全 文 ：中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月

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防风多糖的理化特性、形貌特征及结构分析
戴晶晶 1，张 静 1*，孙润广 2，焦自明 2，张 鹏 1，张化朋 1，刘阿娟 1
1. 陕西师范大学食品工程与营养科学学院，陕西 西安 710062
2. 陕西师范大学物理学与信息技术学院，陕西 西安 710062
摘 要：目的 从防风 Saposhnikovia divaricata 中提取多糖并对其进行理化性质及结构特征的分析。方法 采用 DEAE-52
纤维素和 Sephadex G-200 凝胶柱色谱分离纯化，获得防风多糖主要成分 SPS0 和 SPS1，通过紫外光谱（UV）、热稳定性实
验、红外光谱（IR）、刚果红实验、环境扫描电镜（ESEM）、原子力显微镜（AFM）对防风多糖进行理化性质、形貌特征及
结构特征分析。结果 SPS0 和 SPS1 糖醛酸的质量分数分别为 12.07%、0.95%；IR 光谱显示 SPS0 含有-COOH 的特定吸收
峰；刚果红实验表明 SPS0 具有三股螺旋结构，SPS1 没有三股螺旋结构；ESEM、AFM 观察显示 SPS0 形貌工整，为链状多
分枝结构，SPS1 多糖形貌不规则，有少量分枝结构。结论 SPS0 是一种具多分枝结构的酸性多糖；SPS1 是一种含 β-D-吡
喃环的均一多糖，热稳定性较高。
关键词：防风多糖；理化特性；形貌；环境扫描电镜；原子力显微镜
中图分类号：R284.18 文献标志码：A 文章编号：0253 - 2670(2013)04 - 0391 - 06
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2013.04.004
Analyses on properties for physicochemistry, morphology, and structure
of Saposhnikovia divaricata polysaccharides
DAI Jing-jing1, ZHANG Jing1, SUN Run-guang2, JIAO Zi-ming2, ZHANG Peng1, ZHANG Hua-peng1, LIU A-juan1
1. College of Food Engineering and Nutritional Science, Shaanxi Normal University, Xi’an 710062, China
2. College of Physics and Information Technology, Shaanxi Normal University, Xi’an 710062, China
Abstract: Objective To extract Saposhnikovia divaricata polysaccharides (SPS) and to analyze the characteristics of their
physicochemistry and structures. Methods Two main polysaccharides, SPS0 and SPS1, were obtained by DEAE-52 and Sephadex
G-200 column chromatography; UV spectrophotometer, heat stability test, IR spectrometry, Congo-red test, environmental scanning
electron microscope (ESEM), and atomic force microscope (AFM) were used to determine the physicochemical, morphological, and
structural properties of polysaccharides. Results The uronic acid contents of SPS0 and SPS1 were 12.07% and 0.95%, respectively.
IR spectrometry showed SPS0 had a specific absorption peak of -COOH. Congo-red test indicated that only SPS0 had a triple helix
conformation. ESEM and AFM showed that SPS0 was neat and orderly, with a hyper branched structure, but irregular figure and fewer
branches were observed in SPS1. Conclusion SPS0 is an acidic and hyper branched polysaccharide, while SPS1 is a homogeneous
polysaccharide including β-D-pyranose sugar residues with better heat stability.
Key words: Saposhnikovia divaricata polysaccharides; physicochemical properties; morphology; environmental scanning electron
microscope; atomic force microscope

防风Saposhnikovia divaricata (Turcz.) Schischk.，
又名屏风、铜芸、茴草，伞形科植物，未抽花茎植
株的干燥根。最早记载于《神农本草经》，味辛甘，
性温，能解表祛风、胜湿、止痉[1]，为常用中药，
具有治疗感冒头痛、风湿痹痛、风疹瘙痒、破伤风
等[2]功效。药理实验研究表明，防风具有解热、镇
痛、镇静、抗炎、抗过敏、抗惊厥、抑菌和增强机
体非特异性免疫功能的作用[3-5]。其化学成分有挥发
油、色原酮、香豆素、有机酸、多糖等[6]。早在 1989
年日本学者从防风根中提取出防风多糖，并研究了

收稿日期：2012-08-15
基金项目：国家自然科学基金资助项目（10874108）；陕西省自然科学基础研究计划资助项目（SJ08A16）
作者简介：戴晶晶（1983—），女，蒙古族，内蒙古人，硕士研究生，主要从事天然产物研究。E-mail: sunflowerjj@163.com
*通信作者 张 静，女，副教授，硕士研究生导师。E-mail: zhangjin@snnu.edu.cn
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防风多糖的单糖摩尔比[7]。目前对防风多糖的研究
主要集中在多糖单糖组成[8-9]、热水浸提工艺、结构
修饰[10]以及抗氧化[11-12]、抗肿瘤[13]药理作用等方
面，但有关防风多糖的理化特性、形貌及结构的研
究较少，尚未见用原子力显微镜、环境扫描电镜观
察防风多糖分子的表面形貌的报道。超声波作为一
种提取中药有效成分的新方法，有提取效率高、时
间短、所需温度低的优点[14-15]。本实验使用超声波
提取的方法提取防风粗多糖，纯化得到 2 种防风多糖
SPS0 和 SPS1，并对其理化性质、结构特征以及多糖
形貌进行了研究和比较，为防风多糖的提取、分离及
纯化技术工艺研究提供了理论和实验依据。
1 仪器与材料
超声水浴提取器（上海宁商超声仪器有限公
司）；LXJ—IIB 型低速大容量多管离心机（上海安
亭科学仪器厂）；PHA1—4 型真空冷冻干燥机（德
国 CHRIST 公司）；DHL—A 电脑恒流泵（上海沪
西分析仪器厂）；DBS—100 电脑全自动部分收集器
（上海沪西分析仪器厂），配置 DEAE-52 纤维素色谱
柱（2.5 cm×65 cm）和 Sephadex G-200 凝胶柱（1.5
cm×50 cm）；WZZ—2B 自动旋光仪（上海精密科
学仪器有限公司）；TU—1810 紫外可见分光光度计
（北京普析通用仪器有限责任公司）；Avaatr360
E.S.P.型傅里叶红外光谱仪（美国尼高力公司）；环
境扫描电子显微镜（FEI 公司）；原子力显微镜（日
本岛津公司）。
DEAE-52 纤维素（Whatman 公司）；Sephadex
G-200（Whatman 公司）；半乳糖醛酸（Fluka 公司）；
咔唑（北京化学试剂公司）；苯酚、硫酸、考马斯亮
蓝、牛血清白蛋白、刚果红、氯化钠、氢氧化钠、
乙醇等试剂均为国产分析纯。
防风购自西安同兴堂中药店，经陕西师范大学
生命科学学院田先华教授鉴定为 Saposhnikovia
divaricata (Turcz.) Schischk. 未抽花茎植株的干燥根。
2 方法
2.1 防风多糖的提取
2.1.1 原料处理 将防风于 50 ℃温度干燥 12 h 后
粉碎，过 60 目筛，按照料液比 1∶6 加入 95%的乙
醇在 80 ℃下回流脱脂 2 次，每次 2 h，离心弃去上
清液，药渣自然晾干备用。
2.1.2 防风粗多糖的制备 称取脱脂后的防风 100
g，在 60 ℃下按 1∶30 的比例加水超声，超声频率
80 kHz、电功率 220 W，工作时间 5 s，间歇时间 3 s，
循环 240 次，提取 20 min，浸提液离心弃去残渣，
滤液在 50 ℃下旋转蒸发浓缩至原体积的 1/5 后，加
入 3 倍体积的 95%乙醇静置醇沉 12 h，离心收集沉
淀加适量蒸馏水溶解，流水透析 48 h 以除去小分子
杂质，透析后离心取上清液真空冷冻干燥，得到防
风粗多糖（SPS），经苯酚硫酸法检测，粗多糖的得
率为 4.68%。与本实验室之前的实验结果相比较[16]，
虽然提取率降低，但提取功率从 1 000 W 降到 220
W，节约了能耗，更有利于工业化生产。实验是多
次重复的结果，具有可靠性和可重复性，有一定的
实用价值。
2.1.3 防风多糖的分离纯化 称取 0.3 g SPS 溶于 10
mL 蒸馏水，离心后上清液用 DEAE-52 色谱柱（80
cm×2.5 cm）分离，依次用 1 000 mL 蒸馏水、0.05、
0.1、0.2 mol/L 的 NaCl 溶液洗脱，每管收集 10 mL，
用苯酚硫酸法测吸光度（A）值，绘制洗脱曲线。
称取经 DEAE-52 纤维素柱色谱得到的组分
0.03 g，溶于 5 mL 蒸馏水中，离心后经 Sephadex G-
200 柱色谱，蒸馏水洗脱每管收集 3 mL，经苯酚-
硫酸法测 A 值合并单一组分，透析，冷冻干燥得防
风多糖纯品。
2.1.4 多糖纯度鉴定 不同相对分子质量的多糖在
乙醇中的溶解度不同，而不同的多糖比旋光度也不
同，如果多糖经不同浓度的乙醇沉淀后得到的沉淀
物有相同的比旋度，则说明该多糖组分均一。
采用比旋度法[17]，将多糖样品溶解在水溶液
中，达到半饱和溶液；在搅拌下滴加乙醇，使乙醇
体积分数达到 20%，继续搅拌至沉淀完全，离心分
离沉淀；继续滴加乙醇，使乙醇体积分数达到 40%，
再分离沉淀；前后 2 次沉淀，冷冻干燥后，在相同
条件下测定比旋光度。
2.2 防风多糖的理化性质
2.2.1 总糖定量测定 利用苯酚-硫酸法[9]测定总
糖质量分数，分别取 0.20、0.40、0.80、1.20、1.60、
2.00 mL 葡萄糖标准溶液于 25 mL 试管中，加蒸馏
水至 2 mL，先后加 1 mL 6%苯酚和 5 mL 浓硫酸，
混匀，静置 30 min 后，以蒸馏水作空白，在 490 nm
处测 A 值，以葡萄糖质量浓度为横坐标，A 值为纵
坐标，绘制标准曲线。多糖样品测定按照上述方法
操作，根据标准曲线计算总糖质量分数。
2.2.2 蛋白定量测定 考马斯亮蓝G-250法[18]测定
蛋白质量分数，分别取 0、0.40、0.80、1.20、1.60、
2.00 mL 质量浓度为 1.0 mg/mL 牛血清白蛋白溶液
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于 25 mL 试管中，加蒸馏水至 2 mL，再加入 5 mL
质量浓度为 0.1 mg/mL 的考马斯亮蓝 G-250 试剂，
充分混合，放置 3 min，在 595 nm 处测 A 值，以牛
血清白蛋白质量浓度为横坐标，A 值为纵坐标，绘
制标准曲线。多糖样品测定按照上述方法操作，根
据标准曲线计算蛋白质量分数。
2.2.3 糖醛酸定量测定 利用硫酸-咔唑法[19]测定
糖醛酸质量分数，分别取质量浓度为 0.01、0.02、
0.03、0.04、0.05、0.06 mg/mL 的糖醛酸溶液 1 mL
于 25 mL 的具塞试管中，冰浴下加入硫酸硼砂溶液
5 mL，0.1%咔唑溶液 0.2 mL，充分混匀，沸水浴条
件下 30 min，冷却至 26 ℃，在 530 nm 处测定吸光
值。以糖醛酸质量浓度为横坐标，A 值为纵坐标，
绘制标准曲线，取 0.04 mg/mL 多糖样品溶液 1 mL，
按照上述方法操作，在 530 nm 处测定 A 值，根据
标准曲线计算糖醛酸质量分数。
2.2.4 防风多糖溶解性及定性分析 观察防风多糖
的颜色、状态及在不同溶剂中的溶解情况，并进行
碘-碘化钾反应、三氯化铁、斐林试剂反应、Monish
反应。
2.2.5 紫外光谱分析 配制 1 mg/mL的多糖样品溶
液，以蒸馏水为对照，在 400～190 nm 内进行全波
长扫描。
2.2.6 多糖的热稳定性 称取多糖样品 SPS0 和
SPS1 各 5 份，每份 20 mg，加蒸馏水 1 mL 溶解，分
别置于 40、60、80、100 ℃烘干，定容至 10 mL，用
苯酚-硫酸法测定含糖量，考察防风多糖的热稳定性。
2.3 防风多糖的结构特征
2.3.1 红外光谱 1 mg 干燥的样品加 100 mg 溴化
钾在玛瑙钵中研磨均匀，经压片机压成半透明薄片，
在 4 000～400 cm−1 进行红外光谱扫描。
2.3.2 刚果红实验 刚果红可以与具有多股螺旋构
象的多糖形成配合物，配合物的最大吸收波长同刚
果红比发生红移；NaOH 在一定浓度范围内，配合
物出现亚稳区[20]，因此，刚果红常被用来推断多糖
是否具有螺旋结构。
配制浓度为 2 mg/mL 的多糖样品溶液 SPS0 和
SPS1，80 μmol/L 的刚果红溶液，浓度分别为 1.0、2.0、
3.0、4.0、5.0 mol/L 的 NaOH 溶液，取 2 mL 的样品
溶液加入 2 mL 刚果红溶液、1 mL NaOH 溶液，混匀，
室温下静置 15 min，于 600～400 nm 进行光谱扫描，
记录刚果红在不同浓度 NaOH 溶液中的最大吸收波
长。以纯刚果红和 NaOH 溶液混合作为参照。
2.4 防风多糖的形貌特征
2.4.1 扫描电镜观察[21] 用导电胶将少量多糖样品
粘于样品台，喷金后，在高真空模式下观察样品表
面形貌。
2.4.2 原子力显微镜（AFM）观察 AFM 是观测
多糖微观结构最有效的方法之一，可在纳米尺度范
围内观察到防风多糖的分支结构，为多糖的显微形
貌特征观察和研究提供直观的信息。
将多糖样品配制成 100 μg/mL 的溶液，磁力搅
拌器搅拌 24 h，取溶液体积的 1/2 稀释为 50 μg/mL
的溶液，继续磁力搅拌 24 h，用微量移液枪分别吸
取 5 μL 滴在新解理的云母表面，凉干后置于 AFM
上观察。图像均在 Tapping 模式下获得，湿度为
50%～60%，探针为 SiN4，微悬臂长 200 μm，力弹
性常数 0.12 N/m[22]。
3 结果与分析
3.1 防风多糖的分离纯化及纯度鉴定结果
SPS 经 DEAE-52 纤维素柱色谱蒸馏水，0.05、
0.1、0.2 mol/L 的 NaCl 洗脱后得到 4 个洗脱峰，各
部分所占比例分别为 49.1%、36.9%、7.7%、6.3%，
经蒸馏水和 0.05 mol/L NaCl 洗脱的 2 个组分较多，
因此选择这两部分进一步纯化。
经纤维素色谱得到的两种组分分别经过
Sephadex G-200 柱色谱分离，蒸馏水洗脱，收集单
一的对称峰，将得到的两个防风多糖组分分别命名
为 SPS0、SPS1。
SPS0 经两次乙醇沉淀后比旋度基本相同， 20D]α[
105.3±2；SPS1 经乙醇沉淀后的比旋度也基本相同，
20
D]α[ 140.5±3，说明两多糖均为纯化的均一组分。
3.2 防风多糖的理化性质分析
3.2.1 总糖及蛋白、糖醛酸的定量测定结果 SPS0
和 SPS1 的总糖、蛋白及糖醛酸质量分数见表 1，从
表中可以看出 SPS1 的总糖质量分数高于 SPS0，两
者的蛋白质量分数均较低，SPS0 的糖醛酸质量分数
较高，属于酸性多糖。
3.2.2 防风多糖溶解性及定性分析 SPS0 和 SPS1
均为白色，SPS0 呈雪花状，SPS1 呈棉絮状，SPS0
较 SPS1 相比更易溶于水，两者均难溶于乙醇、丙
表 1 总糖及蛋白、糖醛酸的质量分数
Table 1 Content of total sugar, protein, and uronic acids
多糖样品 总糖 / % 蛋白质 / % 糖醛酸 / %
SPS0 86.61 0.214 12.07
SPS1 97.43 0.407 0.95
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酮、乙醚、正丁醇等有机溶剂中。SPS0 和 SPS1 与
斐林试剂反应为阳性，与碘-碘化钾、三氯化铁、
Monish 反应为阴性，说明两者均含有还原糖，为非
淀粉多糖，不含有酚类、单糖类物质。
3.2.3 紫外光谱分析 紫外光谱显示（图 1），SPS0
和 SPS1 在 200 nm 处有明显的多糖特征吸收峰存
在，在 260 nm 和 280 nm 处无吸收峰，说明 SPS0
和 SPS1 不含核酸、色氨酸、酪氨酸以及苯丙氨酸。
3.2.4 多糖热稳定性分析 以室温样品糖质量分数
为 100%计，经过不同温度烘干的样品糖质量分数
见表 2。在 40 ℃条件下烘干，对 SPS0 和 SPS1 的
糖质量分数影响不大，随着温度的增加，SPS0 的糖
质量分数下降比较明显，当温度达 100 ℃时是未处
理样品糖质量分数的 64.28%；而经过盐洗得到的多
糖 SPS1 随着温度的升高，糖质量分数有所降低，
但降低不及 SPS0 明显，说明 SPS1 较 SPS0 有较强
的耐热性。

图 1 SPS 紫外光谱图
Fig. 1 UV spectrogram of SPS
表 2 防风多糖热稳定性
Table 2 Thermal stability of SPS
质量分数 / % 多糖样品
40℃ 60 ℃ 80 ℃ 100 ℃
SPS0 97.68 90.62 79.17 64.28
SPS1 96.52 89.83 85.75 84.41

3.3 防风多糖的结构特征分析
3.3.1 红外光谱分析 从红外光谱（图 2）中可以
看出，SPS0（a）在 3 418.44 cm−1 处强且宽的吸收
峰是 O-H 伸缩振动引起的，表明 SPS0 存在分子内
氢键和分子间氢键。2 926.07 cm−1 处的吸收峰是
-CH2-次甲基的 C-H 伸缩振动引起的；1 650.80 cm−1
处的吸收峰是 O-H 的弯曲振动所引起；1 418.57
cm−1 处的吸收峰是羧基（-COOH）C-O 伸缩振动引
起的；1 348.57 cm−1 处的吸收峰是-COO 的 C＝O 对
称伸缩振动引起的；1 272.26 cm−1 处的吸收峰是羧
基（-COOH）的 O-H 变角振动引起的，说明 SPS0
中含有-COOH，是一种酸性多糖。1 109.79 和 1 014.04
cm−1处的吸收峰是羟基（-OH）的变角振动引起的，
916.81 cm−1 处吸收峰为 D-吡喃葡萄糖非对称伸缩
振动所造成的 C-O-C 振动，862.35 cm−1 处的吸收峰
是吡喃环的非对称环伸缩振动，763.68 cm−1 处的吸
收峰为 D-吡喃葡萄糖对称伸缩振动。SPS1（b）在
3 435.77 cm−1 处存在的宽吸收峰是多糖分子间或分
子内氢键的 O-H 伸缩振动，1 450.10 cm−1 处的吸收
峰是 C-H 变角振动，1 013.93 cm−1 处的吸收峰是羟

图 2 SPS 的红外光谱图
Fig. 2 FT-IR spectrogram of SPS

190 300 400
SPS0
SPS1
λ / nm

4 000 3 000 2 000 1 000
3
43
5.
77

3
41
8.
44

2
92
6.
07

1
65
0.
80

1
41
8.
57

1
34
8.
57

1
27
2.
26

1
15
6.
71

1
10
9.
79

1
45
0.
10

1
01
4.
04

91
6.
81

88
0.
67
8
62
.8
5
76
3.
68

a
b
ν / cm−1
1
01
3.
93

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基（-OH）的变角振动引起的，880.67 cm−1 处的特
征吸收峰是 β-D-半乳吡喃糖或者 β-D-甘露吡喃糖
的 C-H 的变角振动所引起的，表明该多糖组分含有
β-D-吡喃糖环，分子以 β-糖苷键连接。
3.3.2 防风多糖的构象分析 从图 3 可以看出，
SPS0 与刚果红发生络合作用，在 NaOH 浓度 0～0.6
mol/L 内表现为最大吸收波长的特征变化，当 NaOH
浓度为 0.7 mol/L 后，最大吸收波长下降，这表明在
一定碱的浓度范围内，SPS0 是有序的三股螺旋，但
在强碱条件下，三股螺旋解体，不能与刚果红形成
络合物[23]。随着 NaOH 浓度的增加，SPS1 的最大
吸收波长相应减小，但与刚果红相比，减小趋势缓
慢，没有表现出三股螺旋结构与刚果红络合后所表
现出的变化趋势，可以推断出 SPS1 不具有三股螺
旋结构。

图 3 多糖刚果红复合物的最大吸收波长变化
Fig. 3 Maximum absorption wavelength
of Congo-red compound
3.4 防风多糖的形貌特征分析
3.4.1 防风多糖的环境扫描电镜（ESEM）观察结
果 SPS0（图 4-a1）的表面形貌圆滑工整，结构较
为规则，放大到 2 500 倍后（图 4-a2）的多糖具有
球状边缘相连接的链状结构。图 4-b1 中可见，SPS1
的表面较 SPS0 粗糙，呈现出不规则的纤维丝状与
颗粒状的堆积，放大到 2 500 倍后（图 4-b2）的多
糖呈片状，仍然为无规则形态。扫描电镜为防风多
糖在微米尺度的显微形貌特征提供了直观的信息，
但未能揭示其纳米尺度的特征，需进一步研究。
3.4.2 防风多糖的 AFM 观察结果 用质量浓度为
100 μg/mL 的多糖溶液制得的云母片观察到糖链呈
杂乱无规则状，不能清晰地观察到多糖的微观形貌，
这可能是由于多糖样品浓度过大或搅拌不够均匀彻
底，过多羟基使分子间的缔合作用增加，链状结构
分布过于密集，将多糖溶液稀释为 50 μg/mL 后，可
以观察到链状细节。
图 5 中 a 和 b 分别为 SPS0、SPS1 在质量浓度为
50 μg/mL的AFM观测图，扫描范围在 3.00 μm×3.00
μm，其中 a1、b1 是平面图像，a2、b2 是三维图像。
从图 5-a1 可以看出 SPS0 呈长链状形态，有分支结
构。经软件测量，其单链高度在 0.45～1.78 nm，宽
度在 37～94 nm，宽度可能是由于探针的加宽效应
或是云母作用导致。从图 5-b1 可以看出 SPS1 同样
呈链状形态，但分支较小。经软件测量，其单链高
度在 0.57～1.67 nm，宽度在 47～112 nm 内。

图 4 SPS 扫描电镜照片
Fig. 4 ESEM images of SPS

图 5 SPS AFM 图像
Fig. 5 AFM images of SPS
a1 a2 b1 b2
8.48
[nm]
8.48
[nm]
0.00
0.00
1.00
2.00
3.00 0.00
1.00
2.00
3.00
8.48
[nm]
7.98
[nm]
7.98
[nm]
0.00
0.00
1.00
2.00
3.00 0.00
1.00
2.00
3.00
7.98
[nm]
0.000.000.000.00 1.00 μm 1.00 μm3.00×3.00 μm 3.00×3.00 μm 3.00×3.00 [μm] Z 0.00～7.98 nm3.28×3.28 [μm] Z 0.00～8.48 nm

0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0
515
510
505
500
495
490
485
480
λ m
ax
/
nm

CNaOH / (mol·L−1)
SPS0+刚果红+NaOH
SPS1+刚果红+NaOH
刚果红+NaOH
a1 a2 b1 b2
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4 讨论
采用超声法提取防风多糖，经 DEAE-52 分离纯
化得到水洗和 0.05 mol/L NaOH 洗组分，通过
SephadexG-200 凝胶柱纯化后，得到 SPS0 和 SPS1。
研究表明 SPS0 和 SPS1 为均一多糖，SPS0 较
SPS1 更易溶于水，两者的蛋白量较低；SPS0，糖
醛酸量为 12.07%，为酸性多糖；在高温条件下，SPS1
比 SPS0 稳定。
红外光谱分析表明 SPS0 含有-COOH，是一种
含有吡喃环的酸性多糖，SPS1 中含有 β-D-吡喃葡
萄糖环。刚果红实验表明 SPS0 在水溶液中具有三
股螺旋结构，而 SPS1 不具有三股螺旋结构。
在微米尺度范围内，ESEM 观测结果表明 SPS0
的表面形貌圆滑工整，在纳米尺度范围内，AFM 观
测结果表明 SPS0 为长链状多分支结构；同理，在微
米尺度范围内，ESEM 观测结果表明 SPS1 的表面较
SPS0 粗糙，在纳米尺度范围内，AFM 观测结果表明
SPS1 呈长链状形态，具有少量分支结构。通过对防
风多糖的显微形貌特征观察和研究，为防风多糖结构
的研究提供了直观的信息，具有重要的生物学意义。
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