全 文 :中国农学通报 2012,28(24):311-316
Chinese Agricultural Science Bulletin
0 引言
刀豆氨酸是一种天然的碱性非蛋白质游离氨基
酸,等电点为8.2[1],极易溶于水。刀豆氨酸是一种存在
于某些豆类中合成的非蛋白质碱性L-α-氨基酸[2],具有
一定的毒性[3]、抗肿瘤性[4]和抗代谢性[5],占刀豆干重的
8%,是主要的贮氮化合物。刀豆氨酸和精氨酸的分子
结构非常相似,刀豆氨酸是碱性氨基酸,其制备有化学
合成法和生物提取法,后者简单易得,操作也较简单。
L-刀豆氨酸被认为是一种潜在的生物杀虫剂 [5],
同时由于其为贮氮化合物,也可作为一种肥料,因此具
有研究价值。刀豆氨酸的提取方法有 PCAF
(pentacyanoamm-onioferrate)与 L-刀豆氨酸的特异反
应[6]、HPLC法[7]、氨基酸自动分析仪法[8]对刀豆氨酸进
行定量测定以及L-刀豆氨酸与2,4-二硝基氟苯在硼砂
缓冲液中的反应[9]这4种测定方法。试剂PCAF Sigma
公司早己停止生产,HPLC法对仪器和操作要求较高,
因此L-刀豆氨酸与2,4-二硝基氟苯在硼砂缓冲液中的
反应是目前方法操作最简单、最快速的一种试验方
法。在弱碱性的环境下,氨基酸的α-氨基很容易与 2,
4-二硝基氟苯作用,生成稳定的黄色 2,4-二硝基苯氨
基酸[10-12],而L-刀豆氨酸与2,4-二硝基氟苯在硼砂缓冲
液中的反应会产生一种绿色络合物[9],与其他氨基酸
第一作者简介:王春艳,女,1984年出生,硕士研究生,研究方向:次级代谢产物。通信地址:230036皖合肥市长江西路130号农业大学生化教研室
203室,E-mail:ruoke98@163.com。
通讯作者:文汉,1963年出生,副教授,硕士生导师。通信地址:230036皖合肥市长江西路 130号农业大学生化教研室 203室,E-mail:lifwenl000@
163.com。
收稿日期:2011-11-08,修回日期:2012-02-29。
刀豆氨酸的提取及测定方法的优化
王春艳,王海林,谢长林,文 汉
(安徽农业大学,合肥 230036)
摘 要:研究刀豆氨酸的提取及2,4-二硝基氟苯与刀豆氨酸在pH 9.5硼砂缓冲溶液中反应的最佳条件,
进而优化测定刀豆氨酸的方法。运用分光光度法测定2,4-二硝基氟苯与刀豆氨酸的络合物在571 nm处
的吸光值。结果表明,刀豆氨酸水提取法效果最好,DNFB-乙腈的用量为 30 μL时,刀豆氨酸与DNFB
反应的络合物在571 nm处有最大吸收值。在 30 min内稳定以后该络合物的OD值随着时间的增长而
增加,对应线性回归方程为y=0.0083x-0.052,相关系数R2=0.9986。
关键词:刀豆氨酸;提取;分光光度法
中图分类号:Q946.889 文献标志码:B 论文编号:2011-3253
Optimization of Extraction and Determination of L-canavanine
Wang Chunyan, Wang Hailin, Xie Changlin, Wen Han
(Anhui Agricultural University, Hefei 230036)
Abstract: The extraction of L-canavanine and the best reaction conditions of L-canavanine and 2,
4-dinitrofluorobenzene in pH 9.5 borax buffer were studied in this paper, which could optimize the method of
determination. The OD value of L-canavanine and 2,4-dinitrofluorobenzene’s complex in 571 nm was
determined by spectrophotometry. The results showed that the best extraction method of L-canavanine was
water extraction. When the volume of DNFB-acetonitrile was 30 μL, the complex reaction absorption value of
L-canavanine and DNFB in 571 nm was maximum. The OD value of the complex increased with the extension
of time after stability within 30 minutes. Corresponding linear regression equation was y=0.0083x-0.052;
Correlation coefficient was R2=0.9986.
Key words: L-canavanine; extraction; spectrophotometry
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的颜色反应不同。在国内对从植物组织中提取刀豆氨
酸的报道目前只有陈东芳的《一种新的测定刀豆氨酸
含量的方法》,她发现了L-刀豆氨酸与2,4-二硝基氟苯
在硼砂缓冲液中的这一特殊颜色反应,但是笔者对刀
豆氨酸进行试验的过程中发现在多种氨基酸存在的情
况下灵敏度不高,并且她的文章未对反应中的所有试
剂进行光谱扫描以及该络合物的稳定情况进行测定。
此外对如何从刀豆组织中提取刀豆氨酸国内很少报
道,主要有用50%的乙醇提取[13],因此笔者试验将对此
方法进行进一步的优化。
1 试剂与方法
1.1 试验时间、地点
研究试验于 2010—2012年在安徽农业大学生化
实验室进行。
1.2 试验仪器、试剂
722S分光光度计,上海精密科学仪器有限公司;
TU-1810紫外可见分光光度计(北京普析通用仪器责
任有限公司);TGL-16M台式高速冷冻离心机,长沙湘
仪离心仪器有限公司;循环水真空泵,上海亚荣生化仪
器厂;HH-2数显恒温水浴锅,国华电器有限公司;电子
天平,上海电子天平仪器厂;艾科浦纯化水机,重庆颐
洋企业发展有限公司。
刀豆氨酸(Sigma公司生产),精氨酸、丙氨酸、苯
丙 氨 酸 等 氨 基 酸 为 国 产 试 剂 ,四 硼 酸 钠
(Na2B4O7·10H2O)、硼酸H3BO3、无水乙醇等均为国产分
析纯,乙腈为色谱纯,2,4-二硝基氟苯为上海金山县兴
塔化工厂生产的化工试剂。
1.3 试验方法
1.3.1 氨基酸的生产方法 有水解提取法、化学合成法、
微生物发酵法以及酶合成法等[14]。以下是不同提取溶
剂对刀豆氨酸组织进行提取效果的比较。
(1)水提取。精确称取刀豆愈伤组织研磨,加入1
倍体积的水,使其静置 2 h,10000 r/min离心 2 min,得
上清液,上清液过滤得滤液,离心后的沉淀继续研磨提
取2次,合并3次提取的滤液,将所得滤液进行旋转蒸
发浓缩得提取液。
(2)乙醇提取。称取刀豆愈伤组织,研磨,加入 1
倍体积 50%的乙醇进行提取,静置 1 h,10000 r/min离
心2 min,得上清液,过滤得滤液,将滤液旋转蒸发得浓
缩液,按浓缩液的量加 5体积的无水乙醇,使静置过
夜,弃去上清液,所得沉淀液中加入5倍体积的水使溶
解,将提取液旋转蒸发至有沉淀时即停,得浓缩液[10]。
(3)缓冲液提取。称取刀豆愈伤组织,先加 10倍
体积pH 9.5硼砂缓冲液研磨使其呈均浆状后倒入离心
管中,于4℃条件下10000 r/min离心10 min,上清液经
旋转蒸发浓缩后得刀豆氨酸提取液。
(4)直接提取。取刀豆愈伤组织于研钵中直接研
磨[15],静置,10000 r/min离心2 min,得上清液。上清液
经旋转蒸发浓缩即得刀豆氨酸提取液。
1.3.2 刀豆氨酸测定方法的优化
(1)吸收曲线。刀豆氨酸在新测定方法下制得的
反应液用紫外可见分光光度计于 200~800 nm之间进
行光谱扫描并绘制出吸光曲线图。在 200~800 nm下
对DNFB-乙腈溶液、刀豆氨酸标准品及刀豆氨酸与
DNFB反应络合物进行光谱扫描。
(2)刀豆氨酸的反应体系。向 10 mL试管中加
pH 9.5硼砂缓冲液 l mL、乙腈 l mL、刀豆氨酸样品液
1 mL、2,4-二硝基氟苯溶液30 μL,摇匀,放在50℃水浴
锅中避光水浴 30 min,流水冷却至室温,用 1 cm玻璃
比色皿在571 nm处测定其吸光度
(3)不同氨基酸与DNFB-乙腈的反应。制备浓度
为 50 μg/mL的刀豆氨酸、亮氨酸、苯丙氨酸、甘氨酸、
鸟氨酸、精氨酸、丙氨酸、缬氨酸溶液各 10 mL。从以
上溶液中各取 1 mL 混合均匀得含刀豆氨酸
6.25 μg/mL的混合氨基酸溶液。将以上得到的9种溶
液分别与 10 μL DNFB-乙腈反应,在 571 nm下测刀豆
氨酸与DNFB反应后的络合物的吸光度值。
(4)DNFB试剂用量的影响。取 10mL试管 7只,
向其中 6只分别加入DNFB溶液,分别为 10.0、30.0 、
50.0、70.0、90.0、110.0 μL,再加 pH 9.5硼砂缓冲液
l mL、乙腈 l mL、1.3.2(3)中制备的混合液液 1 mL,在
571 nm下测定刀豆氨酸与DNFB反应后的络合物的
吸光度值。
(5)刀豆氨酸与DNFB-乙腈的反应生成的络合物
的稳定情况。制备 100 μg/mL的刀豆氨酸标准品,在
10 mL试管中加pH 9.5硼砂缓冲液 l mL、乙腈 l mL、刀
豆氨酸样品液1 mL,2,4-二硝基氟苯溶液10 μL,摇匀,
放在 50℃水浴锅中避光水浴 30 min,流水冷却至室
温。在571 nm下每5 min测OD值。
2 结果与分析
2.1 刀豆氨酸的提取分离
图1所示为水提取、直接提取、缓冲液提取和乙醇
提取等不同提取溶剂对20 g固体刀豆组织提取刀豆氨
酸效果的比较。从扫描图的结果表明,水的吸光度值
最大,其次是乙醇提取,再者是直接提取和缓冲液提
取。
2.2 刀豆氨酸的测定及优化
2.2.1 吸收曲线 用紫外可见分光光度计于 200~
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王春艳等:刀豆氨酸的提取及测定方法的优化
800 nm之间分别对刀豆氨酸标准品、DNFB-乙腈、刀
豆氨酸与DNFB在pH 9.5硼砂缓冲液中反应后的络合
物进行光谱扫描,并绘制光谱吸收曲线。DNFB-乙腈
试剂的扫描如图 2所示,其吸收峰在 200~390 nm之
间,刀豆氨酸扫描结果如图3所示,其吸收峰在210 nm
处,吸收范围在 200~300 nm。刀豆氨酸与 DNFB在
pH 9.5硼砂缓冲液中作用后扫描结果如图 4所示,其
在 470 nm及 571 nm处形成 2个吸收峰,其中 470 nm
处的吸收峰不稳定,571 nm处的吸收峰较稳定。故可
确定刀豆氨酸在新的反应条件下的吸收峰在 571 nm
处。
2.2.2 不同氨基酸与DNFB-乙腈的反应 试验扫描结
果如图5所示,在571 nm处吸光度值最大的是刀豆氨
酸,次之是含有刀豆氨酸的混合氨基酸,其余的氨基酸
在 571 nm处相对于刀豆氨酸来说几乎是没有吸光度
值。试验结果表明,只有刀豆氨酸与DNFB-乙腈反应
的络合物在 571 nm处有吸收值。在有其他氨基酸存
在的情况下,2,4-二硝基氟苯会先于其他氨基酸结合
反应,因此在2,4-二硝基氟苯量少的情况下,在571 nm
处没有吸收峰。2,4-二硝基氟苯量只有大于一定的数
值才有吸收值。
2.2.3 试剂用量的影响 图6结果表明在571 nm处,刀
A水提取,B乙醇提取,C缓冲液提取,D直接提取
图1 不同提取溶剂提取效果的比较
图2 DNFB-乙腈的吸收曲线
波长/nm
A
BD
C
波长/nm
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豆氨酸与 10.0、30.0、50.0、70.0、90.0 μL的DNFB-乙腈
反应,其吸光值不同,吸光度值最大为30 μL时。这说
明在其他最适反应条件一定时,DNFB-乙腈的最大用
量是30 μL。试验结果也表明,刀豆氨酸与DNFB反应
的络合物在 571 nm处有吸收峰。因此可确定刀豆氨
酸与DNFB反应的络合物应在571 nm处测其吸收值。
2.2.4 刀豆氨酸与DNFB-乙腈的反应生成的络合物的
稳定情况 由图 4刀豆氨酸络合物的吸收曲线可知在
200~800 nm处有 2个吸收峰试验结果表明,在 30 min
内571 nm下的络合物稳定的随着时间的增长OD值增
加(图7),480 nm下的络合物一直随着时间的增长OD
值不断增加(图8)。
3 结论
3.1 刀豆氨酸的提取方法
试验结果表明,刀豆氨酸在水提取情况下效果较
好。
3.2 刀豆氨酸的测定方法
通过试验研究发现,刀豆氨酸与DNFB反应的络
合物在 571 nm处有稳定的吸收峰;多种氨基酸与
DNFB-乙腈的反应液在200~800 nm间扫描结果表明,
只有刀豆氨酸在571 nm下有吸收峰,其他氨基酸都没
有吸收值。由混合氨基酸的扫描曲线得出,在其他氨
基酸存在的情况下,DNFB-乙腈先于其他的氨基酸进
行反应,并在480 nm处有一吸收峰,而在571 nm处没
图3 刀豆氨酸标准品的吸收曲线
1代表571 nm吸收峰,2代表480 nm处的吸收峰
图4 刀豆氨酸络合物的吸收曲线
波长/nm
波长/nm
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王春艳等:刀豆氨酸的提取及测定方法的优化
有吸收峰。不同DNFB-乙腈的含量对 571 nm处得吸
收值有影响,得出DNFB-乙腈的最适用量为 30 μL。
刀豆氨酸与DNFB-乙腈反应生成的络合物在 30 min
内是稳定的,随着时间的增长在 571 nm处OD值也在
不断增加。
4 讨论
在国内对从植物组织中提取刀豆氨酸的报道目前
只有陈东芳的《一种新的测定刀豆氨酸含量的方法》,
她发现了L-刀豆氨酸与2,4-二硝基氟苯在硼砂缓冲液
中的这一特殊颜色反应,但是笔者对刀豆氨酸进行实
图5 不同氨基酸与DNFB-乙腈的反应
DNFB的量由上往下分别为30、50、10、70、90 μL
图6 不同量的DNFB吸收值的比较
波长/nm
波长/nm
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验的过程中发现,在多种氨基酸存在的情况下灵敏度
不高,因此经过试验分析将 DNFB-乙腈的含量由
10 mL变为 30 mL,提升了约 0.2个OD值。通过对反
应中所有试剂进行光谱扫描,可以很清楚的知道各物
质在 200~800 nm处的光谱曲线。对该络合物的稳定
情况进行测定,很好地优化了刀豆氨酸的测定情况。
此外对如何从刀豆组织中提取刀豆氨酸国内很少报
道,主要有用50%的乙醇提取[10],利用刀豆氨酸极易溶
于水的这一原理,通过用水、缓冲液、乙醇、直接榨汁等
试验得出,用水提取刀豆氨酸时数之最大。目前还没
有发现只能与刀豆氨酸进行特异性反应的化学试剂,
如果发现了就可以排除其他氨基酸对试验的干扰性。
参考文献
[1] 杨如圭,郭德萍.刀豆氨酸的制备[J].化学试剂,1982(3):192-193.
[2] 李宁,李铣,冯志国,等.刀豆的化学成分[J].沈阳药科大学学报,
2007,24(11):676-677.
[3] 郝赤.L-刀豆氨酸与克百威对大菜粉蝶幼虫毒力对比试验[J].昆虫
知识,1998,35(2):68-70.
[4] Rosenthal G A, Harper L. L-Homoarginine studies provide insight
into the antimetabolic properties of L-eanavanine[J].Insect Biochem
Molec.Biol,1996,26(4):389-394.
[5] Bence A K, Crooks P A. The mechanism of L-cansvanine
cytotoxicity arginyl tRNA synthesase as a novel target for
anticancer drug discovery[J].Enzyme Inhibition and Medicinal
Chemistry,2003,18(5):383-394.
[6] 郝赤.L-刀豆氨酸及其与昆虫的相互作用[J].山西农业大学学报,
1995,15(4):394-398.
[7] Rosenthal G A, Dahlman D L. A cautionary note on
pentacyanoammonioferrate use for determining L-canavan
coccurrence in biological materials[J]. Experientia,1982(38):
1034-1035.
[8] In Doo Hwan, Sang Gu Kim, Young Myung Kwon. Canavanine
metabolism in tissue cultures of Canavalia lineate Plant[J]. Cell
issue and Organ Culture,1996(45):17-23.
[9] 吴莹莹,佟建明,张琪,等.苜蓿种子中刀豆氨酸含量的测定[J].中国
饲料,2008(17):35-37.
[10] 陈东方,文汉.一种新的测定刀豆氨酸含量的方法[J].中国农学通
报,2010,26(19):99-102.
[11] 聂剑初,吴国利,张翼伸,等.生物化学简明教程[M].北京:高等教育
出版社,1999:10-11.
[12] 王镜岩,朱圣庚,徐长法.生物化学[M].北京:高等教育出版社,2005:
136-137.
[13] 郑集,陈钧辉.普通生物化学 [M].北京:高等教育出版社,2007:
84-85.
[14] 李良铸,李明晔.现代生化药物生产关键技术[M].北京:化学工业
出版社,2006:109-110.
[15] 蒋立科,杨婉身.现代生物化学实验技术[M].北京:中国农业出版
社,2003:21-22.
0.740.76
0.780.80
0.820.84
0.860.88
0.900.92
5 10 15 20 25 30 35 40
时间/min
刀
豆
氨
酸
的
OD值
图7 571 nm下络合物的稳定情况 图8 480 nm下络合物的稳定情况
0.63
0.64
0.65
0.66
0.67
0.68
0.69
0.70
5 10 15 20 25 30 35 40
时间/min
刀
豆
氨
酸
的
OD值
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