全 文 ：收稿日期：２０１１－０９－２２
１）基金项目：辽宁省高等教育教学改革资助项目（２００９０３０４）；辽宁师范大学教学改革资助项目（ＬＳＪＧ２００９０１０８）
东风菜叶柄无性系建立研究１）
乔雪，姜宇，王巍，张冬艳，姜长阳＊
（辽宁师范大学生命科学学院，辽宁 大连 １１６０８１）
摘 要：为保护野生资源，满足人工栽培的需要，以东风菜叶柄为材料，进行了愈伤组织诱导、分化培养，
不定芽生根培养，试管苗生根继代增殖培养、移栽、定植的研究，建立起变异植株的无性系。结果表明：
ＭＳ＋２，４－Ｄ２．５ｍｇ／Ｌ是叶柄愈伤组织培养的理想培养基；ＭＳ＋ＧＡ３０．５ｍｇ／Ｌ＋ＡｇＮＯ３１．５ｍｇ／Ｌ＋
ＮＡＡ ０．１ｍｇ／Ｌ是愈伤组织分化培养的理想培养基；用ＮＡＡ２０ｍｇ／Ｌ的无菌溶液对不定芽切口进行处
理后，接种到 Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ培养基上培养，是不定芽生根培养和试管苗生根继代培养的理想方
法；定植的试管苗保持了野生东风菜的所有植物学性状。
关键词：东风菜；愈伤组织；快速繁殖
Ｔｈｅ Ｓｔｕｄｙ ｏｎ Ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ Ｃｌｏｎｅ ｏｆ Ｄｏｅｌｌｉｎｇｅｒｉａ ｓｃａｂｅｒ
Ｑｉａｏ Ｘｕｅ，Ｊｉａｎｇ Ｙｕ，Ｗａｎｇ Ｗｅｉ，Ｚｈａｎｇ Ｄｏｎｇｙａｎ，Ｊｉａｎｇ Ｃｈａｎｇｙａｎｇ
（Ｃｏｌｅｇｅ ｏｆ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｌｉａｏｎｉｎｇ Ｎｏｒｍａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｄａｌｉａｎ １１６０８１）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅ ａｉｍ ｗａｓ ｔｏ ｐｒｅｓｅｒｖｅ ｔｈｅ ｗｉｌｄ ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ａｎｄ ｍｅｅｔ ｔｈｅ ｎｅｅｄｓ ｏｆ ｆａｌｓｅ ｐｌａｎｔｉｎｇ，ｓｔｉｐｅｓ ｏｆ Ｄｏｅｌｉｎｇｅ－
ｒｉａ ｓｃａｂｅｒ ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ａｓ ｍａｔｅｒｉａｌ ｔｏ ｄｏ ｔｈｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ ｏｎ ｃａｌｕｓ ｉｎｄｕｃｅｍｅｎｔ ａｎｄ ｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ，ｒｏｏｔｉｎｇ ｏｆ ａｄｖｅｎｔｉ－
ｔｉｏｕｓ ｂｕｄｓ ａｎｄ ｒｏｏｔｉｎｇ ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｕｂｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ，ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｕｂｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ａｎｄ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ ｔｈｅ
ｃｌｏｎｅ ｏｆ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｐｌａｎｔｓ．Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｂｅｓｔ ｍｅｄｉｕｍ ｆｏｒ ｃａｌｕｓ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｓｔｉｐｅｓ ｗａｓ ＭＳ＋２，４－
Ｄ２．５ｍｇ／Ｌ；ＭＳ＋ＧＡ３０．５ｍｇ／Ｌ＋ＡｇＮＯ３１．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ ０．１ｍｇ／Ｌ ｗａｓ ｓｕｉｔａｂｌｅ ｆｏｒ ｃａｌｕｓ ｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ；
ｔｈｅ ｉｄｅａｌ ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｒｏｏｔｉｎｇ ｏｆ ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ ｂｕｄｓ ａｎｄ ｔｕｂｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｗａｓ ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｍｅｄｉｕｍ Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ
０．１ｍｇ／Ｌ ａｆｔｅｒ ｔｈｅ ｉｎｃｉｓｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ｄｅａｌｅｄ ｗｉｔｈ ａｓｅｐｔｉｃ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ＮＡＡ ２０ｍｇ／Ｌ；ｔｈｅ ｔｅｓｔ ｔｕｂｅ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｔｒａｎｓ－
ｐｌａｎｔｅｄ ｍａｉｎｔａｉｎｅｄ ａｌ ｂｏｔａｎｙ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ ｏｆ ｔｈｅ ｗｉｌｄ Ｄｏｅｌｉｎｇｅｒｉａ ｓｃａｂｅｒ．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ：Ｄｏｅｌｌｉｎｇｅｒｉａ ｓｃａｂｅｒ；Ｃａｌｕｓ；Ｒａｐｉｄ Ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ
东风菜（Ｄｏｅｌｌｉｎｇｅｒｉａ ｓｃａｂｅｒ）又称山蛤芦、仙白草、
盘龙草、白云草等，属于菊科东风菜属多年生直立草本
植物，在我国的北部、中部、东部、南部及东北有分布，
在辽宁省的沈阳、大连、鞍山、铁岭、丹东等地也有分
布。生长于阔叶林下、灌木丛中、林缘草地及路旁等环
境中［１－３］。东风菜根含有东风菜皂苷、东风菜苷、齐墩
果酸苷等药用成分。全草做中药用，具有化痰止咳、行
气止疼等功效，能治头疼目眩、肝热眼赤、风湿痹疼、跌
打肿痛、咳嗽、胃疼、疝气、蛇咬伤等疾病［４］。东风菜不
仅具有重要的药用价值，而且近年来辽宁南部地区的
农民还发现，把东风菜的干粉作为家禽饲料添加剂，能
明显降低家禽发病率和死亡率。因此，近年来，在辽宁
的南部地区，人们每年都多次采收东风菜作为草药出
售和家禽饲料添加剂。这使本来分布和数量就很少的
东风菜野生资源遭到了严重破坏。现在，在辽宁南部
地区已经很难采到野生东风菜。有人试图进行人工栽
培，但由于长期对此采收使其几乎不结种子。为保护
东风菜野生资源、实现栽培，从２００６年开始，我们对东
风菜进行了组织培养及无性系建立的研究。虽然已多
有菊科植物组织培养及无性系建立的研究［５－１０］，但迄今
未见东风菜属植物组织培养和无性系建立研究的报道。
１ 材料与方法
１．１ 材料及来源
６月上旬，将旅顺山坡林缘生长旺盛的东风菜植株
地上部基生叶采回实验室后，剪下叶柄作为试验材料。
１．２ 材料灭菌
参见李欢等侧金盏花的研究［１１］。
１．３ 培养条件
参见李欢等侧金盏花的研究［１１］。
１．４ 试验方法
１．４．１ 愈伤组织诱导培养。把无菌叶柄切成长约
０．４ｃｍ的柄段后，接种到以ＬＳ、ＭＳ和 Ｗｈｉｔｅ ３种培养
４
第２期（总第１１７期） 中 国 林 副 特 产 Ｎｏ．２（ＧＳＮＯ．１１７）
２０１２年４月 Ｆｏｒｅｓｔ Ｂｙ－Ｐｒｏｄｕｃｔ ａｎｄ Ｓｐｅｃｉａｌｉｔｙ ｉｎ Ｃｈｉｎａ Ａｐｒ．２０１２
DOI:10.13268/j.cnki.fbsic.2012.02.014
基为基本培养基，附加浓度分别为１．５ｍｇ／Ｌ、２．０ｍｇ／
Ｌ、２．５ｍｇ／Ｌ的２，４－Ｄ、ＮＡＡ的培养基上，进行叶柄愈
伤组织的诱导培养。叶柄愈伤组织诱导培养试验重复
３次，每种培养基接种培养１００个茎段。
１．４．２ 叶柄愈伤组织分化培养。把由叶柄诱导培养
的愈伤组织用镊子在无菌培养皿中将其分散为直径
１．０ｃｍ的块状后，接种到以 ＭＳ＋ＧＡ３０．５ｍｇ／Ｌ＋Ａｇ－
ＮＯ３１．５ｍｇ／Ｌ为基本培养基，附加不同浓度６－ＢＡ和
ＮＡＡ的培养基上，进行愈伤组织的分化培养。愈伤组
织分化培养试验重复３次，每种处理接种１００块愈伤
组织。
１．４．３ 不定芽的生根培养。把分化培养的不定芽从
基部切下后，把下部切口分别在ＩＢＡ ２０ｍｇ／Ｌ、ＮＡＡ
２０ｍｇ／Ｌ和２，４－Ｄ ２０ｍｇ／Ｌ的无菌溶液中处理５ｍｉｎ
后，接 种 到 Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ ０．１ｍｇ／Ｌ、１／２ＭＳ＋ＩＡＡ
０．１ｍｇ／Ｌ、Ｎ６＋ＩＡＡ ０．１ｍｇ／Ｌ ３种培养基上，进行不定
芽生根培养。生根培养试验重复３次，每种培养基接
种１００个不定芽。
１．４．４ 试管苗移栽与定植。３月下旬，把生长着生根
继代增殖培养的试管苗移到温室中，去掉瓶塞，在光照
下炼苗２ｄ后，将试管苗取出，把根部在２０ｍｇ／Ｌ的
ＩＡＡ溶液中处理３ｍｉｎ后，移栽到上半层为干净河沙、
下层为园土的温室营养钵中。移栽后前１０ｄ要保持
湿度９０％左右、没有直射光的环境条件，之后按照温
室内正常条件管理。移栽试验重复２次，移栽试管苗
均为５００株。
把在温室中移栽成活的试管苗于５月上旬定植到
大连郊区的山坡林缘上。定植试验重复２次，定植的
株数均为４５０株。定植后按照野生环境条件管理。
２ 结果及分析
２．１ 不同基本培养基、不同浓度生长素对叶柄愈伤组
织诱导培养的影响
培养到５０ｄ时观察统计，结果见表１。由表１可
见，培养基中添加ＮＡＡ不能诱导形成愈伤组织；以ＬＳ
和 Ｗｈｉｔｅ为基本培养基，也几乎不能诱导培养出愈伤
组织。以 ＭＳ为基本培养基，诱导培养出愈伤组织的
效果较好。其中在 ＭＳ＋２，４－Ｄ２．５ｍｇ／Ｌ的培养基上，
不仅愈伤组织的诱导率达到了８５％，而且愈伤组织生
长旺盛。观察还表明，在 ＭＳ＋２，４－Ｄ２．５ｍｇ／Ｌ的培养
基上，接种后１０ｄ左右，约３０％培养材料的切口开始膨
大，随后愈伤组织开始迅速生长。培养到５０ｄ时，培养
材料就会生长为直径０．７～１．６ｃｍ、表面呈颗粒状、嫩
绿色的愈伤组织。前人研究认为，这样的愈伤组织为
具有分化力的愈伤组织［１２－１３］。把这种愈伤组织接种到
相同的培养基上进行愈伤组织的继代培养，经过４５ｄ
的培养，又会培养出一代外观不变、生长旺盛的愈伤组
织。２次重复试验的结果基本一致。以上结果说明：
ＭＳ＋２，４－Ｄ２．５ｍｇ／Ｌ这一培养基是东风菜叶柄愈伤
组织培养的理想培养基。
表１ 不同基本培养基、不同浓度生长素对
叶柄愈伤组织诱导培养的影响
培 养 基 愈伤组织诱导率／％ 愈伤组织长势
ＬＳ＋２，４－Ｄ１．５ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
ＬＳ＋ＮＡＡ１．５ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
ＭＳ＋２，４－Ｄ１．５ｍｇ·Ｌ－１ ４４ ＋
ＭＳ＋ＮＡＡ１．５ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
Ｗｈｉｔｅ＋２，４－Ｄ１．５ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
Ｗｈｉｔｅ＋ＮＡＡ１．５ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
ＬＳ＋２，４－Ｄ２．０ｍｇ·Ｌ－１ ６ ＋
ＬＳ＋ＮＡＡ２．０ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
ＭＳ＋２，４－Ｄ２．０ｍｇ·Ｌ－１ ７６ ＋＋
ＭＳ＋ＮＡＡ２．０ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
Ｗｈｉｔｅ＋２，４－Ｄ２．０ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
Ｗｈｉｔｅ＋ＮＡＡ２．０ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
ＬＳ＋２，４－Ｄ２．５ｍｇ·Ｌ－１ １１ ＋
ＬＳ＋ＮＡＡ２．５ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
ＭＳ＋２，４－Ｄ２．５ｍｇ·Ｌ－１ ８５ ＋＋
ＭＳ＋ＮＡＡ２．５ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
Ｗｈｉｔｅ＋２，４－Ｄ２．５ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
Ｗｈｉｔｅ＋ＮＡＡ２．５ｍｇ·Ｌ－１ ０ －
注：＋＋长势旺盛；＋长势一般；－为不生长。下表同。
２．２ 不同浓度生长调节剂对愈伤组织分化培养的影响
表２ 不同浓度生长生长调节剂对愈伤组织分化培养的影响
６－ＢＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
ＮＡＡ／
（ｍｇ·Ｌ－１）
分化率／
％
分化不定芽数／
块
不定芽长势
０ ０．１ ０ ０ －
０ ０．３ ０ ０ －
０ ０．６ ０ ０ －
０ ０．９ ０ ０ －
０．３ ０．１ ９１ ４．６ ＋＋
０．３ ０．３ ６７ ４．６ ＋
０．３ ０．６ １３ １．９ ＋
０．３ ０．９ ０ ０ －
０．６ ０．１ ６７ ４．４ ＋＋
０．６ ０．３ ５０ ４．２ ＋
０．６ ０．６ １６ ２．３ ＋
０．６ ０．９ ０ ０ －
１．２ ０．１ ０ ０ －
１．２ ０．３ ０ ０ －
１．２ ０．６ ０ ０ －
１．２ ０．９ ０ ０ －
培养到５０ｄ观察统计，结果见表２。由表２可见，
培养基中不加６－ＢＡ和添加的６－ＢＡ浓度达到１．２ｍｇ／
Ｌ时，培养的愈伤组织不能分化；培养基中加入的
ＮＡＡ浓度达到０．９ｍｇ／Ｌ时，培养的愈伤组织也不能
分化；培养基中加ＮＡＡ浓度为０．６ｍｇ／Ｌ时，愈伤组织
的分化效果也不理想；培养基中加入的 ＮＡＡ浓度为
０．１ｍｇ／Ｌ时，愈伤组织的分化效果最理想，不仅分化率
为９１％、每块培养的愈伤组织可分化出４．６个不定芽，
而且分化的不定芽长势旺盛。观察还表明，接种后５ｄ
左右愈伤组织开始生长分化；培养到１５ｄ时，绿色的愈
伤组织上就会分化出许多不定芽；培养到５０ｄ时，就
会分化出高为０．５～１．１ｃｍ、具有４～７个叶片、呈丛生
状地不定芽。３次重复试验的结果基本一致。以上结
果证明：ＭＳ＋ＧＡ３０．５ｍｇ／Ｌ ＋ＡｇＮＯ３１．５ｍｇ／Ｌ ＋
５
２０１２年 乔雪等：东风菜叶柄无性系建立研究 第２期
ＮＡＡ ０．１ｍｇ／Ｌ这种培养基是东风菜愈伤组织分化培
养的理想培养基。
２．３ 不同生长素、不同培养基对不定芽生根培养的影响
表３ 不同生长素、不同培养基对不定芽生根培养的影响
培养基 生长素
生根率
％
生根条数
／株
试管苗
长势
Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１ ＩＢＡ２０ｍｇ·Ｌ－１ ２３ １．９ －
１／２ＭＳ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１ ＩＢＡ２０ｍｇ·Ｌ－１ ０ ０ －
Ｎ６＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１ ＩＢＡ２０ｍｇ·Ｌ－１ ０ ０ ＋
Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１ ＮＡＡ２０ｍｇ·Ｌ－１ ９５ ６．６ ＋＋
１／２ＭＳ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１ ＮＡＡ２０ｍｇ·Ｌ－１ ８１ ４．３ ＋
Ｎ６＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１ ＮＡＡ２０ｍｇ·Ｌ－１ ０ ０ －
Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１ ２，４－Ｄ２０ｍｇ·Ｌ－１ ０ ０ －
１／２ＭＳ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１ ２，４－Ｄ２０ｍｇ·Ｌ－１ ０ ０ －
Ｎ６＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１ ２，４－Ｄ２０ｍｇ·Ｌ－１ ０ ０ －
接种后２８ｄ观察统计，结果见表３。由表３可见，
用２，４－Ｄ ２０ｍｇ／Ｌ的无菌溶液对不定芽的基部切口进
行处理和在 Ｎ６＋ＩＡＡ ０．１ｍｇ／Ｌ的培养基上，不定芽
均不能生根；用ＩＢＡ ２０ｍｇ／Ｌ的无菌溶液对基部切口
进行处理，不定芽的生根效果也较差。把下部切口在
ＮＡＡ２０ｍｇ／Ｌ的无菌溶液中处理５ｍｉｎ后，接种到以
Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ、１／２ＭＳ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ ２种培
养基上，生根效果较好。其中在 Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ
培养基上的生根效果最好，不仅生根率达到了９５％、
平均每株试管苗生根６．６条，而且试管苗外观上长势
好。观察也表明，把在 ＮＡＡ２０ｍｇ／Ｌ的无菌溶液中处
理５ｍｉｎ后的不定芽接种到 Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ培养
基上，培养４ｄ可见下部切口处长出新根。接着，伴随
着根的生长，根数也在不断增加。培养到２８ｄ时，就会
培养生长为高３．５～５．１ｃｍ、具有４～８个叶片、茎粗
０．２ｃｍ左右、根为白色的旺盛试管苗。把上述培养的
旺盛试管苗剪成至少具有２个叶片（实际上是具有２
个生长点）的茎段后，接种到相同的生根培养基上，进
行试管苗的生根继代增殖培养。３次重复试验，每次继
代培养５代结果证明：经过２６ｄ的培养，就会培养出１
代平均生根率为９６．６％、繁殖系数为２．８（按照这个速
度，一年能繁殖速度约１７０万）、其长势与不定芽生根培
养的试管苗一致的１代试管苗。以上结果证明：用
ＮＡＡ２０ｍｇ／Ｌ的无菌溶液对不定芽切口进行处理后，接
种到 Ｗｈｉｔｅ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ培养基上培养是东风菜不定
芽生根培养和试管苗生根继代培养的理想方法。
２．４ 试管苗移栽与定植的效果
观察表明，移栽后８ｄ可见成活并开始生长新叶。
３０ｄ统计证明：２次移栽的平均成活率为９４．５％。
定植后３０ｄ统计证明：２次定植共成活８９２株，平
均成活率为９９．１％。这说明试管苗容易定植成活。
定植后观察表明，定植后前３０ｄ生长缓慢，随后生
长速度加快，植株生长旺盛。同时，试管苗保持了野生
东风菜所有的生物学性状。
３ 讨论
目前已经报告的植物愈伤组织诱导材料，大多数
使用子叶和下胚轴［１２］。这是因为这两种植物组织幼
嫩，分化的程度低，具有较强的分化能力。由于叶柄愈
伤组织诱导率很低［１４］，几乎不把叶柄作为愈伤组织的
诱导材料。而本研究以叶柄为材料，也获得了具有很
强分化力的愈伤组织。这证明高度分化的叶柄细胞也
具有全能性。
本研究所获得的试管苗保持了野生东风菜的所有生
物学性状说明，通过本研究所建立的无性系技术为实现
东风菜的人工栽培和野生资源的保护奠定了技术基础。
在试管苗的继代增殖培养中，出现了培养周期比
不定芽生根培养周期缩短的２ｄ的现象。产生这种现
象主要是由以下原因引起的：试管苗的茎段粗壮旺盛、
自身抗性强、适应性强。
参 考 文 献
［１］ 中国科学院植物研究主编．中国高等植物图鉴（４册）
［Ｍ］．北京：科学出版社，１９７５：４２３．
［２］ 韩全忠，王正兴．大连地区植物志（下册）［Ｍ］．大连：
大连理工大学出版社，１９９３：７３１．
［３］ 李书心．辽宁植物志（下册）［Ｍ］．沈阳：辽宁科学技术
出版社，１９９１：４５３－４５４．
［４］ 南京中医药大学．中医药大辞典（下册）［Ｍ］．上海：上
海科学技术出版社，２００６：８９１－８９２．
［５］ 朱海军，余红强，义鸣放．蓝刺头组织培养和叶片再生
植株的研究［Ｊ］．核农学报，２００７，２１（６）：５８１－５８４．
［６］ 陶静，杨世海，张梦萍，等．抱茎苦荬菜的组织培养及植
株再生［Ｊ］．中国中药杂志，２００８，３３（４）：３６８－３７１．
［７］ 王丽娟，沈默，吴绛云，等．名种菊花快速繁殖技术［Ｊ
］．北方园艺，２００２（３）：６１．
［８］ 程林梅，高洪文，赵茂林．菊苣组织培养与植株再生的
研究［Ｊ］．草业学报，２００２：１１（４）：１０５－１０７
［９］ 高亦珂，赵勃，丁国勋．菊花茎叶外植体再生体系的研
究［Ｊ］．北京林业大学学报，２００１，２３（１）：３２－３３．
［１０］ 司怀军，戴朝曦，于品华．菊花幼嫩花瓣愈伤组织的诱
导和植株再生［Ｊ］．甘肃农业大学学报，１９９８，３３（２）：
１７５－１７７，１７４
［１１］ 李欢，肖筝，王本全，等．侧金盏花组织培养及无性系
建立的研究［Ｊ］．特产研究，２０１０，３２（１）：２２－２４，２８．
［１２］ 安利佳，姜长阳．植物组织培养导论［Ｍ］．大连：辽宁
师范大学出版社，１９９６：７０－７２，４３－４５．
［１３］ 李俊明，朱登云，编译．植物组织培养教程 ［Ｍ］．北
京：中国农业出版社，２００８：４７－４９．
［１４］ 王国平，洪霓．果树的脱毒与组织培养［Ｍ］．北京：中
化学工业出版社，２００５：４２－４３．
作者简介：乔雪（１９９０－），女，辽宁大连人，在读本科生，
从事植物组织培养研究。＊通讯作者：姜长阳（１９５３－），男，
辽宁大连人，教授，从事植物技术研究，Ｅ－ｍａｉｌ：ｃｈａｎｇｙ－
ａｎｇｊｉａｎｇ＠１２６．ｃｏｍ。
６
２０１２年 中 国 林 副 特 产 第２期