ０．３ ０．３ ８２．３５ ７．３６ ０．４０ 组培苗生长受到抑制，生根
条数较多，但根较短、粗，
愈伤化严重
４ １／２ＭＳ ０ ０．１ ９４．７４ ４．０６ ０．８８ 生根状态基本正常，稍有愈
伤化现象发生
５ １／２ＭＳ ０．１ ０．３ ８９．４７ ８．６５ ０．５８ 生根条数较多，但根较短、
粗，愈伤化严重
６ １／２ＭＳ ０．３ ０ １００．００ ５．５６ ０．８８ 组培苗生长受到抑制，所形
成的根较短、粗，有愈伤化
现象
７ ＭＳ ０ ０．３ ８５．００ ５．２４ ０．６５ 生成的根较短、粗，愈伤化
严重
８ ＭＳ ０．１ ０ １００．００ ５．３２ １．２７ 生根条数较多，部分较粗，
有愈伤化现象
９ ＭＳ ０．３ ０．１ ８５．００ ５．００ ０．７８ 生根条数较多，根较短、粗，
愈伤化严重
第２期 马 妍等：风箱树组织培养研究 １５１
３种植物激素对风箱树生根长度的影响见表４。
在试验范围内，根长度随各因素含量不同而发生明
显变动。对于风箱树生根的最优组合应为１／４ＭＳ０
或 ＭＳ０。根据因素内水平级差大小可见参试的３
个因素对风箱树生根长度影响的主次关系为ＩＢＡ＞
ＮＡＡ＞基本培养基，即ＩＢＡ对风箱树生根长度的
促进有更为重要的作用。
表４ 不同基本培养基及激素配比对风箱树根长影响的
指数分析
Ｔａｂｌｅ ４ Ｉｎｄｅｘ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｂｏｕｔ ｔｈｅ ｉｍｐａｃｔ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂａｓｉｃ
ｍｅｄｉｕｍ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ ｏｆ ａｕｘｉｎ
ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ ｏｎ ｒｏｏｔｉｎｇ
各因素水平
Ｌｅｖｅｌ ｐｅｒ ｆａｃｔｏｒ
基本培养基
Ｍｉｎｉｍａｌ ｍｅｄｉｕｍ
ＮＡＡ ＩＢＡ
Ｔ１ ０．９０ ０．９６ １．１６
Ｔ２ ０．７８ ０．９４ ０．８７
Ｔ３ ０．９０ ０．６９ ０．５４
极差 ０．１２ ０．２７ ０．６２
注：Ｔ１、Ｔ２、Ｔ３分别为各因素逐步递增的３个水平。
采用直观分析法分析不同培养基所得的生根长
度，可见ＩＢＡ水平为１、ＮＡＡ水平为１、基本培养基
水平为１或３的时候植株生根长度达到最大，但
ＩＢＡ水平为１、ＮＡＡ水平为１时，所加的激素浓度
均为０，因此对于风箱树生根培养，生长素的存在对
根的伸长生长是不利的，综合各方面的因素，最佳的
生根培养基为１／４ＭＳ０。
２．４ 移栽
生根培养１５ｄ后，选取生根质量好生长健壮的
组培苗去掉瓶盖，在瓶内倒少许水，于组培室内锻炼
５ｄ，然后洗掉培养基移入壤土、泥炭土（１∶１）的育
苗钵中，并用薄膜覆盖保湿，放在温室内进行培养，
逐渐将薄膜揭开并定期浇水，以移栽苗长出２片以
上新叶为成活标准，３０ｄ后统计成活率，达１００％。
３ 结论与讨论
本试验建立了适宜风箱树的组培快繁体系，即
启动培养基为 ＭＳ０，增殖培养基为 ＭＳ＋６－ＢＡ １．５
ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ ０．２ｍｇ／Ｌ，生根培养为１／４ＭＳ０。此体
系的建立，为这一品种的快速繁殖、种质资源保存和
改良及规模化生产利用奠定了技术基础。
在风箱树启动培养过程中，虽然加有激素的培
养基腋芽的萌发率有所提高，但腋芽萌发后，激素对
其生长也存在不利影响，如芽的伸长生长减弱，并有
玻璃化现象发生；未加激素的 ＭＳ０ 培养基虽然对腋
芽萌发率稍有影响，但芽子萌发后，生长正常、粗壮，
因此综合考虑，风箱树最适的启动培养基为 ＭＳ０，这
与马红媛等［４］对山羊草所做的研究及所得结果相似。
在影响植物组织培养的各因素中，激素是关键
因子，尤其对组织培养的增殖阶段起着决定性的作
用［５－６］，在增殖培养的过程中可以发现，随着细胞分
裂素浓度的增加，增殖系数也随着增加，但玻璃化及
茎尖的干死现象也愈加严重，这与黄冬华、任东岁
等［７－８］的研究是一致的，通过添加适宜种类和浓度的
激素可以在一定程度上控制风箱树玻璃化及茎尖干
死现象的发生，其他一些方法，如通气、调节ｐＨ
值［９］、改变光照强度等对风箱树玻璃化和芽尖干死
的影响，有待进一步研究。
在生根培养过程中发现，风箱树茎段在各种生
根培养基中均可达到较高的生根率，但就生根质量
而言，在不加激素的１／４ＭＳ０ 中最好，同时也可看
出，激素的添加对生根率尤其是对生根条数有显著
的促进作用，但当根源基形成后，培养基内外源激素
的存在可使根发生明显的愈伤化现象，根变得粗而
短，并且容易脱落，移栽成活率低，李云等所做的四
倍体刺槐生根实验中也得出相似结论［１０］。
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（编辑 杨建肖）