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珠子参总皂苷对H_2O_2诱导新生大鼠心肌细胞凋亡的抑制作用



全 文 :◇ 基础研究 ◇
中国临床药理学与治疗学
中国药理学会主办
CN 34-1206/R,ISSN 1009-2501
http://www.cjcpt.com
2012Aug;17(8):860-867
2012-02-03收稿 2012-05-10修回
陈良金,男,副教授,研究方向:中医内科基础与临床。
Tel:15572761106 E-mail:cljcy@126.com
石孟琼,通信作者,女,实验师,研究方向:心脑血管药理。
Tel:13687220902 E-mail:shmq0212@126.com
珠子参总皂苷对H2O2诱导
新生大鼠心肌细胞凋亡的抑制作用
陈良金1,石孟琼1,贺海波2,熊兴军3,卢训丛1
1三峡大学医学院,宜昌443002,湖北;2三峡大学天然产物研究与利用湖北省
重点实验室,宜昌443002,湖北;3长阳县中医院,长阳443006,湖北
摘要 目的:观察珠子参总皂苷对 H2O2 诱导新
生大鼠心肌细胞凋亡的抑制作用,并探讨其作用
机制。方法:Wistar乳鼠心肌细胞原代培养,用
H2O2 建立氧化应激损伤模型,然后用珠子参总
皂苷(100,200μg/mL)孵育24h后,MTT法检
测珠子参总皂苷对细胞活力的影响,流式细胞仪
和 Hoechst33258染色检测珠子参总皂苷对氧化
应激诱导细胞凋亡及胞内ROS含量的影响,比色
法测定心肌细胞Caspase-3、Caspase-9的活性,荧
光定量PCR测定心肌细胞Bcl-2和Bax mRNA
表达,并计算Bcl-2与Bax的比值。结果:珠子参
总皂苷(100,200μg/mL)能显著改善心肌细胞
活性,有效保护线粒体膜电位的稳定,抑制心肌细
胞凋亡和改善细胞形态,降低细胞内活性氧
(ROS)含量;下调Bax mRNA 表达,上调Bcl-2
mRNA表达及Bcl-2与Bax的比值;降低 H2O2
所致新生大鼠心肌细胞中 Caspase-3、Caspase-9
的活性。结论:珠子参总皂苷对 H2O2 诱导心肌
细胞凋亡有显著的抑制作用,其机制可能与其稳
定心肌细胞膜、清除ROS及调节心肌细胞Bcl-2、
Bax和Caspase-3、Caspase-9表达有关。
关键词 珠子参总皂苷;H2O2;心肌细胞;凋亡;
Bcl-2;Bax;Caspase-3;Caspase-9
中图分类号:R965.2
文献标识码:A
文 章 编 号:1009-2501(2012)08-0860-08
活性氧(reactive oxygen species,ROS)是心
脏疾病发生及诱导心肌细胞死亡的主要因素之
一。正常情况下,它在心肌细胞内氧化代谢中产
生和消除是平衡的,但是在氧化应激情况下会导
致ROS在心肌细胞内过量聚集,引起细胞毒性。
研究表明它的大量堆积可造成心肌细胞能量代谢
障碍,最终导致细胞凋亡和坏死,当前其已成为心
肌缺血损伤的重要原因之一[1]。因此,清除心肌
组织内过量产生和蓄积的ROS,抑制心肌细胞凋
亡将是有效防治心肌缺血性损伤的重要手段。珠
子参(Panacis majoris rhizoma)是土家族、苗族民
间传统习用的益气活血中药,具补肺养阴、祛瘀止
痛、止血之功,主要用于气阴两虚、烦热口渴,虚劳
咳嗽、跌扑损伤、关节痹痛、咳血、吐血、衄血、崩
漏、外伤出血、心悸等症[2-3]。实验研究表明,其
主要成分珠子参总皂苷对心肌缺血再灌损伤具有
较好的保护作用[4],我们在前期研究中也观察到
珠子参总皂苷对小鼠局灶性脑缺血损伤有明显保
护作用,并初步证实了抗氧化损伤可能是其作用
机制之一[5],但珠子参总皂苷对氧化应激引起离
体心肌细胞凋亡的影响未见报道。本实验利用
H2O2 诱导乳大鼠心肌细胞损伤模型,观察珠子
参总皂苷是否对 H2O2 诱导的新生大鼠心肌细胞
凋亡具有抑制作用,并探讨其可能的作用机制。
·068·
1 材料与方法
1.1 药品 珠子参总皂苷的制备参见我们前期
发表的文章[5],其为淡黄色粉末,实验时以培养液
配制成所需浓度,经过0.22μm 孔径滤膜过滤除
菌后使用。
1.2 动物 出生1~3d的 Wistar大鼠,SPF
级,雌雄不拘,由湖北省疾病控制中心实验动物中
心提供,合格证:SCXK(鄂)2008-0005。
1.3 试剂与仪器 H2O2(国药集团);DMEM 培
养基、胎牛血清、胰蛋白酶(Gibco);DMSO、四氮
唑蓝(MTT)、2'-7'-二氯荧光乙酰乙酸盐(DCFH-
DA)和线粒体膜电位检测试剂盒(JC-1)(Sigma);
Hoechst33258(凯基生物);Annexin V/FITC(晶
美生物);Caspase-3及Caspase-9活性检测试剂
盒(碧云天);Bcl-2、Bax以及 GAPDH 引物合成
(上海生工);Trizol裂解液(Invitrogene);Prime
ScriptTM RT reagent Kit、Taq DNA聚合酶 (大
连宝生物);其他试剂均为市售分析纯。GENios
酶标仪(瑞士 Tecan公司);EPICS XL-4流式细
胞仪、荧光检测仪(美国Backman Coulter公司);
CKX41倒置显微镜(日本,奥林巴斯);NU-4750E
型CO2 培养箱(Nu Aire公司);SW-4T-2F洁净
工作台(上海博讯实业有限公司医疗设备厂);
LS-B50L立式压力蒸汽灭菌器(上海华线医用核
子仪器有限公司);CDF-3220多元定量PCR仪
(美国 MJ Research公司);Gene Genius凝胶分
析系统(英国SYNGNE公司)。
1.4 新生大鼠心肌细胞的分离培养[6] 取1~
3d龄的 Wistar大鼠乳鼠,在无菌条件下取出心
脏,剪刀破碎至1mm3大小,加入约心脏10倍体
积用的胰酶和胶原酶的混合酶(胰酶终浓度为
0.08%,胶原酶终浓度是0.01%)分次消化,收集
消化液至离心管中,加入15%胎牛血清终止消
化,1000r/min离心5min,弃上清,细胞沉淀用
含15%血清的DMEM 培养液重悬,接种于培养
瓶中,在CO2 孵箱中(37℃,95%空气-5% CO2
条件下)培养1.5h,用差速贴壁法出除成纤维细
胞等非心肌细胞。心肌细胞悬液计数,用含15%
胎牛血清的DMEM 培养液稀释至所需的细胞密
度,接种到96孔培养板(细胞密度5×104 个/
mL,每孔100μL)或6孔培养板(细胞密度3×
105 个/mL,每 孔 1 mL)中,于 CO2 孵 箱 中
(37℃,95%空气-5%CO2 条件)培养。隔日更换
培养基,生长3~4d,待细胞融合贴满瓶底,且有
节律同步搏动时,然后进行分组和给药实验。
1.5 珠子参总皂苷对新生大鼠心肌细胞的影
响[7] 为了考查珠子参总皂苷对新生大鼠心肌细
胞活性是否存在潜在的影响,我们先进行珠子参
总皂苷对新生大鼠心肌细胞活力的潜在影响测
试。取在96孔板中培养的原代心肌细胞,贴壁
后,分别加入不同浓度(0、25、50、100、250、500、
1000μg/mL)珠子参总皂苷,孵育24h,测定细
胞活力。具体方法如下:孵育完毕后,向各孔细胞
中加入20μL MTT(5g/L),继续培养4h,弃去
培养液,加入150μL DMSO溶液,振荡10min,
然后用酶标仪测定570nm 的光密度值,按下式
求得心肌细胞的存活率:存活率=(各组细胞光密
度值/正常组细胞光密度值)×100%。
1.6 珠子参总皂苷对 H2O2 致氧化损伤的影响
1.6.1 分组及给药 新生大鼠心肌细胞培养参
照文献[7]的方法,并略加改进。将接种于96孔或
6孔培养板中的各组心肌细胞采用完全随机设计
分组法分为正常组、模型组、珠子参总皂苷低和高
剂量组;模型组和珠子参总皂苷治疗组先用
500μmol/L的 H2O2 浓度作用2h,更换培养液
后,珠子参总皂苷低、高剂量分别加入 100、
200μg/mL珠子参总皂苷,孵育24h,然后进行
相应的实验。
1.6.2 心肌细胞存活率 接种于96孔培养板中
的各组心肌细胞经过相应处理后,进行心肌细胞
活力测定,具体方法检测方法同“1.5”。
1.6.3 心肌细胞内ROS含量检测[8] 各组心肌
细胞经过相应处理后,收集细胞,用0.02%ED-
TA消化细胞,用无血清培养基重悬,终浓度
10μmol/L的DCFH-DA 37℃ 孵育1h,用PBS
清洗2遍,流式细胞仪(激发光波长488nm)检
测,每个样品收集1×104 个细胞,用Cel Quest
软件分析结果。
1.6.4 心肌细胞凋亡形态观察[9] 将上述各组
处理过的细胞用0.125%胰蛋白酶消化后收集,
用37℃ 的PBS冲洗24孔板2次,加入1mL的
4%的多聚甲醛于4℃ 固定10min,自然晾干,
每孔加入终浓度为10mg/L的 Hoechst33258染
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液100μL,室温避光染色10min,水冲净晾干,
激发光波长450nm,发射光波长490nm。荧光
显微镜下观察凋亡细胞形态学变化。
1.6.5 细胞凋亡检测[10] 各组心肌细胞经过相
应处理后,收集细胞,用0.02%EDTA消化,制备
细胞悬液,1000r/min 离心 7min,弃上清液,
PBS洗涤,收集细胞,在冰水浴中进行下述操作:
用Annexin V-FITC试剂盒中binding buffer悬
浮细胞,调节细胞浓度为1×106/mL,取100μL
上述细胞,分别按试剂盒说明加入PI和Annexin
Ⅴ-FITC,混匀后室温避光15min后,用流式细
胞仪检测细胞凋亡。
1.6.6 线粒体功能检测[11] 各组心肌细胞经过
相应 处 理 后,用 0.125% 胰 蛋 白 酶 消 化 后,
1000r/min离心10min,弃上清液,PBS洗涤,收
集细胞,用不含血清的DMEM 培养基悬浮细胞,
调节细胞浓度为1×106/mL,取100μL 上述细
胞,加入JC-1(1mg/L)10μL,37℃ 避光孵育
10min,上机检测。
1.6.7 Caspase活性检测 各组心肌细胞经过
相应处理后,用0.125%胰蛋白酶消化后,离心
(600 g,4℃,5min),吸除上清,PBS洗1次,收
集细胞每份样品加入50μL细胞裂解液,冰上孵
育15min,离心(20000 g,4℃,15min),进行
Caspase活性检测。具体方法按照试剂盒说明书
进行。按下式求得Caspase活性:Caspase活性=
OD405nm/OD595nm。
1.6.8 荧光定量PCR测定Bcl-2、Bax mRNA表
达 用Trizol试剂提取心肌细胞总RNA,按说明
书操作,整个过程在冰浴中进行;总RNA经紫外
分光光度计测定260nm 与280nm 处光密度比
值 (A260/A280)为1.8~2.0。采用逆转录酶及随
机引物进行逆转录反应,严格按逆转录试剂盒说
明书操作实时荧光定量PCR引物表达序列信息
来源于 Gene Bank,使用Primer premier 5.0软
件设计,由上海生工生物工程有限公司合成Bcl-2
序 列 (202bp):上 游 引 物 CGACTTTG-
CAGAGATGTCCA,下 游 引 物 CATCCACA-
GAGCGATGTTGT;Bax序列(207bp):上游引
物 CTGCAGAGGATGATTGCTGA,下游引物
GAGGAAGTCCAGTGTCCAGC;GAPDH 序列
(343bp):上 游 引 物 GCTGGGGCT CACCT-
GAAGG ;下游引物 GGATGACCTTGCCCA-
CAGCC采用高温启动法进行实时荧光定量PCR
循环,扩增的每个标准均设内参对照,每个指标均
有正常组作对照进行PCR循环扩增,循环条件:
95℃ 预变性 30s、95℃ 变性 5s、60℃ 退火
30s、72℃ 延伸40s,扩增40次。实时荧光定量
PCR仪汇出扩增曲线图,从而进行结果分析,根
据公式 ΔΔCt=(Ct,target-Ct,actin)TimeX- (
Ct,target-Ct,actin)Time0,应用公式2-ΔΔCt计算
并分析各基因表达的差异性。
1.7 统计学分析 每项试验至少重复3次,所有
实验结果的数据以均数±标准差(x±s)表示,所
有数据分析在SPSS 13.0统计软件包上进行单因
素方差分析及LSD-t检验,P<0.05认为差异有
统计学意义。
2 结果
2.1 珠子参总皂苷对新生大鼠心肌细胞活性的
影响 通过用 MTT法进行珠子参总皂苷对新生
大鼠心肌细胞活性分析,我们发现在珠子参总皂
苷在25~1000μg/mL浓度范围内孵育24h,对
新生大鼠心肌细胞没有明显的细胞毒性,相反,珠
子参总皂苷还可以提高心肌细胞细胞活力,与珠
子参总皂苷0μg/mL组比较具有统计学差异(P
<0.05,P<0.01),而且随着剂量的增加,其作用
增强(图1)。
图1 珠子参总皂苷对新生大鼠心肌细胞活性的影响(x
±s,n=3)
与珠子参总皂苷0μg/mL组相比较b P<0.05,c P<0.01
2.2 珠子参总皂苷对 H2O2 致心肌细胞氧化应
激损伤的影响 模型组心肌细胞经 H2O2 氧化损
伤后细胞活性明显下降,与正常组比较极具有统
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计学差异(P<0.01);用珠子参总皂苷(100,
200μg/mL)处理后,心肌细胞活性分别提高了
44.2%和51.6%,与模型组比较极具有统计学差
异(P<0.01,图2)。
图2 珠子参总皂苷对H2O2 致心肌细胞损伤细胞活性的
影响(x±s,n=5)
与正常组比较c P<0.01;与模型组比较f P<0.01
2.3 珠子参总皂苷对 H2O2 致心肌细胞氧化应
激损伤细胞内 ROS的影响 心肌细胞经 H2O2
处理后,模型组细胞内的ROS急剧增加(平均荧
光强度为56.32±3.17),与正常组(平均荧光强
度为11.57±2.82)比较,极具有统计学差异(P<
0.01);用珠子参总皂苷(100,200μg/mL)处理
后,平均荧光强度分别降为30.16±2.19、27.39±
1.96,与模型组比较极具有统计学差异(P<
0.01)。实验结果表明珠子参总皂苷具有清除
ROS的能力。
2.4 珠子参总皂苷对 H2O2 致心肌细胞氧化应
激损伤细胞形态的影响 各组心肌细胞经 Ho-
echst 33258染色之后,于荧光显微镜下观察,正
常组细胞核为细胞核呈弥散均匀的蓝色荧光,形
状规则的椭圆形核;模型组细胞核或细胞质皱缩
成致密的颗粒块状,蓝色荧光比正常细胞要强,
见到凋亡细胞中分散着较多的 DNA 荧光碎片。
用珠子参总皂苷(100,200μg/mL)处理后凋亡细
胞数量少于模型组,大部分细胞染色质呈弥漫均
匀低强度荧光,核固缩细胞数目显著减少,染色质
边聚和核碎片减少,大多数细胞核形态趋于正常
(图3)。研究证实珠子参总皂苷对 H2O2 致心肌
细胞氧化应激损伤较好的保护作用。
 
图3 珠子参总皂苷对H2O2 致心肌细胞氧化应激损伤细胞形态的影响
A:正常组;B:模型组;C:珠子参总皂苷低剂量组;D:珠子参总皂苷高剂量组
2.5 珠子参总皂苷对 H2O2 致心肌细胞凋亡的
影响 由表1可知:模型组心肌细胞凋亡率显著
高于正常组,实验结果表明 H2O2 致心肌细胞细
胞凋亡发生;经珠子参总皂苷(100,200μg/mL)
处理后,观察到珠子参总皂苷能有效地减少细胞
凋亡,与模型组比较极具有统计学差异(P<
0.01)。
2.6 珠子参总皂苷对 H2O2 致心肌细胞氧化应
激损伤线粒体膜电位的影响 如表1所示,H2O2
致心肌细胞氧化应激损伤线粒体膜电位快速下
降,与正常组比较极具有统计学差异(P<0.01)。
珠子参总皂苷处理组(100,200μg/mL)心肌细胞
线粒体膜电位均有改善作用,其中以珠子参总皂
苷高剂量疗效更为显著,与模型组比较极具有统
计学差异(P<0.01)。提示珠子参总皂苷具有保
护线粒体,减轻过 H2O2 对心肌细胞线粒体的毒
性作用。
2.7 珠子参总皂苷对 H2O2 致心肌细胞氧化应
激损伤细胞Caspase-3、Caspase-9活性的影响 
由表 2 可知,模型组心肌细胞中 Caspase-3、
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Caspase-9活性分别升高了82.3%和85.0%,与
正常组比较具有统计学差异(P<0.01)。用珠子
参总皂苷(100,200μg/mL)处理后可使心肌细胞
中Caspase-3、Caspase-9活性分别降低16.2%、
29.6%和11.9%、21.0%,与模型组比较,除珠子
参总皂苷低剂量组Caspase-9无统计学差异外,
其它均具有统计学差异(P<0.05,P<0.01),其
中以珠子参总皂苷高剂量更为显著。
表1 珠子参总皂苷对H2O2 致心肌细胞凋亡率、线粒体膜电位的影响(x±s,n=6)
组别 剂量(μg/mL) 凋亡率(%) 膜电位(mV)
正常组        - 4.7±1.2  173±13
模型组        - 32.3±2.5c  117±12c
珠子参总皂苷低剂量组 100  21.6±1.6f  134±10
珠子参总皂苷高剂量组 200  20.0±1.0f  145±12f
与正常组相比较c P<0.01;与模型组比较f P<0.01
表2 珠子参总皂苷对H2O2 致心肌细胞氧化应激损伤细胞Caspase-3、Caspase-9活性的影响(x±s,n=6)
组别 剂量(μg/mL) Caspase-3(U/mL) Caspase-9(U/mL)
正常组        - 57±6  69±8
模型组        - 105±9c  128±11c
珠子参总皂苷低剂量组 100  88±9e  113±9
珠子参总皂苷高剂量组 200  74±7f  101±9f
与正常组相比较c P<0.01;与模型组比较e P<0.05,f P<0.01
2.8 珠子参总皂苷对 H2O2 致心肌细胞氧化应
激损伤细胞Bcl-2、Bax mRNA表达的影响 如表
3和图4所示,模型组心肌细胞中Bcl-2mRNA
表达量降低,Bax mRNA表达量增加,Bcl-2/Bax
的比值降低,与正常组比较极具有统计学差异(P
<0.01)。用珠子参总皂苷(100,200μg/mL)处
理后可使心肌细胞中Bcl-2mRNA表达量升高,
Bax mRNA表达量降低,Bcl-2/Bax的比值升高,
与模型组比较具有统计学差异(P<0.05,P<
0.01),其中以珠子参总皂苷高剂量更为显著。
表3 珠子参总皂苷对H2O2 致心肌细胞氧化应激损伤细胞Bcl-2、Bax mRNA表达的影响(x±s,n=6)
组别 剂量(μg/mL) Bcl-2/GAPDH  Bax/GAPDH  Bcl-2/Bax
正常组        - 0.79±0.05  0.62±0.04  1.27±0.02
模型组        - 0.51±0.03c  10.93±0.03c  0.55±0.02c
珠子参总皂苷低剂量组 100  0.62±0.04e  0.80±0.05e  0.78±0.06f
珠子参总皂苷高剂量组 200  0.70±0.03f  0.74±0.02f  0.97±0.07f
与正常组相比较c P<0.01;与模型组比较e P<0.05,f P<0.01
图4 珠子参总皂苷对H2O2 致心肌细胞氧化应激损伤细
胞Bcl-2、Bax mRNA表达的影响
3 讨论
近年来,ROS对心脏的损伤作用已引起广泛
重视。在正常情况下,心肌细胞在正常氧化代谢
中会产生少量的 ROS,通过细胞内的防御机制
(内源性ROS清除酶类和抗氧化剂)以维持ROS
产生和清除的平衡,但在一些损伤因素(如缺血缺
氧或炎症等)的作用下,细胞内氧化代谢物增加,
或细胞中抗氧化保护机制不足时,ROS产生堆积
会对细胞产生毒性,引起细胞死亡。H2O2是体内
氧化还原代谢的中间产物,同时又是一种ROS,
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当它在体内积累到一定程度可对机体细胞产生损
伤作用。H2O2 不仅能直接氧化细胞膜上的脂质
及蛋白,而且能自由穿过细胞膜和细胞内铁离子
反应生成OH-等活性更强的自由基,导致系列反
应。目前 H2O2 可以诱导心肌细胞凋亡已为众多
的实验所证明[12]。因此,本实验利用过 H2O2 诱
导乳大鼠心肌细胞损伤模型,研究珠子参总皂苷
对H2O2 致心肌细胞凋亡的抑制作用,在此基础
上探讨并探讨其可能的作用机制。
珠子参具有较广泛的药理作用,对消化系统、
中枢神经系统、心脑血管系统、免疫系统等具有广
泛的药理作用[13-14]。我们前期研究发现珠子参
及其主要成分珠子参总皂苷对心脑缺血性损伤具
有较好的保护作用,并初步证实了抗氧化损伤可
能是其作用机制之一[3,5]。本实验将在此基础上
进一步证实其对心肌细胞凋亡的抑制作用及可能
的作用机制,实验结果表明,珠子参总皂苷对
H2O2 致心肌细胞凋亡具有显著的改善作用,能
有效地清除心肌细胞在 H2O2 攻击下过量产生的
ROS,提高心肌细胞活性;在受损的心肌细胞形态
学分析中,我们发现珠子参总皂苷能显著改善心
肌细胞折光率,减少胞浆空泡形成,抑制细胞脱
落、悬浮、溶解坏死的发生,显示出其对 H2O2 所
致心肌细胞凋亡具有较好的抑制作用。
研究表明,ROS与心肌细胞凋亡密切相关。
心肌细胞内过量产生的ROS能够损害线粒体膜
并且减低线粒体膜电势,改变线粒体膜的通透性,
进而通过线粒体信号转导通路、P53通路及 NF-
κB通路引起心肌细胞凋亡[15],而Bcl-2家族参与
被认为是心肌细胞凋亡发生的主要机制[16]。Bcl-
2家族被分为抗凋亡蛋白(Bcl-2、BCI-XL、BCL-W
等)和促凋亡蛋白(Bax、Bad、Bak等),促凋亡蛋
白转位到线粒体膜上,促进线粒体内的凋亡蛋白
释放。抗凋亡蛋白与促凋亡蛋白结合,阻止其促
凋亡作用。在Bcl-2家族中,Bcl-2和Bax是其最
重要的成员,其比值直接决定了细胞在接受凋亡
信号的发展方向,Bcl-2占优势则存活,Bax占优
势则死亡。正常情况下,心肌细胞中有一定量的
Bcl-2和Bax表达,当心肌过氧化损伤时Bcl-2蛋
白表达显著下调,而Bax蛋白表达显著上调,同
时细胞凋亡率增加还与Bcl-2/Bax的比值呈负相
关[10,17]。本研究用流式细胞仪和荧光定量PCR
分别检测了心肌细胞在 H2O2 致氧化应激损伤后
线粒体膜电位和Bcl-2、Bax mRNA表达,结果发
现模型组线粒体膜电位明显下降,用珠子参总皂
苷处理后线粒体膜电位显著回升。模型组的Bax
mRNA表达水平明显增加,Bcl-2mRNA表达和
Bcl-2与Bax的比值显著降低;而珠子参总皂苷
则可显著下调Bax mRNA表达,上调Bcl-2mR-
NA表达及Bcl-2与Bax的比值。实验提示珠子
参总皂苷对氧化损伤心肌细胞凋亡的抑制作用可
能与恢复线粒体膜电位及影响Bcl-2和Bax表达
有关。
Bcl-2家族在细胞凋亡的线粒体信号通路上
游过程发挥作用,而Caspase蛋白激酶家族则在
下游发挥作用,在这一过程中有多种促凋亡和抗
凋亡的蛋白相互作用,两者失调导致细胞凋亡。
Bcl-2蛋白主要在凋亡的上游过程发挥作用,它与
Bax蛋白结合形成异二聚体,抑制了 Bax蛋白的
促凋亡作用;同时Bcl-2蛋白亦可直接或间接抑
制线粒体膜渗透性转移孔道复合物的开放,阻止
后继的细胞色素C、凋亡诱导因子及其他促凋亡
蛋白酶因子-1、Caspase-9结合成三元复合物,阻
止Caspase-9激活,两者均使 Caspase-3不能激
活,因而细胞凋亡受到抑制[18]。有研究表明[19]氧
化应激可激活线粒体信号通路,而线粒体依赖的
Caspases激活途径依赖于线粒体细胞色素C释
放到胞浆,触发Caspases的级联效应,首先激活
Caspase-9,然后它进一步激活Caspase-3启动线
粒体信号通而引发细胞凋亡[20]。因此激活
Caspase-9及Caspase-3是细胞凋亡的必经之路。
本实验结果显示,H2O2 作用后,心肌细胞中
Caspase-9及Caspase-3的活性显著升高,证明氧
化应激不但可激活线粒体上游Bcl-2家族信号通
路,而且还可激活下游的Caspase蛋白激酶家族
信号通路。用珠子参总皂苷处理后Caspase-9及
Caspase-3的活性显著降低。
综上所述,珠子参总皂苷对 H2O2 致新生大
鼠心肌细胞凋亡具有抑制作用。它通过抑制心肌
细胞内ROS的产生与聚集,恢复线粒体正常膜电
位,下调Bax mRNA表达,上调Bcl-2mRNA表
达和Bcl-2与Bax的比值以及降低Caspase-9及
Caspase-3的活性,进而提高心肌细胞存活率,抑
制心肌细胞凋亡而发挥对氧化应激损伤心肌细胞
·568·中国临床药理学与治疗学2012Aug;17(8)
的保护作用。本研究为珠子参总皂苷防治心血管
疾病的临床应用提供一定的理论基础和实验依
据。
参 考 文 献
[1] 徐媛青,贺海波,张长城,等.Nrf2/ARE通路及其
在缺血性心肌损伤中的作用[J].中国临床药理学与
治疗学,2011,16(6):695-698.
[2] 国家药典委员会.中国药典(一部)[M].北京:中
国医药科技出版社,2010:254-255.
[3] Chen T,Hu YQ,Deng LR,et al.Effects of poly-
saccharides extracted from zhu zi shen (rhizoma
panacis majoris)on oxidative stress and hemody-
namics in rats with adriamycin-induced chronic heart
failure[J].J Tradit Chin Med,2011,31(3):235-
240.
[4] 韩红,李麟仙,王琼仙,等.珠子参总皂苷、三七总
皂苷及绞股兰总皂苷对心肌缺血再灌损伤的保护
作用[J].中国病理生理杂志,1994,10(2):128-
133.
[5] 金家红,贺海波,石孟琼,等.珠子参总皂苷对小
鼠局灶性脑缺血的保护作用[J].第三军医大学学
报,2011,33(24):2631-2633.
[6] 何欢,侯莉,黄璜,等.冠欣舒胶囊对大鼠心肌细
胞缺氧/复氧损伤保护作用的拆方实验研究[J].中
国临床药理学与治疗学,2011,16(12):1367-
1373.
[7] 黄宜生,潘芸芸,贾钰华.酸枣仁皂苷 A抗过氧化
氢诱导心肌细胞凋亡的作用及机制研究[J].辽宁
中医杂志,2011,38(3):454-456.
[8] 李文娟,聂少平,余强,等.黑灵芝多糖对氧化应
激所致大鼠乳鼠心肌细胞损伤的影响[J].食品科
学,2010,31(11):221-225.
[9] 李晶莹,赵明智,宋佳隆,等.蒺藜皂苷对过氧化
氢损伤心肌细胞的保护作用[J].广东化工,2011,
38(8):31-32.
[10]罗萍,张瑞芳,杜松,等.普罗布考对过氧化氢诱
导新生大鼠心肌细胞凋亡及肿瘤坏死因子-α生成
的影响[J].中华实用诊断与治疗杂志,2011,25
(9):853-856.
[11]刘颖,纪超.附子多糖后处理对缺氧/复氧乳鼠心
肌细胞锰超氧化物歧化酶表达的影响[J].中药药
理与临床,2011,27(5):53-56.
[12]He HB,Xu J,Xu YQ,et al.Cardioprotective
effects of saponins from Panax japonicus on acute
myocardial ischemia against oxidative stress-trig-
gered damage and cardiac cel death in rats[J].J
Ethnopharmacol,2012,140(1).73-82.
[13]Chan HH,Sun HD,Reddy MVB,et al.Potentα-
glucosidase inhibitors from the roots of Panax ja-
ponicus C.A.Meyer var.major[J].Phytochemis-
try,2010,71(11/12):1360-1364.
[14]赵仁,赵毅,李东明.珠子参研究进展[J].中国现
代中药,2008,10(7):3-6.
[15]Long X,Goldenthal MJ,Marin-Garcia J.Oxidative
stress enhances phosphorylation of p53in neonatal
rat cardiomyocytes[J].Mol Cel Biochem,2007,
303(1/2):167-174.
[16] Mattson MP,Kroemer G.Mitochondria in cel
death:novel targets for neuroprotection and cardio-
protection[J].Trends Mol Med,2003,9(5):196
-205.
[17]罗萍,张瑞芳,杜松,等.普罗布考对过氧化氢诱
导新生大鼠心肌细胞凋亡及肿瘤坏死因子-α生成
的影响[J].中华实用诊断与治疗杂志,2011,25
(9):853-856.
[18]周晓慧,韩亚玲,杨鹤梅,等.黄芩茎叶总黄酮对
H2O2 诱导的心肌细胞凋亡相关基因 Bcl-2及Bax
表达的影响[J].广东医学,2007,28(10):1590-
1591
[19]Cande C,Cohen I,Daugas E,et al.Apoptosis-in-
ducing factor(AIF):a novel caspase-independent
death effector released from mitochondria[J].Bio
chimie,2002,84(2/3):215-222.
[20]黄宜生,潘芸芸,贾钰华.酸枣仁皂苷 A抗过氧化
氢诱导心肌细胞凋亡的作用及机制研究[J].辽宁
中医杂志,2011,38(3):454-456.
·668· Chin J Clin Pharmacol Ther 2012Aug;17(8)
Protective effects of total saponin from Panacis majoris rhizoma a-
gainst H2O2-induced apoptosis in neonatal rat cardiomyocytes
CHEN Liang-jin1,SHI Meng-qiong1,HE Hai-bo2,XIONG Xing-jun3,LU Xun-cong1
1 Medical Science College,China Three Gorges University,Yichang 443002,Hubei,China;2 Hubei
Key Laboratory of Natural Products Research and Development,China Three Gorges University,
Yichang 443002,Hubei,China;3 Department of Pharmacy,Traditional Chinese Medicine Clinical
Hospital,Changyang 443500,Hubei,China
ABSTRACT AIM:To observe the inhibition
effects of total saponin from Panacis majoris rhi-
zoma on myocardial apoptosis of neonatal rat in-
duced by H2O2and its mechanism.METHODS:
Oxidative stress-induced injury model was estab-
lished with H2O2.Effects of total saponin from
Panacis majoris rhizome(100,200μg/mL)on
viability of cels and oxidative stress-induced ap-
optosis of cels were detected by MTT assay;
Cel apoptosis rate and reactive oxygen species
(ROS)content were detected by flow cytometry,
the apoptosis cels morphous were observed by
hoechst33258through fluorescence microscope;
The levels of Caspase-3,9were measured by de-
tecting kits;Real-time polymerase chain reaction
was applied to detect the mRNA expressions of
Bcl-2 and Bax apoptosis-related genes.RE-
SULTS:Total saponin from Panacis majoris rhi-
zome(100,200μg/mL)might significantly in-
crease cel viability and mitochondrial membrane
potential,inhibit myocardial apoptosis,improve
cel morphous,decrease intra-celular ROS con-
tents,down-regulate mRNA expression of Bax,
up-regulate the mRNA expression of Bcl-2and
Bcl-2/Bax ratio,decrease activities of Caspase-
3,9,and with the dose of total saponin increas-
ing,the aforesaid improvement became more and
more strong.CONCLUSION: Total saponin
from Panacis majoris rhizome could effectively
inhibit myocardial apoptosis of neonatal rat in-
duced by H2O2.The mechanism may be related
to stabilizing mitochondrial membrane potential,
scavenging of ROS,regulating the Caspase-3,
9,Bcl-2and Bax expression levels.
KEY WORDS Total saponin from Panacis ma-
joris rhizome;H2O2;Cardiomyocytes;apopto-
sis;Bcl-2;Bax;Caspase-3;Caspase-9
本文编辑:
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储冀汝
读者·作者·编者
2012年本刊一些常用词汇可直接用缩写
 磷酸盐缓冲液(PBS)
 核因子-κB(NF-κB)
 酶联免疫吸附测定(ELISA)
 一氧化氮(NO)
 总胆固醇(TC)
 甘油三酯(TG)
 丙氨酸转氨酶(ALT)
 天冬氨酸转氨酶(AST)
尿素氮(BUN)
肌酐(Cr)
干扰素(IFN)
白细胞介素(IL)
肿瘤坏死因子(TNF)
二甲基亚砜(DMSO)
四唑盐比色法 (MTT法)
舒张压(DBP)
收缩压(SBP)
曲线下面积(AUC)
抑制浓度(IC50)
小抑菌浓度(MIC)
半数致死量(LD50)
体重指数(BMI)
糖化血红蛋白(Hbalc)
·768·中国临床药理学与治疗学2012Aug;17(8)