全 文 ：　 核 农 学 报　 ２０１４，２８（１２）：２２７５ ～ ２２８２
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｎｕｃｌｅａｒ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ
收稿日期：２０１４⁃０１⁃２２　 接受日期：２０１４⁃０５⁃２８
基金项目：浙江省重大科技专项重点农业项目（２０１２Ｃ１２００８⁃１），浙江省“三农六方”科技协作计划项目
作者简介：安家炜，女，主要从事食品质量与安全研究。 Ｅ⁃ｍａｉｌ： ａｊｗ１９９３０４０８＠ ｑｑ． ｃｏｍ
通讯作者：倪勤学，女，讲师，主要从事天然产物与功能食品研究。 Ｅ⁃ｍａｉｌ： ｎｉｑｉｎｘｕｅ＠ ｈｏｔｍａｉｌ． ｃｏｍ
张有做，男，教授，主要从事食品分子机能学研究。 Ｅ⁃ｍａｉｌ：ｙｙｚｚｈａｎｇ２００２＠ ｈｏｔｍａｉｌ． ｃｏｍ
文章编号：１０００⁃８５５１（２０１４）１２⁃２２７５⁃０８
美国豆芋地上部位有效成分及 α⁃葡萄糖
苷酶抑制活性研究
安家炜１ 　 张有做１ 　 高前欣２ 　 舒恩成２ 　 裘耀东３ 　 倪勤学１
（ １浙江农林大学农业与食品科学学院，浙江省农产品品质改良技术研究重点实验室，浙江 临安 　 ３１１３００；
２浙江同成农业开发有限公司，浙江 杭州　 ３１００３０；３ 杭州纽曲星生物科技有限公司，浙江 杭州　 ３１１２３４）
摘　 要：利用化学显色法扫描分析了美国豆芋不同地上部位（茎、叶、花）中次生代谢物的分布，并比较了
３ 个不同部位提取物主要有效成分含量及体外抗氧化活性和 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性。 结果表明美国豆
芋地上部位（茎、叶、花）中主要含有黄酮、皂苷和多糖等次生代谢产物，且均有不同程度的抗氧化和抑
制 α⁃葡萄糖苷酶活性。 叶中总黄酮含量最高，花中总皂苷和总糖含量最高。 自由基清除能力依次为叶
醇提物 ＞花醇提物 ＞茎醇提物；还原力依次为花醇提物 ＞叶醇提物（ ＞茎醇提物。 抑制 α⁃葡萄糖苷酶
活性则依次为花醇提物 ＞叶醇提物 ＞茎醇提物，不同部位醇提物的活性显著强于其水提物。 相关性分
析结果显示美国豆芋不同部位的抗氧化活性主要与其黄酮含量相关，而抑制 α⁃葡萄糖苷酶活性则主要
与皂苷含量相关（ ｒ ＝ ０． ９９４１）。 研究结果为美国豆芋的综合利用、开发其降血糖花茶提供指导，也对后
续美国豆芋花降血糖功能成分的分离纯化和机理研究具有重要意义。
关键词：美国豆芋；总黄酮；总皂苷；总糖；抗氧化活性；α⁃葡萄糖苷酶抑制活性
ＤＯＩ：１０􀆰 １１８６９ ／ ｊ． ｉｓｓｎ． １００⁃８５５１􀆰 ２０１４􀆰 １２． ２２７５
　 　 美国豆芋（Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ）是一种无性
繁殖的多年生豆科土圞儿属植物，地下块茎作为无性
繁殖或食用，是一种天然的高蛋白、高钙食品，同时富
含抗 ＨＩＶ、抗肥胖、抗癌等药理成份［１ － ４］，对现代生活
习惯病如高血压，糖尿病等具有明显改善效果，在欧美
及日本已有广泛的种植与应用［５ － ７］。 ２００９ 年由张有
做成功引种至中国，目前在浙江省杭州地区、宁波地
区、温州地区、金华地区均有栽培和利用。 栽培过程中
发现，作为美国豆芋加工副产物的地上部分（茎为草
质藤本缠绕状，叶为羽状复叶、卵状椭圆形至卵状披针
形，总状花序、蝶形花冠）在 ５ ～ １０ 月份长势非常茂
盛，１１ 月份后地上部分均枯萎败落。 而在欧洲及日本
均有炮制豆芋花茶及利用地上茎叶用于防治高血糖、
高血脂等慢性疾病的习惯。 所以，美国豆芋地上部分
若能在每年秋季自然枯败前采集利用，可制备成功能
花茶，也可提取活性成分后作为清除自由基、调节血
糖、血脂等功能食品配料使用，是一个资源量大、可持
续发展和系统开发的天然资源。
本文选取美国豆芋茎、叶、花 ３ 个地上部位作为原
料，对其中植物次生代谢物进行探索，对主要有效成分
的含量及抗氧化活性和抑制 α⁃葡萄糖苷酶活性进行
了比较研究，以期为美国豆芋资源的深度开发和综合
利用奠定基础。
１　 材料与方法
１． １　 材料、试剂与仪器
美国豆芋地上部位（茎、叶、花）于 ２０１２ 年 ７ 月采
收于浙江省临安市浙江农林大学官塘农场。
熊果酸、香草醛、芦丁、葡萄糖、２，２′⁃二苯基⁃１⁃苦
味酰苯肼 （２，２⁃Ｄｉｐｈｅｎｙｌ⁃１⁃ｐｉｃｒｙｌｈｙｄｒａｚｙｌ， ＤＰＰＨ）、２，
２′⁃连氮基⁃双（３⁃乙基苯并噻吡哆啉⁃６⁃硫酸）二铵盐
５７２２
核　 农　 学　 报 ２８ 卷
［ ２， ２′⁃ Ａｚｉｎｏｂｉｓ （ ３⁃ Ｅｔｈｙｌｂｅｎｚｏｔｈｉａｚｏｌｉｎｅ ⁃６⁃
Ｓｕｌｆｏｎａｔｅ）， ＡＢＴＳ］、２，４，６⁃三（２⁃吡啶）⁃ ｓ⁃三嗪［２，４，６⁃
Ｔｒｉ （２⁃ｐｙｒｉｄｙｌ）⁃ｓ⁃ｔｒｉａｚｉｎｅ， ＴＰＴＺ］、α⁃葡萄糖苷酶、４⁃硝
基 苯⁃α⁃Ｄ⁃吡 喃 葡 萄 糖 苷 （ ４⁃Ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌα⁃Ｄ⁃
ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ， ｐＮＰＧ）、阿卡波糖（ ａｃａｒｂｏｓｅ），均购自
美国 Ｓｉｇｍａ 公司； 甲醇、 无水乙醇、 二甲基亚砜
（Ｄｉｍｅｔｈｙｌ ｓｕｌｆｏｘｉｄｅ， ＤＭＳＯ）、冰乙酸、高氯酸、氢氧化
钠、亚硝酸钠、硝酸铝、三氯化铁对硝基苯酚等均为分
析纯；水为去离子水。
ＲＥ５２⁃Ａ 旋转蒸发器 （上海亚荣生化仪器厂）；
ＢＳＡ２２４Ｓ电子天平［赛多利斯科学仪器（北京）有限公
司］；ＭＢ４５ 红外线快速水分测定仪（美国 ＯＨＡＵＳ 公
司）；ＵＶ⁃１８００ 紫外分光光度计（日本 ＳＨＩＭＡＤＺＵ 公
司）；ＤＧＧ⁃９０５３ＡＤ 型电热恒温鼓风干燥箱（上海森信
实验仪器有限公司）；ＳＨＺ⁃３ 型循环水真空泵（上海亚
荣生化仪器厂）；ＨＨ⁃４ 电热恒温水浴锅（常州国华电
器有限公司）；ＺＫ⁃８２Ｂ 电热真空干燥箱（上海实验仪
器厂 有 限 公 司 ）； ＳｐｅｃｔｒａＭａｘ Ｍ２ 酶 标 仪 （美 国
Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｄｅｖｉｃｅ 公司）。
１． ２　 方法
１． ２． １　 不同部位提取物的制备　 美国豆芋地上部分
采割后，把茎、叶、花分离，清洗、去杂后冷冻干燥，粉碎
后过 ４０ 目筛。 各取 ５ ｇ分别用蒸馏水热回流提取４ ｈ，
定容至 １００ ｍＬ容量瓶得美国豆芋茎、叶、花水提物，做
总糖含量和抑制 α⁃葡萄糖苷酶活性的检测。 另各取 ５
ｇ分别用 ７０ ％乙醇热回流提取 ４ ｈ，洗渣定容至 １００
ｍＬ容量瓶中，得美国豆芋茎、叶、花醇提物做总皂苷、
总黄酮、抗氧化和抑制 α⁃葡萄糖苷酶活性的检测。 提
取前用快速水分测定仪测定花样中的实际水分含量，
试样各有效成分含量、抗氧化活性半抑制浓度和抑制
α⁃葡萄糖苷酶活性的样品浓度均折合成干基计算。 每
个样品平行试验 ３ 次。
１． ２． ２　 不同部位提取物中的化学成分定性分析　 参
考陈玉婷等［８］和郝海燕等［９］方法，将美国豆芋茎、叶、
花按照不同的方法（颜色反应、沉淀反应）进行化学成
分的快速定性分析。
１． ２． ３　 总黄酮含量的测定　 总黄酮含量的测定采用
硝酸⁃亚硝酸钠比色法［１０ － １１］。 精密称取芦丁对照品
１５． ００ ｍｇ，置 １００ ｍＬ容量瓶中，加 ７０ ％乙醇溶解并稀
释至刻度，摇匀即得 １５０ μｇ·ｍＬ － １的芦丁标准溶液。
准确吸取芦丁标准溶液 ０、０． ５、１． ０、２． ０、３． ０、４． ０ ｍＬ
移入 １０ ｍＬ具塞试管中，加入 ７０ ％乙醇溶液至 ５ ｍＬ，
各加 ５ ％亚硝酸钠溶液 ０． ３ ｍＬ，振摇后放置 ５ ｍｉｎ，加
入 １０ ％硝酸铝溶液 ０． ３ ｍＬ，摇匀后放置 ６ ｍｉｎ，加
１． ０ ｍｏｌ·Ｌ － １氢氧化钠溶液 ２ ｍＬ，用 ７０ ％乙醇溶液定
容，静置 １０ ｍｉｎ。 以零管为空白，在 ５１０ ｎｍ 的波长处
测定吸光值（Ａ），以 Ａ 值为纵坐标（Ｙ）、芦丁对照品的
总黄酮浓度为横坐标（Ｘ），绘制标准曲线，得回归方程
为 Ｙ ＝ ０． ０１１３ Ｘ －０． ００１７（ ｒ ＝ ０． ９９９６），线性范围为 ０
～ ６０ μｇ·ｍＬ － １。
不同试样待测液分别取 ０． ５ ｍＬ，按照上述方法操
作，在 ５１０ ｎｍ的波长处测定吸光值，并根据芦丁的标
准曲线按照下式计算各试样的总黄酮含量。
总黄酮 ＝
ｍ１ × Ｖ２
ｍ × Ｖ１ × １０６
× １００％
式中 ｍ１：依据标准曲线计算出被测液中芦丁的质量数
（μｇ）；ｍ：供试品取样量（ ｇ）；Ｖ１：待测液分取的体积
（ｍＬ）；Ｖ２：待测液的总体积（ｍＬ）。
１． ２． ４　 总皂苷含量的测定　 香草醛 －冰醋酸比色法
测定样品的总皂苷含量［１２ － １３］。 精密称取熊果酸标准
品 １０． ０ ｍｇ，用无水乙醇定容于 １００ ｍＬ 容量瓶中，即
得 １００ μｇ·ｍＬ － １熊果酸标准品溶液。 精密吸取熊果
酸对照品溶液 ０． １、０． ２、０． ４、０． ６、０． ８、１． ０ｍＬ，于加热
状态下氮气吹干溶剂，分别加入 ５ ％香草醛 －冰醋酸
０． ５ ｍＬ，然后加入高氯酸 ０． ８ ｍＬ，混匀后于 ６５ ℃水浴
反应 １５ ｍｉｎ，取出放置冰水中冷却，加冰醋酸 ５ ｍＬ，在
５４８ ｎｍ处测定吸光度值（Ａ），以 Ａ值为纵坐标（Ｙ），熊
果酸为对照品的总皂苷量为横坐标（Ｘ），绘制标准曲
线，得回归方程为 Ｙ ＝ ０． ００５ Ｘ － ０． ０３０５，ｒ ＝ ０􀆰 ９９９４，
线性范围为 １０ ～ １００ μｇ。
不同试样待测液分别取 ０． ５ ｍＬ，按上述方法操
作，在 ５４８ ｎｍ处测定吸光值，并根据熊果酸的标准曲
线按照下式计算各试样的总皂苷含量。
总皂苷 ＝
ｍ１Ｖ２
ｍ × Ｖ１ × １０６
× １００％
式中 ｍ１：依据标准曲线计算出被测液中熊果酸的质量
数（μｇ）；ｍ：供试品取样量（ｇ）；Ｖ１：待测液分取的体积
（ｍＬ）；Ｖ２：待测液的总体积（ｍＬ）。
１． ２． ５　 总糖含量的测定　 苯酚 －硫酸法用于测定样品
的总糖含量［１４］。 精密称取 １０５ ℃烘干至恒重的无水葡
萄糖对照品 １０． ０ ｍｇ，于 １００ ｍＬ容量瓶中用蒸馏水配成
１００ μｇ·ｍＬ －１的葡萄糖标准溶液。 准确吸取葡萄糖标
准溶液 ０、０． ２、０． ４、０． ６、０． ８、１． ０ ｍＬ至１０ ｍＬ具塞试管，
用蒸馏水定容至 ４ ｍＬ，分别加入 ６ ％苯酚溶液 １ ｍＬ，摇
匀，迅速加入浓硫酸 ５ ｍＬ，室温放置 １０ ｍｉｎ，摇匀，置 ３０
℃水浴中保温３０ ｍｉｎ后于４９０ ｎｍ测定吸光值（Ａ），以 Ａ
值为纵坐标（Ｙ），葡萄糖对对照品的总糖浓度为横坐标
（Ｘ），绘制标准曲线，得回归方程为 Ｙ ＝ ０． ０８５Ｘ － ０．
６７２２
　 １１ 期 美国豆芋地上部位有效成分及 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性研究
０１１２，ｒ ＝０． ９９９１，线性范围为 ０ ～１０ μｇ·ｍＬ －１。
不同试样待测液分别取 ０． ５ ｍＬ，按照上述方法操
作，测定 ４９０ ｎｍ波长处的吸光值，根据葡萄糖标准曲
线，按照下式计算样品的总糖含量。
总糖 ＝
ｍ１ × Ｖ２
ｍ × Ｖ１ × １０６
× １００％
　 　 式中 ｍ１：依据标准曲线计算出被测液中总糖
（μｇ）；ｍ：供试品取样量（ ｇ）；Ｖ１：待测液分取的体积
（ｍＬ）；Ｖ２：待测液的总体积（ｍＬ）。
１． ２． ６ 　 ＤＰＰＨ 自由基清除能力的测定 　 参考文
献［１５ － １７］，准确称取 ＤＰＰＨ 试剂 ０． ０２ ｇ，用乙醇溶解至
５００ ｍＬ容量瓶中，摇匀得 ０． １０１ ｍｍｏｌ·Ｌ － １ ＤＰＰＨ 溶
液，置于棕色瓶内待用。 将待测样品用乙醇配制适宜
浓度梯度。 取 ０． １ ｍＬ 不同浓度的待测样溶液和
３． ９ ｍＬ ＤＰＰＨ溶液混合摇匀，在室温下反应 １ ｈ 后在
５１７ ｎｍ波长下测定吸光度 Ａ。 以乙醇为空白对照，测
得吸光值 Ａ０。
抑制率 ＝ （Ａ０ － Ａ） ／ Ａ０ × １００ ％
以样品溶度为横坐标、抑制率为纵坐标，做样品清除
ＤＰＰＨ自由基的曲线。 根据回归方程，计算 ＤＰＰＨ 自
由基清除率为 ５０ ％ 时的样品溶度，即为样品清除
ＤＰＰＨ自由基的半抑制溶度（ ＩＣ５０）。 １． ２． ７ 　 ＡＢＴＳ 自
由基清除能力的测定 　 参考文献 ［１８ － ２０］，配置
１４０ ｍｍｏｌ·Ｌ － １过硫酸钾（Ｋ２Ｓ２Ｏ８）水溶液和 ７ ｍｍｏｌ·
Ｌ － １ ＡＢＴＳ溶液。 然后取 １７６ μＬ的过硫酸钾溶液加入
到 １０ ｍＬ的 ＡＢＴＳ 溶液中，混合、避光反应 １２ ～ １６ ｈ。
最后，用无水乙醇将 ＡＢＴＳ溶液稀释至在室温条件下，
７３４ ｎｍ波长下吸光值为 ０． ７００ ± ０． ０２，即得 ＡＢＴＳ 自
由基工作液。
将待测样品分别用乙醇稀释至适宜浓度梯度。 以
无水乙醇为空白试剂将分光光度计调零。 将 ３． ９ ｍＬ
的 ＡＢＴＳ溶液与 ０． １ ｍＬ待测样溶液混合摇匀，在室温
下反应 ６ ｍｉｎ，在 ７３４ ｎｍ 波长处测定吸光值 Ａ。 乙醇
溶液替代样品测定的吸光值为 Ａ０。
抑制率 ＝ （Ａ０ － Ａ） ／ Ａ０ × １００ ％
以样品溶度为横坐标、抑制率为纵坐标，做样品清除
ＡＢＴＳ自由基的曲线。 根据回归方程，计算样品清除
ＡＢＴＳ自由基的半抑制溶度（ＩＣ５０值）。
１． ２． ８ 　 铁离子还原 ／抗氧化能力的测定 （ Ｆｅｒｒｉｃ
Ｒｅｄｕｃｉｎｇ Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ Ｐｏｗｅｒ， ＦＲＡＰ法） 　 参考文献［２１
－２２］，样品配制 １０ ｍｇ·ｍＬ － １的待测液，各取 ０． ３ ｍＬ
加入 ２． ７ ｍＬ ＴＰＴＺ 工作液（由 ０． ３ ｍｏｌ·Ｌ － １醋酸盐缓
冲液 ２５ ｍＬ， １０ ｍｍｏｌ · Ｌ － １ ＴＰＴＺ 溶液 ２． ５ ｍＬ，
２０ ｍｍｏｌ·Ｌ － １ ＦｅＣｌ３溶液 ２． ５ ｍＬ 组成），混匀后在
３７℃反应１０ ｍｉｎ，于 ５９３ ｎｍ 波长处测定吸光值。 以乙
醇做空白对照。
准确称取 ６． ０８ ｍｇ硫酸亚铁溶于适量的水中，加入
１８ ｍｏ１·Ｌ －１的硫酸 ０． ２５ ｍＬ，再加水稀释至 ５０ ｍＬ 定
容，得 ８００ μｍｏｌ·Ｌ －１的硫酸亚铁溶液，并置入小铁钉。
依次配置２５、５０、１００、２００、４００、８００ μｍｏｌ·Ｌ －１标准溶液，
以硫酸亚铁浓度为横坐标，吸光值为纵坐标绘制标准曲
线。 以样品反应后的吸光值在标准曲线上获得相应的
硫酸亚铁的浓度（μｍｏｌ·Ｌ －１）定义为 ＦＲＡＰ值。
１． ２． ９　 α －葡萄糖苷酶抑制活性的测定　 检测方法：
反应体系参考文献［２３］，所有样品用 ＤＭＳＯ 溶解，终
浓度为 ３． ５ ｍｇ·ｍＬ － １，ａｃａｒｂｏｓｅ 为阳性对照。 ９６ 微孔
板上用微量移液器向每孔加入磷酸钾缓冲液 （０􀆰 １
ｍｏｌ·Ｌ － １， ｐＨ值 ６． ８）８０ μＬ，０． ２ Ｕ·ｍＬ － １的 α －葡
萄糖苷酶 ２０ μＬ，样品溶液 ２０ μＬ，３７℃恒温 １５ ｍｉｎ，加
入 ２􀆰 ５ ｍｍｏｌ·Ｌ － １ ＰＮＰＧ ２０ ｕＬ，３７℃恒温反应 １５ ｍｉｎ。
最后加入 ８０ μＬ ０． ２ ｍｏｌ·Ｌ － １的 Ｎａ２ＣＯ３溶液终止反
应，于 ４０５ ｎｍ波长下测定吸光度值 Ａ。 实验共设 ５ 个
组，每组 ３ 孔，分别为：ａ． 对照组（缓冲液 ＋酶液 ＋底
物）；ｂ． 空白组对照组（缓冲液）；ｃ． 样品测定组（样品
＋酶液 ＋底物）；ｄ． 样品对照组（样品 ＋缓冲液）；ｅ．
阳性对照组（ａｃａｒｂｏｓｅ ＋酶液 ＋底物）。
抑制率 ＝ ［１ － （Ａｃ － Ａｄ） ／ （Ａａ － Ａｂ）］ × １００ ％
酶活力的测定：根据采用的反应体系，用磷酸缓冲
液 ＰＢＳ（ｐＨ值 ６． ８）配置成 ０、５、２５、５０、１００、１５０、２００、
３００、４００ μｍｏｌ·Ｌ － １ ９ 个不同浓度的 ＰＮＰＧ 溶液，各取
１４０ μＬ加入 ０． ２ ｍｏｌ·Ｌ － １ Ｎａ２ＣＯ３溶液 ８０ μＬ混匀，在
４０５ ｎｍ下测定吸光值。 以吸光值为纵坐标，对硝基苯
酚浓度为横坐标，绘制标准曲线。
根据所采用的反应体系，磷酸钾缓冲液 ＰＢＳ（ｐＨ
值 ６． ８）８０ μＬ 加入 ０． ２ Ｕ·ｍＬ － １ α －葡萄糖苷酶 ２０
μＬ，ＤＭＳＯ ２０ μＬ，３７℃恒温 １５ ｍｉｎ后加入 ２． ５ ｍｍｏｌ·
Ｌ － １ ＰＮＰＧ ２０ μＬ，３７℃恒温反应 １５ ｍｉｎ，再加入 ８０ μＬ
０． ２ ｍｏｌ·Ｌ － １的 Ｎａ２ＣＯ３溶液，于 ４０５ ｎｍ波长下测定吸
光值。 酶活力单位定义为 ３７ ℃、ｐＨ值 ６． ８ 条件下，每
分钟水解底物所产生 １ μｍｏｌ对硝基苯酚的酶量，规定
为 １ 个酶活力单位（Ｕ）。
１． ２． １０ 　 数据处理 　 所有试验重复 ３ 次，结果采用
ＳＰＳＳ １６． ０ 统计软件进行数据分析。
２　 结果与分析
２． １　 不同部位提取物中化学成分
美国豆芋茎、叶、花提取物按照不同的方法（颜色
７７２２
核　 农　 学　 报 ２８ 卷
反应、沉淀反应）进行化学成分的快速定性分析（表
１）。 从化学定性实验可知美国豆芋地上部位提取物
中都含有糖、多酚、皂苷、黄酮及有机酸等物质；而 ３ 个
部位提取物的生物碱反应均为阴性，表明不含该类物
质；叶提取物中显示含有蛋白质，而花和茎中则无该反
应。 说明虽然茎、叶、花都来自于美国豆芋植株，但不
同部位的次生代谢产物种类存在差异。
表 １　 美国豆芋不同地上部位化学成分定性分析
Ｔａｂｌｅ １　 Ｔｈｅ ｑｕａｌｉｔｙ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｆｒｏｍ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ
定性分析 Ｑｕａｌｉｔａｔｉｖｅ ａｎａｌｙｓｉｓ 叶提取物Ｌｅａｆ ｅｘｔｒａｃｔ
花提取物
Ｆｌｏｗｅｒ ｅｘｔｒａｃｔ
茎提取物
Ｓｔｅｍ ｅｘｔｒａｃｔ
糖：碱式硫酸铜 Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ： ｃｕｐｒｉｃ ｓｕｌｆａｔｅ，ｂａｓｉｃ ＋ ＋ ＋
蛋白质：双缩脲反应 Ｐｒｏｔｅｉｎ： ｂｉｕｒｅｔ ｒｅａｃｔｉｏｎ ＋ － －
酚类：１％三氯化铁 Ｐｈｅｎｏｌｉｃｓ： １％ ｆｅｒｒｉｃ ｃｈｌｏｒｉｄｅ ＋ ＋ ＋
皂苷：醋酐浓硫酸反应 Ｓａｐｏｎｉｎ： Ｌｉｅｂｅｒｍａｎｎ⁃Ｂｕｒｃｈａｒｄ ｒｅａｃｔｉｏｎ ＋ ＋ ＋
生物碱：碘 －碘化钾 Ａｌｋａｌｏｉｄｓ： ｉｏｄｉｎｅ⁃ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ｉｏｄｉｄｅ － － －
香豆素：盐酸羟胺饱和溶液 Ｃｏｕｍａｒｉｎ： ｈｙｄｒｏｘｙｌａｍｉｎｅ ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ ｓｏｌｕｔｉｏｎ － － －
黄酮： 盐酸镁粉反应 Ｆｌａｖｏｎｏｉｄ：ＨＣｌ ＋ Ｍｇ ＋ ＋ ＋
蒽醌：１０％氢氧化钾 Ａｎｔｈｒａｑｕｉｎｏｎｅ： １０％ ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ｈｙｄｒｏｘｉｄｅ － － －
有机酸：溴酚蓝反应 Ｏｒｇａｎｉｃ ａｃｉｄ： ｂｒｏｍｏｐｈｅｎｏｌ ｂｌｕｅ ｒｅａｃｔｉｏｎ ＋ ＋ ＋
　 　 注： ＋ ：表示呈阳性反应， － ：表示呈阴性反应。
Ｎｏｔｅ： ＋ ： ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｒｅａｃｔｉｏｎ， － ： ｎｅｇａｔｉｖｅ ｒｅａｃｔｉｏｎ．
表 ２　 美国豆芋不同地上部位有效成分含量的测定结果
Ｔａｂｌｅ ２ Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ａｃｔｉｖｅ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｉｎ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｆｒｏｍ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ
地上部分 Ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ
含量（％ ，以样品干基计） Ｃｏｎｔｅｎｔ ／ （％ ， ＤＷ）
总黄酮 Ｔｏｔａｌ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ 总皂苷 Ｔｏｔａｌ ｓａｐｏｎｉｎｓ 总糖 Ｔｏｔａｌ ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ
叶 Ｌｅａｆ ２． ６０ ± ０． ０４ ａ ４． ７８ ± ０． ３９ｂ ０． ３５ ± ０． ０３ｂ
茎 Ｓｔｅｍ ０． ８３ ± ０． ０３ ｃ ４． ２６ ± ０． ３５ｂ １． ０４ ± ０． ０９ ａ
花 Ｆｌｏｗｅｒ １． ０９ ± ０． ０６ｂ ８． ５１ ± ０． ６１ ａ １． ３３ ± ０． １１ａ
　 　 注：同一列不同字母表示显著差异（ｐ ＜ ０． ０５）。 下同。
Ｎｏｔｅ：Ｖａｌｕｅｓ ｉｎ ｓａｍｅ ｒｏｗ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｍｅａｎ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ （ｐ ＜ ０． ０５） ． Ｔｈｅ ｓａｍｅ ａｓ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ．
２． ２　 不同部位有效成分含量
在定性分析的基础上，比较了美国豆芋茎、叶、花
中总黄酮、总皂苷和总糖含量（表 ２）。 结果表明美国
豆芋茎、叶、花中均含有丰富的总皂苷，占干基量为
４􀆰 ２６％ ～８． ５１％ ，总皂苷含量最高的部位为花，茎和叶
中总皂苷含量无显著性差异。 总黄酮含量最高的部位
为叶（２． ６０ ％ ），其次为花（１． ０９ ％ ），茎中含量最少。
总糖含量依次为花 （１． ３３ ％ ） ＞ 叶 （１． ０４ ％ ） ＞ 茎
（０􀆰 ３５ ％ ）。 综合比较，美国豆芋花中富含皂苷和多糖
类化合物，而叶中富含黄酮。
２． ３　 不同部位醇提物的抗氧化活性
不同的抗氧化能力评价方法的原理不同，都有各
自的优缺点，因此测得的样品的抗氧化能力也不尽相
同，甚至具有较大的差别，只采用 １ 种方法来评价抗氧
化剂的活性是不科学的［２４］。 因此，本文采用多种不同
的试验体系进行综合评价，采用 ＤＰＰＨ 法、ＡＢＴＳ 法评
价自由基清除能力，采用铁离子还原法（ＦＲＡＰ）来评
价还原力，以期客观全面地评价美国豆芋地上部分提
取物抗氧化活性，为其开发和应用奠定基础，也为进一
步的功能学研究提供思路。
美国豆芋茎、叶、花 ７０ ％乙醇提取物的抗氧化活
性通过 ＤＰＰＨ自由基清除、ＡＢＴＳ自由基清除和铁离子
还原力 ３ 个体外体系进行了比较（图 １、图 ２）。 美国豆
芋不同部位醇提物对 ＤＰＰＨ自由基的清除能力具有显
著性差异，叶醇提物的活性显著高于其他部位，ＩＣ５０值
为 ２４６． ９３ μｇ·ｍＬ － １，其次为花。 茎醇提物的 ＤＰＰＨ
自由基清除能力远远弱于其他部位。 美国豆芋 ３ 个不
８７２２
　 １１ 期 美国豆芋地上部位有效成分及 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性研究
同地上部位醇提物对 ＡＢＴＳ自由基的清除能力无显著
性差异，ＩＣ５０值为 ２１９． ３３ ～ ２３９􀆰 ３０ μｇ·ｍＬ － １。铁离子
还原力强弱则为花醇提物最强，１􀆰 ０ ｍｇ·ｍＬ － １浓度时
ＦＲＡＰ值为 ５６０． １７ μｍｏｌ·Ｌ － １，其次为叶醇提物（４７３．
５９ μｍｏｌ·Ｌ － １），茎醇提物最弱。
图 １　 美国豆芋不同地上部位醇提物自由基清除能力
Ｆｉｇ． １　 Ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ ｆｒｅｅ ｒａｄｉｃａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ ｏｆ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｆｒｏｍ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ
图 ２　 美国豆芋不同地上部位醇提物还原力
Ｆｉｇ． ２　 Ｒｕｄｕｃｉｎｇ ｐｏｗｅｒ ｏｆ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ ｏｆ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｆｒｏｍ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ
２． ４　 不同部位提取物的 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性
以阿卡波糖为阳性对照，美国豆芋茎、叶、花 ７０ ％
乙醇提取物和水提物的 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性如图 ３
所示。 由结果可知，美国豆芋茎、叶、花醇提物的抑制
能力均高于其水提物。 其中花醇提物的抑制能力最
强，在 ３． ５ ｍｇ·ｍＬ － １浓度时抑制率达 ７３． ８８ ％ ，显著
高于其他部位（ｐ ＜ ０． ０５）。
２． ５　 相关性分析
美国豆芋茎、叶、花总黄酮、总皂苷和总糖含量与
其抗氧化及 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性相关性分析见表
３。 由表 ３ 可知，美国豆芋不同部位提取物的抗氧化与
其总皂苷含量相关性较差，但与总黄酮显显著正相关，
其中 ＡＢＴＳ 清除能力与总其黄酮相关系数 ｒ 达
０􀆰 ９６５６。 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性则与抗氧化活性相
反，与总黄酮和总糖相关性不大，但与总皂苷具有显著
的正相关，ｒ高达 ０． ９９４１。 说明，美国豆芋中皂苷类化
合物为其抑制 α⁃葡萄糖苷酶的主要活性成分。
３　 讨论
作为美国豆芋加工副产品的茎、叶、花含有丰富的
次生代谢产物和较强的生物学活性，具有开发应用的
潜力。 美国豆芋叶中总黄酮含量占叶干基 ２． ６０ ％ ，且
具有强自由基清除能力，可开发天然抗氧化剂。 另外，
体外 α⁃葡萄糖苷酶抑制模型表明，美国豆芋花醇提物
具有显著强于其他部位的 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性，相
关性分析指明其抑制 α⁃葡萄糖苷酶的主要活性成分
为皂苷类化合物，相关系数高达 ０． ９９４１。 糖尿病是一
组由于胰岛素分泌缺陷和 ／或胰岛素作用缺陷导致的
９７２２
核　 农　 学　 报 ２８ 卷
　 　 　 　
图 ３　 美国豆芋不同地上部位提取物抑制 α⁃葡萄糖苷酶活性
Ｆｉｇ． ３　 α⁃Ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｅｘｔｒａｃｔ ｏｆ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｆｒｏｍ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ
表 ３　 美国豆芋不同地上部位有效成分含量和抗氧化及 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性相关性分析
Ｔａｂｌｅ ３　 Ｔｈｅ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ａｍｏｎｇ ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ， α⁃ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ａｂｉｌｉｔｙ ａｎｄ ｍａｉｎ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｉｎ
ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｆｒｏｍ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ
抗氧化及 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性
Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ ａｎｄ α⁃ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ａｂｉｌｉｔｙ
有效成分 Ｍａｉｎ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ
总黄酮 Ｔｏｔａｌ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ 总皂苷 Ｔｏｔａｌ ｓａｐｏｎｉｎｓ 总糖 Ｔｏｔａｌｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ
ＤＰＰＨ自由基清除能力 ＤＰＰＨ ｒａｄｉｃａｌ ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ ａｂｉｌｉｔｙ ０． ６１６０ ０． １６６９ ０． ２０３１
ＡＢＴＳ自由基清除能力 ＡＢＴＳ ｒａｄｉｃａｌ ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ ａｂｉｌｉｔｙ ０． ９６５６ ０． ００４４ ０． ６６６２
铁离子还原力 Ｆｅｒｒｉｃ ｒｅｄｕｃｉｎｇ ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ ｐｏｗｅｒ （ＦＲＡＰ） ０． ２１７３ ０． ６３３０ ０． ００１０
α⁃葡萄糖苷酶抑制活性 α⁃Ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ａｂｉｌｉｔｙ ０． １０４９ ０． ９９４１ ０． ３４６２
以慢性血糖水平增高为特征的代谢异常综合症，是严
重危害人类健康的多发病和难治病。 随着环境和饮食
结构的改变，全球糖尿病患者迅速增加，至 ２０１２ 年全
球糖尿病患者已超过 ３７１ 万人。 α⁃葡萄糖苷酶主要位
于小肠绒毛粘膜细胞刷状缘上，其作用为对淀粉、蔗糖
等碳水化合物进行利用吸收。 抑制该酶可以减缓体内
葡萄糖的产生，降低餐后血糖［２５］。 美国豆芋花部位中
含有高含量的皂苷类化合物（以花干基计总皂苷含量
达 ８． ５１ ％ ），具有较强的 α⁃葡萄糖苷酶抑制活性，为
潜在的优良的降血糖天然产物，这也为日本民间炮制
豆芋花茶用于防治高血糖、高血脂等慢性疾病的习惯
找到了理论依据。 在此基础上，以花提取物为原料，采
用现代柱层析手段，进一步分离、纯化其降血糖的皂苷
类化合物单体，解析其具体化学结构，研究其降血糖作
用机理，将是下一步研究的重点。
４　 结论
本试验结果表明美国豆芋地上部位（茎、叶、花）
中主要含有黄酮、皂苷和多糖等次生代谢产物，且均有
不同程度的抗氧化和抑制 α⁃葡萄糖苷酶活性的作用。
叶中总黄酮含量最高，花中总皂苷和总糖含量最高。
自由基清除能力依次为叶醇提物 ＞花醇提物 ＞茎醇提
物；还原力依次为花醇提物 ＞叶醇提物 ＞茎醇提物。
抑制 α⁃葡萄糖苷酶活性则依次为花醇提物 ＞叶醇提
物 ＞茎醇提物，不同部位醇提物的活性显著强于其水
提物。 相关性分析结果显示美国豆芋不同部位的抗氧
化活性主要与其黄酮含量相关，而抑制 α⁃葡萄糖苷酶
活性则主要与皂苷含量相关。 研究结果为美国豆芋的
综合利用，充分利用其茎、叶、花开发天然抗氧化剂或
降血糖功能食品或医药中间体提供理论依据。
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ＡＮ Ｊｉａ⁃ｗｅｉ１ 　 ＺＨＡＮＧ Ｙｏｕ⁃ｚｕｏ１ 　 ＧＡＯ Ｑｉａｎ⁃ｘｉｎ１ 　 ＳＨＵ Ｅｎ⁃ｃｈｅｎｇ２
ＱＩＵ Ｙａｏ⁃ｄｏｎｇ３ 　 ＮＩ Ｑｉｎ⁃ｘｕｅ１
（ １Ｔｈｅ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｆｏｒ Ｑｕａｌｉｔｙ Ｉｍｐｒｏｖｅｍｅｎｔ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｏｆ Ｚｈｅｊｉａｎｇ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ， Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ
Ａｇｒｉｃｕｌｕｒｅ ａｎｄ Ｆｏｏｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ， Ｚｈｅｊｉａｎｇ Ａ ＆ Ｆ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ， Ｌｉｎ’ ａｎ， Ｚｈｅｊｉａｎｇ　 ３１１３００；２ Ｚｈｅｊｉａｎｇ
Ｔｏｎｇｃｈｅｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ Ｃｏ． ， Ｌｔｄ， Ｈａｎｇｚｈｏｕ， Ｚｈｅｊｉａｎｇ　 ３１１３００； ３Ｈａｎｇｚｈｏｕ Ｎｕｔｒｔｉｏｎ
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ． ， Ｌｔｄ， Ｈａｎｇｚｈｏｕ， Ｚｈｅｊｉａｎｇ　 ３１１２３４）
Ａｂｓｔｒａｃｔ： Ｔｈｅ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ ｏｆ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ （ｌｅａｆ， ｓｔｅｍ， ｆｌｏｗｅｒ） ｏｆ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ ｗｅｒｅ ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅｌｙ
ａｎａｌｙｚｅｄ ｂｙ ｃｈｒｏｍｏｇｅｎｉｃ ｍｅｔｈｏｄｓ． Ｔｈｅｉｒ ｍａｉｎ ａｃｔｉｖｅ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｃｏｎｔｅｎｔ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ ａｃｔｉｖｉｔｙ， α⁃ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ
ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｗｅｒｅ ａｌｓｏ ｃｏｍｐａｒｅｄ． Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｏｆ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ ａｎｄ ｏｆ α⁃ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｙ， ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｍａｉｎ ａｃｔｉｖｅ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｗｅｒｅ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ， ｓａｐｏｎｉｎｓ
ａｎｄ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ． Ｌｅａｆ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｔｏｔａｌ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ （２． ６０ ％ ， ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ ｓａｍｐｌｅ， ｔｈｅ ｓａｍｅ ｂｅｌｏｗ），
ｗｈｉｌｅ ｆｌｏｗｅｒ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｔｏｔａｌ ｓａｐｏｎｉｎｓ ａｎｄ ｔｏｔａｌ ｓｕｇａｒ （８． ５１％ ａｎｄ １． ３３％ ）． Ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ ｆｒｅｅ
ｒａｄｉｃａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｗｅｒｅ ａｓ ｆｏｌｌｏｗｓ： ｌｅａｆ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ ＞ ｆｌｏｗｅｒ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ ＞ ｓｔｅｍ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ．
Ｒｕｄｕｃｉｎｇ ｐｏｗｅｒ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｗｅｒｅ ａｓ ｆｏｌｌｏｗｓ： ｆｌｏｗｅｒ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ ＞ ｌｅａｆ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ ＞ ｓｔｅｍ ｅｔｈａｎｏｌ
ｅｘｔｒａｃｔ． Ｔｈｅ α⁃ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｗａｓ ａｓ ｆｏｌｌｏｗｅｓ： ｆｌｏｗｅｒ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ ＞ ｌｅａｆ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ ＞ ｓｔｅｍ
ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ． Ｔｈｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｅｔｈａｎｏｌ ｅｘｔｒａｃｔ ｏｆ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｏｆ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ ｗａｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｓｔｒｏｎｇｅｒ ｔｈａｎ
ｔｈａｔ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ｗａｔｅｒ ｅｘｔｒａｃｔ． Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅｉｒ ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｗｅｒｅ ｍａｉｎｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅｉｒ ｔｏｔａｌ
ｆｌａｖｏｎｏｉｄ ｃｏｎｔｅｎｔ， ｗｈｉｌｅ ｔｈｅ ｓａｐｏｎｉｎ ｗｅｒｅ ｔｈｅ ｍａｉｎ ａｃｔｉｖｅ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ａｔｔｒｉｂｕｔｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ α⁃ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｙ．
Ｔｈｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ ｐｒｏｖｉｄｅ ａ ｔｈｅｏｒｅｔｉｃａｌ ｂａｓｉｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ
ｉｔｓ ｈｙｐｏｇｌｙｃｅｍｉｃ ｆｌｏｗｅｒ ｔｅａ， ａｎｄ ａｌｓｏ ｗａｓ ｏｆ ｇｒｅａｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｉｔｓ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ａｎｄ ｔｈｅ
ｆｕｒｔｈｅｒ ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ ｉｔｓ Ｈｙｐｏｇｌｙｃｅｍｉｃ ｅｆｆｅｃｔ．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ：Ａｐｉｏｓ ａｍｅｒｉｃａｎａ Ｍｅｄｉｋｕｓ； Ｔｏｔａｌ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ； Ｔｏｔａｌ ｓａｐｏｎｉｎｓ； Ｔｏｔａｌ ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ； Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ ａｃｔｉｖｉｔｙ； α⁃
Ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｙ
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