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A method of extracting flavonoids from the mung bean hull

绿豆皮中黄酮类化合物提取工艺



全 文 :Jan.2008
·60·
生物加工过程
ChineseJournalofBioprocessEngineering
第6卷第1期
2008年1月
绿豆皮中黄酮类化合物提取工艺
陈婷婷,徐 娟,赵瑶,金 苗,屠春燕
(南京工业大学 制药与生命科学学院,南京210009)
摘要:研究了绿豆总黄酮的提取工艺。通过对固液比、乙醇体积分数、提取温度与提取时间的单因素实验确定水
平点,设计4因素3水平实验,选用k(34)正交表,优选绿豆总黄酮的最佳提取工艺为固液比1:50,妒(乙醇)为
40%,提取温度70℃,提取时间120min。在此基础上得到绿豆皮中总黄酮的提取量为27.57ms/g,且5次平行的
相对标准偏差为0.75%,总黄酮的平均回收率达97.5%。
关键词:提取;黄酮;绿豆皮
中图分类号:Q946.919 文献标识码:A 文章编号:1672—3678(2008)Ol一0060一05
Amethodofextractingflavonoidsfromthemungbeanhull
CHENTing-ting,XUJuan,ZHAOJun,JINMiao,TUChun—yan
(CollegeofLifeScienceandPharmaceuticalEnsineering,NanjingUniversityofTechnology,Nanjing210009,China)
Abstract:Theoptimumethodofextractngflavonoidsfrommungbeanhullwaftinvestigatedbyusingfac—
torialndorthogonalexperimentaldesigns.Anb(34)experimentinvolvedmaterial—liquidratio,ethanal
concentration,extractingt mperature,andextr ctingmewascarriedout.Theresultsshowedthatat
conditionsatmaterial—liquidratioof1:50,ethanolconcentrationof40%,extractingtemperatureof70
oC,andextractingt me120min,theoptimalextractionquantityof27.57mg/gwasobtained..
Keywords:extracting;flavonoids;mungbeanhull
绿豆(Mungbean),又名青小豆,录豆,植豆,为豆
科草本植物绿豆的成熟种子。中医认为其性味甘寒,
有清凉解毒,止泻利尿,消肿下气,除烦热和滋补强身
的作用。绿豆皮中含有黄酮,鞣质,皂甙,生物碱,强
心甙,蒽醌类化合物等具有生物活性的化学成分。其
中黄酮类成分具有抗氧化,增强免疫力,降血脂、血糖
等功效,成为近年来的研究热点u。2J。
国内外提取黄酮的方法很多,包括水煮法、有
机溶剂提取法、酶解法、超临界萃取法、超声波提取
法、微波提取法、树脂吸附法、高效液相色谱法
等[3。6]。其中,有机溶剂提取法是最传统的黄酮提
取方法,具有工艺成熟、简单,成本低廉等优点,因
此,选用有机溶剂提取法,通过单因素及正交试验
确定了绿豆皮中黄酮类化合物的最佳提取工艺。
1材料与方法
1.1材料与试剂
1.1.1材料
绿豆皮干粉(实验室制取);芦丁(国药集团化
学试剂有限公司)。
1.1.2试剂
硝酸铝(上海振兴试剂厂);亚硝酸钠(上海新
宝精细化工厂);NaOH(汕头市西陇化工厂);无水
收稿日期:2006-12-27
作者简介:陈婷婷(1982一),女,江苏启东人,硕士研究生,研究方向:生物化工。
联系人:屠春燕,女,副教授,E-mail:toy7341@126.toni
万方数据
2008年1月 陈婷婷等:绿豆皮中黄酮类化合物提取工艺 ·6l
乙醇(南京化学试剂有限公司);镁粉(国药集团化
学试剂有限公司);盐酸(南京峰展精细化工厂)。
以上试剂除特殊说明外均为分析纯。
1.2试验仪器设备
HH-S恒温水浴锅(金坛市正基仪器有限公
司);SHB一11I循环水式多用真空泵(郑州长城科工贸
有限公司);DU-650紫外可见光分光光度计(美国
Beckman公司);电热干燥箱(中国重庆银河试验仪
器有限公司);ⅡL型九阳食品粉碎机(山东九阳小
家电有限公司)。
1.3方法
1.3.1材料的处理
将从绿豆上剥离下的种皮,放入50℃的烘箱中
恒温干燥至种皮变脆,取出后用粉碎机粉碎,混匀,
放入干燥器中备用。
1.3.2绿豆皮黄酮提取液的制备
用电子天平准确称取1g绿豆皮粉末,置于
250mL圆底烧瓶中,用一定体积和浓度的乙醇为溶
剂,在一定温度与时间下,加热提取。收集提取液,
真空抽滤,向滤液中加入适量硅藻土,于常温下搅
拌2—3rain,静置5min,将蛋白多糖等大分子物质
吸附,而后进行真空抽滤,滤液倒人分液漏斗中,用
石油醚分3次萃取,将色素、油脂等脂溶性物质萃取
出去,取下层清液收集合并,待测。
1.3.3绿豆皮中黄酮类物质定性实验
使用盐酸-镁粉还原反应进行定性分析,对绿豆
皮的提取物是否为黄酮类物质进行初步鉴别。取
绿豆皮的乙醇提取液置于试管中,分别加少量的盐
酸及镁粉,于试管中加热振摇片刻,然后观察提取
液的颜色变化。多数黄酮、黄酮醇、二氢黄酮及二
氢黄酮醇类化合物显橙红至紫红色,少数显紫至蓝
色,当B环上有一oH或一OcH,取代时,呈现的颜
色随之加深,其他黄酮类化合物,除少数异黄酮外,
都不显色H1。
1.3.4提取液中总黄酮含量的测定方法
黄酮测定用硝酸铝显色法。
(1)芦丁标准液的配制
精密称取干燥至恒重的芦丁标准样品0.0431 g,
加适量的乙醇(体积分数为30%),稍加热溶解,冷却
后定容至100mL,摇匀,配成质量浓度为0.431
rng/mL的芦丁标准液,备用。
(2)测定方法
精密量取芦丁标准液适量,以蒸馏水为对照,
加体积分数为30%乙醇至5mL。先加0.3mL亚硝
酸钠溶液(50ms/mE),摇匀,放置6min;再加O.3
mL硝酸铝溶液(100ms/mE),摇匀,再放置6min;
最后加4mLNaOH(40ms/mE),用30%乙醇定容,
放置15~20rain,在波长510nm处测定吸光度。
(3)绿豆皮提取液中黄酮含量的测定
准确吸取样品溶液1mL,置于10mL容量瓶
中,蒸馏水为空白,按(2)测定方法操作,根据标准
曲线计算相应的黄酮浓度,最终得出提取液中黄酮
含量。
2结果与分析
2.1 绿豆皮提取液定性分析实验结果
提取液经盐酸一镁粉还原反应,其颜色反应为浅
橙红色。结果表明绿豆皮提取液的活性成分初步
认定为黄酮类物质,并且其基本结构是2-苯基色原
酮,母核含有碱性氧原子,又带有酚性羟基,因此能
与某些还原试剂发生颜色反应怫J。
2.2总黄酮含量的测定

2.2.1芦丁标准曲线的绘制
精密移取芦丁标准液0.2,0.5,0.8,1.1,1.4,
1.7,2,2.3,2.6mL,分别置于10mL容量瓶中,按(2)
测定方法操作,得芦丁质量浓度Y(ms/mL)与吸光度
A的关系:Y=0.097A一0.009,r=0.9994,以此方程
计算提取液中黄酮类化合物的含量。
2.2.2测定方法回收率试验
精密量取已知含量的绿豆黄酮提取液1.0mL,
分别加入质量浓度为0.431mg/mL的芦丁标准液
O.2,0.6,1mL,作回收率试验(见表1),其平均回收
率为97.8%。
表1回收率试验
Table1 Determinationofrec very
2.3单因素实验
选择对提取有影响的因素:乙醇体积分数、提
取温度、提取时间、固液比[¨10|,进行单因素试验,
万方数据
·62· 生物加工过程 第6卷第1期
再在单因素试验结果的基础上,以测得的绿豆皮黄
酮类化合物提取量为分析指标,选择合适的正交
表,确定绿豆黄酮类化合物的最佳提取工艺。
2.3.1提取溶剂的选择
工业上常用的提取溶剂为甲醇、乙醇、丙酮
等07J,但甲醇、丙酮对人体有一定毒性,所以选择乙
醇作为提取溶剂。
2.3.2提取溶剂的浓度
在固液比为1:50,提取温度为70℃,提取时间
为60rain的条件下,分析乙醇浓度对提取绿豆总黄
酮的影响。结果如图l,随着乙醇体积分数的增加,
绿豆皮提取液中黄酮类化合物的含量先提高后降
低,当乙醇体积分数达到30%时,黄酮类化合物的
含量最高,达18.33mg/g,超过30%时开始下降。
从提取液的颜色上看,乙醇浓度超过40%后,提取
液的颜色偏于绿色。原因可能是乙醇体积分数增
高后,使一些醇溶性杂质和色素等成分溶出量增
加,这些成分与黄酮类化合物竞争同乙醇.水分子结
合,从而导致黄酮类化合物的提取量下降旧J。

k






图1 乙醇浓度对黄酮提取量的影响
Fig.1Effectofdifferentco centrationsof
alcoholonextractionofflavonoids
2.3.3提取温度的影响
在固液比为1:50,妒(乙醇)为30%,提取时间
为60rain的条件下,分析提取温度对提取绿豆总黄
酮的影响。结果如图2显示,温度越高,提取效果越
好,但是温度达到80℃时,提取液呈明显的褐色,原
因是黄酮类化合物在高温下容易被氧化,温度过
高,其中的有效成分易被破坏,同时杂质的浸出量
也增加,对进一步分离不利一。10I。所以选择提取温
度为70℃。
2.3.4固液比的影响
在妒(乙醇)为30%,提取温度为70℃,提取时

k


专f



图2提取温度对黄酮提取量的影响
魄.2 Effect缸differenttemperature011倒腻0fflavonoids
间为60rain的条件下,分析固液比对提取绿豆总黄
酮的影响。结果如图3显示,当固液比达到1:60
时,提取效果最好,黄酮提取量达18.56mg/g。这
是因为增加溶剂用量,有利于黄酮由原料向浸提液
扩散,增大黄酮浸出率。当溶剂用量增大到一定限
度时,原料表面与浸提液之间的浓度差不再是影响
浸出率的主要因素,溶剂溶解的其他杂质也增多,
黄酮提取量反而有所下降一J。



1:30 1:40 1:50 l:60 1:70
固液比他:札)
图3 固液比对黄酮提取量的影响
Fig.3Effectofdifferentmaterial-liquidratio
onex位wtionofflavonoids
2.3.5提取时间的影响
在固液比为1:60,乙醇体积分数为30%,提取
温度为70℃的条件下,分析提取时间对提取绿豆总
黄酮的影响。如图4所示,提取时间在90min时提
取效果最好,此时黄酮提取量为26.02mg/s,时间
过长,黄酮提取量反而有所下降,可能是因为有较
多杂质浸出,影响黄酮提取量。
2.4正交试验
考虑到各因素之间的相互影响,为了获得最佳
工艺条件,以不同固液比、乙醇体积分数、提取温
度、提取时间为主要考察因素,以测得的浸提样品
万方数据
2008年1月 陈婷婷等:绿豆皮中黄酮类化合物提取工艺 · 63·

k






提取时阃/rain
图4提取时间对黄酮提取量的影响
Fig.4EffectofdifferenttimeOnextractionofflavonoids
中总黄酮含量为考察指标,根据单因素试验结果设
计因素水平如表2。选用L9(34)正交表,试验结果
如表3。
表2正交试验因素水平表
Table2 Factorandlevelsoforthogonaltest
表3 k{34)正交试验设计及结果分析
Table3 k《34)arrangementandresultsoforthogonaltest
根据正交试验数据,采用回归方程系数的绝对
值大小和极差分析,可得出最优化组合:A。B,C,D,,
即固液比为l:50,妒(乙醇)为40%,提取温度为
80℃,提取时间为120min,各因素对试验指标影响
均较大,但主次顺序为,B,C,D,A,即乙醇体积分数
对绿豆总黄酮的提取量影响最大,提取温度的影响
其次。
考虑到提取温度80℃时的黄酮提取量较温度
为70℃时的提取量增幅不大,仅4.37%,同时温度
越高,越容易导致黄酮类化合物的氧化以及杂质的
带入,因此综合考虑,最终确定绿豆总黄酮的最佳
提取工艺为:料液比为1:50,p(乙醇)为40%,提取
温度为70℃,提取时间为120min。在此工艺下得
到的黄酮提取量为27.57mg/g。
2.5提取方法的精密度试验
采用最佳提取工艺,连续进行5次绿豆总黄酮
提取试验,测定提取液中总黄酮的含量,结果见表
4,相对标准偏差RSD为0.75%。
表4精密度试验
Table4 Precisiontest
2.6提取方法的回收率试验
在最佳提取工艺下,以芦丁为对照品,考查此
工艺下黄酮类化合物的回收率(见表5)。
表5回收率试验
Table5 Determinationofrec very
3结论
利用盐酸.镁粉还原反应对绿豆皮提取液中的
黄酮类化合物进行初步鉴定,并采用硝酸铝显色法
万方数据
·64· 生物加工过程 第6卷第1期
对粗提液中的总黄酮进行定量分析,该分析方法回
收率为97.8%。通过单因素与正交试验,确定绿豆
总黄酮的最佳提取工艺为:料液比为1:50,9(乙醇)
为40%,提取温度为70℃,提取时间为120min。
在此工艺下得到的黄酮提取量为27.57mg/g,且提
取工艺的相对标准偏差为0.75%,回收率
达97.5%。
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万方数据