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Cloning and sequence analysis of the chalcone synthase gene (CHS) from Fagopyrum dibotrys

金荞麦查尔酮合成酶基因CHS的克隆及序列分析



全 文 :书金荞麦查尔酮合成酶基因犆犎犛的
克隆及序列分析
蒙华,李成磊,吴琦,邵继荣,陈惠
(四川农业大学生命科学与理学院,四川 雅安625014)
摘要:采用同源克隆的方法获得金荞麦查尔酮合成酶基因(犆犎犛)的保守片段554bp,进一步采用染色体步移法
(genomewalking)和RT-PCR技术克隆到犆犎犛基因的全长DNA序列和cDNA开放阅读框(ORF)序列。序列分
析结果表明,金荞麦犆犎犛基因DNA全长1650bp,含一个462bp的内含子;其cDNA编码区全长1188bp,编码
395个氨基酸,命名为犉犱犆犎犛,NCBI登录号为GU169470。该氨基酸序列与同为蓼科的掌叶大黄、虎杖犆犎犛的氨
基酸序列同源率分别达到94%和93%,且含有犆犎犛活性位点和底物结合口袋位点等保守位点。
关键词:金荞麦;查尔酮合成酶基因;克隆;序列分析
中图分类号:Q943.2;S517.032  文献标识码:A  文章编号:10045759(2010)03016208
  金荞麦(犉犪犵狅狆狔狉狌犿犱犻犫狅狋狉狔狊),又称野荞麦、天荞麦,属双子叶蓼科荞麦属的多年生草本植物[1]。它是我国
民间传统的一种中草药,其块根能入药,具清热解毒,排脓消肿,祛风化湿的功效。现代医学研究发现,金荞麦块
根含有的一类原花色素苷的缩合性单宁混合物如表儿茶素,原矢车菊素B2等不仅能够抑制某些肿瘤细胞生
长[2],还能祛痰抗炎、抑制血小板聚集,降低还原反应和增强巨噬细胞的吞噬[3]。
金荞麦作为栽培荞麦的野生近缘种,其子粒营养成分含量丰富,具有很高的营养价值。张政和林汝法[4]的研
究表明,金荞麦子粒高达12.6%的蛋白质含量,已达到优质禾谷类粮食的标准,且微量元素、维生素的含量也很
高,生物类黄酮含量也在1.6%以上。金荞麦子粒中生物类黄酮主要为槲皮素、芦丁、莰菲、桑色素等,这些成分
对冠心病、心脑血管病、糖尿病均有良好治疗作用,所以金荞麦在保健食品开发方面也具有一定潜力。
查尔酮合成酶(chalconesynthase,CHS)是植物次生代谢途径中黄酮类物质合成的关键酶[5],它催化4香豆
酸CoA和丙二酰CoA反应,将3个丙二酰CoA中的3个乙酸单位合成1个新的芳环,生成柚皮素查尔酮,为花
青甙类色素和植物黄酮类物质的合成提供了最基本的碳架结构[6]。而这些化合物不但为自然界提供了颜色,还
参与了植物的多种生理生化过程,如防UV辐射、抗胁迫、调节生长素运输、抗菌等。所以犆犎犛在植物黄酮类物
质合成途径中担当了重要的作用。目前,已在多种植物中克隆出犆犎犛,如非洲菊(犌犲狉犫犲狉犪犺狔犫狉犻犱犪)[7]、百合
(犔犻犾犻狌犿犫狉狅狑狀犻犻)[8]、大豆(犌犾狔犮犻狀犲犿犪狓)[9]、甜橙(犆犻狋狉狌狊狊犻狀犲狀狊犻狊)[10]、何首乌(犘狅犾狔犵狅狀狌犿犿狌犾狋犻犳犾狅狉狌犿)[11]等。
由于金荞麦具有较高的药用与营养价值,是一种经济附加值很高的资源植物,克隆其黄酮类生物合成途径关键酶
基因,对其代谢工程研究具有重要作用。本研究以雅安金荞麦为材料,采用PCR技术和染色体步移技术克隆其
犆犎犛基因的DNA和cDNA开放阅读框(openreadingframe,ORF)序列,为逐步揭示其次生代谢途径奠定基础。
1 材料与方法
1.1 试验材料及菌种
金荞麦2009年7月采自四川雅安老板山,大肠杆菌(犈狊犮犺犲狉犻犮犺犻犪犮狅犾犻)DH5α由本实验室保存。
1.2 试剂
质粒DNA小量提取试剂盒、胶回收试剂盒购自 Omega公司;狉犜犪狇DNA 聚合酶、克隆载体pMD18T、
162-169
2010年6月
   草 业 学 报   
   ACTAPRATACULTURAESINICA   
第19卷 第3期
Vol.19,No.3
 收稿日期:20091201;改回日期:20091231
基金项目:四川省科技厅科技攻关项目(04NG001015,2006Z08012)资助。
作者简介:蒙华(1985),女,四川绵阳人,在读硕士。Email:lisamh@163.com
通讯作者。Email:wuqiwq@yahoo.cn
GenomeWalking试剂盒购自Takara公司;RNA提取试剂植物RNAout试剂盒购自天泽基因工程有限公司;逆转
录试剂盒RevertAidTMFirstStrandcDNASynthesisKit购自Fermentas公司;其他化学试剂均为国产或进口分
析纯。
1.3 金荞麦犆犎犛基因保守片段的克隆
根据GenBank中登录的植物犆犎犛活性中心的保守核苷酸序列,设计如下一对简并引物,CHSf:5′ATG(A/
C)T(C/G)TA(C/T)CA(A/G)CAGGG3′;CHSr:5′CG(A/G)TG(A/C/G/T)GC(A/T/C/G)A(T/C)CCA
GAA3′。以叶片为材料参照吴琦等[12]SDS微量法快速提取总DNA进行PCR,反应参数为:94℃5min;94℃1
min,52℃1min,72℃1min,共30个循环;72℃8min。
PCR产物经琼脂糖凝胶电泳检测、回收纯化后连接
pMD18T克隆载体,挑选阳性克隆送北京诺赛基因组
研究中心有限公司进行测序。
1.4 染色体步移(genomewalking)扩增金荞麦犆犎犛
基因DNA序列
根据1.3获得的金荞麦犆犎犛保守片段核苷酸序
列设计9条特异引物(表1),引物设计位置见图1。按
Takara公司 Genomewalking试剂盒说明书进行操
作,以总DNA为模板,特异引物分别与试剂盒提供的
4条简并引物AP1~AP4通过套式PCR进行未知序
列的染色体步移。
表1 犆犎犛染色体步移所用引物
犜犪犫犾犲1 犘狉犻犿犲狉狊犳狅狉犆犎犛犵犲狀狅犿犲狑犪犾犽犻狀犵
引物编号Primercode 引物序列Primersequence(5′3′)
3JC1 5′GGACTCACCTTCCACCTTCTCAA3′
3JC2 5′TCTCAACATCGCCGACTGGAAC3′
3JC3 5′GCCACCAGACAGGTCTTGAATGA3′
5JC1 5′TCATTCAAGACCTGTCTGGTGGC3′
5JC2 5′GTTCCAGTCGGCGATGTTGAG3′
5JC3 5′TGGTCTGGGAAGTCCAAACGAG3′
5JC4 5′TGGTAGGTGAAACTAAAGGGATTGA3′
5JC5 5′GCCAAATAGATGAGATGATGAGAAC3′
5JC6 5′TCGCTGTTGGTGACCCTGAAGT3′
图1 金荞麦犆犎犛基因染色体步移扩增示意图
犉犻犵.1 犌犲狀狅犿犲狑犪犾犽犻狀犵狆狉狅犮犲犱狌狉犲犳狅狉犆犎犛犵犲狀犲狅犳犉.犱犻犫狅狋狉狔狊
1.4.1 金荞麦犆犎犛基因3′端未知序列的染色体步移 第1轮:以叶片总DNA为模板,3′端特异引物3JC1分
别与简并引物AP1~AP4进行PCR。反应参数:94℃1min;98℃1min;94℃30s,60℃1min,72℃2min,5个
循环;94℃30s,25℃3min,72℃2min,1个循环;94℃30s,60℃1min,72℃2min,94℃30s,60℃1min,
72℃2min,94℃30s,44℃1min,72℃2min,15个循环;72℃10min,结束。
第2轮:以第1轮PCR产物为模板,3′端特异引物3JC2分别与简并引物AP1~AP4进行套式PCR。反应参
数:94℃30s,60℃1min,72℃2min,94℃30s,60℃1min,72℃2min,94℃30s,44℃1min,72℃2min,15
个循环;72℃10min,结束。
第3轮:以第2轮PCR产物为模板,3′端特异引物3JC3分别与简并引物AP1~AP4进行套式PCR,反应参
数同第2轮。3轮PCR产物琼脂糖凝胶电泳检测,纯化回收后,第3轮产物进行T载体克隆和测序。
1.4.2 金荞麦犆犎犛基因5′端未知序列的染色体步移 5′端特异引物5JC1、5JC2和5JC3分别与4条简并引物
AP1~AP4进行5′未知序列的第1次染色体步移,PCR产物回收经T载体克隆测序。拼接测序结果后,再设计
3条5′端特异引物5JC4、5JC5和5JC6进行第2次染色体步移,继续扩增5′端未知序列,2次步移反应参数均同
1.4.1。PCR产物琼脂糖凝胶电泳检测,纯化回收后第3轮产物进行T载体克隆和测序。
361第19卷第3期 草业学报2010年
1.4.3 金荞麦犆犎犛基因全长DNA序列的克隆 根据测序结果拼接得到犆犎犛全长基因序列后,设计如下1对
特异引物JChsf:5′AAATGGCACCGACGGTCC3′;JChsr:5′GCGCCTAGGGATAATCAGTT3′扩增金荞麦
犆犎犛基因全长DNA序列,反应条件为:94℃5min;94℃1min,55℃1min,72℃90s,共30个循环;72℃8
min。PCR产物纯化后经T载体克隆和序列测定,获得金荞麦犆犎犛全长DNA序列。
1.5 总RNA提取及犆犎犛基因cDNA开放阅读框(ORF)序列的克隆
采用植物RNAout试剂盒提取金荞麦新鲜花蕾总RNA。以其为模板,OligodT为引物通过RT-PCR来制
备cDNA第1链。具体操作为:将4μL花蕾总RNA、1μLOligodTPrimer(0.5μg/μL)和7μL无RNA酶灭菌
水混匀,于70℃变性5min后,立即置于冰上2min;再加入4μL5×反应缓冲液、1μLRNA酶抑制剂(20
U/μL)和2μL10mmol/LdNTP混合物,混匀后于37℃反应5min,最后加入1μL 逆转录酶 MMLV
(RNaseH-)(200U/μL),反应总体积20μL,42℃反应1h,70℃下10min灭活反转录酶后于-80℃保存。以反
转录得到的cDNA为模板,特异引物JChsf和JChsr扩增其cDNAORF序列。反应条件为:94℃5min;94℃1
min,55℃1min,72℃1min,共30个循环;72℃8min。PCR产物纯化后经T载体克隆和序列测定,获得金荞麦
犆犎犛基因cDNAORF序列。
1.6 金荞麦犆犎犛序列分析
采用NCBI(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)Blast工具和DNAMAN软件(Version5.2LynnonBiosoft,
USA)将金荞麦犆犎犛与数据库中其他植物犆犎犛进行核酸和氨基酸的同源序列比对,并用 MEGA4.0软件经邻
接法构建系统发育树。
2 结果与分析
图2 金荞麦犆犎犛基因的保守片段犘犆犚
犉犻犵.2 犘犆犚狆狉狅犱狌犮狋狊狅犳犮狅狀狊犲狉狏犪狋犻狏犲犳狉犪犵犿犲狀狋
狅犳犆犎犛犵犲狀犲狅犳犉.犱犻犫狅狋狉狔狊
2.1 犆犎犛基因保守片段的克隆
简并引物CHSf和CHSr扩增出1条约600bp的
特异带(图2)。克隆后的测序结果表明,该片段长554
bp。Blast核酸序列比对分析显示,该序列与苦荞麦
(犉.狋犪狋犪狉犻犮狌犿)EU151721.1、甜荞麦(犉.犲狊犮狌犾犲狀狋狌犿)
EU151722、掌叶大黄(犚犺犲狌犿狆犪犾犿犪狋狌犿)DQ205352
的同源性分别为100%,94%和86%,表明克隆到了金
荞麦犆犎犛基因的保守片段。
2.2 染色体步移扩增金荞麦犆犎犛基因DNA序列
2.2.1 金荞麦犆犎犛基因5′端未知序列的染色体步
移 以5′端特异引物5JC1、5JC2、5JC3和简并引物
AP3经第1次染色体步移获得1条约1100bp的特
异带(图3A);5JC4、5JC5、5JC6和简并引物AP1、AP2
经第2次染色体步移分别得到约800和1000bp的特
异带(图3A)。将5′端2次步移测序结果拼接后得到
长1225bp的片段,再与已知保守片段拼接,经Blast比对分析表明,获得了犆犎犛基因包括起始密码子ATG在
内的5′端序列。
2.2.2 金荞麦犆犎犛基因3′端未知序列的染色体步移 以3′端特异引物3JC1、3JC2、3JC3与简并引物AP3经
染色体步移获得1条约1000bp的特异带(图3B)。其中3JC3与AP3的扩增产物测序结果表明,片段长947
bp,与已知保守片段拼接,经Blast比对分析表明,获得了犆犎犛基因包括终止密码子TGA在内的3′端序列。
2.2.3 金荞麦犆犎犛基因全长DNA序列的克隆 将扩增得到的保守片段与5′端,3′端序列拼接,拼接后的序列
经Blast比对后找到完整的开放阅读框,以此为模板设计的特异引物JChsf和JChsr扩增金荞麦犆犎犛基因全长
DNA序列,得到1条约1600bp的特异带(图4A)。
461 ACTAPRATACULTURAESINICA(2010) Vol.19,No.3
图3 染色体步移法扩增金荞麦犆犎犛基因
犉犻犵.3 犌犲狀狅犿犲狑犪犾犽犻狀犵犪犿狆犾犻犳犻犮犪狋犻狅狀狅犳犆犎犛犵犲狀犲狅犳犉.犱犻犫狅狋狉狔狊
 A:犆犎犛基因DNA5′端未知序列的染色体步移;1~3:第1次染色体步移,引物AP3和5JC1、5JC2、5JC3三轮PCR产物;4~6:第2次染色体步移,
引物AP1和5JC4、5JC5、5JC6三轮PCR产物;7~9第2次染色体步移,引物AP2和5JC4、5JC5、5JC6三轮PCR产物;B:犆犎犛基因DNA3′端未知
序列的染色体步移;1~3:引物AP3和3JC1、3JC2、3JC3三轮PCR产物 A:Genomewalkingof犆犎犛geneDNA5′endunknownsequence;1-3:PCR
productsofthefirsttimegenomewalkingofprimersAP3with5JC1、5JC2、5JC3;4-6:PCRproductsofthesecondtimegenomewalkingofprimers
AP1with5JC4、5JC5、5JC6;7-9:PCRproductsofthesecondtimegenomewalkingofprimersAP2with5JC4、5JC5、5JC6;B:Genomewalkingof
犆犎犛geneDNA3′endunknownsequence;1-3:PCRproductsofthegenomewalkingofprimersAP3with3JC1、3JC2、3JC3
2.3 金荞麦犆犎犛基因cDNAORF序列的克隆
图4 金荞麦犆犎犛基因全长犇犖犃及犮犇犖犃犗犚犉的犘犆犚
犉犻犵.4 犘犆犚犪犿狆犾犻犳犻犮犪狋犻狅狀狅犳犇犖犃犪狀犱犮犇犖犃犗犚犉
犳狌犾犾犲狀犵狋犺狅犳犆犎犛犵犲狀犲
A:犆犎犛基因全长DNA的PCRPCRamplificationforDNAful
lengthof犆犎犛;B:犆犎犛基因cDNAORF的PCR
PCRamplificationforcDNAORFof犆犎犛
金荞麦新鲜花蕾总RNA经RT-PCR获得第1
链cDNA后,利用特异引物JChsf、JChsr扩增犆犎犛基
因cDNAORF序列,获得1条约1200bp的特异带
(图4B)。
2.4 金荞麦犆犎犛基因核苷酸序列分析
金荞麦犆犎犛基因DNA和cDNA扩增产物经T
载体克隆后,拼接测序结果,分别得到了长为1650和
1188bp的核苷酸序列。将金荞麦犆犎犛 基因全长
DNA序列提交http://genes.mit.edu/GENSCAN.
html网站进行内含子预测,并结合cDNA序列的比对
分析表明,该DNA序列在位于第61位半胱氨酸密码
子内第1和第2位碱基之间含有1个462bp大小的
内含子(182~643bp),该内含子核苷酸序列符合典型
GT-AG内含子的特征(图5)。金荞麦犆犎犛 基因
cDNA序列包含一个完整的开放阅读框,编码395个
氨基酸,将该序列命名为犉犱犆犎犛。上述序列已提交
NCBI的GenBank,登录号为GU169470。
犉犱犆犎犛序列经Blast分析表明,其核苷酸序列与已报道的苦荞麦犆犎犛基因部分片段(EU151721.1)和甜荞
麦犆犎犛基因部分片段(EU151722.1)的相似率达到97%和94%,与掌叶大黄、虎杖(犘狅犾狔犵狅狀犻犮狌狊狆犻犱犪狋狌犿)、银
白杨(犘狅狆狌犾狌狊犪犾犫犪)等其他植物犆犎犛基因核苷酸序列同源性达75%以上。
2.5 金荞麦犆犎犛氨基酸序列分析
将犉犱犆犎犛推导的氨基酸序列进行BLASTP分析,结果表明,其与同为蓼科植物的掌叶大黄、虎杖的同源性
561第19卷第3期 草业学报2010年
图5 犉犱犆犎犛的犇犖犃序列及推导的氨基酸序列
犉犻犵.5 犇犖犃犪狀犱犱犲犱狌犮犲犱犪犿犻狀狅犪犮犻犱狊犲狇狌犲狀犮犲狊狅犳犉犱犆犎犛
内含子以小写字母表示Thelowercasepresentsintron
均在90%以上,与不同科植物如甜橙、葡萄(犞犻狋犻狊狏犻狀犻犳犲狉)、大豆等也具有较高的同源性。利用DNAMAN软件
将犉犱犆犎犛基因推导的氨基酸序列与其他几种植物犆犎犛基因的氨基酸序列进行多序列比对(图6)。分析表明,
编码多种功能位点的外显子2区同源性较高。犉犱犆犎犛编码的氨基酸序列包含了犆犎犛 高度保守的活性位点
Cys165、Phe216、His304和 Asn337,底物结合口袋位点Ser134、Glu193、Thr195、Cys198和Ser339,环化反应口袋位点
Thr133、Met138、Phe216、Ile255、Gly257、Phe266和Pro376以及犆犎犛的标签序列GFGPG。其活性位点Cys165、Asn337附
近的保守区域:MMYQQGCFAGGTV,YGNMSSACVLFI也是本研究设计简并引物的依据。
661 ACTAPRATACULTURAESINICA(2010) Vol.19,No.3
图6 犉犱犆犎犛与其他植物犆犎犛的氨基酸序列比对
犉犻犵.6 犃犿犻狀狅犪犮犻犱狊犲狇狌犲狀犮犲犪犾犻犵狀犿犲狀狋狅犳犉犱犆犎犛狑犻狋犺狅狋犺犲狉犆犎犛犳狉狅犿犱犻犳犳犲狉犲狀狋狆犾犪狀狋狊
 &:高度保守活性位点Highlyconservedactivesite;#:底物结合口袋位点Substratebindingpocketsite;@:环化反应口袋位点Cyclizationpocket
site;划线部分为犆犎犛标签序列GFGPGThepartunderlinedis犆犎犛signaturesequenceGFGPG;Fd:犉.犱犻犫狅狋狉狔狊;Pc:犘.犮狌狊狆犻犱犪狋狌犿;Rp:犚.
狆犪犾犿犪狋狌犿;Vv:犞.狏犻狀犻犳犲狉;In:犐狆狅犿狅犲犪狀犻犾;Pa:犘.犪犾犫犪;Gm:犌犾狔犮犻狀犲犿犪狓;At:犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪
利用MEGA4.0软件通过邻接法构建基于犉犱犆犎犛氨基酸序列的系统发育树(图7)。序列中加入了本试验
克隆得到但未发表的苦荞麦和甜荞麦犆犎犛基因。可以看出金荞麦与苦荞麦的同源关系最近,与同为蓼科的甜
荞麦、掌叶大黄和虎杖构成一个分支,表明与它们的同源关系较近,而与其他植物的同源关系较远。
3 讨论
犆犎犛基因属于多基因家族,在结构上非常保守,除金鱼草(犃狀狋犻狉狉犺犻狀狌犿犿犪犼狌狊)的犆犎犛基因含有2个内含
子外[13],其余的犆犎犛均只包含1个内含子和2个外显子,且编码许多功能位点的外显子2区较保守。本试验得
到的金荞麦犆犎犛含有1个内含子,氨基酸序列比对结果也表明编码多种功能位点的外显子2区同源性较高。
此外,氨基酸序列比对发现,金荞麦犆犎犛第198位底物结合口袋位点由其他植物中的苏氨酸(Thr)变成了半胱
氨酸(Cys),与同为蓼科植物的虎杖和掌叶大黄一致。在构建系统发育树时,加入了本实验室克隆得到的苦荞麦
761第19卷第3期 草业学报2010年
图7 基于犆犎犛全长氨基酸序列构建的系统发育树
犉犻犵.7 犘犺狔犾狅犵犲狀犲狋犻犮狋狉犲犲犫犪狊犲犱狅狀犪犿犻狀狅犪犮犻犱狊犲狇狌犲狀犮犲狊狅犳犆犎犛
:未发表Unpublished
和甜荞麦的全长犆犎犛,结果显示,金荞麦和苦荞麦的亲缘关系比和甜荞麦的亲缘关系近。因此,本研究结果从功
能基因序列同源性这个角度,支持Sharma[14]和罗定泽等[15]的观点。
黄酮类化合物是一类天然次生代谢物,广泛存在于各种陆生植物当中。它在植物器官花色素积累、抗胁迫、
抗菌和细胞的发育与分化等过程中有着重要的作用,同时还对人体健康有明显的改善作用,如治疗和预防心血管
疾病、抗肿瘤等[16]。查尔酮合成酶作为黄酮类物质合成途径中的关键酶,其基因的突变,沉默或过表达,往往会
直接或间接的影响多种黄酮类物质的生物合成,从而对植物的花色、抗胁迫能力和黄酮含量等产生一定影响。
Hemleben等[17]对紫罗兰(犕犪狋狋犺犻狅犾犪犻狀犮犪狀犪)白花突变体的研究发现,由于单核苷酸的替代使一个编码精氨酸的
AGG变成了编码丝氨酸的AGT,突变后的CHS失去生理活性,从而影响了花色素的形成导致白花出现;Fuku
saki等[18]利用RNAi技术将犆犎犛mRNA导入夏堇(犜狅狉犲狀犻犪犺狔犫狉犻犱犪)中,发现花色由蓝色变成白色;Cui等[19]
用玉米小斑病(犅犻狆狅犾犪狉犻狊犿犪狔犱犻狊)病菌侵染高粱(犛狅狉犵犺狌犿犫犻犮狅犾狅狉)的幼苗,结果发现其犆犎犛的表达量显著增
加,且抗性高的品种与抗性低的品种相比表达量更大,表达持续的时间更长;Verhoeyen等[20]将犆犎犛基因和黄
酮醇合酶基因(flavonolsynthase,犉犔犛)共同转化至番茄后,增加了番茄中黄酮醇的含量,从而提高了其抗氧化水
平。
随着转基因技术的发展,许多功能基因被转入资源植物中进行遗传改良以提升它们的品质[21,22]。金荞麦是
一种药用与饲用兼备的资源植物,除其块根能入药,子粒具有独特的营养价值和保健功能外,其茎叶也是高产优
质的牧草资源[23]。随着人们对金荞麦价值认识的加深,需求量大大增加,过度的采挖已使野生金荞麦资源急剧
减少,我国已将其列为国家二级保护植物。鉴于犆犎犛在黄酮类活性物质合成途径中的关键作用,在首次克隆了
金荞麦全长犆犎犛基因的基础上,将继续克隆该途径其他关键酶基因和转录调控因子基因,为其代谢调控机制的
深入研究奠定基础。
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犆犾狅狀犻狀犵犪狀犱狊犲狇狌犲狀犮犲犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳狋犺犲犮犺犪犾犮狅狀犲狊狔狀狋犺犪狊犲犵犲狀犲(犆犎犛)犳狉狅犿犉犪犵狅狆狔狉狌犿犱犻犫狅狋狉狔狊
MENGHua,LIChenglei,WUQi,SHAOJirong,CHENHui
(ColegeofLifeScience,SichuanAgriculturalUniversity,Ya’an625014,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:Theconservativesequenceofthechalconesynthasegenefrom犉犪犵狅狆狔狉狌犿犱犻犫狅狋狉狔狊544bpwasisola
tedbyhomologycloning,andthenthefullengthDNAandcDNAORF(openreadingframe)sequenceswere
clonedbygenomewalkingandRT-PCR,respectively.Sequenceanalysisshowedthatthe犆犎犛DNAof犉.
犱犻犫狅狋狉狔狊was1650bp,includingone462bpintron.ThecodingregionofcDNAwas1188bp,encoding395a
minoacids,designatedas犉犱犆犎犛andincludedtheconservedsitesofCHSsuchasactivesitesandsubstrate
bindingpocketsites.Thehomologyanalysisof犉犱犆犎犛withthatofotherplantsshowedthatitwascloselyre
latedto犚犺犲狌犿狆犪犾犿犪狋狌犿andPolygonumcuspidatumwith94%and93% homology,respectively.These
quenceaccessionnumberisGU169470inGenBank.
犓犲狔狑狅狉犱狊:犉犪犵狅狆狔狉狌犿犱犻犫狅狋狉狔狊;chalconesynthasegene;cloning;sequenceanalysis
961第19卷第3期 草业学报2010年