全 文 ：园 艺 学 报 2004，31(3)：413—414
Acta Horticulturae Sinica
蝴蝶兰组培工厂化生产技术
李 军 柴向华 曾宝 张秀珊 王细燕 詹海洋 朱饱卿
(汕头市农业科学研究所，汕头515021)
摘 要：介绍了蝴蝶兰组培快繁技术及其工厂化生产技术。
关键词：蝴蝶兰；组织培养
中图分类号：S 68 文献标识码：A 文章编号：0513—353X(2004)0343413-02
Mericlone Production Technical of Phalaenopsis
Li Jun，Chai Xianghua，Zeng Baodang，Zhang Xiushan，Wang Xiyan，Zhan Haiyang，and Zhu Baoqing
(Shantou Agricultural Science Research 疵u ，Shantou 515021，China)
Abstract：This paper dealt with rapid propagation and factorial production of Phalaenopsis．
Key words：Phalaenopsis；Tissue culture
蝴蝶兰 (Phalaenopsis)为单茎性气生兰，植株极少发育侧枝，较难进行常规无性繁殖。自Rotor
G．1949年利用蝴蝶兰花梗腋芽培养出试管苗以来，蝴蝶兰组培种苗的工厂化生产发展迅猛，技术日
趋成熟 。近十年来，我们建立了一整套蝴蝶兰组培快繁与工厂化生产技术流程，并在蝴蝶兰优良
小花品种 ‘满天红’和本所选育的新品种组培生产中取得了成功，逐渐形成年产各类规格种苗几十
万株、开花株近十万株 (其中大部分为自育品系)的规模。
1 生产技术流程
2 诱导
花梗诱导 — 二次诱导 — 分化丛生芽 — 增殖 — 壮苗与生根 — 炼苗 — 出瓶种植
L 叶 诱导 片 —
2．1 外植体及其处理
选用已开花花梗的下端休眠芽和分化苗的叶片作为外植体。将剪去上端花序的花梗剪切成 10～
15 cm，用自来水冲洗 1～2 h，然后在超净工作台上先用 75％酒精浸泡 30 S，无菌水冲洗后放人
0．1％ HgC1 溶液中浸泡10 min左右，无菌水冲洗2～3次，在无菌接种盘上剥去休眠芽的苞片，再放
人0．05％HgC1，溶液中浸泡7～8 min，无菌水冲洗5～8次。
2．2 花梗诱导
处理后的花梗切成2～3 cm长的切段，每段一个侧芽，基部向下插入诱导培养基1／3 MS+6-BA
10 mg·L +NAA 1 mg·L +椰汁 10％+蔗糖2％+琼脂0．7％ (pH 5．6左右)。先放置于黑暗培
养7～10 d，然后光照培养，光照强度 1000～2000 lx，光照时间10 h／d，培养温度 (26±2)℃。5～
10 d后开始萌动，诱导率可达90％以上。在花梗休眠芽的诱导过程中，我们发现有80％左右的休眠
芽萌发后，长成类似花梗侧枝的细嫩梗茎，约20 d后，待其长至3～5 cm，有2～3个芽点时将其切
离花梗，并将其重新切段，基部向下重新放人诱导培养基中，约l0～20 d，下端切口、侧芽、上端切
收稿日期：2003—12—03；修回日期：2004一O2—23
感谢许大熊研究员对本研究的悉心指导。
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口等部位均出芽，其中以侧芽出芽率最高，较快地分化出丛生芽，下端切口的出芽率次之，分化频率
不高，但启动后出芽较多。
2．3 叶片诱导
将分化苗的叶片切割成 1～2 cm ，叶面向上水平放入诱导培养基中进行诱导，光照强度 1000～
2000 lx，光照时间10 h／d，培养温度 (26 4-2)℃。约3O～45 d，部分叶片开始分化，且不经过原球
茎阶段，直接分化出芽，尤其是叶片的基部诱导出芽率较高，分化也较早。利用这一方法，可以周年
进行诱导，极大改善生产上原材料少的限制，加快组培材料的积累。
3 继代增殖
花梗和叶片诱导出丛生芽后，接种于继代培养基 1／3 Ms+NAA 0．5 mg·L +蔗糖 2％ +琼脂
0．7％+6．BA 1～10 mg·L (pH 5．6左右)，培养温度 (26±2)℃，光照强度2000 lx，光照时间1O
h／d。每4O～50 d继代 1次，增殖倍数2～3倍。继代增殖的初期宜用5—10 mg·L 浓度的6-BA较
快地积累材料，随着继代次数的增加，特别是 1O代以后或变异株开始出现以后，只能用 1～5 mg。
L 浓度6-BA促进丛生芽的生长，并在生产中及时汰除变异株 。
我们发现：丛生芽的增殖生长表现出一定的群体效应，即当丛生芽切割成只有 1～2个芽时，丛
生芽的增殖大大减少，大多数 1个继代周期后几乎没有增殖，但丛生芽有一定的长大。当有3～5个
芽或更多时，丛生芽的增殖则较为正常。切割丛生芽时，只能将丛生芽轻轻分开，不可对丛生芽的四
周进行切割，否则会因切割伤口太多而导致培养基褐化较快，不利于丛生芽的生长与分化，甚至会造
成丛生芽的死亡。对一些较大的芽 (芽高1．5 cm以上，单轴茎直径0．5 cm以上)进行横切可以提高
增殖率，横切后会在切口的下部长出一轮丛生芽，增殖率可提高3～5倍。因蝴蝶兰单轴茎较短小，
在切割时对切割部位的掌握要准，否则会将芽切死或因没有切去顶芽而达不到应有的增殖率。
4 生根与炼苗
当芽长至1．5～3 cm高，2～3片叶时，即可转入生根培养基花宝1号2．5 g·L +10％香蕉泥+
IBA 1 mg·L一 +NAA 0．5 mg·L +蔗糖2％+琼脂0．7％ +活性炭0．1％(pH 5．6左右)，光照强度
2000～3000 lx，光照时间12 h／d，培养温度22～28~C，20 d左右开始生根。生根后将苗置于光照强
度8000～10000 lx、光照时间8～12 h／d的环境条件下 15～20 d，可以明显提高瓶苗的质量和种植成
活率。当苗高3～5 cm，叶片数3～5片时，即可出瓶种植。
参考文献：
1 谭文澄，戴策刚．观赏植物组织培养技术．北京：中国林业出版社，1991．247—257
2 王怀字．蝴蝶兰的快速无性繁殖．园艺学报，1998，16(1)：73～77
3 刘荣维，梅庆超，崔元芳，等．丛生芽——蝴蝶兰无性快速繁殖的新途径．热带作物学报，1993，14(2)：105～107
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