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Procaryotic Expression of PEPC from Halophyte Suaeda aralocaspica and Analysis of Stress Tolerance of the Recombinant Strain

异子蓬PEPC基因原核表达及其重组菌在非生物胁迫下的耐受力解析



全 文 :书西北植物学报!
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文章编号$
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收稿日期$
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基金项目$国家自然科学基金"
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#&新疆自治区优秀青年科技人才培养项目"
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作者简介$程
!
刚"
#&1)
#!男!在读博士研究生!研究方向为植物学
2*34.5
$
60
-
7
8
#!%95
8!
#(%,:73
!!"
通信作者$兰海燕!博士!教授!研究方向$植物抗逆分子生物学
2*34.5
$
540;4.
8
40
!
<
-
=,6>=,:0
异子蓬
1213
基因原核表达及其重组菌
在非生物胁迫下的耐受力解析

!
刚!兰海燕"
"新疆大学生命科学与技术学院新疆生物资源基因工程重点实验室!乌鲁木齐
1%""+(
#

!
要$该研究在
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"
B2%
#中表达了
C
+
盐生植物异子蓬的磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶基因
"
+!+,
#!并进行了酶学特性及非生物胁迫响应分析!以期初步阐明
+!+,
基因在非生物胁迫下的生物学功能!为
异子蓬
D2DC
的非生物胁迫的抗性生理研究提供参考依据基于
$E*FGC2
技术获得异子蓬
+!+,
全长基因
"
H60I40J
登录号为
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#!构建了
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L
H2M*+?*#*+!+,
重组菌株通过分光光度法和酶联
免疫吸附技术"
2NOPG
#分别测定了
D2DC
重组蛋白的酶活和含量!并检测
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$$
L
H2M*+?*#*+!+,

组菌株在非生物胁迫下的耐受性生物信息学分析发现!该
+!+,
基因的
:BQG
全长为
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L
!编码
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个氨
基酸!与甜菜"
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2
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#
D2DC
的氨基酸序列一致性达
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!具有
D2DC
的典型保守结构域"
D2D:4/6
#以及
T5?GUD?V/.FF

TWOHXPBP
Y
KBGH
活性位点&
D2DC
蛋白属
D2DC*#
型的不含信号肽的非分泌型亲水蛋白
Z6/A6@0R57A
结果显示!融合
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D2DC
蛋白的分子量约
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#+"JB
&在
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诱导
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L
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重组菌株显示出更高的
D2DC
酶活及含量!而且
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L
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重组菌在
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1""3375
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"
!"S
聚乙二醇"
D2H
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温度范围(
$"
"
+""
#
375
%
N
甲基紫精和
L
U%,"
"
##,"
的非生物胁迫下生长均明显优于对照研究表明!异子蓬
+!+,
基因的表达提
高了
!-#)*
耐受非生物胁迫的能力
关键词$异子蓬&
C
+
盐生植物&磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶&非生物胁迫
中图分类号$
V1(
&
V1&
!!!
文献标志码$
G
$%"&%
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8
54/6
&
4R.7A.:/A@6//6/
!!
磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶"
D2DC
#是
C
+
光合
途径中重要的光合调控酶!催化磷酸烯醇式丙酮酸
"
D2D
#的
$
*
羧化并以四碳酸形式固定
Ca
!
!充当
Ca
!
泵的作用)#*%*
D2DC
存在于所有植物(绿藻(
光合细菌(古细菌及非光合细菌中!主要参与
C
+

景天酸光合代谢途径)+*$*
D2DC
在植物中主要以
C
+
型(
C
%
型(
CGW
型以及细菌型
+
种同工酶形式
存在)(**除了调控光合作用!
D2DC
还参与三羧酸
循环"
?CG
#中各种生物合成及氮同化过程所消耗
的中间产物的回补反应!在植物(藻类及细菌中起到
重要的非光合协调作用)1*#"*除此之外!
D2DC
在植
物应对逆境胁迫中也发挥重要作用!如非生物胁迫
中的盐)##*(干旱)#!*(低温)#%*(臭氧胁迫)#+*等均能诱

+!+,
基因上调表达!参与植物抗逆反应特别
是通过转基因方法将
C
+
植物
+!+,
基因导入
C
%
经济作物中!以提高其光合速率及胁迫耐受性!从而
增加作物产量和适应性的研究已被广泛报道研究
发现!转玉米
++78

+!+,
基因的拟南芥和水
稻较对照具有更高的光合速率)#$*#(*!干旱胁迫下!过
表达
+!+,
水稻较对照具有更高光耐受性)#*在
生物胁迫中!一些植物病毒能够诱导
+!+,
基因的
高表达!间接帮助植物抵御病毒侵害)#1*
近年来发现的几种单细胞
C
+
植物光合碳同化
模式)#&*!为人类进一步认识光合碳同化途径及其进
化关系提供了新证据异子蓬"
31(%4((&(*)#("
5
6
#(
#作为藜科异子蓬属一年生盐生植物!在中国仅分
布于新疆!生长于重度盐化荒漠!整个生活史均具极
强的抗逆性)!"*异子蓬特有的单细胞
C
+
光合途
径!能够在单个叶肉细胞内经极性区隔化分布的两
种异型叶绿体进行高效光合作用)!#*因此!探索单
细胞
C
+
植物异子蓬中
D2DC
的相关功能对揭示该
物种高光效机制及逆境胁迫响应机制具有重要意
义前期研究中发现异子蓬中至少有
!
种植物型
D2DC
"根据文献命名为
D2DC*#
型和
D2DC*!
型#!
目前获得了
D2DC*#

+!+,
基因的
:BQG

长)!!*本研究通过原核表达异子蓬
D2DC*#

+!+,
基因!分析了
D2DC
在原核表达系统中的酶
学特性!并检测了
D2DC
重组菌在非生物胁迫下的
耐受性能本研究为后续深入分析
D2DC
的功能及
利用其改良作物光合特性和抗逆性提供参考依据
#
!
材料和方法
<,<
!
实验材料
异子蓬"
31(%4((&(*)#("
5
#(
#种植于新疆大学
新疆生物资源基因工程重点实验室阳台本研究所
用的菌株(质粒和
DCF
扩增用引物序列见表
#

<,=
!

!

<>=><
!
&?@5
全长序列的克隆
!
取发育
!
个月的
异子蓬幼苗嫩叶
",#$
Y
!于液氮中磨碎至均匀粉末
状!用
FQG
L
@6
L
D=@6
植物总
FQG
提取试剂盒"天
根#提取异子蓬总
FQG
!置
)1"[
备用
取上 述 总
FQG #
#
Y
!用
W*WNT
试 剂 盒
"
?4K4F4
#反转录合成
:BQG
第一链!以此作为模
板!根据已报道异子蓬
+!+,
基因的部分序列
"
BV$%1%$%
#!以及近源种中相似性较高的
+!+,
保守编码序列"
BV$%1%$!
(
GX&$"((
#设计简并引
物"表
#
#!获得部分序列"缺失
$E
端#
DCF
反应程
序为
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预变性
$3.0
&
+[
变性
%"/
!
$1,1[


%"/
!
![
延伸
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!
%"
个循环后!
![
延伸

3.0
随后!利用
PWGF?6@
?W
FGC2:BQG G3*
L
5.9.:4A.70K.A
"
C570A6:;
!
?4K4F4
#及引物
HPD#

QHPD#
扩增获得
+!+,
基因
$E
端序列获得的
+!+,
全长
:BQG
由上海
P40
Y
70
公司测序
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!
$*$A
生物信息学分析
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西
!

!

!

!

!

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菌株!质粒和
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扩增所用引物
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"
L
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L
5.9.:4A.70
L
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8
类别
C4A6
Y
7@
8
名称
Q436
描述
B6/:@.
L
A.70
来源
F696@60:6
菌株
PA@4.0/
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5
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质粒
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6@4A7@
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!
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PA7@6>.0A;654R
引物"
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#
%E
#
D@.36@
"
$E
#
%E
#
D2DC
+
L
4
G?HHCZGPZHKHGGHK?HHGHGG
本研究
?;./_7@J
D2DC
+
B7_0
4
??GGCCHH?H??C?HCG??CCGH
本研究
?;./_7@J
HPD# GHH?H??GC?C??HHG???CCG?C?CHH
本研究
?;./_7@J
QHPD# HCGHGGC?C?CG?CGHCGGGG?CCC
本研究
?;./_7@J
D2DC
+
L
R
CCHHGG??CG?HHCGGH?H?HGGH??HH
本研究
?;./_7@J
D2DC
+
B7_0
R
???HCHHCCHCGCCHH?H??C?HCG??C
本研究
?;./_7@J
!!
注$4表示
+!+,
同源克隆的简并引物&R表示
+!+,
全长序列的引物&下划线表示酶切位点
Q7A6
$
4
/A40>/97@A;6>6
Y
606@4A6
L
@.36@/=/6>.0;73757
Y
7=/:5706
&
R
/A40>/97@A;6
L
@.36@/=/6>.0A;643
L
5.9.:4A.70799=5*560
Y
A;+!+,
:BQG
&
?;6=0>6@5.06/.A6.0>.:4A6/A;660>70=:564/6/6
^
=60:6,
0:R.,053,0.;,
Y
7]
程序进行序列比对!并用
C5=/A45
M
进行多序列比对分析)!%*用
;AA
L
$%%
_6R,6<*
L
4/
8
,7@
Y
%
A@40/54A6
%在线软件进行蛋白翻译分析&
利 用
D@7A
L
4@43
"
;AA
L
$%%
_6R,6<
L
4/
8
,7@
Y
%
L
@7A*
L
4@43
%#对蛋白质基本理化性质进行预测&
W7A.9
P:40
"
;AA
L
$%%
3
8
;.A/,./R*/.R,:;
%
:
Y
.*R.0
%
37A.9
+
/:40
#对蛋白质功能位点进行预测分析&
;AA
L
$%%
:65*
57,5.96,0:A=,6>=,A_
在线软件进行亚细胞定位预
测&
P.
Y
045D+,"
"
;AA
L
$%%
:R/,>A=,>J
%
/6@].:6/
%
P.
Y
*
045D
%#预测蛋白质信号肽序列&
;AA
L
$%%
6<
L
4/
8
,7@
Y
%
A775/
%
L
@7A/:456,;A35
分析蛋白亲疏水性&
D@6>.:A*
D@7A6.0
"
;AA
L
/
$%%
___,
L
@6>.:A
L
@7A6.0,7@
Y
#及
P_.//*W7>65
"
;AA
L
$%%
/_.//37>65,6<
L
4/
8
,7@
Y
%#预
测蛋白质二级及三级结构
<>=>B
!
基因诱导表达及免疫印迹分析
!

!-#)*
?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
重组菌和
!-#)*
?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#
对照菌!接种于含
#""
#
Y
%
3N
氨苄青霉素的
NI
液体培养基!于
%[
(
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%
3.0
培养至
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(""
",+
"
",(
!加入
",13375
%
N
OD?H
诱导
+;
离心收集
$3N
菌液!用
DIP
"
L
U
,+
#缓冲液洗涤菌体
!
次!加入
#3NDIP
缓冲液!
超声波破碎菌体"功率
!""Z
!超声
%/
!间隔
#"/
!
重复
#"
次#!随后
+[
(
#!"""
Y
离心
#"3.0
!取上
清及
#3NDIP
缓冲液重悬沉淀进行
PBP*DGH2
检测
PBP*DGH2
结束后!
&"T
历时
$"3.0
将蛋
白转印至
DTBb
膜先用
#e#""""
稀释
HP?
?4
Y
鼠源单克隆抗体与膜反应
!;
!再用
#e#""""
羊抗小鼠
O
Y
H
二抗孵育
!;
!洗膜后加入
BGI
显色
液室温避光孵育
$
"
#"3.0
!至出现目的条带后终
止显色反应!观察结果
<>=>C
!
重组菌表达蛋白的酶活分析
!
用索莱宝磷
酸烯醇式丙酮酸羧化酶试剂盒"北京#和朗顿植物磷
酸烯醇式丙酮酸羧化酶酶联免疫检测试剂盒"上
海#!检测
!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,

组菌的
D2DC
酶活性和蛋白含量!以空载菌株
!-
#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#
作为对照样品前处
理步骤为$离心收集
#"3N
菌液!用
DIP
"
L
U,+
#
缓冲液洗涤菌体
!
次!加入
#3N
提取液"含
#""
3375
%
NDWPb

DIP
缓冲液#!超声波破碎菌体
"功率
!""Z
!超声
%/
!间隔
#"/
!共
$3.0
#!随后
+
[
(
1"""
Y
离心
#"3.0
!取上清!置冰上待测按照
B60
Y
等)!+*的方法!在
%+"03
处检测样品吸光度!
通过监测
QGBU
的减少量来评价
D2DC
酶活!每
3
Y
组织蛋白在反应体系中每分钟消耗
#0375
QGBU
定义为一个酶活力单位用生物素双抗体
夹心酶联免疫吸附法"
2NOPG
#评价菌体中
D2DC

含量变化水平
<>=>D
!
重组菌的生长和胁迫耐受性测定
!
重组菌
生长情况测定按照
Q4@4
8
40
等的方法)!$*!并做适当
修改菌体在
",13375
%
NOD?H
诱导表达
+;
!调
节重组菌
!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,

对照菌株
!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#
的初始
aB
值相等!按
#S
"
]
%
]
#的接种量
!
次转接至含
#""
#
Y
%
3N
氨苄青霉素的新鲜
NI
培养基中!每隔
!
;
取样!在
(""03
处测定菌液
aB

重组菌
!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
和对照菌株
!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#
的非生
物胁迫耐受性检测按照
P.0
Y
;
等方法)$*!并做适当
&(#
&
期 程
!
刚!等$异子蓬
+!+,
基因原核表达及其重组菌在非生物胁迫下的耐受力解析
修改将
",13375
%
NOD?H
诱导表达
+;
后的重
组菌和对照菌株调节
aB
值一致!按
#S
"
]
%
]
#的接
种量!接种在添加有
!""
"
1""3375
%
NQ4C5
(
$S
"
!"SD2H("""
(
$"
"
+""
#
375
%
N
甲基紫精以及
L
U%,"
"
##,"

NI
液体培养基!于
%[
(
!!"@
%
3.0
振荡培养温度胁迫实验是将诱导后培养物添
加到
NI
"
L
U,"
#!于
!$[
"
$![
!
!"@
%
3.0
振荡
培养所有非生物胁迫实验每
!;
取样
#
次!在
(""
03
处检测菌液
aB

<,B
!
数据分析
实验数据统计分析及作图采用
H@4
L
;D4>
D@./3$,"#
软件进行
!
!
结果与分析
=><
!
1213
基因克隆及原核表达
以异子蓬总
FQG
反转录获得的
:BQG
为模
板!通过
$E*FGC2
和同源克隆技术!对目的片段进
行扩增!得到
%"""R
L
左右条带"图
#
!
G
#!与预期
片段大小一致
测序结果表明!
+!+,
基因
:BQG
全长为
!&"#
R
L
在线蛋白翻译分析"
;AA
L
$%%
_6R,6<
L
4/
8
,7@
Y
%
A@40/54A6
%#发现!该序列具有完整读码框!可进行后
续蛋白表达后将
+!+,
基因重组子转化
!-#)*
?@40/6AA4
"
B2%
#!得到重组菌
!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
"图
#
!
I
#

#
!
异子蓬
+!+,
基因
:BQG
扩增"
G
#及重组原核表达
载体
L
H2M*+?*#*+!+,
双酶切鉴定"
I
#
W
#
,BN$"""
&
W
!
,BN#$"""
&
G,#,+!+,
基因
DCF
扩增产物&
I,#,!#)F
)

=)/
)
消化的
L
H2M*+?*#
&
!,!#)F
)

=)/
)
消化的
L
H2M*+?*#*+!+,
重组质粒
b.
Y
,#
!
DCF@6/=5A/79+!+,:BQG793-(&(*)#("
5
#(
"
G
#
40>@6/A@.:A.70>.
Y
6/A.7079
L
H2M*+?*#*+!+,]6:A7@
"
I
#
W
#
,BN$"""
&
W
!
,BN#$"""
&
G,#,+!+,
Y
6069@4
Y
360AR
8
DCF
&
I,#,
L
H2M*+?*#>.
Y
6/A6>R
8
!#)F
)
40>=)/
)
&
!,F6:73R.040A
L
54/3.>
L
H2M*+?*#*+!+,>.
Y
6/A6>
R
8
!#)F
)
40>=)/
)
,
=>=
!
异子蓬
$*$A
生物信息学分析
本研究通过生物信息学平台系统分析了异子蓬
D2DC
的蛋白信息
D@7AD4@43
分析发现!异子蓬
+!+,
基因编码
&((
个氨基酸!理论分子量为
##",!JB
!等电点为
(,#"
该蛋白质的主要氨基酸
构成为
N6=
"
#!,!S
#(
H5=
"
1,$S
#(
G@
Y
"
,%S
#(
G54
"
(,1S
#(
G/
L
"
(,#S
#!推测的分子式为
C
+&"%
U
1"#
Q
#%(#
a
#+$"
P
%
理论不稳定系数为
%1,($
!属于
稳定型蛋白亲水性及疏水性分析发现!该蛋白多
肽链中亲水性氨基酸多于疏水性氨基酸且均匀分
布!因此推测异子蓬
D2DC
属于亲水蛋白
前人研究发现!植物中
C
+

D2DC

C
末端

+
位或附近的
#
个氨基酸残基为保守丝氨酸
"
P6@
#!而
C
%

D2DC
的相应位置则为丙氨酸
"
G54
#
)
!#*!!
*
本研究克隆的异子蓬
D2DC

C
末端

$
位氨基酸是丙氨酸"图
!
#!推测可能属于
C
%

D2DC
!并将其命名为
D2DC*#

D2DC

异子蓬
D2DC
蛋白功能位点与功能域预测发
现!
#(%
"
&((
位氨基酸之间存在一个典型
D2DC

构域氨基酸序列分析表明!异子蓬
D2DC
含有植
物型
D2DC
所有基本模体(保守残基(催化位点及磷
酸化和泛素化位点)!(*"图
!
#其中!位于
Q
端的
##
POBGVNF
#模体!在
C
+
(
CGW
及部分
C
%
植物中
参与调控植物酶活性的昼夜变化!该模体中的丝氨
酸残基为专一磷酸化位点)!*位于
C
端的&(%
VQ?H
&((模体决定了
D2DC
最大催化活性)!1*(+"
HFHH?THFHH
(+&模体中
F
(+残基直接参与该酶
的羧化反应)!&*根据
DFaPO?2
数据库分析!异子

D2DC
氨基酸序列含有
!
个大的
D2DC
活性位
点!分别位于
#(&
"
#1"
氨基酸位点"
DP""1#
!
T5*
?GUD?V/.FF
#和
$&!
"
("+
氨 基 酸 位 点
"
DP""%&%
!
TWOHXPBP
Y
KBGH
#之间
D2DC
亚细胞定位和结构预测结果显示!异子

D2DC
位于线粒体基质空间(线粒体内膜(线粒
体间隙和叶绿体类囊体膜的可能性系数分别为
",$!
(
",!$$
(
",!$$

",!1"

D2DC
蛋白跨膜结
构域和信号肽分析发现!该蛋白不含信号肽!属于非
分泌型蛋白
利用
D@6>.:AD@7A6.0
程序预测异子蓬
D2DC

级结构"图
%
#分析发现!
%
*
螺旋(无规则卷曲和延伸
链含量分别为
($,%S
(
%",+%S

%,1%S
!
%
*
螺旋
和无规则卷曲大量分布!而延伸链稀疏地散布在其
中利用
P_.//*W7>65
程序提供的同源建模法!对
异子蓬
D2DC
蛋白质进行同源建模!获得的三级结
"#
西
!

!

!

!

!

%$


!
!
异子蓬
D2DC
氨基酸序列的分析
方框标示酶催化反应中重要的结构域&灰色背景标示保守残基&黑色背景标示功能位点&下划线标示模体
b.
Y
,!
!
G045
8
/./7943.074:.>/6
^
=60:679D2DC9@733-(&(*)#("
5
#(
I7<6/.0>.:4A6A;6.3
L
7@A40A:4A45
8
A.:>734.0/
&
H@4
8
40>R54:J.0>.:4A6A;6:70/6@]6>@6/.>=6/40>9=0:A.7045/.A6/
!
@6/
L
6:A.]65
8
&
\0>6@5.06/6
^
=60:6/364037A.9/

%
!
异子蓬
D2DC
三级结构预测
b.
Y
,%
!
?;6
L
@6>.:A6>A6@A.4@
8
/A@=:A=@679D2DC
L
@7A6.0
构如图
%
所示
=>B
!
异子蓬
$*$A
蛋白诱导表达及免疫印迹分析
PBP*DGH2
结果显示!重组菌
!-#)*?@40/6A*
A4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
样品在
#%"JB
处有差异表
达条带"
D2DC##"JBdHP?!(JB
#!表明构建原
核表达载体正确"图
+
!
G
#取超声处理后菌体上清
及沉淀进行蛋白可溶性检测"图
+
!
I
#结果表明目
的蛋白主要以包涵体形式存在于沉淀中
Z6/A6@0
印迹结果发现!重组菌和对照菌
!-
#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#

OD?H
诱导后分别
检测到
HP?
融合蛋白"
#%"JB
#和
HP?
标签"
!(
JB
#!且重组菌未诱导情况下也检测到较弱条带!说

D2DC
存在本底表达"图
+
!
C
#
=,C
!
重组蛋白的酶活分析
本研究采用酶联免疫吸附技术和分光光度法!

!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
重组菌
D2DC
蛋白含量及活性进行了测定结果表明!重
组 菌经
",13375
%
NOD?H
诱导
+;
!
D2DC
含量达
##
&
期 程
!
刚!等$异子蓬
+!+,
基因原核表达及其重组菌在非生物胁迫下的耐受力解析

+
!
D2DC
重组蛋白的
PBP*DGH2

Z6/A6@0R57A
分析
G

I,PBP*DGH2
分析$
W
#
,
蛋白质分子量对照&
#,
重组菌诱导前&
!,
重组菌诱导后&
%,
重组菌诱导前总蛋白&
+,
重组菌诱导前上清&
$,
重组菌诱导前上清&
(,
重组菌诱导后总蛋白&
,
重组菌诱导后沉淀&
1,
重组菌诱导后上清&
C,Z6/A6@0R57A
分析$
W
!
,
预染蛋白质分子量对照&
,
对照菌诱导后&
#",
重组菌诱导后箭头所示为
D2DC
重组蛋白条带
b.
Y
,+
!
G045
8
/./79A;6@6:73R.040AD2DC
L
@7A6.0R
8
PBP*DGH240>Z6/A6@0R57A
G40>I,PBP*DGH24045
8
/./79@6:73R.040AD2DC
L
@7A6.0,W
#
,D@7A6.03756:=54@_6.
Y
;A34@J6@
&
#,\0*.0>=:6>@6:73R.040A
!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
&
!,O0>=:6>@6:73R.040A!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
&
%,?7A45:@=>66=:6>@6:73R.040A/A@4.0/
&
+,O0/75=R569@4:A.7079=0*.0>=:6>@6:73R.040A/A@4.0/
&
$,P75=R569@4:A.7079=0*.0>=:6>@6:73R.040A/A@4.0/
&
(,?7A45:@=>66=:6>@6:73R.040A/A@4.0/
&
,O0/75=R569@4:A.7079.0>=:6>@6:73R.040A/A@4.0/
&
1,P75=R569@4:A.7079.0>=:6>@6:73R.040A/A@4.0/
&
C,Z6/A6@0R57A4045
8
/./79@6:73R.040AD2DC
L
@7A6.0,W
!
,D@6/A4.06>
L
@7A6.03756:=54@_6.
Y
;A34@J6@
&
&,O0>=:6>:70A@75!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#
&
#",O0>=:6>@6:73R.040A!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,,
?;64@@7_.0>.:4A6/A;6A4@
Y
6A@6:73R.040AD2DC
L
@7A6.0,
",#&0
Y
%
3N
!分别是非诱导组和对照组的
!,"#

!&,(&
倍"图
$
#
D2DC
活性为
#(,#%%
3
Y
!分别
是非诱导组和对照组的
!,%$

$,%1
倍该结果表
明通过
OD?H
诱导!重组菌表达了目的蛋白
D2DC
且具有活性非诱导重组菌中
+!+,
基因有少量
泄漏表达!因此与对照菌相比检测到一定的
D2DC
含量及活性
=,D
!
重组菌胁迫耐受性测定
为了验证
D2DC
重组菌
!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
在不同非生物胁迫下的耐受性!
本研究检测了
!""
"
1""3375
%
NQ4C5
(
$S
"
!"S
D2H("""
(
!$[
"
$![
(
$"
"
+""
#
375
%
N
甲基紫精

L
U%,"
"
##,"
等不同条件下的菌体生长"图
(
!
G
"
2
#结果显示!在
+""3375
%
NQ4C5
处理
#!;
时!重组菌液
aB
(""
值是对照的
#,$1
倍在
#"S
D2H("""
(
!$[
(
$
#
375
%
N
甲基紫精和
L
U&,"
胁迫下!重组菌分别是对照的
#,!$
(
!,%
(
#,&!

#,1!
倍并且!随着胁迫增强!重组菌的生长呈现
优于对照菌的趋势以上结果表明!过量表达
D2DC
能够赋予宿主菌更好的耐受非生物胁迫的
能力
本研究进一步探讨了
+""3375
%
NQ4C5
(
#"S
D2H("""
(
!$[
(
$
#
375
%
N
甲基紫精(
L
U&,"

单一非生物胁迫条件下菌体生长情况"图

!
I
"
b
#

$
!
异子蓬
D2DC
蛋白含量和活性测定
#,
对照菌非诱导&
!,
重组菌非诱导&
%,
重组菌诱导后&
图中数据为平均值
fPB
"
0g%
#&下同
b.
Y
,$
!
?;6
L
@7A6.0:70A60A40>60`
8
364:A.].A
8
79D2DC
9@733-(&(*)#("
5
#(
#,\0*.0>=:6>:70A@75!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#
&
!,\0*.0>=:6>@6:73R.040A!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
&
%,O0>=:6>@6:73R.040A!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
&
I4@@6
L
@6/60A/3640fPB79A;@66@6
L
5.:4A6/
&
?;6/4364/R657_,
结果显示!在正常条件下"
%[
(
L
U,"
#!重组菌和
对照菌生长没有差异!
#";
后基本达到平稳期"图

!
G
#在胁迫条件下!除
#"SD2H("""
以外!
#!
;
两者菌体生长量均有显著差异!并且对照菌的生
长受到明显胁迫抑制以上结果表明!
+!+,
基因
的表达促进了菌体在非生物胁迫下的生长
!#
西
!

!

!

!

!

%$


(
!
非生物胁迫下的菌体生长检测
b.
Y
,(
!
PA@4.0/
Y
@7_A;=0>6@]4@.7=/4R.7A.:/A@6//6/
%
!

!

尽管
+!+,
基因在
C
%
或具花环结构的
C
+

物中已被广泛研究!但在单细胞
C
+
植物中的研究鲜
见报道本研究克隆了单细胞
C
+
植物异子蓬
+!+,
基因
:BQG
全长序列!包含
!&"#R
L
个核苷


!
!-#)*?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
重组菌
在不同非生物胁迫下的生长检测
b.
Y
,
!
H@7_A;79A;6@6:73R.040A!-#)*
?@40/6AA4
$$
L
H2M*+?*#*+!+,
=0>6@>.996@60A4R.7A.:/A@6//6/
酸!编码
&((
个氨基酸!序列中含有多个
D2DC
已知
模体(保守残基(酶催化位点(磷酸化和泛素化位点
及两个大的
D2DC
活性位点)!!*氨基酸序列多重
比对发现!异子蓬
D2DC
序列与甜菜"
.%/(01*
2
(&6
"
#(五色苋"
>*/%&;(;/$%&(
?
#)4%(
#及莲子草"
>*6
/%&;(;/$%&("%""*"
#的同源性最高!均达
&"S

上)!!*通过生物信息学方法对异子蓬
D2DC
蛋白
质理化性质(结构及功能位点等预测分析发现!异子

D2DC
同其他种属植物型
D2DC
类似)%"*%#*该蛋
白主要分布于线粒体基质!属于无跨膜结构域和信
号肽的非分泌蛋白对其三级空间结构分析显示!
异子蓬
D2DC
主要以
%
*
螺旋为主!其酶催化反应结
构域位于蛋白中心位置!符合酶活性中心局限于大
分子一定区域的规律)%!*
经免疫印迹检测原核表达的
#%"JB
重组
HP?*D2DC
蛋白主要以包涵体形式存在!在菌体裂
解后上清及未诱导情况下也有少量表达本实验克
隆的异子蓬
D2DC

D2DC*#
型!其体外重组酶活
性检测显示!底物
D2D
能够在
D2DC
及苹果酸脱氢
酶催化下!通过消耗
QGBU
最终生成苹果酸!该结
%#
&
期 程
!
刚!等$异子蓬
+!+,
基因原核表达及其重组菌在非生物胁迫下的耐受力解析
果与
D4@J
等研究结果一致)%%*众所周知!
D2DC

为重要的光合关键酶在植物中被广泛研究
C
+

D2DC

C
+
光合途径中催化
D2D
结合大气中
Ca
!
形成四碳酸!后经脱羧作用释放
Ca
!
!并将其供给
C
%
循环使用!起到了
Ca
!
浓缩作用)$!&!!*
C
%

"和%或根型#
D2DC

C
%

C
+
植物中则可能在三
羧酸循环的中间物质的回补反应中行使重要功能!
包括草酰乙酸"
aGG
#(苹果酸等)$*
已有大量报道集中在
D2DC
抗逆功能的研究
在转基因植物中过量表达
C
+
植物
D2DC
!能不同程
度地增强植物抵御和适应外界胁迫的能力除了增
强植物耐旱)%+*%$*(耐盐)##*(耐高温)#*等能力外!
I6*
Y
=34
等)%(*发现!转
+!+,
基因水稻具有耐受重金
属毒害的能力此外!在
!-#)*
中过量表达
+!+,
基因有利于细胞抵御逆境胁迫)$!%%*本研究也发现
原核表达的
D2DC
蛋白在
Q4C5
(
D2H("""
(甲基紫
精"
WT
#(
L
U%,"
"
##,"
的胁迫下能促进菌体生
长!由此推测
D2DC
在非生物胁迫下参与了
!-#)*
耐受非生物胁迫的胁迫生理过程!该结果与
P.0
Y
;
等研究结果相符)$*推测
D2DC
参与胁迫应答可能
存 在两种机制!一是
D2DC
能够催化
D2D
生成
aGG
和%或随后的苹果酸!
aGG

?CG
循环中起
重要的回补反应)%*%1*&二是菌体内积累大量的苹果
酸能够作为渗透调节物质帮助抵御胁迫产生的细胞
损伤)%&*+"*因此!
D2DC
作为一种重要的酶!能够促
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基因原核表达及其重组菌在非生物胁迫下的耐受力解析