全 文 ：South China Forestry Science
第 44卷第 1期
2016年 2月
Vol. 44, No. 1
Feb., 2016
收稿日期：2015-08-18
作者简介：李晓辉，男，工程师，硕士研究生，主要从事园林植物与观赏园艺的繁殖与培育方面研究等工作。
★通信作者：连芳青，女，教授，主要从事园林植物与观赏园艺的繁殖与培育方面研究与教学等工作。
红花荷的组织培养技术
李晓辉 1，邹 芸 1，丁进义 1，朱 恒 1，连芳青 2★
（1.上饶市林业科学研究所，江西 上饶 334000；2.江西农业大学，江西 南昌 330045）
摘 要：以红花荷（Rhodoleia championii）为试验材料，对红花荷组织培养进行了初步的研究。试验得出：初代培养带
腋芽茎段培养以 MS+6-BA 1.5 mg/L +NAA0.2 mg/L为最佳培养基，带顶芽茎段以 MS+6-BA 1.5 mg/L +NAA0.2 mg/L为
最佳培养基；继代培养以 WPM+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L为最佳培育基；生根培养以 1/2 WPM+NAA 0.2 mg/L +
IBA 0.5 mg/L为最佳培养基；移栽以基质以泥炭︰蛭石＝1︰1为最佳；红花荷组培快繁技术的建立为工厂化生产奠定了
理论基础。
关键词：红花荷；组织培养；快速繁殖
分类号：Q813:12:S792.99 文献标识码：A 文章编号：2095－9818(2016)01－0010－03
Tissue culture techniques of Rhodoleia championii
Li Xiaohui1, Zou Yun1, Ding Jinyi1, Zhu Heng1, Lian Fangqing2★
(1. Shangrao Institute of Forestry Science, Shangrao Jiangxi 334000, China;
2. Jiangxi Agricultural University, Nanchang Jiangxi 330045, China)
Abstract: Taking Rhodoleia championii as experiment material, tissue culture and reproduction technology of Rh. championii
were studied. Test results showed: primary culture stems with axillary buds for MS+6-BA 1.5 mg/L +NAA 0.2 mg/L was the
best medium, stem segment with bud for MS+6-BA 1.5 mg/L + NAA0.2 mg/L was the best medium. Subculture for WPM+6-
BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L was the best culture medium; rooting culture for 1/2 WPM+ NAA 0.2 mg/L +IBA 0.5 mg/L is
the best medium; transplanting for matrix with peat ∶vermiculite = 1︰1 is the best. The establishment of tissue culture and
cuttage reproduction techniques for Rh. championii laid the theoretical basis for itsfactorization production.
Key words: Rhodoleia championii; tissue culture; fast propagation
DOI 编码：10.16259/j.cnki.36-1342/s.2016.01.002
红花荷（Rhodoieia championi Hookf.），别名红苞
木、萝多木、吊钟王［1-2］。为金缕梅科（Hamamelidaceae）
红花荷亚科红花荷属（Rhodoieia）植物 ［3-4］， 为常绿阔
叶乔木。 原产于中国广东、广西及其沿海岛屿的山地
阔叶林中。 红花荷成龄树高可达 10 m 左右，具有材
质好、干形直、生长快、树形美、花大色艳、花期长、易
管理以及适应性强等特点， 是优良的用材树种；同
时，红花荷是观花、观叶的好树种，是一种极具有发展
前途的园林绿化观赏树种和行道树种，也可做盆景［5-11］。
由于红花荷在风景园林中占有的重要地位，大量快速
的繁殖也显得日益重要。 本文对红花荷进行了组培
技术的研究，以期探索出一条通过组织培养的方法大
量繁殖红花荷苗木，满足市场需要，以促进我国园林
事业的发展。
1 试验材料与方法
1.1 试验材料
供试验材料为江西农业大学园林与艺术学院花
木基地的红花荷叶片、带腋芽茎段和带顶芽茎段。
1.2 材料的处理与培养条件
将采回的枝条先用水清洗表面污渍，切取带顶芽
茎段、 带腋芽茎段及中度成熟叶片分别放入杯子中，
用清水冲洗 1 h。
1.2.1 顶芽茎段和带腋芽茎段的消毒处理。 在无菌室
内的超净工作台上，将带顶芽茎段和带腋芽茎段先用
75%酒精浸泡 10 s， 接着用 0.1% HgCl2 浸泡 3~10
min，再用无菌水冲洗4～5 遍，最后用无菌滤纸吸干表
面水分。 分别接种于诱导培养基上；
1.2.2 叶片的处理。将中度成熟叶片切成 6 mm×6 mm
第 １期
左右的小块， 用 75%酒精浸泡 10 s， 接着用 0.1%
HgCl2浸泡 3~5 min，再用无菌水冲洗 4 遍，最后用无
菌滤纸吸干表面水分，接种于诱导培养基上。
1.2.3 培养条件。 以上每个处理接种 15瓶，每瓶接种
1 个外植体，重复 3 次。 培养基添加琼脂 0.7%，蔗糖
3%，pH 5.8～6.0；培养温度（25±2）℃，光照每天 14 h，
光照强度 1 500~2 000 lx。
2 试验结果
2.1 初代培养
2.1.1 表面灭菌方式试验结果。 红花荷的 3种外植体
在不同灭菌时间处理中的污染率。
表 1 不同外植体接种效果(污染率)的比较
Tab. 1 Comparison of inoculation effect by
different explants (the contaminated rate)
2.1.2 带腋芽茎段试验结果。 将已消毒的带腋芽茎段
接种在以下培养基上，该试验共设 9 个处理，分别是
1 号：B5+6-BA 1.0 mg/L+ NAA 0.2 mg/L；2 号：B5+6-
BA 1.5 mg/L+ NAA 0.5 mg/L；3 号：B5+6-BA 2.0 mg/
L+ NAA 1.0 mg/L；4 号：WPM +6-BA 1.0 mg/L+ NAA
0.5 mg/L；5 号 ：WPM +6-BA 1.5 mg/L+ NAA1.0 mg/
L；6 号：WPM +6-BA 2.0 mg/L+ NAA 0.2 mg/L；7 号：
MS +6-BA 1.0 mg/L+ NAA 1.0 mg/L；8 号：MS +6-BA
1.5 mg/L+ NAA 0.2 mg/L；9 号：MS +6-BA 2.0 mg/L+
NAA 0.5 mg/L；通过对比试验研究分析找出红花荷带
腋芽茎段初代培养的最佳方案。在接种 8 d后腋芽开
始萌动，抽生新梢明显，12 d 后可见两片细小鲜绿的
嫩叶，18 d 后叶片展开长约 2 cm，宽约 1 cm，约 25 d
后带腋芽茎段基部膨大，开始产生淡红色疏松愈伤组
织。 具体结果见表 2：
表 2 带腋芽茎段初代培养试验结果
Tab. 2 The test results of stem initial culture
表 2 中出芽指数：发生芽的外植体上的出芽的平
均数。
2.1.3 带顶芽茎段和叶片试验结果。 带顶芽茎段接种
后萌动、抽新梢、展叶均表现出与带腋芽茎段相似，通
过对启动率、出愈率和出芽指数的方差模型分析，表
现得与带腋芽茎段初代培养非常相似；叶片试验结果
表明：由于对叶片的消毒试验没有成功，叶片组织全
部杀死，叶片的初代培养试验失败。 需要进一步研究
探索。
2.2 继代增殖培养试验结果
在初代培养的基础上，获得的芽、苗数量有限，不
能充分发挥组织培养快速繁殖的优势，根据初代培养
中影响红花荷培养的主要因素，合理选择继代培养基
组合，以获得大量增殖的材料。该试验共设 9个处理，
分别是 1 号：B5+ 6-BA 0.2 mg/L+ NAA 0.2 mg/L；2
号：B5+6-BA 0.5 mg/L+ NAA 0.5 mg/L；3 号：B5+6-
BA 1.0 mg/L+ NAA 1.0 mg/L；4号：MS +6-BA 0.2 mg/
L+ NAA 0.5 mg/L；5 号 ：MS +6-BA 0.5 mg/L+ NAA
1.0 mg/L；6号：MS +6-BA 1.0 mg/L+ NAA 0.2 mg/L；7
号：WPM +6-BA 0.2 mg/L+ NAA 1.0 mg/L；8号：WPM
+6-BA 0.5 mg/L+ NAA0.2 mg/L；9 号 ：WPM +6-BA
1.0 mg/L+ NAA 0.5 mg/L； 通过不同培养基试验以期
找出红花荷最佳继代增殖培养方案，结果见表 3：
表 3 继代增殖培养试验结果
Tab. 3 Test results of multiplication
2.3 生根培养
将切割 3 cm以上的健壮无根单苗转入生根培养
灭菌时间
/ min
平均污染率/ %
带腋芽茎段 带顶芽茎段 叶片
3 48.00 51.00 0
5 47.67 42.33 0
8 37.33 25.00 0
10 10.67 8.33 0
试验号 启动率/ % 出愈率/ % 出芽指数
1 68 65 0.6
2 72 71 1.4
3 58 43 0.4
4 72 70 0.9
5 81 53 1.3
6 70 46 0.8
7 82 81 1.3
8 96 91 1.8
9 85 73 1.6
试验号 增殖倍数 有效苗数 新梢形态发生
1 3.1 3.5
新梢基部有愈伤组织发生 ，
苗绿健壮
2 3.4 2.2
新梢基部有愈伤组织发生 ，
苗叶小细弱
3 2.7 1.3
新梢基部无愈伤组织发生 ，
苗叶小细弱
4 2.1 0.9
新梢基部有愈伤组织发生 ，
苗叶小细弱
5 2.8 1.0
新梢基部无愈伤组织发生 ，
苗叶小细弱
6 2.3 1.9
新梢基部有愈伤组织发生 ，
苗叶小细弱
7 3.3 2.7
新梢基部膨大， 无愈伤组织
发生，苗叶小细弱
8 4.2 3.9
新梢基部有愈伤组织发生 ，
苗绿健壮
9 2.7 2.8
新梢基部有愈伤组织发生 ，
苗叶小细弱
李晓辉等：红花荷的组织培养技术 11
南 方 林 业 科 学 第 44卷
附图：
红花荷初代培养
红花荷生根培养
红花荷继代培养
红花荷移栽前
红花荷移栽后
基，40 d 统计生根时间、生根率、一级根平均根数，观
察生根情况。 本试验共设 9个处理，1 号：1/4 WPM +
NAA 0.2 mg/L+ IBA 0.2 mg/L；2 号：1/4 WPM +NAA
0.5 mg/L+ IBA 0.5 mg/L；3 号 ：1/4 WPM +NAA 1.0
mg/L+ IBA 1.0 mg/L；4 号：1/ WPM +NAA 0.2 mg/L+
IBA 0.5 mg/L；5 号 ：1/2 WPM +NAA 0.5 mg/L+ IBA
1.0 mg/L；6 号 ：1/2 WPM +NAA 1.0 mg/L + IBA 0.2
mg/L；7 号：WPM +NA 0.2 mg/L+ IBA 1.0 mg/L；8 号：
WPM +NAA 0.5 mg/L+ IBA 0.2 mg/L；9 号 ：WPM +
NAA 1.0 mg/L+ IBA 0.5 mg/L；试验结果如下：
表 4 生根试验结果
Tab. 4 The result of rooting test
2.4 炼苗与移栽
将瓶内获得的带根健壮单苗（根长 1.5~2 cm，苗
高 3~4 cm）移栽至大棚内。移栽前在培养室里揭开 1/2
的封口膜，2 d 后再揭开全部封口膜， 再过 3 天取出
试管苗，移出并洗净培养基，不要损伤根系，栽植到移
栽基质上（表 9）。 移栽前两周要精心管护，前一周内
（植株未发新根）湿度应控制在 90%左右，一周后（植
株发了新根） 湿度可控制在 70%～80%； 温度控制在
20 ℃～26 ℃。 移栽基质试验设 2个方案，1号：泥炭︰
珍珠岩＝1︰1；2 号：泥炭︰蛭石＝1︰1，移栽成活率如
下：
表 5 移栽成活率结果
Tab. 5 The survival rate result of transplanting
3 结论
3.1 表面灭菌方式
红花荷带腋芽茎段的最佳灭菌方法为 75%酒精
处理 10 s+0.1% HgCl2 处理 8 min， 带顶芽茎段为
75%酒精处理 10 s+0.1% HgCl2处理 5 min；叶片在消
毒过程中全部被杀死，因此，不能得出叶片的最佳灭
菌方式。
3.2 初代培养
带腋芽茎段培养以 MS+6-BA 1.5 mg/L +NAA
0.2 mg/L 为最适宜培养基配方组合， 启动率达到了
96%，出愈率达到 91%，出芽指数达到 1.8；带顶芽茎
段以 MS+6-BA 1.5 mg/L +NAA 0.2 mg/L 组合培养效
果最好，启动率达到 86.34%，出愈率达到 76%，出芽
指数达到 1.6。
3.3 继代培养
适宜于新梢继代增殖培养的最优组合是 WPM+
6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L，增殖倍数达 4.2，有效
试验号
生根时
间/ d
生根率
/ %
根数
/ 条
生根情况
1 20.8 62.90 3.2 轻度愈伤化，根系红色
2 16.3 54.67 2.8 正常，根系红色色
3 21.8 46.00 1.7 轻度愈伤化，根系红色
4 16.5 84.34 4.3 正常，根系红色
5 15.3 76.00 3.7 正常，根系红色
6 18.6 81.30 3.9 轻度愈伤化，根系白色
7 29.4 49.67 1.8 重度愈伤化，根系红色
8 27.7 26.67 1.2 重度愈伤化，根系白色
9 26.2 38.00 1.7 轻度愈伤化，根系红色
(下转第 19 页)
试验号 移栽基质 成活率/ %
1 泥炭︰珍珠岩＝1︰1 73.50
2 泥炭︰蛭石＝1︰1 85.43
12
第 １期
(上接第 12 页)
苗数达到 3.9。
3.4 生根培养
生根培养：以 1/2 WPM+NAA 0.2 mg/L +IBA 0.5
mg/L，为最适宜培养基配方组合，植株生长健壮，生根
时间较短，为 16.5 d，生根率最高，达到了 84.34%，平
均根数最多，为 4.3根，平均根长为 2.6 cm。
3.5 移栽
移栽： 移栽基质以泥炭︰蛭石＝1︰1 效果最好，
成活率最高，达到 85.43%，且长势良好。
参考文献：
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(8A):36.
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［7］ 蒙彩兰，何日明 .园林绿化树种红花荷［J］.广西林业，2006
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率、高生长、粗生长均显著高于种植在阔叶林林缘的
华木莲。
2）在市林科所庭院内种植的 2株华木莲小苗，一
株所在位置光线较强，另一株光线较弱，其生长表现
过程见表 3。 由表 3 可见两株地径相近，种植在两个
土壤肥力相近但光线强弱不同的地方，在不同的时期
生长表现差异较大。 第 1 年和第 2 年光线较弱的地
方的华木莲生长量明显大于光线较强的地方的华木
莲，但到了第 4年和第 5年光线较强的地方的华木莲
生长量又明显大于光线较弱的地方的华木莲。
3）将华木莲种植在杉木残次林或砍伐迹地内，10
a后其树高可超过周边杉木。 这些试验证明了华木莲
具有良好的前期耐阴性，后期喜阳的特点，因此华木
莲作为针叶林更新树种，对改善林分结构有广泛的应
用空间，将是把我国长江以南地区大面积针叶纯林改
造成针阔混交生态林的理想树种。
3结论与讨论
1）人工栽培的华木莲一般 6年生时可开花，在华
南地区可提前 1～2年开花。 7-10年生时有少量挂果，
以后产种量逐年增加，70 年生成年母树产种量可达
4.5 kg/株以上。 华木莲 80 年生后成年母树产种量有
所下降。 华木莲母株产种的高峰期在树龄 50～80年。
2）华木莲的种子不存在生理休眠，用湿沙储存种
子就可，10月获得的种子在第 2年的春天 3月底至 4
月初播种发芽率最高，种子活性最强，种子储存时间
越长，种子的活性越低，第 3 年就基本上失去发芽能
力。
3）华木莲主伐后可考虑萌芽更新和天然种子更
新，这将使华木莲的第 2代林造林成本大幅下降。
4） 华木莲具有良好的前期耐阴、 后期喜阳的特
点，因此华木莲作为针叶林更新树种，对改善林分结
构有广泛的应用空间，将是把我国长江以南地区大面
积针叶纯林改造成针阔混交生态林的理想树种。
参考文献：
［1］ 刘素梅，徐光辉，龙桂根，等 .华木莲原生地生境调查研究
［J］.南方林业科学，2015，43(6):19-20.
表 3 华木莲在不同光照情况下不同时期的生长表现
Tab. 3 The growth performance of S. glauca in
different light conditions in different periods
位置 光线较强地点
生长指标 树高/ cm 树高/ cm 地径/ cm
2011 年 4 月 26 日 15.0 21.0 0.47
2011 年 7 月 22 日 87.3 66.8 0.75
2011 年 11 月 11 日 118.6 66.2 1.0
2012 年 4 月 19 日 140 90
2014 年 9 月 15 日 330 393 5.1
2015 年 5 月 29 日 380 460 6.0
碱解氮/ mg/kg 101
有效磷/ mg/kg 7.4
速效钾/ mg/kg 57
有机质/ g/kg 71.9
光线较弱地点
地径/ cm
0.48
0.96
1.6
4.1
4.5
121
6.0
67
73
徐光辉等：华木莲结实规律与林下利用技术研究 19