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Optimization for purifying technology of Nelumubinis Plumula extract with chitosan by comparison of orthogonaldesign and response surface method

正交设计与响应面法优化壳聚糖对莲子心提取液除杂工艺对比研究



全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 43 卷 第 11 期 2012 年 11 月

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正交设计与响应面法优化壳聚糖对莲子心提取液除杂工艺对比研究
陈 敬 1, 2,温庆果 1,刘 韶 1*,李新中 1
1. 中南大学湘雅医院,湖南 长沙 410008
2. 长沙市中心医院药学部,湖南 长沙 410004
摘 要:目的 确定壳聚糖用于莲子心提取液除杂的最佳工艺条件。方法 以固形物去除率、甲基莲心碱保留率为考察指标,
分别考察壳聚糖用量、药液质量浓度、药液 pH 值、作用温度、搅拌时间对除杂效果的影响;在单因素分析的基础上采用正
交试验设计及响应面法对比优化除杂工艺条件。结果 莲子心提取液除杂的优化工艺条件:药液质量浓度为生药 0.2 g/mL
(1∶5)或 0.18 g/mL(1∶5.5),壳聚糖溶液(1%)用量为 1.2 mL/g(壳聚糖溶液体积与生药量之比),作用温度为 60 ℃,
pH 值为 6.2,搅拌时间 20 min。结论 正交设计与响应面法均可用于壳聚糖对莲子心提取液除杂的工艺条件优化,且除杂效
果良好;但正交设计的试验次数相对较少,且方法简便,更加适合壳聚糖除杂工艺的优化。
关键词:莲子心;壳聚糖;除杂工艺;正交设计;响应面法;甲基莲心碱
中图分类号:R284.2 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2012)11 - 2183 - 06
Optimization for purifying technology of Nelumubinis Plumula extract with
chitosan by comparison of orthogonal design and response surface method
CHEN Jing1, 2, WEN Qing-guo1, LIU Shao1, LI Xin-zhong1
1. Xiangya Hospital, Central South University, Changsha 410008, China
2. Department of Pharmacy, Changsha Central Hospital, Changsha 410004, China
Key words: Nelumbinis Plumula; chitosan; purifying technology; orthogonal design; response surface method (RSM); neferine

莲子心中生物碱具有抗心律失常[1]、降压[2]、降
血糖[3]、抗血小板聚集[4]、逆转肿瘤多药耐药[5-6]等
多种药理作用,但在提取过程中,莲子心中所含的
胶质、蛋白质、叶绿素、果胶、鞣质等成分使其难
以用普通滤过方式除去,有人曾采用膜分离方法分
离莲心碱[7],但滤膜抗污染能力弱,使用寿命短。壳
聚糖是天然阳离子型絮凝剂,具有优良的絮凝效果,
在中药提取液除杂澄清工艺中应用较多[8-10],但尚
未见壳聚糖用于莲子心提取液除杂处理的报道。本
实验采用正交试验设计法和响应面法(response
surface method,RSM)[11-13]分别优化了壳聚糖对莲
子心提取液除杂工艺条件,并对两种试验设计获得
的结果进行了比较。
1 仪器与材料
DF—101S 集热式磁力加热搅拌器:江苏金坛
市医疗仪器厂;赛多利斯分析天平(德国赛多利斯
仪器系统有限公司);Agilent 1100 高效液相色谱仪,
包括 G1311A 四元梯度泵、G1313A 自动进样器、
G1311A 柱温箱、G1315A 二极管阵列检测器(美国
安捷伦公司)。
壳聚糖(国药集团化学试剂有限公司);莲子心
(湖南三湘中药饮片有限公司,经湘雅医院药剂科刘
韶副主任药师鉴定为睡莲科莲属植物莲 Nelumbo
nucifera Gaertn. 成熟种子的干燥绿色胚芽)。甲基
莲心碱对照品(自制,HPLC 峰面积归一化法计算
质量分数>97%);甲醇(色谱纯,美国 Tedia 公司);
其他试剂为分析纯。
数据分析软件:正交设计助手 II(专业版)V3.1;
Design-expert 8.0.4。
2 方法与结果
2.1 莲子心提取液的制备
取莲子心 1 kg,按文献报道[14]方法提取,回收

收稿日期:2012-03-06
基金项目:湖南省中医药管理局基金资助项目(2009056)
作者简介:陈 敬(1985—),女,硕士研究生,研究方向为中药新药。Tel: 13974903224 E-mail: xtcj2003@163.com
*通讯作者 刘 韶 Tel: 13723873434 E-mail: liushao999@hotmail.com
网络出版时间:2012-10-19 网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/12.1108.R.20121019.1034.005.html
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 43 卷 第 11 期 2012 年 11 月

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乙醇至完全,加纯化水定容,得质量浓度为生药 0.2
g/mL(1∶5)的莲子心提取液,测得其 pH 值为 6.2;
依法可得 0.17 g/mL(1∶6)、0.13 g/mL(1∶8)、
0.10 g/mL(1∶10)的莲子心提取液,备用。
2.2 壳聚糖溶液的制备[9]
称取 5.0 g 壳聚糖,先用少量 l%醋酸溶液将其
搅成糊状,再用 l%醋酸溶液定容至 500 mL,溶胀
24 h,充分搅拌均匀,即得 1%壳聚糖溶液,备用。
2.3 甲基莲心碱的测定[14]
2.3.1 色谱条件 色谱柱为 Hypersil BDS C18 柱
(150 mm×4.6 mm,5 μm),流动相为甲醇(A)-0.1%
三乙胺水溶液(B),梯度洗脱:0~5 min,60%~
75% A;5~10 min,75%~80% A;检测波长 282 nm,
体积流量 1.0 mL/min,柱温 30 ℃。
2.3.2 对照品溶液的配制 精密称取甲基莲心碱对
照品 6.7 mg 置 25 mL 量瓶中,甲醇溶解,定容,得
268 μg/mL 对照品溶液。
2.3.3 供试品溶液的制备 精密吸取 1 mL 莲子心
提取液澄清剂处理前后的样品于 5 mL 量瓶中,加
甲醇稀释至刻度,用 0.45 μm 微孔滤膜滤过,取续
滤液作为供试品溶液。
2.3.4 线性关系考察 精密吸取对照品溶液 2、4、
6、8、10、15、20 μL 注入液相色谱仪,按上述色
谱条件测定峰面积。以峰面积为纵坐标(Y),甲基
莲心碱质量为横坐标(X)进行线性回归,得回归
方程 Y=809.58 X-16.738,r=1.000 0,表明甲基
莲心碱在 0.536~5.36 μg 与峰面积呈良好线性关系。
2.3.5 样品测定 分别精密吸取对照品溶液与供试
品溶液各 10 μL,注入液相色谱仪,测定,外标法
计算,即得。
2.4 评价指标
2.4.1 甲基莲心碱保留率 采用 HPLC 法分别对澄
清前后提取液中甲基莲心碱进行定量测定,计算保
留率。
甲基莲心碱保留率=澄清后甲基莲心碱的量/澄清前甲
基莲心碱的量
2.4.2 固形物去除率[15] 精密量取澄清处理前后
提取液各 25 mL,置已干燥至恒定质量的蒸发皿中,
水浴蒸干,105 ℃烘 3 h,迅速置于干燥器中冷却,
30 min 后精密称定,计算固形物去除率。
固形物去除率=(澄清前固形物的量-澄清后固形物的
量)/澄清前固形物的量
2.4.3 综合评分(overall desirability,OD) 在用
澄清剂对莲子心提取液进行除杂处理时,既需最大
限度地减少目标有效成分的损失,又要保证较好的
澄清效果,所以选取固形物去除率(Y1)及甲基莲
心碱保留率(Y2)一同作为评价指标进行综合评分,
将 Y1 的权重设定为 0.3,Y2 的权重设定为 0.7,则:
OD=(Y1/Y1max×0.3+Y2/Y2max×0.7)[16-17]。
2.5 除杂工艺单因素考察
2.5.1 壳聚糖溶液用量对除杂效果的影响 取质量
浓度为 1∶6 的莲子心提取液 60 mL,平行 6 份,在
50 ℃下加入不同量的壳聚糖溶液,搅拌 10 min,
保温 1 h,室温静置 12 h,滤过,滤液定容至 50 mL,
测定固形物去除率和甲基莲心碱保留率,结果见表
1。由结果可知,壳聚糖溶液用量对固形物去除率及
甲基莲心碱保留率影响明显,随着壳聚糖溶液用量
增大,固形物去除率增大,但甲基莲心碱保留率随
之下降。

表 1 壳聚糖用量对除杂效果的影响
Table 1 Effect of chitosan dosage on purifying
壳聚糖用量 /
(mL·g−1)
固形物去
除率 / %
甲基莲心碱
保留率 / %
OD 值 / %
0.6 12.23 96.96 84.14
0.8 15.07 94.67 85.78
1.0 17.80 93.24 87.90
1.2 19.74 90.96 88.50
1.6 24.24 86.06 90.16
1.8 25.94 85.23 91.53

2.5.2 药液质量浓度、药液 pH 值、作用温度、搅
拌时间考察 取莲子心提取液适量,按单因素设计
试验,壳聚糖用量为 0.8 mL/g,分别设置药液质量
浓度为 1∶5、1∶6、1∶8、1∶10,药液 pH 值为 3、
4、5、6.2(不调),作用温度为 40、50、60、70、
80 ℃,搅拌时间为 10、20、30、40、60 min,其
余操作基本同“2.5.1”项下方法。结果表明药液质
量浓度、作用温度对除杂效果影响较明显;搅拌时
间对除杂效果影响较小,搅拌 20 min 即可;药液
pH 值对固形物去除率及甲基莲心碱保留率影响较
小,且 pH 值越低,药液中非水溶性物质易游离出
来形成油状沉淀,加大了后续滤过操作的难度,故
不考虑调节 pH 值。结果见表 2~5。
2.6 正交试验设计优选除杂工艺条件
由单因素试验得知,药液质量浓度、壳聚糖用
量、作用温度对澄清效果影响较显著,而搅拌时间
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 43 卷 第 11 期 2012 年 11 月

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表 2 药液质量浓度对除杂效果的影响
Table 2 Effect of sample concentration on purifying
药液质量浓度 /
(g·mL−1)
固形物去
除率 / %
甲基莲心碱
保留率 / %
OD 值 / %
1∶10 11.58 91.32 87.95
1∶ 8 12.40 94.16 91.48
1∶ 6 14.29 93.66 94.38
1∶ 5 17.32 90.41 97.21

表 3 药液 pH 值对除杂效果的影响
Table 3 Effect of pH value on purifying
药液 pH 值
固形物去
除率 / %
甲基莲心碱
保留率 / %
OD 值 / %
3 16.10 95.24 99.80
4 16.04 95.35 99.77
5 15.42 95.48 98.70
6.2 (不调节) 14.85 94.25 96.74

表 4 作用温度对除杂效果的影响
Table 4 Effect of temperature on purifying
作用温度 / ℃
固形物去
除率 / %
甲基莲心碱
保留率 / %
OD 值 / %
40 12.13 94.05 88.05
50 14.81 94.27 92.77
60 17.63 95.24 98.27
70 9.67 96.73 85.79
80 8.12 97.66 83.82
表 5 搅拌时间对除杂效果的影响
Table 5 Effect of stirring time on purifying
搅拌时间 /
min
固形物去
除率 / %
甲基莲心碱
保留率 / %
OD 值 / %
10 14.77 93.23 95.99
20 15.46 94.36 98.14
30 14.81 94.84 97.23
40 11.18 96.93 91.69
60 11.06 96.89 91.43

对除杂效果影响较小,搅拌 20 min 即可;药液 pH
值对除杂效果影响也较小,且 pH 越低,溶液中非
水溶性物质游离出来形成油状沉淀,加大了后续过
滤的难度,故不考虑调节 pH 值。故选择药液质量
浓度(A)、澄清剂壳聚糖溶液用量(B)、作用温度
(C)3 个主要影响因素作为考察因素,以 Y1 与 Y2
的综合评分 OD 作为评价指标,采用 L9(34) 正交表
安排试验,加入壳聚糖溶液后搅拌 20 min,静置 12
h 后滤过,取滤液定容测定各指标,正交试验设计
与结果见表 6,方差分析见表 7。由表 6 直观分析可
知,正交试验的极差所确定的主次因素顺序依次为
B>C>A,即壳聚糖溶液用量>作用温度>药液质
量浓度。由直观分析可知 A3B3C3 方案最佳,方差分
析表明因素 B、C 对除杂效果影响差异具有显著性
(P<0.05),因素 A 差异无显著性;结合单因素试
验优选出壳聚糖除杂工艺条件为 A3B3C3,以此最佳
工艺条件进行验证试验,结果见表 8。

表 6 L9(34) 正交试验设计与结果
Table 6 Design and results of L9(34) orthogonal test
试验号 A B / (mL·g−1) C / ℃ D (空白) Y1 / % Y2 / % OD / %
1 1︰7 (1) 0.8 (1) 40 (1) (1) 13.92 94.59 89.57
2 1︰7 (1) 1.0 (2) 50 (2) (2) 16.45 93.63 92.43
3 1︰7 (1) 1.2 (3) 60 (3) (3) 21.16 90.70 96.89
4 1︰6 (2) 0.8 (1) 50 (2) (3) 14.75 94.62 90.76
5 1︰6 (2) 1.0 (2) 60 (3) (1) 18.89 92.88 95.31
6 1︰6 (2) 1.2 (3) 40 (1) (2) 19.39 88.24 92.58
7 1︰5 (3) 0.8 (1) 60 (3) (2) 17.36 94.06 94.02
8 1︰5 (3) 1.0 (2) 40 (1) (3) 19.37 89.82 93.72
9 1︰5 (3) 1.2 (3) 50 (2) (1) 21.31 88.21 95.26
K1 92.963 91.450 91.957 93.380
K2 92.883 93.820 92.817 93.010
K3 94.333 94.910 95.407 93.790
R 1.450 3.460 3.450 0.780

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表 7 正交试验方差分析
Table 7 Analysis of variance in orthogonal test
误差来源 偏平方和 自由度 F 值 显著性
A 3.986 2 4.366
B 18.777 2 20.566 P<0.05
C 19.350 2 21.194 P<0.05
D (误差) 0.910 2
F0.05(2, 2)=19.00 F0.01(2, 2)=99.00

表 8 正交验证试验
Table 8 Verification test of orthogonal test
试验号 固形物去除率 / % 甲基莲心碱保留率 / %
1 22.85 90.34
2 22.07 90.32
3 22.89 89.91

2.7 响应面法优选除杂工艺条件
2.7.1 响应面分析因素水平的选取 根据 Box-
Benhnken 试验设计原理,在单因素考察的基础上,
选择药液质量浓度(A)、壳聚糖用量(B)、作用温
度(C)3 个因素作为考察因素,以 Y1 与 Y2 的综合
评分 OD 作为评价指标,采用 3 因素 3 水平的响应
面分析方法安排试验,试验按“2.5”项下方法进行,
响应面分析方案见表 9。
表 9 响应面分析试验设计与结果
Table 9 Design and results of RSM
试验号 A B / (mL·g−1) C / ℃ Y1 / % Y2 / % OD / %
1 1∶7 (−1) 0.8 (−1) 50 (0) 13.84 94.20 88.09
2 1∶5 (1) 0.8 (−1) 50 (0) 16.74 92.96 91.18
3 1∶7 (−1) 1.2 (1) 50 (0) 17.79 91.66 91.93
4 1∶5 (1) 1.2 (1) 50 (0) 19.27 89.51 92.15
5 1∶7 (−1) 1.0 (0) 40 (−1) 15.69 92.90 89.69
6 1∶5 (1) 1.0 (0) 40 (−1) 17.66 91.26 91.21
7 1∶7 (−1) 1.0 (0) 60 (1) 17.51 92.92 92.21
8 1∶5 (1) 1.0 (0) 60 (1) 20.62 93.19 96.70
9 1∶6 (0) 0.8 (−1) 40 (−1) 15.71 94.43 90.84
10 1∶6 (0) 1.2 (1) 40 (−1) 19.55 90.79 93.47
11 1∶6 (0) 0.8 (−1) 60 (1) 18.61 95.58 94.30
12 1∶6 (0) 1.2 (1) 60 (1) 21.74 91.52 97.03
13 1∶6 (0) 1.0 (0) 50 (0) 16.38 94.63 91.91
14 1∶6 (0) 1.0 (0) 50 (0) 16.21 94.40 91.50
15 1∶6 (0) 1.0 (0) 50 (0) 17.14 93.95 92.46
16 1∶6 (0) 1.0 (0) 50 (0) 16.78 94.21 92.15
17 1∶6 (0) 1.0 (0) 50 (0) 16.61 94.83 92.37
2.7.2 方差分析和回归方程 回归方程各项的方差
分析见表 10。由 Box-Benhnken 设计拟合,得响应
值(Y)对编码自变量的二次多项回归方程为 Y=
92.08+1.16 A+1.27 B+1.88 C-0.72 AB+0.74
AC+0.025 BC-1.35 A2+0.11 B2+1.72 C2。
对该模型进行回归方差分析和显著性检验,结
果见表 10。结果表明,该模型 F 值为 35.18,概率
P<0.000 1,表明模型极显著;模型的确定系数 Radj2
值为 0.950 6,说明方程的因变量与全体自变量间线
性关系显著,响应值的变化有 95.06%来源于所选自
变量,即药液质量浓度、壳聚糖用量及作用温度。
模型的变异系数为 0.53%,说明模型的精密度好。
同时,方程的失拟项 F 值为 2.39,概率 P>0.05,
失拟项不显著,说明回归方程在整个回归区域的拟
合情况良好,可用该回归模型代替实验真实点对实
验结果进行分析。
由表 10 可知,对响应值作用显著的是 A、B、
C、AB、AC、A2、C2,因素 A、C 平方项的影响较
大,说明响应值与因素之间并不是简单的线性关系;
药液质量浓度与壳聚糖用量、药液质量浓度与温度
对响应值有较强交互作用。
2.7.3 等高线图和响应面图分析 回归优化响应面
曲面图见图 1。
根据二次多项回归方程,固定作用温度(因素

表 10 响应面法方差分析
Table 10 Analysis of variance in RSM
方差来源 平方和 自由度 F 值 显著水平
模型 75.55 9 35.18 P<0.000 1
A 10.86 1 45.50 P=0.000 3
B 12.93 1 54.18 P=0.000 2
C 28.24 1 118.34 P<0.000 1
AB 2.06 1 8.63 P=0.021 8
AC 2.21 1 9.24 P=0.018 8
BC 2.50×10−3 1 0.01 P=0.921 3
A2 7.66 1 32.11 P=0.000 8
B2 0.05 1 0.21 P=0.662 4
C2 12.51 1 52.42 P=0.000 2
残差 1.67 7
失拟项 1.07 3 2.39 P=0.209 8
纯误差 0.60 4
总和 77.22 16
P<0.001 为极显著;P<0.05 为显著
P<0.001 is highly significant; P<0.05 is significant
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图 1 药液质量浓度 (A) 与壳聚糖用量 (B) (I)、药液质量浓度 (A) 与作用温度 (C) (II) 和壳聚糖用量 (B)
与作用温度 (C) (III) 对除杂效果的影响
Fig. 1 Effects of extract concentration (A)-chitosan dosage (B) (I), extract concentration (A)-temperature (B) (II),
and chitosan dosage (B)-temperature (C) (III) on purifying

C),取中间值 50 ℃,可作出药液质量浓度(因素
A)和壳聚糖用量(因素 B)两因素的交互图,见
图 1-I。由该图可知,随着药液质量浓度升高,响应
值为一曲面,在药液质量浓度为 0.18 g/mL(即 1∶
5.5)时,存在极大值,而壳聚糖用量与响应值成正
相关,壳聚糖用量越大,响应值越大,当壳聚糖用
量为 1.2 mL/g 时,响应值最大。该图中曲线坡度较
陡,表明因素 A 和因素 B 交互作用明显。
同理,根据二项多次回归方程,固定壳聚糖用
量(因素 B),取中间值 1.0 mL/g,可以作出药液质
量浓度(因素 A)和作用温度(因素 C)两因素之
间的交互图,见图 1-II。在该图中,随着药液质量
浓度增加,响应值仍为一曲面,而随着温度升高,
响应值为一不对称马鞍面,温度为 60 ℃时,响应
值最高。两曲面坡度较陡,表明因素 A 和 C 之间交
互作用较明显。
同理,将药液质量浓度(因素 A)固定为 1∶6,
可作出壳聚糖用量(因素 B)和作用温度(因素 C)
之间的交互图,见图 1-III。该图曲面平缓,表明因
素 B 和 C 之间交互作用较小。
通过软件分析,回归模型预测的最佳除杂工艺
为药液质量浓度为生药 0.18 g/mL(即 1∶5.5),壳
聚糖用量为 1.2 mL/g,作用温度为 60 ℃。以此最
佳工艺进行验证试验,结果见表 11。
3 讨论
3.1 评价指标的选择
澄清剂能选择性地除去莲子心药液中胶质、蛋
白质、叶绿素、果胶、鞣质等成分,所以选取固形
物去除率作为评价除杂效果的指标。同时,为避免
有效成分的损失,故又选取甲基莲心碱保留率一同
表 11 响应面法验证试验
Table 11 Verification test of RSM
试验号 固形物去除率 / % 甲基莲心碱保留率 / %
1 22.66 90.72
2 22.82 89.78
3 22.19 91.51

作为指标进行综合评分。鉴于两指标间的矛盾性,
在数理统计时根据其重要程度给每个指标一个权
重,用权重影响该指标在方案得分中所占的分值。
在处理试验数据时笔者引入了综合评分这一概念,
从而可以方便的将不同考察范围的指标转变成一个
数值,从而可能预测出综合最优的除杂工艺条件时
各因素的取值。
3.2 药液 pH 值的选择
经单因素考察,药液 pH 值为 3~4 时,固形物
去除率较 pH 值 5~6 时略偏高,但该因素对固形物
去除率及甲基莲心碱保留率影响均不显著,且 pH
值越低,溶液中非水溶性物质游离出来形成油状沉
淀,加大了后续过滤的难度,故不考虑调节 pH 值。
3.3 正交设计法与响应面法比较
正交设计能够较为全面的考察多因素多水平,
具有试验次数较少,方法简便,结果准确可靠等优
点,能筛选出影响指标的显著因素并给出最佳因素
水平组合[18],但存在无法找出整个区域上因素的最
佳组合和响应值的缺点[19],多采用线性模型,与实
际情况可能有偏差,比如本实验中正交设计结果药
液质量浓度为1∶5,而响应面设计结果选择1∶5.5,
固形物去除率一致,但甲基莲心碱保留率稍偏高。
响应面优化法以回归方法作为函数估算工具,
O
D
/
%

94
92
90
88
1.00
90
94
98
O
D
/
%

O
D
/
%

1.20
98
90
94
B / (mL·g−1) A / (g·mL−1) C / ℃0.80 0.12
0.16
0.20 60.0
50.0
40.0
0.20
0.16
0.12
60.0
50.0
40.0 0.80
1.20
1.00
A / (g·mL−1) C / ℃ B / (mL·g−1)
I II III
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 43 卷 第 11 期 2012 年 11 月

·2188·
将多因子试验由回归因子与试验结果的相互关系用
多项式近似把因子与试验结果的关系函数化,能在
整个区域上找到因素和响应值之间明确的函数表达
式即回归方程,从而得到整个区域上因素的最佳组
合和响应值的最优值[13,18],试验精度更高,具有更
好的预测性。与正交试验相比,其优势是:在试验
条件寻优过程中,可以连续的对实验的各个水平进
行分析,而正交试验只能对一个个孤立的试验点进
行分析。但是响应面法仍有其局限性,该方法的前
提是设计的试验点应包括最佳的试验条件,如果试
验点的选取不当,响应面优化法是不能得到很好的
优化结果的。
两种方法优化得到的除杂工艺条件为药液质量
浓度为 1∶5 或 1∶5.5,壳聚糖用量为 1.2 mL/g,作
用温度为 60 ℃。通过本实验的比较,两种方法得
到的结果基本一致,均可用于除杂工艺条件的优化;
但正交试验的试验次数相对较少,方法简便,更加
适合于壳聚糖除杂工艺条件的优化。
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