全 文 ：热带亚热带植物学报 2004，12(5)：471-472
Journal ofTropical and SubtropicalBotany
细裂银叶菊叶的组织培养繁殖研究
龚 伟， 胡庭兴，宫渊波，余 峥，王米力，辜云杰
(四川农业大学林学园艺学院，四川 稚安 625014)
摘要 ：以细裂银叶菊叶片为材料，进行愈伤组织的诱导、分化培养及生根诱导培养。结果表明：叶片愈伤组织的诱导以
MS+2,4一D 2 mg L。+BA l mg L。 +NAA 0．1 mg L一。培养基较好：分化培养以MS t BA 0．5 mg L-。+NAA 0．1 mg L。为
好；生根诱导以 1／2MS+NAA 0．0l mg L-。效果最好。
关键词：细裂银叶菊；组织培养：植株再生
中图分类号：Q943．1 文献标识码：A 文章编号：l005—3395(2004)05—047l一02
In vitro Propagation of Senecio cineraria cV Silver Dust
GONG Wei，HU Ting-xing，GONG Yuan-bo，YU Zheng，WANG Mi-1 i，GU Yun-j ie
(Colege of Forestry and Horticulture，Swhuan Agricuhural University，Ya’an 625014，China)
Abstract：The leaves ofSenecio cineraria CV．Silver Dust were used to study the callus induction，shoots induction
and rooting． It was shown that MS medium supplemented with 2 mg L～2,4一D+I mg L～BA+0．1 mg L。 NAA was
good for callus induction，while MS medium containing 0．5 mg L～BA+0．1 mg L～NAA，half-strength MS medium
containing 0．0 1 mg L NAA gave best results for shoot induction and for rooting．respectively．
Key words：Senecio cineraria CV．Silver Dust；Tissue culture；Plant regeneration
细裂银叶菊(Senecio cineraria CV．Silver Dust)为
菊科千里光属，是一种重要的园林观叶植物。其株
高约 l5—30 cm，叶厚，叶缘呈不规则深裂或浅裂，全
株密被白色绒毛，犹如皑皑 白雪披被，属观叶植物
中叶色最独特的一种，观赏价值较高，颇受喜爱Ⅲ。
目前，细裂银叶菊主要靠播种和扦插繁殖，受季节
和材料限制而导致繁殖系数低、速度较慢 ，不能满
足市场的需求。采用组织培养方式可能是获得优质
细裂银叶菊苗木的有效途径之一，而有关细裂银叶
菊叶的组织培养尚未见报道。本文用细裂银叶菊叶
进行愈伤组织诱导、植株再生研究，为细裂银叶菊
快繁提供科学资料。
灵的混合液漂洗 l0一l5 min，流水冲洗 1 h。在无菌条
件下，用 75％酒精消毒 0．5 rain，0．1％升汞(HgCl2)处
理 6 min左右，无菌水冲洗 5-6次后，将叶片切成大
小为0．5 cm×O．5 cm—1．0 cm×1．0 cm的小块，接种于
愈伤组织诱导培养基上，40 d后统计诱导率。把诱导
出的愈伤组织接种于分化培养基上培养，观察其分
化与增殖情况。将所获的健壮无根单苗接种于生根
培养基上诱导生根，30 d后统计生根情况。
以 MS为基本培养基，生长调节剂采用 2，4．D、
BA和 NAA，每种培养基均附含 O．7％的琼脂和 3％
的蔗糖(其中生根培养基为 1．5％1，pH 5．8—6．0。培养
条件 ：培养 室温 度为 25±2。C，光照强度 1 500—
2 000 lx，光照 12 h d～。
1材料和方法
2结果和分析
供试材料为盆栽细裂银叶菊，在 2月下旬，选
取植株生长健壮，无病虫害的幼嫩叶片。将叶片用 2．1愈伤组织的诱导
自来水冲洗数次后，用含 1％的洗衣粉和 1％的消洗 将叶片接种于愈伤组织诱导培养基上培养。
收稿 日期 ：2003—06—17 接受 日期 ：2003—10—08
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热带亚热带植物学报 第 12卷
12 d后叶片边缘便开始膨大形成黄白色的愈伤组织；
30 d后愈伤组织开始迅速生长，40 d时在培养基(1)
MS+2,4一D 1 mgL一 +BA 0．5mgL一 +NAA 0．1 mgL‘ ：
(2)MS+24一D 1 mgL +BA 1 mgL- +NAAO．1 mgL～；
(3)MS+2,4一D 2 mg L‘ +BA 0．5 mg L‘ +NAA
0．1 mg L‘ 和(4)MS+2，4一D 2 mg L‘ +BA 1 mg L +
NAA 0．1 mg L 中的诱导率分别为 35．2％、42．7％、
67．4％、86．3％；前两种培养基中的愈伤组织生长较
慢且较小；后两种中的生长较快且较大。
可以看出，培养基中附加不同浓度的 2．4一D、
BA与 NAA，愈伤组织的诱导率以及生长速度和大
小均有一定的差异，随着 2，4一D和 BA浓度的升高
其诱导率逐渐升高，而且愈伤组织的生长速度也随之
加快 。2．0 mg L’2,4一D、1．0 mg L。BA与 0．1 mg L。
NAA组合对叶片的愈伤组织诱导率最高，且生长
迅速，疏松成颗粒状。
2．2丛生芽的诱导 一
将诱导出的愈伤组织转入增殖培养基上培养，
愈伤组织继续增大，20 d后，黄 白色的愈伤组织逐
渐转绿，分化出丛生芽。待愈伤组织完全分化出丛生
芽后，分成芽数相近的芽丛进行增殖培养。芽生长与
分化较迅速，30 d可继代一次，在培养基(4)MS+BA
0．5 mg L～+NAA 0．1 mg L一；(5)MS+BA 1．0 mg L。+
NAA 0．1 mg L- ；(6)MS+BA 1．5 mg L +NAA
0．1 mgL 中的增殖倍数(只统计苗高大于 1．0 cm的
芽)分别为 9．2、4．5、0；培养基(4)上的丛生芽分化的
芽多且生长适中，而培养基(5)和(6)上的芽少且矮
小。
可看出，随着 BA浓度的增加，芽的增殖倍数却
下降，说明高浓度的BA抑制了丛生芽的形成和芽
的高径生长。0．5 mg L。的BA有利于愈伤组织的生
长和分化，产生的有效苗也最多。
2．3不定根的诱导
将生长健壮的无根单苗接种于生根培养基上，
6 d后芽苗基部开始膨大突起，12 d后开始形成白
色小根。在 1／2MS或 1／2MS分别附加 0．0l、0．05、
0．1 mg L。NAA的培养基上诱导生根 ，30 d后生根
率分别为 81．3％、87．5％、78．2％、75．1％；平均根数分
别为 4．3条、5．2条、3．7条、3．4条。在不含 NAA或
含0．O1 mg L。NAA的培养基上的不定根整齐均匀，
含 0．05和 0．1 mg L。NAA的培养基上的不定根生
长慢且不均匀。
可以看出，0—0．1 mgL。的NAA均能诱导生根，
且生根率都在 75％以上。但不同浓度的NAA对根的
诱导有一定的差异。当NAA浓度为 0．O1 mgL一时，
对无根单芽的生根诱导效果最好，并且生根较快，
根多，整齐而均匀。
2．4试管苗的移栽
将生根瓶苗，在温室大棚 中保湿预培养 2 d
后，洗去根部培养基，移栽到富含有机质的营养袋
中，用地膜覆盖保湿 30 d后，统计其成活率，结果达
90％以上 。
3结论
本试验 以细裂银叶菊叶片为外植体在 MS+
2，4一D 2 mg L。+BA l mg L。+NAA 0．1 mg L。培养基
中进 行愈伤 组织的诱导 ，40 d后的诱导率 可达
86．3％；分化培养中将芽丛在 MS+BA 0．5 mg L。+
NAA0．1 mgL。上培养，30 d可继代一次，增殖倍数
可达 9．2倍；将健壮的无根单芽接种于 1／2MS+
NAA 0．O1 mgL。上进行生根诱导，30 d生根率可达
87．5％，且根多、生根整齐，生根苗移栽成活率高，生
长正常。本试验研究结果符合组培快繁的要求，可
以进行大规模的工厂化生产。
参考文献
[1]薛聪贤．景观植物实用图鉴 6观叶植物 225种 [M]．杭州：浙江
科学技术出版社．2000．
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