全 文 ：Journal of Chinese Pharmaceutical Sciences  http://www.jcps.ac.cn  141 
Structural determination of two triterpenoid saponins from Gymnocladus 
chinensis Baill. 
Kan Wang, Hong­Zheng Fu * 
State Key Laboratory of Natural and Biomimetic Drugs, Peking University, Beijing 100191, China 
Abstract: Two triterpenoid saponins (compound I and II) have been isolated from Gymnocladus chinensis Baill., and compound I 
was  determined  as  a  new  compound.  The  structure  of  compound  I  was  assigned  as  2β,23­dihydroxy­acacic  acid­3­O­α­L­ 
arabinopyranosyl­21­O­{(6S)­2­E­2,6­dimethyl­6­O­[4­O­(6S)­2­E­2,6­dimethyl­6­O­β­D­glucopyranosyl­α­L­arabinopyranosyl­ 
2,7­octadienoyl}­28­O­β­D­xylopyranosyl(1→3)­β­D­xylopyranosyl(1→4)­α­L­rhamnopyranosyl(1→2)­[α­L­rhamnopyranosyl­ 
(1→6)]­β­D­glucopyranoside by extensive MS and NMR studies. 
Keywords: 1D/2D NMR; Triterpenoid saponins; Gymnocladus chinensis Baill. 
CLC number: R284.1  Document code: A  Article ID: 1003–1057(2009)2–141–05 
Received date: 2009­03­18. 
Foundation  item: National Natural  Science  Foundation  of China  (Grant 
No. 30772639). 
* Corresponding author. Tel.: 86­10­82805212; fax: 86­10­82802724; 
e­mail: drhzfu@yahoo.com.cn 
1. Introduction 
Gymnocladus  chinensis  Baill.  is  a  rich  source  of 
saponins.  Since  Takao Konoshima  isolated  several 
saponins from its dry fruits in 1980s, over 10 triter­ 
penoid  saponins were  reported [1–5] . Furthermore,  its 
diverse biological activities, such as anti­tumor and 
anti­HIDS  activities [6] ,  prompted  us  to  investigate  its 
chemical  constituents.  The  constituents  of  n­BuOH 
extract were isolated by the bioassay­directed fractiona­ 
tion, and we carried out purification of  the n­BuOH 
extract and structural identification of two saponins. 
The structures were established by MS, 1D and 2D 
NMR experiments,  including DQF­COSY, HMQC, 
HMBC,  TOCSY  and NOESY. Compound  I  is  sepa­ 
rated for  the first  time from Gymnocladus chinensis 
Baill.. 
2. Materials and methods 
2.1. General experimental procedures 
A  Lab  Alliance  HPLC  system  consisted  of  two 
Series  III  pumps  and  a  Model  201  detector  was 
used.  TOF­MS  spectra  were  obtained  on  SHIMA­ 
DZU MALDI­TOF AXIMA CFR plus, and GC­MS 
analysis  was  carried  out with  FINNIGAN  TRACE 
instrument. 
2.2. Plant materials 
The  dry  fruits  of  Gymnocladus  chinensis  Baill. 
were purchased from Sichuan Province, where is the 
major cultivation area. They were identified by Yu Qiu, 
Senior Pharmacist at Chengdu Laimei Pharmaceutical 
Co, Ltd. A voucher specimen was deposited at State 
Key  Laboratory  of Natural  and Biomimetic Drugs, 
Peking University. 
2.3. Extraction and isolation 
The  air­dried  and  powdered  fruits  (7.5  kg)  were 
extracted  consecutively  with  95%  EtOH  and  50% 
EtOH.  The  EtOH  extract  was  concentrated  under 
vacuum and the residue was suspended in water, and 
extracted  successively  with  EtOAc  and  n­BuOH. 
The n­BuOH soluble  portion was  concentrated  under 
reduced  pressure,  and  the  viscous  concentrate  was 
passed through a Diaion HP­20 column and succes­ 
sively  eluted  with  20% MeOH,  50% MeOH,  70% 
MeOH, MeOH, and EtOAc. The 70% MeOH eluate 
portion was chromatographed on silica gel eluted with 
a  stepwise  gradient mixture  of CHCl3–MeOH–H2O 
(30:10:1, 10:5:1, 6:4:1) and finally with MeOH, giving 
seven fractions. Fraction D was subjected to column 
chromatography   on   ODS  silica   gel   eluted   with 
MeOH–H2O (7:3), to yield a crude saponin fraction. 
Further  purification  of  the  fraction  by  combination 
of  preparative  and  semi  preparative  reverse  phase 
HPLC  successively  yielded  compound  I  (12.3 mg) 
and compound II (15.2 mg).
K. Wang et al. / Journal of Chinese Pharmaceutical Sciences 18 (2009) 141–145 142 
2.4.  Acid  hydrolysis  and  determination  of  the 
absolute   configuration  of   the   monosaccharide 
units 
Each solution of Saponin I and II (0.5 mg) in 1 M 
HCl (dioxane–H2O, 1:1, 200 mL) was heated at 80 °C 
for 10 h under an Ar atmosphere. After dioxane was 
removed, each solution was extracted with EtOAc to 
obtain the aglycone. The aqueous layer was neutralized 
by  passing  through an  ion­exchange  resin  (Amberlite 
MB­3, Organo, Tokyo, Japan) column and concentrated 
under reduced pressure to dryness, to afford a residue 
of  the  sugar  fraction. The  residue was  dissolved  in 
pyridine (0.1 mL), to which 0.08 M L­cysteine methyl 
ester hydrochloride in pyridine (0.15 mL) was added. 
The mixture was kept at 60 °C for 1.5 h. After reaction 
mixture was dried in vacuo, the residue was trimethyl­ 
silylated with 1­trimethylsilylimidazole (0.1 mL) for 2 h. 
Each mixture was partitioned between n­hexane and 
H2O (0.3 mL), and the hexane extract was analyzed 
by GC­MS  under  the  following  conditions:  capillary 
column, DB­1MS (30 m×0.25 mm×0.25 µm), column 
temperature,  260  °C;  injection  temperature,  90  °C; 
carrier gas, He. In the acid hydrolyzate of Saponin I 
and  II,  L­rhamnose, D­glucose, L­arabinose,  and D­ 
xylose were confirmed by comparison with the reten­ 
tion  times  of  the L­rhamnose, D­glucose, L­arabinose, 
and D­xylose derivatives prepared  in a  similar way, 
which showed retention times of 18.41, 19.62, 17.64 
and 18.40 min, respectively [7] . 
3. Results and discussion 
Compound I was obtained as a white powder and 
showed  positive  Libermann­Burchard  and  Molish 
reactions. Compound I gave the quasi­molecular ion 
at  m/z  2034.9  [M+Na + ]  and  2050.9  [M+K + ]  in  the 
TOF­MS spectrum, corresponding  to  the molecular 
formula C95H150O45. 
The  1 H  NMR  spectrum  showed  signals  for  six 
methyl  groups at  δ  1.21, 1.62, 1.17, 1.76, 1.00 and 
1.24 (each 3H, s), and a characteristic olefinic proton 
at 5.64 (brs). The 13 C NMR spectrum revealed a pair 
of  characteristic  olefinic  carbons  at  δ  143.3,  123.6 
and a carbonyl carbon at 174.7. The assignments of 
other  proton  and  carbon  signals  of  the  aglycone 
were  accomplished  by  analysis  of  the DQF­COSY, 
NOESY,  HSQC,  HMBC  and  DEPT  experiments. 
The 1 H and 13 C NMR values were in full agreement 
with those reported in the literature for acacia acid [1–5] 
(Fig. 2, Table 1). 
In addition,  the 1 H NMR spectrum revealed  signals 
for  four  methyl  groups  at  δ  1.89,  1.53,  1.86,  1.50 
(each  3H,  s),  and  the  13 C  NMR  spectrum  showed 
four pairs of characteristic olefinic carbons at δ 143.4 
and 128.6, 143.9 and 115.0, 142.2 and 128.0, 143.6 
and 111.6 , as well as two carbonyl carbons at 167.9, 
168.1. All  the  results  indicated  that  there were  two 
monoterpene moieties,  by  the  comparison  of NMR 
data with those reported in literature, and the assign­ 
ments of other proton and carbon signals were also 
accomplished by means of 2D NMR (Fig. 2, Table 1). 
The 1 H and 13 C NMR spectra showed eight sugar 
anomeric protons at δ 5.95 (1H, d, J 8.0 Hz, glu1­H), 
4.79 (1H, d, J 7.2 Hz, ara1­H), 5.67 (1H, brs, rha1­H), 
5.28 (1H, brs, rha 1­H), 5. 77 (1H, brs, rha1­H), 5.36 
(1H,  d,  J  6.6  Hz,  xyl1­H),  5.56  (1H,  d,  J  7.8  Hz, 
xyl1­H), 5.15 (1H, d, J 5.4 Hz, xyl1­H). On the basis 
of  the  combined  analysis  of  HMQC,  the  carbons 
were revealed at δ 95.3, 100.0, 101.71, 101.73, 104.0, 
104.3, 105.1 and 105.9. Starting  from  the anomeric 
protons  of  each  sugar  unit,  all  the  hydrogens within 
each  spin  system were  assigned  using DQF­COSY 
with  the  aid  of  TOCSY  and NOESY  experiments, 
while the carbons were assigned by HMQC and further 
confirmed  by HMBC  experiments.  The monosaccha­ 
rides  were  identified  as  two  glucopyranoses,  two 
xylopyranoses,   three   rhamnopyranoses   and  one 
arabinopyranose (Table 1). 
These  data  also  indicated  α­configuration  at  the 
anomeric position of the rhamnose and arabinose, β­ 
configuration at the anomeric position of the glucose 
and xylose. The absolute configuration of  the sugar 
residues obtained by acidic hydrolysis was determined 
as  L­rhamnose, D­glucose,  L­arabinose,  and D­xylose 
through GC­MS analysis and comparison with authentic 
sugar samples. 
Direct  evidence  for  the  sugar  sequence  and  their 
linkage  sites at aglycone C­3 was derived  from  the 
HMBC experiment, which showed unequivocal corre­ 
lation between resonances at δ 5.77 (1H, brs, rhaC H­1) 
and 82.6 (aglycone C­3). Similarly,  the sequence of 
the sugar unit at aglycone C­28 was indicated by the 
cross­peaks between δ 5.95 (1H, d, J 8.0 Hz, gluA H­1) 
and 174.7 (aglycone C­28), δ 5.67 (1H, brs, rhaA H­1) 
and 77.4 (gluA C­2), δ 5.28 (1H, brs, rhaB H­1) and 
66.9 (gluA C­6), δ 5.15 (1H, d, J 7.6 Hz, xylA H­1) 
and 82.6 (rhaA C­4), δ 5.36 (1H, d, J 6.6 Hz, xylB H­1) 
and 77.5 (xylA C­3). The sequence of the sugar unit at 
C­21 was indicated by the cross­peaks between δ 5.56 
(1H,  d, J  7.8 Hz,  gluB H­1) and  78.6  (monoterpene 
(ara­O) C­6), 4.79 (1H, d, J 7.2 Hz, araA H­1) and 
79.9 (monoterpene (21­O) C­6), 6.24 (dd, J 9.0, 7.0 Hz, 
aglycone H­21) and 167.9  (monoterpene  (21­O) C­1) 
(Fig. 1, Table 1) .
K. Wang et al. / Journal of Chinese Pharmaceutical Sciences 18 (2009) 141–145  143 
On the basis of these evidences, the compound was 
identified  as  2β,23­dihydroxy­acacic  acid­3­O­α­L­ 
arabinopyranosyl­21­O­{(6S)­2­E­2,6­dimethyl­6­O­ 
[4­O­(6S)­2­E­2,6­dimethyl­6­O­β­D­glucopyranosyl­ 
α­L­arabinopyranosyl­2,7­octadienoyl}­28­O­β­D­ 
xylopyranosyl(1→3)­β­D­xylopyranosyl (1→4)­α­L­ 
rhamnopyranosyl(1→2)­[α­L­rhamnopyranosyl­(1→6)]­ 
β­D­glucopyranoside.  This  is  the  first  time  that  the 
13 C NMR data and complete assignments for 1 H NMR 
of compound I were provided. 
Compound II was obtained as a white powder and 
showed  positive  Libermann­Burchard  and  Molish 
reactions. Compound II  gave the quasi­molecular  ion 
at  m/z  1951.8  [M+Na + ]  and  1967.8  [M+K + ]  in  the 
TOF­MS spectrum, corresponding  to  the molecular 
formula C90H144O44. 
The  NMR  spectrum  of  compound  II  showed  a 
close resemblance to that of compound I, except for 
the oligosaccharide chain at aglycone C­21. 1 H NMR 
spectrum revealed signals for  two methyl groups at 
δ1.88, 1.49 (each 3H,s), and the 13 C NMR spectrum 
showed  two  pairs  of  characteristic  olefinic  carbons 
at δ 142.2 and 128.6, 143.8 and 115.2, as well as a 
carbonyl carbons at 167.8. All  the  results  indicated 
that there were monoterpene moieties (Fig. 2, Table 2). 
The  signals  of  two methyl  groups  at  δ  0.81  (t,  J 
7.2 Hz) and 1.17 (d, J 7.2 Hz) in the 1 H NMR spectrum 
indicated the existence of a 2­methylbutyroyl group, 
and the absolute configuration of the 2­methylbutyroyl 
group was determined after the assignments of other 
proton  and  carbon  signals  by  analysis  of  2D NMR 
spectra (Fig. 2, Table 2). 
13 C  1 H  13 C  1 H 
Aglycone  28­O GluA 
1  44.6  2.38 (dd, J 9.6,7.0 Hz),  1  95.3  5.95 (1H, d, J 8.0 Hz) 
1.30 (br d, J 13.5 Hz)  2  77.4  4.21 
2  70.5  4.10  3  78.0  4.05 
3  82.6  4.12  4  70.9  3.94 
4  42.2  —  5  76.7  4.22 
5  47.4  1.91  6  66.8  3.49, 4.20 
6  19.0  1.68, 2.10  6­O GluB 
7  33.2  1.71, 1.76  1  104.3  5.56 (1H, d, J 7.8 Hz) 
8  40.3  —  2  75.3  4.01 
9  47.7  1.44  3  78.0  3.92 
10  37.2  —  4  71.7  4.04 
11  24.1  2.28, 2.14  5  78.1  3.9 
12  123.6  5.64  6  62.6  4.15, 3.45 
13  143.3  —  1→2 RhaA 
14  42.2  —  1  101.7  5.28 (1H, brs) 
15  36.0  2.27, 1.70  2  70.1  4.40 
16  73.6  5.16  3  82.6  4.42 
17  51.63  —  4  73.8  4.28 
18  40.8  3.47  5  69.5  4.20 
19  47.8  1.45, 2.96  6  18.8  1.59 (3H, d, J 6.5 Hz) 
2.70 (t, J 10.0 Hz)  1→6 RhaB 
20  35.4  —  1  101.7  5.14 (1H, brs) 
21  76.7  6.24  2  71.8  4.24 
22  36.4  2.21, 2.566  3  72.0  4.18 
23  66.3  3.76, 4.23  4  73.6  3.94 
24  14.9  1.24 s  5  77.6  4.26 
25  17.7  1.68 s  6  18.9  1.48 (3H, d, J 5.7 Hz) 
26  17.6  1.21 s  3­O RhaC 
27  27.3  1.78 s  1  104.0  5.77 (1H, brs) 
28  174.7  —  2  71.8  4.70 
29  29.2  1.01 s  3  72.3  4.58 
30  19.2  1.17 s  4  73.6  4.29 
Monoterpene  moiety (21­O)  5  69.2  4.44 
1  167.9  —  6  17.5  1.69 (3H, d, J 6.4 Hz) 
2  128.6  —  1→4 XylA 
3  143.4  7.12 (t, J 10.0 Hz)  1  105.9  5.15 (1H, d, J 7.6 Hz) 
4  23.9  2.17, 2.40  2  75.2  3.99 
5  40.8  1.44, 1.53  3  77.5  4.12 
6  79.9  —  4  69.0  4.06 
7  143.9  6.23  5  67.0  4.15, 3.43 
8  115  5.37, 5.20  1→3 XylB 
9  12.7  1.89 s  1  105.1  5.36 (1H, d, J 6.6 Hz) 
10  23.7  1.53 s  2  74.7  3.90 
Monoterpene  moiety (ara­O)  3  88.0  4.06 
1  168.1  —  4  69.3  4.12 
2  128.0  —  5  67.1  4.15, 3.43 
3  142.2  6.93 (t, J 10.0 Hz)  6­OAraA 
4  23.7  2.26, 2.20  1  100.0  4.79 (1H, d, J 7.2 Hz) 
5  40.6  1.80, 1.69  2  72.3  4.40 
6  78.6  —  3  73.6  4.16 
7  143.6  6.06  4  69.3  4.07 
8  111.6  5.15, 5.50  5  66.3  4.19, 3.43 
9  12.5  1.86 s 
10  23.6  1.50 s 
Table 1. 13 C NMR and 1 H NMR date of compound I (pyridine­d5) 
Figure 1. Compound I isolated from Gymnocladus chinensis Baill.. 
CH 2 OH 
C 
HO 
O 
O 
OH 
O 
O 
O 
OH 
OH 
O 
C 
O 
O 
O 
OH OH 
O 
CH 3 O 
OH 
O 
OH 
O 
O 
OH 
OH 
O 
O 
OH 
OH 
OH 
O 
OH OH 
OH 
CH 3 
O 
OH OH 
OH 
CH 3 
C 
O 
O 
O 
OH 
OH 
HO 
OH 
H 
H 
H 
H 
H 
H 
H 
H 
H 
H 
GluA 
GluB 
RhaA 
RhaB 
RhaC 
AraA 
XylA 
XylB 
Figure 2.HMBC and DQF­COSY correlations of aglycone, monoterpene 
and 2­methylbutyroyl group of compounds I and II. 
CH 2 OH 
C HO 
OR 2 
OH 
O
OR 3 
C 
O 
H 
C 
CH 3 
CH 2  CH 3 3 
5 
1  2  4 
C 
O 
O 
1 
2 
4 
6 
9 
10 
3 
7 
8 
5 
HMBC            DQF—COSY
CH 2 OH 
C 
HO 
O 
O 
OH 
O 
O 
O 
OH 
OH 
O 
C 
O 
O 
O 
OH OH 
O 
CH 3 
O 
OH 
O 
OH 
O 
O 
OH 
OH 
HO 
OH 
O 
OH 
O 
O 
O 
OH 
OH 
OH 
O 
OH OH 
OH 
CH 3 
O 
OH OH 
OH 
CH 3 
O 
H 
H 
H 
H 
H 
H 
H 
H 
H 
144  K. Wang et al. / Journal of Chinese Pharmaceutical Sciences 18 (2009) 141–145 
The sugar sequence and their linkage sites at C­21 
was indicated by the cross­peaks between δ 5.27 (1H, 
d, J 7.6 Hz, gluB H­1) and 81.3 (monoterpene (ara­O) 
C­6),  4.77  (1H,  d,  J  7.3  Hz,  araA  H­1)  and  79.9 
(monoterpene (21­O) C­6), 167.8 (monoterpene (21­O) 
C­1)  and  6.22  (dd,  J  10.0,5.5  Hz,  aglycon  H­21), 
4.21(1H, araA H­4) and 176.7 (2­methylbutyroyl C­1). 
By comparing with the values for the corresponding 
signals  of  1D  and  2D NMR  spectra  reported  in  the 
literature, it appeared that compound II was a known 
saponin  as   2β,23­dihydroxy­acacic   acid­3­O­α­L­ 
arabinopyranosyl­21­O­{(6S)­2­E­2,6­dimethyl­6­O­ 
[3­O­β­D­glucopyranosyl(4­O­(2­methylbutyroyl))­ 
α­L­arabinopyranosyl]­2,7­octadienoyl}­28­O­β­D­ 
xylopyranosyl(1→3)­β­D­xylopyranosyl(1→4)­α­L­ 
rhamnopyranosyl(1→2)­[α­L­rhamnopyranosyl­(1→6)]­ 
β­D­glucopyranoside. 
Acknowledgements 
This project was supported by the National Nature 
Science Foundation of China (Grant No. 30772639). 
References 
[1] Takao, Konoshima; Tokunosuke, Sawada; Takeatsu, Kimura. 
Chem. Pharm. Bull. 1984, 32, 2617. 
[2] Takao, Konoshima; Tokunosuke, Sawada; Takeatsu, Kimura. 
Chem. Pharm. Bull. 1984, 32, 4833–4841. 
13 C  1 H  13 C  1 H 
Aglycone  28­O GluA 
1  44.8  2.36 (dd, J 13.5, 6.5 Hz),  1  95.1  6.06 (1H, d, J 7.6 Hz) 
1.34 (br d, J 13.5 Hz)  2  78.9  4.21 
2  70.9  4.18  3  77.9  4.05 
3  84.4  4.35  4  71.3  3.94 
4  42.3  —  5  76.6  4.22 
5  47.6  1.8  6  66.9  3.49, 4.20 
6  18.3  1.86, 2.05  1→3 GluB 
7  33.2  1.60, 1.74  1  106.2  5.27 (1H, d, J 7.6 Hz) 
8  40.4  —  2  75.2  4.04 
9  47.9  1.84  3  78  4.00 
10  37.2  —  4  70.8  4.06 
11  24.1  2.40, 2.20  5  78.4  4.36 
12  123.7  5.65 (br, s)  6  63.1  4.48, 4.23 
13  143.4  —  1→2 RhaA 
14  42.3  —  1  101.6  6.25 (1H, brs) 
15  35.4  2.27, 2.96  2  71.6  4.82 
16  73.5  5.21  3  72.5  4.69 
17  51.8  —  4  84.4  4.39 
18  40.9  3.54  5  68.5  4.47 
19  48.0  1.46 (dd, J 10.5, 6.0 Hz)  6  18.7  1.71 (3H, d, J 6.0 Hz) 
2.94 (t, J 10.5 Hz)  1→6 RhaB 
20  35.4  —  1  102.1  5.36 (1H, brs) 
21  77.0  6.22 (dd, J 10.0, 5.5 Hz)  2  72.1  4.60 
22  36.5  2.24, 2.75  3  72.5  4.37 
23  64.2  3.64, 4.08  4  73.9  4.29 
24  14.8  1.39 s  5  69.5  4.58 
25  17.7  1.57 s  6  18.6  1.60 (3H, d, J 6.5 Hz) 
26  17.5  1.14 s  3­O RhaC 
27  27.2  1.74 s  1  104.2  5.75 (1H, brs) 
28  174.8  —  2  72.5  4.69 
29  29.2  0.95 s  3  72.8  4.58 
30  19.2  1.19 s  4  73.9  4.29 
Monoterpene  moiety (21­O)  5  70.4  4.19 
1  167.8  —  6  17.7  1.62 (3H, d, J 6.4 Hz) 
2  128.6  —  1→4 XylA 
3  142.2  6.94 (t, J 10.0 Hz)  1  106.5  5.16 (1H, d, J 7.6 Hz) 
4  23.7  2.21, 2.26  2  75.1  4.11 
5  41.2  1.72, 1.85  3  87.7  4.01 
6  79.9  —  4  68.9  4.06 
7  143.8  6.24 (d, J 7.5 Hz)  5  67.4  3.65, 4.29 
8  115.2  5.24, 5.39  1→3 XylB 
9  12.7  1.88 s  1  106.1  5.18 (1H, d, J 7.6 Hz) 
10  23.6  1.49 s  2  75.2  4.02 
3  78.0  4.04 
1  176.7  —  4  70.8  4.11 
2  5  67.4  4.29, 3.65 
3  27.0  1.43, 1.75  6­O AraA 
4  11.5  0.81 (t, J 7.2 Hz)  1  99.9  4.77 (1H, d, J 7.3Hz) 
5  16.6  1.17 (d, J 7.2 Hz)  2  71.8  4.39 
3  81.3  4.29 
4  69.6  4.21 
5  64.3  4.09, 3.67 
2­Methylbutyroyl group 
41.3  2.39 m 
Table 2. 13 C NMR and 1 H NMR date of compound II (pyridine­d5) 
Figure 3. Compound II isolated from Gymnocladus chinensis Baill..
K. Wang et al. / Journal of Chinese Pharmaceutical Sciences 18 (2009) 141–145  145 
[3] Takao, Konoshima; Tokunosuke, Sawada; Takeatsu, Kimura. 
Chem. Pharm. Bull.1985, 33, 4732–4739. 
[4] Takao, Konoshima; Tokunosuke, Sawada; Takeatsu, Kimura. 
Chem. Pharm. Bull.1987, 35, 46–52. 
[5] Takao, Konoshima; Tokunosuke, Sawada; Takeatsu, Kimura. 
Chem. Pharm. Bull.1987, 35, 1982–1990. 
[6] Takao, Konoshima; Tokunosuke, Sawada; Takeatsu, Kimura. 
J. Nat. Prod. 1995, 58, 1372–1377. 
[7]  Jiang, W.H.; Li, W.; Han, L.K.; Liu, L.J.; Zhang, Q.B.; 
Zhang,  S.J.;  Tamotsu  Nikaido;  Kazuo  Koike.  J.  Nat. 
Prod. 2006, 69, 1577–1581. 
肥皂荚Gymnocladus chinensis Baill.中两个三萜皂苷的结构鉴定
王刊, 付宏征 * 
北京大学 天然药物及仿生药物国家重点实验室, 北京 100191 
摘要: 从肥皂荚Gymnocladus chinensis Baill. 提取出两个三萜皂苷类化合物 (化合物I与II) , 其中化合物I为新化合物, 
通过核磁方法, 鉴定其为2β,23­dihydroxy­acacic  acid­3­O­α­L­arabinopyranosyl­21­O­{(6S)­2­E­2,6­dimethyl­6­O­[4­O­(6S)­2­E­ 
2,6­dimethyl­6­O­β­D­glucopyranosyl­α­L­arabinopyranosyl­2,7­octadienoyl}­28­O­β­D­xylopyranosyl(1→3)­β­D­xylopyranosyl(1→4)­ 
α­L­rhamnopyranosyl(1→2)­[α­L­rhamnopyranosyl­(1→6)]­β­D­glucopyranoside。
关键词:一维/二维核磁共振波谱技术;三萜皂苷;肥皂荚