免费文献传递   相关文献

Quality differences of medical material, raw decoction pieces, and processed products of Astragalus membranaceus var. mongholicus

蒙古黄芪药材、生饮片及其炮制品质量差异性研究



全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47卷 第 6期 2016年 3月 ·905·
• 药剂与工艺 •
蒙古黄芪药材、生饮片及其炮制品质量差异性研究
刘德旺 1,龚苏晓 2,朱雪瑜 2,张铁军 2*
1. 内蒙古医科大学药学院,内蒙古 呼和浩特 010010
2. 天津药物研究院,天津 300193
摘 要:目的 对蒙古黄芪原药材、生饮片及其炮制品进行质量差异性研究。方法 选取道地蒙古黄芪的药用部位根,制备
成生饮片及炮制品,进行炮制前后黄芪甲苷、毛蕊异黄酮苷、芒柄花素、总多糖、总黄酮和总皂苷量的比较研究,分析质量
差异性原因。结果 成分量由高到低分别为黄芪甲苷:原药材>生饮片>蜜炙品>酒炙品>盐炙品>炒制品;毛蕊异黄酮苷、
芒柄花素和总多糖:原药材>生饮片>酒炙品>盐炙品>蜜炙品>炒制品;总黄酮:原药材>酒炙品>生饮片>盐炙品>蜜
炙品>炒制品;总皂苷:原药材>蜜炙品>生饮片>酒炙品>盐炙品>炒制品。结论 温度和辅料保护可能是影响蒙古黄芪
原药材、生饮片及其炮制品质量差异的主要因素。
关键词:蒙古黄芪;炮制;质量差异性;温度;辅料
中图分类号:R283.1 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2016)06 - 0905 - 06
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2016.06.008
Quality differences of medical material, raw decoction pieces, and processed
products of Astragalus membranaceus var. mongholicus
LIU De-wang1, GONG Su-xiao2, ZHU Xue-yu2, ZHANG Tie-jun2
1. School of Pharmaceutical Science, Inner Mongolia Medical University, Hohhot 010010, China
2. Tianjin Institute of Pharmaceutical Research, Tianjin 300193, China
Abstract: Objective To study the quality differences of medical material, raw decoction pieces, and processed products of Astragalus
membranaceus var. mongholicus. Methods The raw decoction pieces and processed products were obtained from genuine medicinal
materials of A. membranaceus var. mongholicus. The reasons for the quality differences were analyzed by comparing the contents of
astragaloside IV, calycosin-7-O-β-D-glucopyranoside, formononetin, total polysaccharides, saponins, and flavones. Results With
content analysis, the sequence was found as follows: astragaloside IV (medical material > raw decoction piece > honey-fried piece >
alcohol-fried piece > salt-fried piece > fried piece); calycosin-7-O-β-D-glucopyranoside, formononetin, and total polysaccharides
(medical material > raw decoction pieces > alcohol-fried piece > salt-fried piece > honey-fried piece > fried piece), total flavones
(medical material > alcohol-fried piece > raw decoction pieces > salt-fried piece > honey-fried piece > fried piece), total saponins
(medical material > honey-fried piece > raw decoction pieces > alcohol-fried piece > salt-fried piece > fried piece). Conclusion The
temperature and supplementary material may play the main roles for quality differences of A. membranaceus var. mongholicus.
Key words: Astragalus membranaceus (Fisch.) Bge. var. mongholicus (Bge.) Hsiao; processing; quality differences; temperature;
supplementary materials

黄芪 Astragali Radix是临床应用广泛的补益要
药,据有记载黄芪炮制的 108部历代炮制文献统计,
黄芪炮制的主要传统方法是蜜炙、盐炙、酒炙和炒
制[1-2]。现行《中国药典》2015年版收载有黄芪、(蜜)
炙黄芪 2种规格的饮片。现代有关比较黄芪加工炮
制前后化学成分差异性的文献报道较少,且相关报

收稿日期:2015-09-07
基金项目:国家科技支撑计划子课题:蒙古黄芪药材及饮片商业标准研究(2011BAI07B01)
作者简介:刘德旺(1964—),男,研究方向为天然药物资源。Tel: (0471)6653152 E-mail: ldewang@sohu.com
*通信作者 张铁军 Tel: (022)23006848 E-mail: zhangtj@tjipr.com

中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47卷 第 6期 2016年 3月 ·906·
道多围绕黄芪生品和蜜炙品,相关指标化学成分也
比较单一。而盐炙和酒炙黄芪确有无法替代的功效,
故有必要对黄芪炮制前后的成分变化进行细致深入
地研究[1]。
本实验选取蒙古黄芪 Astragalus membranaceus
(Fisch.) Bge. var. mongholicus (Bge.) Hsiao的药用部
位根作为原药材,制备成生饮片及炮制饮片,系统
进行了原药材、生饮片及其炒制品、蜜炙品、酒炙
品和盐炙品中黄芪甲苷、毛蕊异黄酮苷和芒柄花素、
总多糖、总黄酮和总皂苷的量差异性研究。
1 仪器与材料
Agilent1100高效液相色谱仪,蒸发光散射检测
器 Alltech ELSD 2000ES,Agilent Technologies,
Germany;Dionex液相系统,四元梯度泵,UV1601
检测器,变色龙工作站;UV1601 分光光度计,日
本岛津;BP2IID 型电子天平,十万分之一,德国
SartorinS 公司;AB204-N 电子分析天平,Mettler
Toledo。
对照品黄芪甲苷(批号 110781-200613,质量
分数≥98%)、毛蕊异黄酮苷(批号 111920-201102,
质量分数 97.1%)、芒柄花素(批号 111703-201204,
质量分数≥98%)、无水 D-葡萄糖(批号 0833-9501,
质量分数≥98%)均购于中国食品药品检定研究院。
蒙古黄芪药材,蒙古巴盟市乌拉特前旗朝阳镇农户
种植,由天津药物研究院张铁军研究员鉴定为豆科
黄芪属植物蒙古黄芪 Astragalus membranaceus
(Fisch.) Bge. var. mongholicus (Bge.) Hsiao的干燥
根,批号 H8。黄芪生饮片、炒制品、蜜炙品、酒炙
品、盐炙品均自制;乙腈(色谱纯),娃哈哈纯净水,
其余试剂均为分析纯。
2 方法与结果
2.1 炮制方法
参照各省《中药饮片炮制规范》以及《医院中
药饮片管理规范实施手册》进行制备,通过 L9(34)
正交试验,得到优化炮制工艺如下。
2.1.1 黄芪生饮片的制备 取蒙古黄芪药材净制
后,用温水(30~40 ℃)浸泡 5 min,取出,覆盖
温麻布润透软化 2 h,切制成椭圆形厚片,厚度 2~
3 mm。烘箱 60 ℃鼓风干燥,备用。
2.1.2 黄芪炒制品的制备 炒锅置电磁炉上,文火
(120 ℃)加热,倒入“2.1.1”项制备的生饮片,160 ℃
翻炒至药材表面显微黄色,透出香气,出锅后及时
摊晾,备用。
2.1.3 黄芪蜜炙品的制备 取炼熟蜂蜜加入适量
开水稀释,开水量为熟蜜量的 1/3,得到稀炼蜜。
取“2.1.1”项制备的生饮片,加入质量分数为 25%
稀炼蜜,搅拌均匀,闷润 2.0 h,用文火约 110 ℃
翻炒至外表皮色泽加深,呈淡棕黄色,略有光泽,
具蜜香气、略带黏性而以不黏手为度,取出,摊晾,
备用。
2.1.4 黄芪酒炙品的制备 取“2.1.1”项制备的生
饮片,黄芪饮片与黄酒用量(W/V)为 10∶1,将
黄酒均匀喷淋在黄芪片上,搅拌均匀,闷润 2.0 h,
用文火 80 ℃翻炒至表面显微黄色,取出,摊晾,
备用。
2.1.5 黄芪盐炙品的制备 取食用盐制成 20%盐
水,另取“2.1.1”项制备的生饮片,加上述盐水拌
匀(食用盐用量为 2%),闷润 1 h,用文火(120 ℃)
加热翻炒至显微黄色。有香气逸出时,取出,摊晾,
备用。
2.2 炮制前后黄芪甲苷的量差异性研究[3]
2.2.1 色谱条件 Dikma C18色谱柱(250 mm×4.6
mm,5 μm);流动相为乙腈-水(32∶68);柱温
35 ℃;体积流量 1 mL/min;蒸发光散射检测:撞
击器关(Impactor off);漂移管温度 100 ℃;载气
体积流量 2.0 L/min;理论板数按黄芪甲苷峰计算应
不低于 4 000。
2.2.2 对照品溶液的制备 精密称取黄芪甲苷对照
品适量,加甲醇制成质量浓度为 506.4 μg/mL的对
照品溶液。
2.2.3 供试品溶液的制备 取各种黄芪样品中粉约
4 g,精密称定,按照《中国药典》2015年版黄芪项
下黄芪甲苷的定量测定方法制备。
2.2.4 样品测定 分别精密吸取对照品溶液 10、20
μL,各供试品溶液 20 μL,注入液相色谱仪,测定,
按照《中国药典》2015年版黄芪项下黄芪甲苷定量
测定方法,以外标两点法对数方程计算,得对数方
程 y=1.092 4 x+2.602 6,HPLC色谱图见图 1,测
定结果见表 1。结果显示,炮制后,黄芪甲苷的量
由高到低为原药材>生饮片>蜜炙品>酒炙品>盐
炙品>炒制品。
2.3 炮制前后毛蕊异黄酮苷和芒柄花素的量差异
性研究[3-4]
2.3.1 色谱条件 Dikma C18色谱柱(250 mm×4.6
mm,5 μm);检测波长 260 nm;柱温 30 ℃;体积
流量 1 mL/min;流动相为乙腈-0.2%甲酸水溶液,

中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47卷 第 6期 2016年 3月 ·907·



图 1 黄芪甲苷对照品 (A) 和蒙古黄芪原药材 (B) 的
HPLC图
Fig. 1 HPLC of astragaloside IV (A) and medical material
of A. membranaceus var. mongholicus (B)

表 1 蒙古黄芪原药材、生饮片及其炮制品中黄芪甲苷定量
测定结果 (n = 3)
Table 1 Quantitative determination of astragaloside IV in
medicinal material, raw decoction pieces, and processed
product of A. membranaceus var. mongholicus (n = 3)
编号 样品 黄芪甲苷/(mg·g−1) 增减百分比/%
1 原药材 0.697 /
2 生饮片 0.661 100.00
3 炒制品 0.546 −17.40
4 蜜炙品 0.643 −2.72
5 酒炙品 0.625 −5.45
6 盐炙品 0.614 −7.11
蜜炙品中饮片占蜜炙成品的 80%,计算其量时扣除;增减百分比
相对于生饮片计算,下同
Piece accounts for 80% in honey-fried, it is deducted when calculating
content; Percentage increase or decrease is deducted by crude piece,
same as below

梯度洗脱程序:0~20 min,20%~40%乙腈;20~
35 min,40%乙腈。
2.3.2 对照品溶液的制备 精密称取毛蕊异黄酮
苷、芒柄花素对照品适量,加甲醇制成含毛蕊异黄
酮苷 60.3 μg/mL、芒柄花素 16.32 μg/mL的混合对
照品溶液。
2.3.3 供试品溶液的制备 取各种黄芪样品粉末
(过 4号筛)约 1 g,精密称定,置 100 mL圆底烧
瓶中,精密加入甲醇 50 mL,称定质量,加热回流
4 h,放冷,再称定质量,甲醇补足减失的质量,摇
匀,滤过,精密量取滤液 25 mL,回收溶剂至干,
残渣加甲醇溶解,转移至 5 mL量瓶中,加甲醇稀
释至刻度,摇匀,0.45 μm微孔滤膜滤过,备用。
2.3.4 线性关系考察 分别精密吸取“2.3.2”项下
制备的混合对照品溶液 2、5、10、15、18、20 μL,
注入液相色谱仪。以进样量为横坐标(X),峰面积
为纵坐标(Y),绘制标准曲线,得回归方程为毛蕊
异黄酮苷 Y=3.544 X-69.908,r=0.999 9,表明毛
蕊异黄酮苷进样量在 120.6~1 206.0 μg与峰面积呈
良好的线性关系;芒柄花素 Y=6.254 X-26.612,
r=0.999 8,表明芒柄花素进样量在 32.64~326.4 μg
与峰面积呈良好的线性关系。
2.3.5 精密度试验 取混合对照品溶液,按“2.3.1”
项下色谱条件连续进样 6次,测定毛蕊异黄酮苷和
芒柄花素的峰面积,计算毛蕊异黄酮苷峰面积 RSD
为 0.34%,芒柄花素峰面积 RSD为 0.81%,表明仪
器精密度良好。
2.3.6 稳定性试验 取蒙古黄芪原药材(批号 H8)
按“2.3.3”项下方法制成供试品溶液,按“2.3.1”
项下色谱条件分别在 0、4、8、14、20、24 h测定,
结果显示,毛蕊异黄酮苷峰面积 RSD为 0.99%,芒
柄花素峰面积 RSD 为 1.05%,表明供试品溶液在
24 h内稳定。
2.3.7 重复性试验 取蒙古黄芪原药材(批号 H8)
6 份,精密称定,按“2.3.3”项下方法制备供试品
溶液并测定,结果毛蕊异黄酮苷平均质量分数为
1.192 mg/g,RSD 为 2.40%;芒柄花素平均质量分
数为 142.2 μg/g,RSD为 2.74%。
2.3.8 加样回收率试验 取蒙古黄芪原药材(批号
H8)6份,每份约 0.5 g,精密称定,置 100 mL圆
底烧瓶中,分别精密加入 1 mL毛蕊异黄酮苷对照
品溶液(质量浓度为 0.594 mg/mL)、1 mL芒柄花
素对照品溶液(质量浓度为 72.2 μg/mL),置 100 mL
圆底烧瓶中,精密加入甲醇 48 mL,按“2.3.3”项
下方法制成供试品溶液,按“2.3.1”项下方法测定,
按照《中国药典》2015 年版 9101 药品质量标准分
析方法验证指导原则,采用外标法计算其质量分数
及加样回收率,记录样品和对照品中毛蕊异黄酮苷
和芒柄花素峰面积,计算回收率。结果毛蕊异黄酮
葡糖苷的平均回收率为 99.57%,RSD为 1.85%,芒
柄花素的平均回收率为 99.26%,RSD为 2.11%。
2.3.9 样品测定结果 取上述蒙古黄芪原药材、生
饮片及其各种炮制样品,按“2.3.3”项下方法制备
供试品溶液并测定,HPLC 色谱图见图 2,测定结
果见表 2。结果显示,炮制后,毛蕊异黄酮苷和芒
柄花素的量由高到低为原药材>生饮片>酒炙品>
盐炙品>蜜炙品>炒制品。
2.4 炮制前后多糖的量差异性研究[5]
2.4.1 对照品溶液的制备 精密称取无水 D-葡萄
糖对照品适量,加甲醇制成质量浓度为 404.8 μg/mL
的对照品溶液。
黄芪甲苷
黄芪甲苷 A B
0 10 20 0 10 20
t/min

中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47卷 第 6期 2016年 3月 ·908·




图 2 混合对照品 (A) 和蒙古黄芪原药材 (B) HPLC图
Fig. 2 HPLC of mixed reference substances (A) and crude
drug of Astragalus Radix (B)
2.4.2 供试品溶液的制备 取各样品粉末(过 4号
筛)约 3 g,精密称定,置索氏提取器中,用 80%
乙醇索氏回流提取 2 h,残渣挥干溶剂后,加水 100
mL回流提取 2次,每次 1.5 h,滤过置 200 mL量
瓶中,加水稀释至刻度,摇匀,精密量取 5 mL,加
乙醇 50 mL超声处理 10 min,离心,取沉淀挥干溶
剂,加水溶解至 10 mL量瓶中,稀释至刻度,0.45 μm
微孔滤膜滤过,精密量取滤液 1 mL,置 10 mL具
塞干燥试管中,备用。
2.4.3 显色及测定 分别精密量取无水 D-葡萄糖
对照品溶液 0.5、1.0 mL和各供试品溶液 1.0 mL,
精密加入蒸馏水至总体积 1.0 mL,加入 5%苯酚溶

表 2 蒙古黄芪原药材、生饮片及其炮制品中毛蕊异黄酮苷和芒柄花素的定量测定结果 (n = 3)
Table 2 Determination of calycosin-7-O-β-D-glucopyranoside and formononetin of medicinal material, raw decoction pieces,
and processed products from A. membranaceus var. mongholicus (n = 3)
编号 样品
质量分数/(mg·g−1) 增减百分比/%
毛蕊异黄酮苷 芒柄花素 毛蕊异黄酮苷 芒柄花素
1 原药材 1.192 0.142 2 / /
2 生饮片 1.135 0.138 5 100.00 100.00
3 炒制品 0.866 0.109 4 −23.70 −21.01
4 蜜炙品 1.008 0.127 1 −11.19 −8.23
5 酒炙品 1.129 0.137 4 −0.53 −0.79
6 盐炙品 1.047 0.135 6 −7.75 −2.09

液 1.0 mL,混匀,迅速加入浓硫酸 5.0 mL,摇匀,
100 ℃水浴加热 15 min,取出,冰浴中冷却 15 min,
于 490 nm测定吸光度(A)值。
2.4.4 线性关系考察 分别精密量取“2.4.1”项下
制备的 D-葡萄糖对照品溶液 1.0、2.0、2.5、3.0、
4.0、5.0 mL置 5 mL量瓶中,加水稀释至刻度,摇
匀。分别精密量取 1.0 mL,按“2.4.3”项下方法测
定 A值。以进样量为横坐标(X),A值为纵坐标(Y),
绘制标准曲线,得回归方程为 Y=0.001 4 X-0.018 4,
r=0.999 7,说明 D-葡萄糖进样质量在 80.96~
404.80 μg与 A值呈良好的线性关系。
2.4.5 样品测定结果 取上述蒙古黄芪原药材、生
饮片及其各种炮制样品,按“2.4.2”项下方法制备
供试品溶液,按“2.4.3”项下方法测定,应用外标
两点法计算多糖质量分数。结果见表 3。结果显示,
炮制后,多糖的量由高到低为原药材>生饮片>酒
炙品>盐炙品>蜜炙品>炒制品。
2.5 炮制前后总黄酮的量差异性研究[6-7]
2.5.1 对照品溶液的制备 精密称取毛蕊异黄酮苷
表 3 蒙古黄芪原药材、生饮片及其炮制品中多糖的定量测
定结果 (n = 3)
Table 3 Quantitative determination of polysaccharides of
medicinal material, raw decoction pieces, and processed
products from A. membranaceus var. mongholicus (n = 3)
编号 样品 多糖质量分数/% 增减百分比/%
1 原药材 4.96 /
2 生饮片 4.52 100.00
3 炒制品 4.03 −10.84
4 蜜炙品 4.32 −4.42
5 酒炙品 4.47 −1.11
6 盐炙品 4.35 −3.76

对照品适量,加 80%乙醇制成质量浓度为 401.6
μg/mL的对照品溶液。
2.5.2 供试品溶液的制备 取各样品粉末(过 4号
筛)约 2 g,精密称定,置索氏提取器中,用 60~
90 ℃石油醚索氏回流脱脂 4 h,残渣挥干溶剂后,
加 80%乙醇 40 mL回流提取 2次,每次 1.5 h,滤过
置 200 mL量瓶中,加 80%乙醇至刻度,摇匀。精
A
B
毛蕊异黄酮苷
毛蕊异黄酮苷
芒柄花素
芒柄花素
0 10 20 30
t/min

中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47卷 第 6期 2016年 3月 ·909·
密吸取 5 mL至 10 mL量瓶中,加 80%稀释至刻度,
摇匀,0.45 μm微孔滤膜滤过,备用。
2.5.3 显色及测定 精密量取毛蕊异黄酮苷对照品
溶液 1.0 mL和样品溶液 1.0 mL,置 10 mL量瓶中,
加入 5%亚硝酸钠溶液 0.3 mL,放置 6 min,加入
10%硝酸铝溶液 0.3 mL,放置 6 min,加入 4%氢氧
化钠溶液 4.0 mL,加水至刻度,混匀,于 510 nm
测定 A值。
2.5.4 线性关系考察 分别精密量取“2.5.1”项下
制备的毛蕊异黄酮苷对照品溶液 1.0、2.0、2.5、3.0、
4.0、5.0 mL置 5 mL量瓶中,加水稀释至刻度,摇
匀。分别精密量取 1.0 mL,按“2.5.3”项下方法测
定 A值。以进样质量为横坐标(X),A值为纵坐标
(Y),绘制标准曲线,得回归方程为 Y=0.015 9 X+
0.007 7,r=0.999 8,说明毛蕊异黄酮苷进样质量在
8.032~40.160 μg与 A值呈良好的线性关系。
2.5.5 样品测定 取上述蒙古黄芪原药材、生饮片
及其各种炮制样品,按“2.5.2”项下方法制备供试
品溶液,按“2.5.3”项下方法测定,应用外标法计
算总黄酮质量分数。结果见表 4。结果显示炮制后,
总黄酮量由高到低为原药材>酒炙品>生饮片>盐
炙品>蜜炙品>炒制品。
表 4 蒙古黄芪原药材、生饮片及其炮制品中总黄酮的定量
测定结果 (n = 3)
Table 4 Determination of total flavonoids of medical
material, raw decoction pieces and processed products from
A. membranaceus var. mongholicus (n = 3)
编号 样品 总黄酮质量分数/% 增减百分比/%
1 原药材 0.628 /
2 生饮片 0.621 100.00
3 炒制品 0.561 −9.66
4 蜜炙品 0.583 −6.12
5 酒炙品 0.625 0.64
6 盐炙品 0.604 −2.74

2.6 炮制前后总皂苷的量差异性研究[8]
2.6.1 对照品溶液的制备 精密称取黄芪甲苷对照
品适量,加甲醇制成质量浓度为 350.4 μg/mL的对
照品溶液。
2.6.2 供试品溶液的制备 取黄芪样品中粉约 1 g,
精密称定,置索氏提取器中,用 60~90 ℃石油醚
索氏回流脱脂 4 h,残渣挥干溶剂后,加乙醇 100 mL
回流提取 2次,每次 2 h,提取液减压回收溶剂至干,
残渣加热水 20 mL使溶解,用水饱和的正丁醇振摇
提取 4次,每次 30 mL,合并正丁醇液,用氨试液
充分洗涤 2次,每次 30 mL,弃去氨液,正丁醇液
蒸干,残渣用甲醇溶解并转移至 10 mL量瓶中,加
甲醇至刻度,摇匀,即得。
2.6.3 显色及测定 分别精密量取黄芪甲苷对照品
溶液 1.0 mL和样品溶液 1.0 mL,水浴蒸干,精密
加入 5%香草醛-冰醋酸溶液 0.2 mL 和高氯酸 0.8
mL,混匀,至 70 ℃水浴加热 15 min,取出,冷水
中冷却 5 min,于 580 nm测定 A值。
2.6.4 线性关系考察 分别精密量取“2.6.1”项下
制备的黄芪甲苷对照品溶液 1.0、2.0、2.5、3.0、4.0、
5.0 mL置 5 mL量瓶中,加甲醇稀释至刻度,摇匀。
分别精密量取 1.0 mL,按“2.6.3”项下方法测定 A
值。以进样质量为横坐标(X),A值为纵坐标(Y),
绘制标准曲线,得回归方程为 Y=0.003 1 X-0.161 9,
r=0.999 8,说明黄芪甲苷进样量在 70.08~350.40
μg与 A值呈良好的线性关系。
2.6.5 样品测定结果 取上述蒙古黄芪原药材、生
饮片及其各种炮制样品,按“2.6.2”项下方法制备
供试品溶液,按“2.6.3”项下方法测定,应用外标
法计算总皂苷质量分数。结果见表 5。结果显示,
炮制后,总皂苷的量由高到低为原药材>蜜炙品>
生饮片>酒炙品>盐炙品>炒制品。
表 5 蒙古黄芪原药材、生饮片及其炮制品中总皂苷的定量
测定结果 (n = 3)
Table 5 Determination of total saponins of medical
material, raw decoction pieces, and processed products from
A. membranaceus var. mongholicus (n = 3)
编号 样品 总皂苷质量分数/% 增减百分比/%
1 原药材 2.241 /
2 生饮片 2.207 100.00
3 炒制品 1.902 −13.82
4 蜜炙品 2.219 0.54
5 酒炙品 2.178 −1.31
6 盐炙品 2.155 −2.36

3 讨论
黄芪炮制方法为实验室自建,是参考《中国药
典》《中药大辞典》《中华药海》《中草药炮制规范》
《全国中草药汇编》及全国各省市《中药材炮制规范》
等文献,建立 L9(34) 因素水平表优化而成。蜜炙黄
芪可以增其补中益气之功兼能健脾温肺润燥,在临

中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47卷 第 6期 2016年 3月 ·910·
床上应用尤为广泛。依据上述规范确定药材与炼蜜
比例为 4∶1,炒制状态为不黏手,对其他未确定因
数炼蜜加开水的比例、闷润时间和炒制温度进行考
察;酒炙黄芪可以应用于肢体麻木、关节痹痛,对
因素黄酒用量、闷润时间、炮制温度进行考察;盐
炙黄芪可补肾益气,对因素食盐用量、闷润时间、
炒制温度进行考察;以黄芪甲苷量和传统外观质量
为评价指标,优化得到最优炮制工艺。
通过系统比较原药材、生饮片及其炮制品中总
皂苷及其代表性成分黄芪甲苷、总黄酮及其代表性
成分毛蕊异黄酮苷、芒柄花素与总多糖的量,可以
看出:炮制品中这些成分量降低最多,可能由于直
接受热,一部分成分变性所致。有文献报道[9]高温
对黄芪甲苷具破坏作用。蜜炙品中黄芪甲苷的量降
低最少,且总皂苷的量略微升高,可能由于其用蜜
水闷润,黏度较大,炒制过程中对黄芪甲苷等皂苷
类成分起到了保护作用。另有文献报道[10]皂苷类成
分加热可能发生糖键断裂致总量增加。酒炙品和盐
炙品中毛蕊异黄酮苷、芒柄花素与总多糖的量降低
较少,且总黄酮的量略微升高,可能由于辅料在药
材表面的附着以及不同程度地渗入药材组织内部,
起到一定的保护作用。另推测在加热条件下不同辅
料加入可能使黄酮类成分发生变化[11]。因此认为温
度和辅料保护可能对炮制过程中多种成分量的变化
起主导作用。
参考文献
[1] 徐丽莉, 袁久林. 黄芪炮制历史沿革及现代研究思路
[J]. 中华中医药学刊, 2011, 29(9): 2071-2073.
[2] 周 倩, 孙立立, 张乐林. 黄芪炮制历史沿革研究 [J].
中成药, 2014, 36(1): 157-159.
[3] 中国药典 [S]. 一部. 2015.
[4] 孙玉萍, 龚苏晓, 曹 煌, 等. 不同加工方法的蒙古黄
芪药材中毛蕊异黄酮苷和芒柄花素定量分析 [J]. 中草
药, 2015, 46(11): 1678-1681.
[5] 龚苏晓, 高 展, 张铁军, 等. 微波辅助提取黄芪多糖
及含量测定 [J]. 时珍国医国药, 2008, 19(4): 784-786.
[6] 李春红, 田 吉, 何 兵, 等. 紫外分光光度法测定黄
芪总黄酮的含量 [J]. 重庆医科大学学报, 2011, 36(8):
954-956.
[7] 房树标, 李艳彦, 刘必旺, 等. 紫外分光光度法测定蒙
古黄芪中总黄酮的含量 [J]. 中国药物与临床, 2007,
7(12): 899-901.
[8] 郑美蓉, 陈 鑫, 牟宗涛, 等. 紫外分光光度法测定不
同产地黄芪中总皂苷含量 [J]. 吉林医药学院学报 ,
2009, 30(2): 80-81.
[9] 尹丽华, 杨中林, 张红飞, 等. 不同产地、不同炮制品
中黄芪中黄芪甲苷的含量差异研究 [J]. 中成药, 2005,
27(9): 1044-1046.
[10] 刘星堦. 黄芪蜜炙方法的历史沿革及效用的探讨 [J].
中国中药杂志, 1993, 18(2): 87-89.
[11] 宋肖炜, 李 清, 叶 静, 等. 黄芪不同炮制品中黄酮
类成分的含量比较 [J]. 中国实验方剂学杂志, 2013,
19(9): 85-88.