目的:探讨氧化苦参碱对人肝癌细胞株(HepG2)增殖抑制的影响及其作用机制。方法:以0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.8,1,2,5,8,10,15 g·L-1的氧化苦参碱处理HepG2细胞,四噻唑蓝法(MTT)检测其对细胞增殖的影响;苏木精-伊红(HE)染色比较细胞形态差异;免疫组化染色进一步检测HepG2细胞肿瘤相关蛋白表达量的变化。结果:不同浓度氧化苦参碱处理HepG2细胞,低于1 g·L-1对细胞抑制不明显;1~8 g·L-1对细胞生长有明显的抑制作用,呈现时间和剂量依赖性;大于 8 g·L-1时,对细胞虽有明显的抑制作用,但未表现出明显的时间和剂量依赖性。进一步免疫组化分析结果显示,HepG2细胞肿瘤相关蛋白P53和Bcl-2表达量明显减少,而Bax表达量明显增加。结论:氧化苦参碱对HepG2细胞增殖具有明显的抑制作用;其作用机制可能是通过上调或者下调肿瘤相关蛋白的表达来实现的。
Objective: To investigate the effects and the mechanisms on oxymatrine inhibiting proliferation of HepG2 cells. Method: HepG2 cells were exposured to oxymatrine, final concentrations of which were 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5, 0.8, 1, 2, 5, 8, 10, 15 g·L-1 respectively, MTT method was used to determine the inhibiting effects of oxymatrine on HepG2 cells proliferation, followed by Haematoxylin and Eosin staining to observe the cell morphology. The expression of P53, Bcl-2 and Bax were further investigated by Immunohistochemical analysis. Result: Oxymatrine below dosage of 1 g·L-1 showed the little inhibition effect on the HepG2 cells proliferation and exhibited the significant inhibition effect from 1 to 8 g·L-1 in both a time-and dose-dependent manner. Whereas the dosage was above 8 g·L-1, oxymatrine didn′t showed the time- and dose-dependent relationship. The results of immunohistochemical analysis indicated that the expression of Bax obviously increased and that of Bcl-2 and P53 decreased. Conclusion: Oxymatrine could notably inhibit the HepG2 cells proliferation probably via upregulating the expression of the Bax and downregulating the expression of Bcl-2 and P53.
全 文 :氧化苦参碱抑制 HepG2细胞增殖的研究
秦学功,尹继云,张华
(黑龙江八一农垦大学 生命科学技术学院,黑龙江 大庆 163319)
[摘要] 目的:探讨氧化苦参碱对人肝癌细胞株(HepG2)增殖抑制的影响及其作用机制。方法:以01,02,03,04,
05,08,1,2,5,8,10,15g·L-1的氧化苦参碱处理 HepG2细胞,四噻唑蓝法(MTT)检测其对细胞增殖的影响;苏木精伊红
(HE)染色比较细胞形态差异;免疫组化染色进一步检测HepG2细胞肿瘤相关蛋白表达量的变化。结果:不同浓度氧化苦参碱
处理HepG2细胞,低于1g·L
-1对细胞抑制不明显;1~8g·L-1对细胞生长有明显的抑制作用,呈现时间和剂量依赖性;大于
8g·L-1时,对细胞虽有明显的抑制作用,但未表现出明显的时间和剂量依赖性。进一步免疫组化分析结果显示,HepG2细胞
肿瘤相关蛋白P53和Bcl2表达量明显减少,而Bax表达量明显增加。结论:氧化苦参碱对HepG2细胞增殖具有明显的抑制作
用;其作用机制可能是通过上调或者下调肿瘤相关蛋白的表达来实现的。
[关键词] 氧化苦参碱;HepG2细胞;增殖抑制;肿瘤相关蛋白
[收稿日期] 20080920
[基金项目] 黑龙江省教育厅科学技术研究项目(11511247)
[通信作者] 秦学功,Tel:(0459)6819299,Email:xgqin2005@ya
hoo.com.cn
每年全世界肝癌新发病例中约425%分布于
我国,严重威胁人民生命健康[1]。传统化疗和放疗
存在抗药性和毒副作用大等诸多问题,亟待开发新
的天然抗肝癌药物。现有研究证实,氧化苦参碱
(oxymatrine,OMT)可抑制胶质瘤细胞(BT325)[2]
人卵巢癌细胞(SKOV3)[3]乳腺癌细胞(MCF7)[4]
的增殖并诱导其分化和凋亡。HepG2细胞是新药体
外研究中应用最多且具有典型肝癌特征的细胞之
一,目前关于氧化苦参碱对其药理作用的研究鲜有
报道。本实验选用 HepG2细胞研究氧化苦参碱的抗
肝癌作用,并初步探讨其可能的抗癌机制。
1 材料
1.1 细胞株 HepG2细胞株(人肝母细胞瘤细胞
株),购自南京凯基生物科技发展有限公司。
1.2 药物 氧化苦参碱对照品购自西安鸿生生物
技术有限公司,HPLC检测纯度>98%(批号110780
200405)。
1.3 试剂 RPMI1640培养基(批号303566,美国
Gibco公司),胰酶(批号252056美国 Gibco公司),
胎牛血清(中国医学科学院生物工程研究所),MTT
(批号070612,美国Sigma公司),二甲亚砜(DMSO,
批号 D8418,美国 Sigma公司),抗 P53(批号
BM0101),Bcl2(批号BM0200),Bax(批号BA0315)
抗体,SABC浓缩型免疫组化试剂盒(批号 SA2010)
均购自武汉博士德生物工程有限公司,DAB显色试
剂盒(批号20080312,北京中山公司)。
1.4 仪器 2K15型高速台式离心机(美国 Sigma
公司);318MC型酶标仪(上海精科分析仪器有限公
司);37XB型倒置显微镜(上海光学仪器六厂);DM
2500型多功能显微镜(德国Leica公司)。
2 方法
2.1 细胞悬液制备 HepG2细胞株复苏后,RPMI
1640培养基(含10%胎牛血清、100U·mL-1双抗)
调细胞密度4×104个/mL,接种于25cm2细胞培养瓶
中,每瓶4mL,于37℃,5%CO2细胞培养箱内培养,
细胞生长汇合度达到80%以上,025%胰蛋白酶37
℃消化3min,细胞皱缩变圆时弃去胰蛋白酶液,完全
培养液制备4×104个/mL的细胞悬液,备用。
2.2 MTT检测抑制率 取上述制备好的 HepG2细
胞悬液接种于96孔培养板,100μL/孔,加入氧化苦
参碱至终浓度分别为 01,02,03,04,05,08,
1,2,5,8,10,15g·L-1,RPMI1640培养液补足至
200μL,每浓度设6个平行复孔,另设对照孔(不加
氧化苦参碱)。细胞悬液混匀后置于37℃,5%CO2
细胞培养箱培养,分别于24,48,72,96h吸弃培养
液,每孔加新鲜培养液100μL和 MTT10μL,暗室
中于微量震荡器上震摇2min,继续培养4h,吸弃孔
内上清液,每孔加入DMSO100μL,振摇5min,酶标
·6241·
第34卷第11期
2009年6月
Vol.34,Issue 11
June,2009
仪570nm测定吸光度(A),计算生长抑制率:
生长抑制率(%)=[(A对照组 -A实验组)/A对照组]×100%
2.3 HepG2细胞形态观察 载玻片置于24孔细胞培
养板内培养HepG2细胞,每孔加细胞悬液1mL,氧化苦
参碱终浓度同为2.2,另设对照组(不加氧化苦参碱)。
72h后取出载玻片,PBS漂洗3次,95%乙醇固定细胞
15min,HE染色,70%,80%,90%无水乙醇依次脱水,
最后二甲苯透明,树胶封片,镜下观察、拍照。
2.4 免疫组化分析 细胞培养同上,氧化苦参碱处
理浓度同2.3,72h后取出载玻片,PBS漂洗3次,
冷丙酮固定10min,3% H2O2室温灭活内源性酶10
min,滴加10%正常羊血清封闭20min,分别用P53,
Bcl2(鼠抗人)和 Bax(兔抗人)抗体处理盖玻片4
℃过夜后,加入相应的二抗和 SABC液室温各 20
min,DAB显色(按试剂盒说明书操作),苏木素复染
(P53除外,因其是细胞核着色),脱水透明封片,显
微镜下观察、拍照。
2.5 统计处理 细胞生长抑制率数据均采用 珋x±s
表示,采用SPSS120进行方差分析,P<005为有
统计学差异。
3 结果
3.1 氧化苦参碱对HepG2细胞增殖的抑制作用 氧
化苦参碱浓度低于1g·L-1对HepG2细胞抑制率变
化不明显;氧化苦参碱浓度大于1g·L-1时,抑制率
与时间和剂量呈正相关。浓度为8,15g·L-1与08
g·L-1的氧化苦参碱溶液处理HepG2细胞96h,前两
者与后者相比抑制率均差异显著(P<001)(图1)。
图1 不同浓度氧化苦参碱对 HepG2细胞抑制率的影响
3.2 细胞形态变化 细胞HE染色后,倒置显微镜
下观察结果显示:随氧化苦参碱浓度增大、作用时间
的延长细胞质染色程度由深变浅。对照组细胞似上
皮样细胞,细胞间相互连接密集生长;氧化苦参碱浓
度小于1g·L-1作用细胞形态无明显变化;1~8g
·L-1时细胞生长逐渐趋于分散,恶性形态表型逐渐
减弱。8g·L-1时细胞缩小,核浆比减小且细胞核
出现极性化,胞浆浓缩,胞浆内出现大小不等的空泡
(图2)。15g·L-1时几乎无贴壁细胞,细胞肿胀,
部分细胞出现膜破裂现象。
A.对照组;BF.氧化苦参碱05,1,2,5,8g·L-1剂量组。
图2 HepG2细胞爬片染色(HE,×400)
·7241·
第34卷第11期
2009年6月
Vol.34,Issue 11
June,2009
3.3 免疫组化法检测凋亡相关蛋白 与对照组相
比,氧化苦参碱处理组细胞 Bax蛋白表达增强,Bcl
2蛋白表达减弱,其阳性表现均为胞浆染色呈棕黄
色;P53蛋白表达减弱,其阳性表现为胞核被染呈棕
黄色(图3)。
4 讨论
A,C,E为P53,Bcl2,Bax对照组;B,D,F.为对应的氧化苦参碱处理组。
图3 HepG2细胞的免疫组化染色(SABC,×400)
氧化苦参碱是从苦参或苦豆子中分离提取的一
种药用活性成分,具有抗肿瘤[5]、增强肌体免疫力、
抗炎、抗心率失常[6]等药理作用。近年来,氧化苦
参碱在抗癌方面的研究倍受重视。而不同种类细胞
在不同培养条件下,氧化苦参碱的抑制作用及作用
机制均有不同报道。本研究发现不同浓度的氧化苦
参碱处理HepG2细胞对其抑制作用与作用机制均不
相同:低于1g·L-1时对细胞的抑制作用不明显;
1~8g·L-1对细胞有明显的抑制作用,且呈时间
剂量依赖性,其作用可能是诱导了细胞的分化或者
凋亡;浓度大于8g·L-1时,对细胞抑制明显,但时
间和剂量依赖性不明显,更多的是倾向于坏死。
Lennon[7]报道氧化苦参碱在一定浓度范围内可
刺激肿瘤细胞引起凋亡,而较高浓度则引起坏死。
本研究对8g·L-1作用下的细胞进行 HE染色,可
见胞体缩小、胞质凝缩、胞膜完整、出现空泡化等凋
亡形态学变化,这表明在此浓度氧化苦参碱对
HepG2细胞的抑制作用机制很可能是通过诱导细胞
凋亡来实现的;当氧化苦参碱浓度达到15g·L-1
时,对 HepG2细胞也具有显著的抑制作用(P<
001),但其死细胞数却随时间和剂量的增加明显
增多,细胞肿胀,部分细胞出现膜破裂现象,表明细
胞此时出现了坏死。此外,侯华新[3]等也以卵巢癌
SKOV3细胞为对象,得出相近的结论。氧化苦参
碱1~8g·L-1处理的 HepG2细胞 HE染色结果整
体观察,发现其颜色规律是随药物浓度增大、时间的
延长细胞质染色程度由深变浅。根据肿瘤细胞分化
程度的染色特征:肿瘤细胞分化越好、越成熟,细胞
质嗜碱性染色越减弱[8],由此判断氧化苦参碱诱导
了HepG2细胞的分化。
细胞凋亡是一个涉及多基因参与的过程,研究
证实 P53,Bcl2,Bax等基因都参与了凋亡的发生。
P53是目前研究最为广泛、系统的抑癌基因之一,
P53活性的调节主要是通过调控蛋白的稳定性,正
常生长的细胞中,P53蛋白的水平很低,但当出现如
DNA损伤、缺氧或是癌基因作用等危险信号时,P53
稳定性增强,蛋白水平迅速升高[9],因此对 P53蛋
白的表达水平进行测定,可间接的初步判断是否氧
化苦参碱诱导了细胞的凋亡。本研究对P53蛋白进
行了免疫组化实验,结果显示8g·L-1氧化苦参碱
处理的细胞与对照组相比 P53基因蛋白表达减弱,
这进一步说明了氧化苦参碱对体外培养的 HepG2细
胞的抑制作用可能是通过诱导其发生凋亡发生的。
Bax是一种促凋亡蛋白,而 Bcl2则是抗肿瘤细胞凋
·8241·
第34卷第11期
2009年6月
Vol.34,Issue 11
June,2009
亡的蛋白。Power[10]等认为 Bcl2/Bax是决定凋亡
的一个重要因素,当 Bax水平高于 Bcl2水平时,则
形成同源二聚体,诱导细胞凋亡,反之,Bcl2水平高
于Bax水平时,Bcl2和 Bax形成异源二聚体,抑制
细胞凋亡。本实验研究结果显示 Bcl2基因蛋白表
达减弱、Bax基因蛋白表达增强,此结果与 P53蛋白
的检测结果相符,都表明氧化苦参碱对细胞的抑制
作用是启动了细胞的凋亡。
综上所述,氧化苦参碱可显著抑制人肝癌细胞
HepG2细胞的增殖,且与时间和剂量呈正相关,氧化
苦参碱浓度在一定范围内可通过诱导HepG2细胞的
分化和凋亡来抑制其增殖,浓度超出一定范围时则
会导致HepG2细胞的坏死。
[参考文献]
[1] 程卫东,徐瑞峰.中药诱导肝癌细胞凋亡的研究进展[J].甘
肃中医,2004,17(4):44.
[2] 程光,章翔,费舟,等.苦参碱对325胶质瘤细胞的增殖抑制
和诱导凋亡作用[J].第四军医大学学报,2002,23(2):2152.
[3] 侯华新,黎丹戎,栾英姿,等.氧化苦参碱诱导卵巢癌 SKOV3
细胞凋亡作用的实验研究[J].中国药理学通报,2002,18
(6):704.
[4] 周炳刚,孙靖范,玉琢中,等.氧化苦参碱诱导人乳腺癌细胞
MCF7凋亡的实验研究[J].中国药理学通报,2002,18(6):
689.
[5] 晓东,宋关斌,严润彬,等.苦参碱和氧化苦参碱抗肿瘤作用
的研究进展[J].重庆大学学报,2005,28(6):125.
[6] 程书权.氧化苦参碱现代研究与应用进展[N].中国中医药
报,20040512
[7] LennonSV,MartinSJ,CoterTG.Dosedependentinduction
ofApoptosisinhumantumourcellinesbywidelydivergingstim
uli[J].CelProlif,1991,24(2):203.
[8] 上海市肿瘤医院病理科.实用肿瘤细胞学[M].上海:上海人
民出版社,1975:100.
[9] AshcroftM,VousdenKH.Regulationofp53stability[J].On
cogene,1999,18:7637.
[10] PowerC,FanningN,RedmondHP.Celularapoptosisandor
ganinjuryinsepsisareview[J].Shock,2002,18(3):197.
EfectsofoxymatrineonproliferationofHepG2cels
QINXuegong,YINJiyun,ZHANGHua
(ColegeofBiologicalScience&Technology,HeiLongJiangAugustFirstLandReclamationUniversity,Daqing163319,China)
[Abstract] Objective:ToinvestigatetheefectsandthemechanismsonoxymatrineinhibitingproliferationofHepG2cels.
Method:HepG2celswereexposuredtooxymatrine,finalconcentrationsofwhichwere01,02,03,04,05,08,1,2,5,8,
10,15g·L-1respectively,MTTmethodwasusedtodeterminetheinhibitingefectsofoxymatrineonHepG2celsproliferation,fol
lowedbyHaematoxylinandEosinstainingtoobservethecelmorphology.TheexpressionofP53,Bcl2andBaxwerefurtherinvestiga
tedbyImmunohistochemicalanalysis.Result:Oxymatrinebelowdosageof1g·L-1showedthelitleinhibitionefectontheHepG2
celsproliferationandexhibitedthesignificantinhibitionefectfrom1to8g·L-1inbothatimeanddosedependentmanner.Whereas
thedosagewasabove8g·L-1,oxymatrinedidn′tshowedthetimeanddosedependentrelationship.Theresultsofimmunohistochem
icalanalysisindicatedthattheexpressionofBaxobviouslyincreasedandthatofBcl2andP53decreased.Conclusion:Oxymatrine
couldnotablyinhibittheHepG2celsproliferationprobablyviaupregulatingtheexpressionoftheBaxanddownregulatingtheexpression
ofBcl2andP53.
[Keywords] oxymatrine;HepG2cel;proliferationinhibition;tumorrelatedprotein
[责任编辑 古云侠]
·9241·
第34卷第11期
2009年6月
Vol.34,Issue 11
June,2009