全 文 ：2015年第12期现代园艺
泥内，潮水也干扰着幼苗的常规沉降。若培植得偏浅，幼苗易
被冲走；若培植得太深，就会陷入泥地。
秋茄培植密度，关系着湿地范围内的林木营造，也关系
着总体群落实际的稳定性。由于潮间带生长环境较为脆弱，
如果红树林培植其中，很容易受到人为的干扰，使其很难成
活，为此，应尽量提前让树林郁闭，构建防浪护坡，从而有效
提高苗木成活率[3]。
4.3 常规培育及管理
秋茄种植密度直接关系到林木群落稳定型及其生长潜
能，而红树林喜群居，因此，要为其创建良好的培植环境，提
升林木的密闭速度，提高成活率，所以，秋茄红树林较为适合
密植，等幼树闭合后，再挪出部分植株[4]。
实际上，红树林通常会在潮间带范围内良好的生长，一
旦受到人为因素的影响，就会使胚轴很难正常生长，如果苗
木出现损伤，导致苗木成活率下降[5]。同时还要注意，在具有
互花米草群落内，每年割草的次数都要在2次以上，进而保
证对群落的有效管理[6]。局部区域内的植被分布，也说明了该
种植区域内波浪以及潮汐的实际情况。具体而言，波浪特有
的掩护，决定着沿岸区域内的树林分布；潮汐特有的淹没状
态，也决定了横向方位的林木分布[7]。而土体中盐度多少，也
直接决定了土体自身性质，淡水经过的区域内能使其中的红
树林长势良好。
5 结语
红树林培植于偏热的地带，适应潮间带独有的气候特
性，被划归成适盐特性的树种。秋茄红树林培育价值高，依循
人工引种的路径，可以构建堤坝架构中的防护林。秋茄引种
培植，能添加滩涂固有的树种类别，前景广阔。
参考文献
1 郭亮.浙江省台州湾秋茄红树林引种试验[J].林业科技开发，2006（4）
2 黄晓琳.浙南红树林现状分析及开发前景[J].浙江林学院学报，2009（3）
3 许加意.浙南地区秋茄红树林营建技术探讨[J].浙江林业科技，2009（6）
4 李建清.秋茄红树林北移引种造林技术[J].浙江林业科技，2011（6）
5 何小广.台州市沿海滩涂红树林现状与发展方向的探讨[J].浙江林业
科技，2014（5）
6 牟爱友，刘际建，杨建青等.我国最北缘秋茄红树林引种试验调查[J].
防护林科技，2005（S1）
7 金川，王金旺，郑坚等.异速生长法计算秋茄红树林生物量[J].生态学
报，2012（11）
（责任编辑 舒丹丹）
作者简介：苗亚军（1980.07-）男，吉林省洮南人，学士学位，助理工程师，主要从事林业生产经营；
紫叶稠李（Prunusvirginiana）属蔷薇科稠李属，高大落叶
乔木，适应性强，抗寒、喜光、喜湿润土壤、速生[1]。原产于北美
洲，叶色变化丰富，是重要的彩叶树种[2]。经多年引种繁育，已
成为吉林省重要的园林绿化树种。鉴于其常规扦插难以生根
繁殖，本研究采用紫叶稠水培侧芽作为外植体，对紫叶稠李
不同组培阶段和激素种类选择进行试验分析，优化其组织培
养技术，对紫叶稠李苗木的快速繁殖生产有重要意义。
1 试验材料及方法
1.1 试验试材
采用生长健壮、无病虫害的紫叶稠李优树1年生冬芽进
行水培，选取发出嫩侧芽作为外植体。
1.2 外植体灭菌与接种
将外植体浸入吐温浸泡20～30min，自来水冲洗至无泡，
移至超净台，切成 2～3㎝小段，浸入 75%酒精 3～5s，再用
0.1%HgCl2液浸泡4～10min，并不断搅动，无菌水清洗 4～5
次，最后将小段两端各剪掉一部分，用无菌滤纸吸干表面水
分接种，每瓶1块外植体。
1.3 培养基和培养条件
采用改良的MS﹙大量元素为原来的3/4﹚，诱导丛生芽培
养基含蔗糖3%，生根培养基含蔗糖2%，大量元素减半。所有
培养基中均含琼脂0.5%，pH值6.4。高压灭菌30min，培养温
度26～28℃，光照周期10/14h，光照强度1400～ 6 Lx，培养
室湿度50%～65%。
2 结果和分析
2.1 不同激素组合对芽诱导的影响
将试材接种于改良的 MS﹙大量元素 3/4﹚，附加蔗糖
紫叶稠李组织培养技术研究
苗亚军 1 陈淑华 2 刘晓慧 2
（1白城市到保机械林场；2白城市林业科学研究院，白城 吉林 137000）
摘 要：以紫叶稠李水培侧芽为外植体，对其进行组织培养技术研究，结果表明：在 3/4MS+6-BA0.3mg/L+ IAA
0.5mg/L+蔗糖 30mg/L的培养基上，外植体分化最早；在 3/4MS+6-BA0.3mg/L+IAA0.3mg/L+蔗糖 30mg/L 培养基的
增殖系数最高；在 1/2MS+IAA0.5mg/L+蔗糖 30mg/L的培养基上，生根率最高，平均生根率达 90%以上。
关键词：紫叶稠李；组织培养；激素；生根
试验研究
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DOI:10.14051/j.cnki.xdyy.2015.24.009
2015年第12期 现代园艺
30mg/L的培养基上，激素组合如表1所示，1周左右芽开始
萌发，2周后外植体开始分化，出现愈伤组织，并有少量丛生
芽。
表 1 不同浓度的 6-BA与 NAA、IAA、IBA对初代分生的影响
由表1可以看出，在不同的激素组合中，6-BA0.3+IAA
0.5的启动天数最短，并且出现了丛生芽，为最佳的初代分生
培养基。
2.2 不同激素组合对芽增殖阶段的影响
将上一阶段诱导的愈伤及丛生芽在超净台中切割成小
块，接种于下列几种培养基中，不同种类和浓度的细胞分裂
素和生长素对继代增殖影响效果是不同的，结果见表2。
表 2 不同浓度的 6-BA与 NAA、IAA、IBA对继代增殖的影响
由表2可知，外植体分化率随6-BA浓度的增加而增加，
但当6-BA达到0.5时，茎条的质量下降，并伴有玻璃化苗现
象，其中4号培养基3/4MS+6-BA0.3mg/L+IAA0.3mg/L分化
率达到63.1%,5号培养基3/4MS+6-BA0.3mg/L+IBA0.1mg/L
分化率达到60.4%，分化率基本相当，但平均苗高4号培养基
为2.72cm,5号培养基为2.18cm；10号培养基和12号培养基
分化率均在60%左右，但分化出的苗细弱，并有玻璃化现象。
综上所述，4 号培养基 3/4MS+6-BA0.3 mg/L+IAA0.3 mg/L为
芽增殖阶段最佳培养基。
2.3 生根培养阶段
将继代增殖得到的2～3cm嫩茎条切下后转入生根培养
基1/2MS附加下列生长素中，培养5～1 d使其生根，结果见
表3。
表 3 不同浓度的激素培养基对生根的影响
表3可看出，NAA和 IAA诱导生根率都达到了 90%左
右，而IBA诱导生根率只有70%，同时，随着NAA浓度的增
加，生根率有下降的趋势，而IAA的浓度在0.5mg/L生根率达
到最高为92.5%，同时生根的长度为1.9㎝，为最长生根长度。
综上所述，紫叶稠李最适宜的生根培养基为 1/2MS+IAA
0.5mg/L+蔗糖30mg/L。
3 结论
（1）在初代培养阶段，培养基 3/4MS+6-BA0.3mg/L+IAA
0.5mg/L适合紫叶稠李外植体诱导分化。（2）在继代与增殖培
养阶段，以改良的MS作为基本培养基（3/4MS），以 6-BA0.3
mg/L+IAA0.5mg/L组合效果最理想。（3）在生根培养阶段，以
1/2MS+IAA0.5mg/L+蔗糖30mg/L组合效果最好，生根快，根
系生长旺盛。
参考文献
1 杨艳清.紫叶稠李引种栽培与繁殖[J].东北林业大学学报，2006（6）
2 李萍，刘晓芳，黄闽敏等.紫叶稠李抗寒性研究[J].西北林学院学报，
2009（4）
3 陈正华.木本植物组织培养及其应用[M].北京：高等教育出版社，
1986
4 潭文澄.观赏植物组织培养技术[M].北京：中国林业出版社，1986
（责任编辑 荷初）
激素水平组合﹙mg/L﹚分化率
（%）
平均苗高
（cm）
增殖
倍数
备注
1 6-BA0.3+NAA0.01 60.2 1.78 2.03 苗较粗壮
2 6-BA0.3+NAA0.03 51.3 1.94 2.05 苗较粗壮
3 6-BA0.3+IAA0.1 48.6 2.31 1.28 苗较粗壮
4 6-BA0.3+IAA0.3 63.1 2.72 2.45 苗粗壮
5 6-BA0.3+IBA0.1 60.4 2.18 2.01 苗粗壮
6 6-BA0.3+IBA0.3 56.8 2.09 2.12 苗粗壮
7 6-BA0.5+NAA0.01 62.5 1.86 2.78 苗较细弱
6-BA0.5+NAA0.03 67.1 1.98 2.72苗细弱
有轻微玻璃化现象
10 6-BA0.5+IAA0.3 61.3 1.39 2.02苗细弱
有玻璃化现象
11 6-BA0.5+IBA0.1 58.9 1.85 2.14苗细弱
有玻璃化现象
12 6-BA0.5+IBA0.3 62.1 1.64 2. 8苗细弱
有玻璃化现象
9 6-BA0.5+IAA0.1 58.6 1.87 1.96苗细弱
有玻璃化现象
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激素水平组合﹙mg/L﹚ 启动天数（d） 备注
1 6-BA0.3+NAA0.03 9 出现愈伤组织
2 6-BA0.3+NAA0.05 8 少量愈伤组织
3 6-BA0.3+IAA0.3 9 愈伤组织明显
4 6-BA0.3+IAA0.5 7 大量愈伤组织有丛生芽
5 6-BA0.3+IBA0.3 8 少量愈伤组织
6 6-BA0.3+IBA0.5 10 少量愈伤组织
生长素种类 浓度﹙mg/L﹚ 生根率﹙%﹚ 出根天数﹙d﹚ 平均根长（㎝）
NAA
0.01 89.1 10 1.8
0.03 84.6 10 1.2
0.05 82.8 12 1.1
IBA
0.30 73.2 12 0.8
0.50 69.4 15 0.9
1.00 73.8 13 1.2
IAA
0.30 88.2 10 1.6
0.50 92.5 11 1.9
1.00 90.4 10 1.5
ResearchofPrunusvirginianaTissueCultureTechnology
Abstrat：StudyingPrunusvirginianatissueculturewithlateralbudstakenasexplants.Theresultsshowedthatexplantdifferentiation
wastheearliestwith3/4MS+6-BA0.3mg/L+IAA0.5mg/L+sucrose30mg/L.Theincrementcoefficientwasthehighestwith3/4MS+6-BA0.3
mg/L+IAA0.3 mg/L+ sucrose 30mg/L. The rooting rate was the highest with 1/2MS+IAA0.5mg/L+ sucrose 30mg/L, the rooting rate was
above90%.
Keywords：Prunusvirginiana；TissueCulture；PGR；Rooting
试验研究
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