全 文 ：紫 茎 泽 兰(Eupatorium adenophorum Spreng.)
为菊科(Asteraceae)泽兰属多年生草本植物，原产
于中北美洲墨西哥、哥斯达黎加等地，现已广泛分
布于世界热带、亚热带的 30 多个国家和地区，成为
世界性入侵杂草[1–2]。紫茎泽兰于 20 世纪 40 年代
自中缅边境进入我国云南省，现已广泛分布于我国
云南、贵州、四川、重庆、广西、西藏以及台湾等省市
区，该植物的入侵已给当地的生物多样性和原有的
自然生态系统造成了极大危害[3]。紫茎泽兰的极强
入侵危害性除了与其拥有极强的生命力和繁殖力
有关之外，还与它能产生丰富的生物活性化学成分
有着直接紧密的联系，是这些生物活性物质赋予了
紫茎泽兰强的化感效应、毒性以及突出的生物学防
御能力等。目前关于紫茎泽兰的研究主要集中在
其生物学特征、危害及其控制措施，然而有关紫茎
泽兰化学成分的研究报道还相对较少。目前已报
热带亚热带植物学报　2015， 23(6)： 697 ~ 702
Journal of Tropical and Subtropical Botany
收稿日期： 2015–02–05　　　　接受日期： 2015–03–31
基金项目： 国家自然科学基金面上项目(30970453, 31270406)； 国家 973 计划项目(2009CB119201)； 植物化学与西部植物资源持续利用国家重
点实验室开放课题(P2012-KF05)； 北京市博士后科研活动经费(2013ZZ-33)资助
作者简介： 张梅，女，博士 , 研究方向为天然产物化学。
* 通信作者 Corresponding author. E-mail: zhmei@scbg.ac.cn
紫茎泽兰的化学成分研究
张梅1*, 刘伟丽1, 高峡1, 谭建文2, 万方浩3
(1. 北京市理化分析测试中心，有机材料检测技术与质量评价北京市重点实验室，北京 100089； 2. 中国科学院华南植物园，中国科学院植物资
源保护与可持续利用重点实验室，广州 510650； 3. 中国农业科学院植物保护研究所，植物病虫害生物学国家重点实验室，北京 100193)
摘要： 为了解紫茎泽兰(Eupatorium adenophorum Spreng.)的化学成分，从其乙醇提取物中分离得到 7 个化合物。通过波
谱 分 析，分 别 鉴 定 为 万 寿 菊 苷 (1)、7-O-(6-methoxykaempferol)-β-D-glucopranoside (2)、4′-甲 基 醚 万 寿 菊 苷 (3)、3-O-(6-
methoxykaempferol)-β-D-glucopranoside (4)、邻苯二甲酸二丁酯 (5)、邻苯二甲酸二(2-乙基)己酯 (6)、1,4-bis(2-benzoxazolyl)
naphthalene (7)。其中化合物 1~4 为首次从紫茎泽兰中分离得到。
关键词： 紫茎泽兰； 黄酮类化合物； 化学成分
doi: 10.11926/j.issn.1005–3395.2015.06.015
Study on Chemical Constituents from Eupatorium adenophorum Spreng.
ZHANG Mei1*, LIU Wei-li1, GAO Xia1, TAN Jian-wen2, WAN Fang-hao3
(1. Beijing Center for Physical and Chemical Analysis, Beijing Key Laboratory of Organic Materials Testing Technology & Quality Evaluation,
Beijing 100089, China; 2. Key Laboratory of Plant Resources Conservation and Sustainable Utilization, South China Botanical Garden, Chinese
Academy of Sciences, Guangzhou 510650, China; 3. State Key Laboratory for Biology of Plant Diseases and Insect Pests, Institute of Plant Protection,
Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing 100193, China)
Abstract: In order to understand the chemical constituents of Eupatorium adenophorum Spreng., seven
compounds were isolated from its ethanol extract. On the basis of spectral data, they were identified as patulitrin (1),
7-O-(6-methoxykaempferol)-β-d-glucopranoside (2), 4′-methoxylpatulitrin (3), 3-O-(6-methoxykaempferol)-β-d-
glucopranoside (4), dibutyl phthalate (5), bis(2-ethylhexyl)phthalat (6), 1,4-bis(2-benzoxazolyl)naphthalene (7).
Compounds 1–4 were isolated from this plant for the first time.
Key words: Eupatorium adenophorum; Flavonoids; Chemical constituent
698 第23卷热带亚热带植物学报
道的紫茎泽兰化学成分主要包括有单萜类、倍半萜
类、三萜类、甾体、黄酮类、苯丙素类及相关衍生物，
其中部分化学成分已被发现具有化感、杀虫、拒食、
抑菌及抗肿瘤等活性[4–6]。为了进一步揭示紫茎泽
兰具极强入侵性的生物活性化学物质基础，为紫茎
泽兰的开发利用开辟新途径，我们对紫茎泽兰的化
学成分进行了研究，前期已分离得到多种酚酸类、
奎尼酸类以及萜类化合物[7–9]等。本文将进一步对
紫茎泽兰中首次分离得到的黄酮类化合物，以及其
他几种化合物的提取分离与结构鉴定进行报道。
1 材料和方法
1.1 材料
紫茎泽兰(Eupatorium adenophorum Spreng.)全
株于 2009 年 7 月采自云南省昆明市郊，经中国科
学院华南植物园邢福武研究员鉴定，标本保存在中
国科学院华南植物园生物有机化学研究组实验室。
1.2 仪器
柱色谱正相层析硅胶为青岛海洋化工有限公
司产品；反相层析硅胶 YMC ODS-A (50 μm)为日
本 YMC 公司生产；薄层色谱正相硅胶板(HFGF254)
为 山 东 烟 台 江 友 硅 胶 开 发 有 限 公 司 产 品；凝 胶
Sephadex LH-20 为 瑞 典 Amersham Biosciences 公
司生产。减压浓缩采用日本东京理化公司 N-1000
旋转蒸发仪、CCA-1110 循环式冷却箱和 SB-1000
电热恒温水浴锅；HPLC 采用日本岛津公司 LC-
20AT 型液相色谱仪、SPD-M20A 检测器和 Shim-
Pack PRC-ODS 色 谱 柱(粒 径 5 μm, 孔 径 12 nm,
250 mm×20 mm)；高效液相半制备使用北京创新
通恒科技有限公司的 HPLC 半制备系统，泵型号
为 P3000，检 测 器 为 UV3000 UV-VIS，色 谱 柱 为
Fuji-C18 (10 μm-100A)；中 压 半 制 备 采 用 上 海 利
穗科技有限公司(Dr Flash-S)分离纯化系统；电喷
雾质谱(ESIMS)采用美国应用生物系统公司 MDS
SCIEX API 2000 LC/MS/MS 仪，以甲醇为溶剂，直
接进样测定；1H NMR 谱和 13C NMR 谱分别采用
Bruker DRX-400 核磁共振仪和 Bruker Avance 600
核磁共振仪，并以四甲基硅烷为内标测定。
1.3 提取分离
紫茎泽兰全株(干重 10 kg)粉碎后用 95% 的乙
醇浸泡提取 3 次，每次 24 h，合并提取液。经减压
浓缩将提取液中乙醇抽干后加适量水使其成为混
悬液，依次用石油醚、乙酸乙酯与正丁醇各萃取 5
次，减压浓缩后分别得到石油醚部分(93.1 g)、乙酸
乙酯萃取部分(80.0 g)以及正丁醇萃取部分(98.2 g)。
石油醚萃取部分经正相硅胶柱层析(200~300 目)，
以 石 油 醚-氯 仿(90：10~0：100)和 氯 仿-甲 醇(100：
0~80：20)为淋洗剂进行梯度洗脱，检测合并主点相
同的流分，得到 P1~P10 共 10 个组分。组分 P6 (30 g)
经 ODS 反相硅胶柱层析(50 µm)，采用甲醇-水(60：
40~100：0)梯度洗脱，合并相同主点流分得 P6-1~P6-7
共 7 个亚组分。亚组分 P6-3 (2.3 g)经正相硅胶柱层
析(200~300 目)，以石油醚-丙酮(300：0~100：5)梯度
洗脱，合并相同主点流分得 5 个亚组分。亚组分
P6-3-5 (0.2 g)经高效液相色谱(HPLC)制备，以 75%
甲醇-水为流动相，流速为 15 mL min–1，得化合物
5 (tR=36 min, 3.5 mg)。
乙 酸 乙 酯 萃 取 部 分(80.0 g)经 硅 胶 柱 层 析
(200~300 目)，以氯仿-甲醇(95：5~60：40)为淋洗剂
梯度洗脱，经 TLC 薄层层析检测合并主点相同的
流 分，得 到 E1~E14 共 14 个 组 分。 组 分 E2 (0.3 g)
经中压正相硅胶柱层析(200~300 目)，以石油醚 -
丙 酮(100：1~90：10)梯 度 洗 脱，合 并 相 同 主 点 流
分 得 E2-1 和 E2-2 亚 组 分。E2-1 亚 组 分 经 Sephadex
LH-20 柱层析，以丙酮洗脱，得化合物 6 (5.0 mg)；
E2-2 亚 组 分 经 Sephadex LH-20 柱 层 析，以 丙 酮 洗
脱，再 经 TLC 薄 层 制 备，展 开 剂 为 石 油 醚-丙 酮
(10：1)得 化 合 物 7 (2.0 mg)。E12 组 分(10.0 g)经 中
压正相硅胶柱层析(200~300 目)，以氯仿-甲醇(95：
5~60：40)梯度洗脱，检测合并主点相同的流分，得
到 E12-1~E12-6 共 6 个 亚 组 分。E12-4 亚 组 分(21.3 g)
经 ODS 反 相 硅 胶 柱 层 析(50 µm)，以 甲 醇-水(30：
70~60：40)梯 度 洗 脱，合 并 30% 甲 醇-水 洗 脱 部
分，经正相硅胶柱层析(200~300 目)，以石油醚-丙
酮(60：40)洗 脱 得 化 合 物 4 (35 mg)；45% 甲 醇-水
洗脱流分中有沉淀析出，甲醇冲洗后得化合物 3
(7 mg)。组分E13 (9.0 g)经正相硅胶柱层析(200~300目)，
以氯仿-甲醇(98：2~80：20)梯度洗脱，检测合并主点
相同的流分，得到 E13-1~E13-5 共 5 个亚组分。E13-4
亚组分(2.4 g)经 ODS 反相硅胶柱层析(50 µm)，以
甲醇-水(20：80~90：10)梯度洗脱，合并相同主点流
分得 3 个亚组分，E13-4-2 亚组分经 Sephadex LH-20
柱层析，甲醇洗脱，得化合物 2 (150 mg)。E13-5 亚
第6期 699
组分(2.5 g)经 ODS 反相硅胶柱层析(50 µm)，以甲
醇-水(20：80~90：10)梯度洗脱，其中有黄色沉淀
析出，用甲醇冲洗后得化合物 1 (7 mg)。
1.4 结构鉴定
万寿菊苷 (Patulitrin, 1)　　黄色粉末；分子式
C22H22O13; ESIMS m/z: 517 [M + Na]
+； ESIMS m/z:
493 [M – H]–, 1H NMR (600 MHz, DMSO-d6): δ 6.93
(1H, s, H-8), 7.71 (1H, d, J = 1.8 Hz, H-2′), 6.89 (1H,
d, J = 8.4 Hz, H-5′), 7.55 (1H, dd, J = 8.4, 1.8 Hz,
H-6′), 5.11 (1H, d, J = 7.2 Hz, H-1′′), 3.32~3.46 (3H,
overlapped, H-2′′, H-3′′, H-5′′), 3.20 (1H, t, J =
9.0 Hz, H-4′′), 3.72 (1H, d, J = 10.2 Hz, H-6′′a), 3.50
(1H, dd, J = 10.2, 6.0 Hz, H-6′′b), 3.77 (3H, s, OCH3-
6), 12.47 (1H, brs, OH-5); 13C NMR (150 MHz,
DMSO-d6)：δ 147.8 (C-2), 135.9 (C-3), 176.2 (C-4),
151.2 (C-5), 131.9 (C-6), 156.4 (C-7), 93.9 (C-8),
151.1 (C-9), 105.1 (C-10), 121.9 (C-1′), 115.6 (C-2′),
145.1(C-3′), 148.0 (C-4′), 115.5 (C-5′), 120.1 (C-6′),
100.2 (C-1′′), 73.3 (C-2′′), 76.7 (C-3′′), 69.7 (C-4′′),
77.3 (C-5′′), 60.7 (C-6′′), 60.4 (OCH3-6)。上述数据
与文献[10]报道一致。
6-甲 氧 基-山 奈 酚-7-β-D-葡 萄 糖 苷 [7-O-(6-
Methoxykaempferol)-β-D-glucopranoside, 2]
黄色粉末； 分子式C22H22O12; ESIMS m/z: 479 [M + H]
+,
501 [M + Na]+；477 [M – H]–; 1H NMR (400 MHz,
CD3OD): δ 6.85 (1H, s, H-8), 8.09 (1H, d, J = 8.0 Hz,
H-2′), 6.88 (2H, d, J = 8.0 Hz, H-3′, H-5′), 8.09 (1H,
d, J = 8.0 Hz, H-6′), 5.09 (1H, d, J = 7.2 Hz, H-1′′),
3.56 (2H, m, H-2′′, H-5′′), 3.53 (1H, t, J = 9.2 Hz, H-3′′),
3.42 (1H, t, J = 9.2 Hz, H-4′′), 3.94 (1H, d, J = 12.0 Hz,
H-6′′a), 3.71 (1H, dd, J = 12.0, 5.6 Hz, H-6′′b), 3.87
(3H, s, OCH3-6);
13C NMR (150 MHz, DMSO-d6):
δ 147.7 (C-2), 135.7 (C-3), 176.2 (C-4), 151.9 (C-
5), 131.8 (C-6), 156.4 (C-7), 94.0 (C-8), 151.4 (C-
9), 105.0 (C-10), 121.6 (C-1′), 115.5 (C-2′), 129.6
张梅等：紫茎泽兰的化学成分研究
图 1 化合物 1~7 的化学结构
Fig. 1 Structures of compounds 1–7
700 第23卷热带亚热带植物学报
(C-3′),159.4 (C-4′), 129.6 (C-5′), 115.5 (C-6′),
100.2 (C-1′′), 73.2 (C-2′′), 76.7 (C-3′′), 69.6 (C-4′′),
77.3 (C-5′′), 60.6 (C-6′′), 60.3 (OMe-6)。13C NMR
(100 MHz, CD3OD): δ 149.1 (C-2), 137.3 (C-3),
177.6 (C-4), 153.1 (C-5), 133.3 (C-6), 157.6 (C-7),
95.4 (C-8), 153.2 (C-9), 106.7 (C-10), 123.5 (C-1′),
116.3 (C-2′), 131.0 (C-3′), 160.8 (C-4′), 131.0 (C-5′),
116.3 (C-6′), 102.0 (C-1′′), 74.8 (C-2′′), 78.0 (C-3′′),
71.3 (C-4′′), 78.5 (C-5′′), 62.5 (C-6′′), 61.5 (OMe-
6)。在 DMSO-d6 中测试的氢谱数据如下：
1H NMR
(600 MHz, DMSO-d6): δ 6.97 (1H, s, H-8), 8.07 (1H,
d, J = 9.0 Hz, H-2′), 6.93 (2H, d, J = 9.0 Hz, H-3′,
H-5′′), 8.07 (1H, d, J = 9.0 Hz, H-6′), 5.11 (1H, d,
J = 7.2 Hz, H-1′′), 3.34~3.49 (3H, overlapped, H-2′′,
H-5′′, H-6′′b), 3.32 (1H, m, H-3′′), 3.19 (1H, m, H-4′′),
3.72 (1H, d, J = 10.2 Hz, H-6′′a), 3.76 (3H, s, OCH3-6),
12.46 (1H, brs, OH-5)。经数据分析及与化合物 1
比较，鉴定化合物 2 为 6-甲氧基-山奈酚-7-β-D-葡萄
糖苷。
4′-甲基醚-万寿菊苷(4′-Methoxylpatulitrin, 3)
　　 黄 色 粉 末； 分 子 式 为 C23H24O13; ESIMS m/z:
531 [M + Na]+; 507 [M – H]–; 1H NMR (400 MHz,
CD3OD): δ 6.86 (1H, s, H-8), 7.73 (1H, d, J = 1.8 Hz,
H-2′), 7.01 (1H, d, J = 8.4 Hz, H-5′), 7.75 (1H, dd, J =
8.4, 1.8 Hz, H-6′), 5.10 (1H, d, J = 7.2 Hz, H-1′′), 3.57
(1H, m, H-2′′), 3.52 (1H, t, J = 9.0 Hz, H-3′′), 3.41
(1H, t, J = 9.0 Hz, H-4′′), 3.57 (1H, m, H-5′′), 3.94
(1H, dd, J = 12.0, 1.8 Hz, H-6′′a), 3.72 (1H, dd, J =
12.0, 6.0 Hz, H-6′′b), 3.88 (3H, s, OCH3-6), 3.91 (3H,
s, OCH3-4′);
13C NMR (100 MHz, CD3OD): δ 148.5
(C-2), 137.7 (C-3), 177.7 (C-4), 153.1 (C-5), 133.4
(C-6), 157.7 (C-7), 95.5 (C-8), 153.2 (C-9), 106.7 (C-
10), 125.2 (C-1′), 115.8 (C-2′), 147.4 (C-3′), 150.9 (C-
4′), 112.2 (C-5′), 121.8 (C-6′), 102.0 (C-1′′), 74.8 (C-
2′′), 78.0 (C-3′′), 71.3 (C-4′′), 78.5 (C-5′′), 62.6 (C-6′′),
61.5 (OCH3-6), 56.4 (OCH3-4′)。经数据分析及与化
合物 2 比对，化合物 3 鉴定为 4′-甲基醚万寿菊苷。
6-甲 氧 基-山 奈 酚-3-β-D-葡 萄 糖 苷 [3-O-(6-
Methoxykaempferol)-β-D-glucopranoside, 4]
黄 色 粉 末； 分 子 式 为 C22H22O12; ESIMS m/z: 479
[M + H]+, 501 [M + Na]+; 477 [M – H]–; 1H
NMR (600 MHz, DMSO-d6): δ 6.52 (1H, s, H-8),
8.03 (2H, d, J = 9.0 Hz, H-2′, H-6′), 6.88 (2H, d, J =
9.0 Hz, H-3′, H-5′), 5.45 (1H, d, J = 7.2 Hz, H-1′′),
3.08~3.33 (5H, overlapped, H-2′′, H-3′′, H-4′′, H-5′′,
H-6′′b), 3.57 (1H, dd, J = 12.0, 4.2 Hz, H-6′′a), 3.75
(3H, s, OCH3-6), 12.69 (1H, brs, OH-5);
13C NMR
(150 MHz, DMSO-d6): δ 159.9 (C-2), 132.8 (C-3),
177.6 (C-4), 152.3 (C-5), 131.3 (C-6), 156.2 (C-7),
93.9 (C-8), 151.6 (C-9), 104.6 (C-10), 120.9 (C-1′),
115.0 (C-2′), 130.8 (C-3′), 159.9 (C-4′), 130.8 (C-5′),
115.0 (C-6′), 100.8 (C-1′′), 74.2 (C-2′′), 76.4 (C-3′′),
69.9 (C-4′′), 77.4 (C-5′′), 60.8 (C-6), 59.9 (OCH3-6)。
在 CD3OD 中测试的核磁数据：
1H NMR (400 MHz,
CD3OD): δ 6.49 (1H, s, H-8), 8.04 (2H, d, J = 9.0 Hz,
H-2′, H-6′), 6.87 (2H, d, J = 9.0 Hz, H-3′, H-5′), 5.26
(1H, d, J = 7.2 Hz, H-1′′), 3.43 (1H, m, H-2′′), 3.41
(1H, m, H-3′′), 3.30 (1H, overlapped, H-4′′), 3.20
(1H, m, H-5′′), 3.68 (1H, dd, J = 12.0, 2.0 Hz, H-6′′a),
3.52 (1H, dd, J = 12.0, 5.6 Hz, H-6′′b), 3.86 (3H, s,
OCH3-6);
13C NMR (100 MHz, CD3OD): δ 161.6 (C-
2), 135.1 (C-3), 179.8 (C-4), 153.7 (C-5), 132.7 (C-
6), 158.8 (C-7), 95.0 (C-8), 153.8 (C-9), 106.2 (C-10),
122.8 (C-1′), 116.1 (C-2′), 132.3 (C-3′), 159.2 (C-4′),
132.3 (C-5′), 116.1 (C-6′), 104.0 (C-1′′), 75.7 (C-2′′),
78.0 (C-3′′), 71.4 (C-4′′), 78.4 (C-5′′), 62.6 (C-6′′),
60.9 (OCH3-6)。上述数据与文献[11]报道一致。
邻苯二甲酸二丁酯 (Dibutyl phthalate, 5)　　
白色粉末； 分子式为 C16H22O4; ESIMS m/z: 279 [M +
H]+, 301 [M + Na]+; 1H NMR (400 MHz, CDCl3): δ
7.71 (2H, dd, J = 6.4, 3.2 Hz, H-3, H-6), 7.53 (2H, dd,
J = 6.4, 3.2 Hz, H-4, H-5), 4.31 (4H, t, J = 6.8 Hz, H2-
3′, H2-3′′), 1.72 (4H, m, H2-4′, H2-4′′), 1.44 (4H, m,
H2-5′, H2-5′′), 0.98 (6H, t, J = 6.8 Hz, H3-6′, H3-6′′)。
上述数据与文献[12]报道一致。
邻苯二甲酸二(2-乙基)己酯 [Bis(2-ethylheXyl)
phthalat, 6]　　无色油状；分子式 C24H38O4; ESIMS
m/z: 391 [M + H]+, 413 [M + Na]+; 1H NMR
(400 MHz, CDCl3): δ 7.70 (2H, dd, J = 6.4, 3.2 Hz,
H-3, H-6), 7.53 (2H, dd, J = 6.4, 3.2 Hz, H-4, H-5),
4.21 (4H, t, J = 6.4 Hz, H2-3′, H2-3′′), 1.67 (2H, m,
H2-4′, H2-4′′), 1.41 (4H, m, H2-5′, H2-5′′), 1.25~1.36
(12H, overlapped, H2-6′, H2-6′′, H2-7′, H2-7′′, H2-9′,
H2-9′′), 0.91 (6H, t, J = 7.6 Hz, H3-8′, H3-8′′), 0.89 (6H,
t, J = 6.4 Hz, H3-10′, H3-10′′)。上述数据与文献[13]
报道一致。
第6期 701
4-Bis(2-benzoxazolyl)naphthalene (7)　　 浅
黄色针晶；分子式 C24H14N2O2; ESIMS m/z: 363 [M +
H]+, 385 [M + Na]+; 1H NMR (400 MHz, CDCl3): δ
9.62 (2H, dd, J = 6.4, 3.2 Hz, H-5, H-5′), 8.55 (2H, s,
H-6, H-6′), 7.82 (2H, dd, J = 6.4, 3.2 Hz, H-7, H-7′),
7.47 (2H, dd , J = 7.2, 2.0 Hz, H-9, H-9′), 7.44 (2H,
dd , J = 7.2, 2.0 Hz, H-10, H-10′), 7.93 (2H, dd, J =
5.2, 2.4 Hz, H-11, H-11′), 7.69 (2H, dd, J = 5.2, 2.4 Hz,
H-12, H-12′); 13C NMR (100 MHz, CDCl3): δ 162.1
(C-1, C-1′), 150.3 (C-2, C-2′), 142.3 (C-3, C-3′),
131.3 (C-4, C-4′), 128.2 (C-5, C-5′), 128.1 (C-6, C-6′),
126.9 (C-7, C-7′), 126.8 (C-8, C-8′), 125.8 (C-9, C-9′),
124.8 (C-10, C-10′), 120.6 (C-11, C-11′), 110.7 (C-12,
C-12′)。上述数据与文献[14]报道一致。
2 结果和讨论
紫茎泽兰乙醇提取物经石油醚和乙酸乙酯萃
取分部，通过硅胶柱层析、葡聚糖凝胶柱层析等色
谱分离手段，从石油醚萃取部分分离得到 1 个化合
物，从乙酸乙酯萃取部分分离得到 6 个化合物，并
对他们的核磁数据进行了详细报道。经波谱数据
分析和文献比对，分别鉴定为万寿菊苷 (1)、7-O-(6-
methoxykaempferol)-β-D-glucopranoside (2)、4′-甲
基 醚 万 寿 菊 苷 (3)、3-O-(6-methoxykaempferol)-β-
D-glucopranoside (4)、邻苯二甲酸二丁酯 (5)、邻苯
二甲酸二(2-乙基)己酯 (6)、1,4-bis(2-benzoxazolyl)
naphthalene (7)。
黄酮类化合物 1~4 为首次从紫茎泽兰中分离
得到。由于化合物 1~3 可参考的文献数据年代较
远，存在数据不全或数据较难查找等问题，故本研
究采用多种氘代试剂对分离得到的 4 种黄酮类化
合物进行了核磁测试，并完成了他们的结构鉴定。
该工作既对化合物 1~4 的核磁数据进行了完善与
补充，也为其他黄酮类化合物的研究工作提供了参
考数据。
文献报道和本研究均表明紫茎泽兰中含有多
种黄酮类物质[15–18], 黄酮类化合物具有多种生物活
性，其在抗氧化、抗癌、防癌、抑制脂肪酶等方面有
显著效果。另据文献报道，邻苯二甲酸二丁酯 (5)
对苜蓿(Medicago sativa)具有较强的化感抑制作
用，对有机磷细菌的生长具有抑制作用 , 暗示邻苯
二甲酸二丁酯为紫茎泽兰中的化感物质，且在紫茎
泽兰以土壤微生物为桥梁的养分高效转化吸收中
起重要作用[19]。
本研究进一步丰富了紫茎泽兰的生物活性化
学物质基础，对于促进紫茎泽兰的有效开发利用具
有积极意义。
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